hemocromatosis y hemosiderosis. Los niveles circulantes de ferritina han sido utilizados

Ferritina
Código de producto: 2875-300
Uso previsto: Determinación cuantitativa de la
concentración de Ferritina circulante en suero
humano por prueba inmunológica de
quimioluminiscencia en microplaca (CLIA)
RESUMEN Y EXPLICACIÓN DE LA PRUEBA:
La Ferritina, en circulación, medida en los niveles de
suero es un índice satisfactorio de almacenamiento de
hierro del cuerpo. El almacenamiento de hierro se mide
directamente con la flebotomía cuantitativa, los
estudios de absorción de hierro, las biopsias hepáticas
y los exámenes microscópicos de los aspirados de
médula ósea. La deficiencia de hierro (anemia) y la
sobrecarga de hierro (hemocromatosis) son
condiciones asociadas con el almacenamiento de
hierro en el cuerpo o falta de ella. Las mediciones de la
capacidad de fijación de hierro total (TIBC) han sido
ampliamente utilizadas como auxiliares en la
determinación de estas condiciones. Sin embargo, un
análisis de ferritina sérica es simplemente significa más
sensible y fiable de la demostración estos trastornos.
Ferritina está presente en la sangre en concentraciones
muy bajas. Normalmente, alrededor del 1% de hierro
en plasma se encuentra en ferritina. La ferritina en
plasma está en equilibrio con las reservas corporales, y
las variaciones de almacenamiento de hierro. Las
concentraciones plasmáticas de la disminución de
ferritina muy temprano en condiciones anémicas como
el desarrollo de la deficiencia de hierro, mucho antes
de que los cambios se observan en la concentración de
hemoglobina en la sangre, el tamaño de los eritrocitos
y TIBC. Por lo tanto la medición de la ferritina sérica
puede servir como un indicador temprano de la
deficiencia de hierro que no es complicado por otros
problemas concurrentes. Al mismo tiempo, un gran
número de enfermedades crónicas puede resultar en
niveles elevados de ferritina sérica. Estas incluyen
infecciones crónicas, enfermedades inflamatorias
crónicas como la artritis reumatoide, enfermedades del
corazón y algunos otros tumores malignos,
especialmente, los linfomas, leucemias, cáncer de
mama y el neuroblastoma. En los pacientes que tienen
estas enfermedades crónicas, junto con la deficiencia
de hierro, los niveles de ferritina sérica son normales.
Un aumento de la ferritina circulante se observa en
pacientes con hepatitis viral o después de una lesión
hepática tóxica como una liberación de ferritina en las
células del hígado lesionado. Los niveles elevados de
ferritina sérica se encuentran en pacientes con
hemocromatosis y hemosiderosis.
Los niveles circulantes de ferritina han sido utilizados
por los médicos, como una ayuda en el diagnóstico de
varios otros trastornos. Se ha demostrado como una
herramienta valiosa en el diagnóstico diferencial de la
anemia por deficiencia de hierro y anemia debido a
otros trastornos y, en la exposición del agotamiento de
las reservas de hierro mucho antes de la aparición de
la anemia. determinaciones de serie se han utilizado
para controlar, de forma no invasiva, la erosión de
almacenamiento de hierro durante el embarazo y en
pacientes sometidos a diálisis. La ferritina sérica es
habitualmente utilizado como una pantalla para la
deficiencia de hierro para una variedad de poblaciones
como donantes de sangre y las personas que reciben
transfusiones regulares de sangre o la terapia de
reemplazo de hierro.
En este método, el calibrador de ferritina, muestra del
paciente o el control primero se agrega a un pozo
cubierto de streptavidin. anticuerpo monoclonal
biotinilado (específico para ferritina) se agrega y se
mezclan los reactivos. resultados de la reacción entre
el anticuerpo biotinilado ferritina y ferritina nativos para
formar un complejo inmune que se deposita en la
estreptavidina pozo cubierto. El exceso de proteínas de
suero son lavados a través de un paso de lavado. Otro
de anticuerpos específicos de ferritina, marcado con
una enzima, se añade a los pocillos. El conjugado
anticuerpo se une a la ferritina ya inmovilizado en el
pozo. El exceso de la enzima se lava a través de un
paso de lavado. Una señal de luz se genera mediante
la adición de un sustrato. La intensidad de la
generación de luz es directamente proporcional a la
concentración de ferritina en la muestra.
El empleo de varias referencias del suero de los niveles
de ferritina conocida permite la construcción de una
curva dosis-respuesta de la actividad y la
concentración. De la comparación de la curva dosisrespuesta, la actividad de un espécimen desconocido
se puede correlacionar con la concentración de
ferritina..
PRINCIPIO
Ag (ferritina) + BtnAb (m)
Ag (ferritina)-BtnAb (m) k
-A
BtnAb (m) = anticuerpo monoclonal biotinilado
(Cantidad de la Franquicia)
AgI (ferritina) = Nativo de antígeno (variable en
cantidad)
Ag (ferritina)-BtnAb (m) = complejos antígenoanticuerpo (Variable Quan.))
