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REB 32(2): 68-72, 2014
RESPUESTAS AL PROBLEMA BIOQUÍMICO
Elizabeth Lira Silva1, Ricardo Jasso Chávez1 y Juan Pablo Pardo Vázquez2
1
Departamento de Bioquímica, Instituto Nacional de Cardiología.
2
Departamento de Bioquímica, Facultad de Medicina, UNAM.
Correo: eli_lira_sil@hotmail.com
En la figura 1 se muestra la dependencia de la
velocidad vs [Fru-6P] a concentraciones fijovariables de ATP, y se observa que la enzima
tiene un sitio catalítico y un sitio alostérico por
ATP, ya que concentraciones crecientes de ATP
inhiben la actividad, como previamente se ha
reportado para otras PFK-1. Para una enzima
alostérica con cooperatividad positiva, el gráfico
de dobles recíprocos (1/v vs 1/S ) genera una
curva cóncava hacia arriba, y la velocidad máxima
se puede obtener al graficar (1/v vs 1/Sn), donde
“n” se aproxima al número de sitios activos de
la enzima. Se ha reportado que la PFK-1 es un
tetrámero, por lo que “n” debería tener un valor
máximo de 4 (Moreno-Sánchez et al, 2012). A
partir de la abscisa al origen del gráfico 1/v vs
1/S4, ver figura 1, se determinó que la Vmax=
63.2 mU/mg.
Fig. 2. Gráfico de Hill (log (v/Vmax-v) vs log (Fru6P).
Fig. 1. Gráfica de 1/velocidad vs 1/(Fru-6P)4 a
pH 7.0.
Para conocer la afinidad del sitio alostérico
por el ATP, se debe determinar el número de
sitios o subunidades que forman la enzima.
Una forma de calcular el número aproximado
de sitios es realizando un gráfico de Hill (Figura
2). En la figura 2 se graficó el log (v/ [Vmax-v])
vs log (Fru-6P) a diferentes concentraciones de
ATP, donde la n = 2.4. Puesto que “n” representa
un número aproximado del verdadero número
de sitios que interactúan, el valor cercano a
2 se pueden interpretar de dos maneras: que
la enzima tiene dos sitios catalíticos con alta
cooperatividad, o que hay cuatro sitios catalíticos
con baja cooperatividad. Se ha descrito que
en células de mamífero la PFK-1 es un homo o
heterotetrámero (Moreno-Sánchez et al, 2012).
Es importante mencionar que para calcular la
pendiente se consideraron solo los puntos entre
0.12-0.26 mM de Fru-6P, debido a que a muy bajas
concentraciones de sustrato la velocidad ya no es
lineal debido a que la Fru-6P puede unirse a sitios
reguladores no catalíticos antes de unirse a los
sitios catalíticos. Sin embargo, a concentraciones
altas también es posible encontrar desviaciones de
la linealidad, debido a la dificultad para detectar
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pequeños cambios en la velocidad conforme se
incrementa la concentración de sustrato o a que
los sitios catalíticos poseen afinidades diferentes
(Segel, 1975).
Para determinar la afinidad del sitio alostérico
por el ATP se puede utilizar la ecuación de Búc para
inhibidores alostéricos (ecuación 3) o activadores
alostéricos (ecuación 4). En el gráfico de Búc (Fig.
3) se observa que a partir de la intersección en el
eje de las abscisas se puede obtener la constante
de disociación del sitio alostérico. El ATP inhibió con
una Ki = 0.95 mM, mientras que la afinidad por
ATP fue mayor (KsATP =0.1-0.34 mM), obtenida a
partir del regráfico de 1/(La)1/n vs [S], ver figura 4
y ecuación 3a. La constante de transición alostérica
fue L=1.66, lo que indica que la abundancia de
ambos estados (T y R) es muy similar.
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la actividad de la PFK-1L, mediante el ajuste no
lineal a partir de la ecuación de enlazamiento exclusivo (ecuación 5) utilizando el programa Origin
5.0 (Fig. 6), se observa como el comportamiento
hiperbólico de las curvas disminuye a partir de
1.0 mM de ATP. A pesar de que el ATP es un potente inhibidor alostérico para la PFK-1, es difícil
observar el comportamiento sigmoide de la curva
de velocidad en presencia del ATP debido a que la
actividad de esta enzima se determinó utilizando un buffer de reacción que contenía K+ y NH4+
(potentes activadores alostéricos de la PFK-1L)
(Moreno-Sánchez et al., 2012). Se ha descrito
que el ATP a bajas concentraciones actúa como
sustrato mientras que a concentraciones altas se
puede unir a un sitio no catalítico (inhibidor alostérico), causando un cambio conformacional que
impide la catálisis. La inhibición de la PFK-1L por
ATP tiene un sentido fisiológico debido a que la
función principal de la glucólisis es la producción
de ATP, es decir el flujo glucolítico se regula por la
velocidad de producción y consumo de ATP (Reed
et al., 2010).
Fig. 3. Gráfico de Búc.
En el gráfico de Horn Börnig (figura 5) es posible
calcular el número aproximado de subunidades “n”
a partir de la pendiente de cada línea recta. En este
caso, un valor de n = 1.93 sugiere que esta enzima
puede ser un tetrámero, en concordancia con los
resultados de la gráfica logarítmica de Hill (Fig. 2).
La constante de transición alostérica determinada
a partir de la ordenada al origen de la recta en
ausencia de efector fue L= 3.04 y L´= 270 y 140
para 1.0 y 2.5 mM de ATP respectivamente. Los
inhibidores incrementan la constante alostérica
efectiva de L a L´, lo que hace que la línea recta
se desplace por encima y de forma paralela a la
línea control.
Al analizar el efecto alostérico del ATP sobre
Fig. 4. Regráfico de 1/(La)1/4 vs [Fru-6P] para la
obtención de Ks y L.
El efecto de la [Fru-2,6BP] (un activador alostérico) sobre la PFK-1, se puede analizar a partir
de la curva de velocidad (Fig. 7), donde se observa
que esta enzima presenta un comportamiento
hiperbólico; la presencia de 5 µM de Fru-2,6BP
lleva al mínimo la cooperatividad de la PFK-1L
(donde n=1). Esto correlacionó con los datos
obtenidos por ajuste lineal mediante la ecuación
de Hill y por ajuste no lineal utilizando la ecuación
de enlazamiento exclusivo (Figuras 7 y 8). En la
figura 8, se graficó log (v/Vmax-v) vs log (Fru-6P) en
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Fig. 5. Gráfico de Horn-Börnig. Log (αVmax/v-α-1)
vs Log (1+α) con diferentes concentraciones de
inhibidor.
Lira Silva E, Jasso Chávez R y Pardo Vázquez JP
Fig. 7. Efecto de fru-2,6BP sobre la actividad de
PFK-1L a varias concentraciones de Fru-6P a pH
7.0 y 2.5mM ATP. Los valores se ajustaron a la
ecuación de enlazamiento exclusivo.
Fig. 6. Efecto del ATP sobre la actividad de PFK-1L
a diferentes concentraciones de Fru-6P a pH 7.0.
Los valores se ajustaron a la ecuación de enlazamiento exclusivo.
Fig. 8. Gráfico de Hill, log (v/Vmax-v) vs log (Fru-6P)
en presencia y ausencia de Fru-2,6BP.
ausencia y presencia de [Fru-2,6BP] para conocer
el valor de “n”. Se determinó que n= 1.66; esto
no significa que la enzima no sea un tetrámero,
sino que los activadores en la mezcla de reacción
minimizaron la cooperatividad de la PFK-1L.
Para determinar la afinidad de la Fru-2,6-BP por
el sitio alostérico se puede utilizar la ecuación de
Búc para activadores alostéricos (ecuación 4). En
el gráfico de Búc (Fig. 9) la intersección en el eje
de las abscisas indica la constante de disociación
para el sitio alostérico. La KA fue de 2.38 µM. Al
realizar el regráfico de 1/(La)1/4 vs [S] (Fig. 10),
se puede obtener el valor de Lα=222 a partir de
la ordenada al origen y la Ks=0.34 mM a partir de
la abscisa al origen (ver ecuación 4a). A partir de
este regráfico es posible obtener la constante de
transición alostérica L=22.7.
En el gráfico de Horn Börnig en presencia del
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Fig. 9. Gráfico de Búc.
Fig. 11. Gráfico de Horn-Börnig. Log (αVmax/v-α-1)
vs Log (1+α) con diferentes concentraciones de
activador.
previamente (Mediavilla et al, 2007), los cuales
se digitalizaron usando el software WinDig 2.5.
Estos errores pueden interferir en los cálculos y
causar la dispersión de datos, sobre todo cuando
los valores de log (1+α) son muy bajos o muy
altos.
CONCLUSIONES
Fig. 10. Regráfico de 1/(La)1/4 vs [Fru-6-P].
activador (Fig. 11) se obtuvo que n=2.39. Esto
correlaciona con los valores obtenidos a partir
del ajuste lineal. Se determinó la constante de
transición alosterica L= 5 a partir de la recta en
ausencia de activador y L´= 1.28 obtenida partir
de la recta en presencia de activador. Se ha descrito que los activadores disminuyen la constante
de transición alostérica efectiva de L a L´, lo que
hace que la línea recta se desplace por debajo y
de forma paralela a la línea control. Es importante
mencionar que la pendiente de estas rectas no fue
de -3 como se esperaba teóricamente (porque la
PFK-1L es un tetrámero n=4). Esto se debió quizás
a los errores introducidos durante el proceso de
transferencia de datos a partir de datos publicados
En este trabajo se determinaron los parámetros
cinéticos para la enzima alostérica PFK-1L de
Sparus aurata, en presencia de ATP (inhibidor
alostérico) o Fru-2,6BP (activador alostérico). Se
utilizaron diferentes métodos mediante ajuste lineal (Hill, Búc, Horn Börnig) y no lineal (utilizando
la ecuación de Hill y la ecuación de enlazamiento
exclusivo para inhibidores y activadores). Los parámetros cinéticos obtenidos bajo estas diferentes
aproximaciones se resumen en la Tabla III, donde
se puede observar que la KS para el ATP está en el
intervalo µM, por lo que con 0.5 mM ya se observa
inhibición. Por esto el ensayo enzimático debería
realizarse con concentraciones menores de ATP
que no sean inhibitorias.
Con base en el análisis cinético realizado, es
posible concluir que ningún método lineal por sí
solo permite obtener todos los parámetros cinéticos
KS, n, L, Ki, KA. Mientras que el ajuste no lineal
permitió obtener todos los parámetros cinéticos
con valores muy similares a los obtenidos con los
diferentes métodos gráficos (ajuste lineal) excepto
para la KS para ATP y el valor de L, en donde los
distintos métodos dan valores muy diferentes,
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Lira Silva E, Jasso Chávez R y Pardo Vázquez JP
Tabla III
Parametros cinéticos obtenidos a partir de los diferentes métodos por ajuste lineal y ajuste no lineal
Parámetros
cinéticos
Ajuste lineal
Lineal
Vmax (mU/mg)
63.2
KS (mM) ATP
0.34
Hill
Búc
Ajuste no lineal
Horn Börnig
Enlazamiento
exclusivo
41.4-63.8
0.1-0.34
0.005-0.006
Ki (mM) ATP
0.95
0.9
KA (µM) Fru-2,6BP
2.38
2.38
L
1.6-1.98
n
1.6-2.4
esto probablemente se debe a que por simplicidad
el análisis se realizó utilizando consideraciones
de equilibrio rápido y quizás esto no se aplique
del todo a una enzima alostérica, por lo que para
fines experimentales debería realizarse otro tipo
de análisis complejos.
Aunque el análisis cinético sugiere que la PFK-1L
es un tetrámero, con esto no es posible concluir el
estado oligomérico de la enzima, por lo cual sería
conveniente realizar experimentos de exclusión
molecular para determinar la estructura de la
enzima.
Finalmente, es importante mencionar que el
interés por estudiar enzimas como la PFK-1L de
Sparus aurata, radica en identificar el posible papel
que esta enzima tiene en la adaptación metabólica
frente a un cambio de dieta (proteínas por carbohidratos). Por lo que analizar sus características
cinéticas y conocer sus moduladores alostéricos
podría permitir modificarla ya que puede ser un
punto de control metabólico en la glicolisis y con
ello favorecer el desarrollo de fármacos (activadores alostéricos). En este caso podría ofrecer alternativas terapéuticas para mejorar el tratamiento
de la diabetes II en mamíferos.
1.66
3-5
116
1.93-2.39
2.01
REFERENCIAS
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Flux control by an over-expressed but strongly
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cells. J Cell Biochem. 113(5):1692-703.