Ka = constante de velocidad de la Asociación
K-a = constante de disociación Tarifa
Ag (ferritina)-BtnAb (m) + StreptavidinC.W. ⇒
inmovilizados complejos (IC)
StreptavidinC.W. = Estreptavidina inmovilizada en bien
Complejo inmovilizado (IC) = Ag-Ac unidos a la así
Después de un período de incubación adecuado, la
fracción del anticuerpo-antígeno adsorbido se separa
del antígeno desatado por la decantación o aspiración.
Otro anticuerpo (dirigido a un epítopo diferente)
marcado con una enzima se añade. Otra interacción se
produce para formar un conjugado complejo
anticuerpo-antígeno-anticuerpo biotinilado-en la
superficie de los pozos. El exceso de la enzima se lava
a través de un paso de lavado. Un sustrato adecuado,
se añade para producir mensurables luz con el uso de
un luminómetro microplaca. La actividad de la enzima
en el pozo es directamente proporcional a la
concentración de antígeno libre nativos. Al utilizar
varias referencias distintas de suero de la
concentración de antígeno conocido, una curva dosisrespuesta se pueden generar a partir de la cual la
concentración del antígeno de un desconocido puede
ser comprobada.
k
benz
Enz
(IC) + Ab (ferritina) Ab (ferritina) - IC
k
-B EnzAb (ferritina) = anticuerpo marcado con (exceso
de cantidad)
EnzAb (ferritina) - IC = antígeno-anticuerpo complejo
kb = constante de velocidad de la Asociación
k-b = constante de disociación Tarifa.
Ensayo inmunoenzimométrico
Materiales Provistos:
Los reactivos esenciales requeridos por un ensayo
inmunoenzimático de incluir una alta afinidad y
especificidad de anticuerpos (enzima e inmovilizado),
con el reconocimiento epítopo diferente y distinto, en
exceso, y antígeno nativo. En este procedimiento, la
inmovilización se produce durante el ensayo en la
superficie de una microplaca bien a través de la
interacción de estreptavidina recubierta por el
anticuerpo bien y exógeno agregada biotinilado
monoclonal anti-ferritina.
Mezclando el anticuerpo monoclonal biotinilado, y un
suero que contiene el antígeno nativo, los resultados
de la reacción entre el antígeno nativo y el anticuerpo,
formando un complejo antígeno-anticuerpo.
Simultáneamente, la biotina unida al anticuerpo se une
a la estreptavidina recubierta por los micropocillos
resultando en la inmovilización del complejo. La
interacción es ilustrada por la siguiente ecuación: k
una
A.
B.
C.
Calibradores de Ferritina) 1.0 ml/vial –
Iconos A-F Seis(6) viales de referencia de
Antígeno PSA en niveles de 0(A), 10(B),
50(C), 150(D), 400(E) y 800(F) ng/ml.
Almacenar de 2 – 8º C Se agregó
preservativo. Nota: Los calibradores, a
base de proteínas de la matriz tamponada,
se realizará con una preparación de
referencia, que se comparó con la primera
norma internacional de la OMS 94/572.
Reactivo de Ferritina Biotina - 13 ml/vial
Icon Un (1) vial conteniendo anticuerpo
etiquetado con enzima, IgG monoclonal de
ratón con biotina en buffer , colorante y
preservativo. Almacenar de 2 – 8º C
Reactivo trazador de Ferritina – 13 ml/vial
Icon Un vial conteniendo peroxidasa de
rábano picante etiquetada con anticuerpo
D.
E.
F.
G.
H.
anti Ferritina IgG en buffer, colorante y
preservante. Almacenar a 2 – 8º C.
Placa de 96 pocillos de reacción cubiertos
con estreptavidína y empacada en bolsa de
aluminio con un agente desecante.
Almacenar de 2 – 8º C
Solución de lavado concentrado – 20 ml
Un (1) vial conteniendo surfactante en
buffer salino. Se agregó preservativo.
Almacenar de 2 – 8º C (ver sección
Preparación de Reactivos)
Reactivo A – 7.0 ml/vial Una (1) botella
conteniendo luminol en buffer. Almacenar
de 2 – 8º C (ver sección Preparación de
Reactivos)
Reactivo B – 7.0 ml/vial Una (1) botella
conteniendo Peróxido de Hidrógeno (H2O2)
en buffer. Almacenar de 2 – 8º C (ver
sección Preparación de Reactivos)
Inserto de instrucciones
Nota 1: No usar los reactivos después de su fecha de
expiración.
Nota 2: Los reactivos abiertos son estables por sesenta
(60) días cuando se almacenan de 2 a 8º C
Nota 3: Los reactivos anteriores son para microplaca
de 96 pocillos.
Materiales requeridos pero no Provistos:
1.- Pipeta capaz de dispensar 25 ul con precisión de
1.5 %.
2.- Dispensador de capacidad: 0.100 ml y a 0.350 ml
con precisión de 1.5 % (opcional)
3.- Lavador de microplacas o una pizeta (opcional).
4.- Luminómetro de microplacas.
5.- Papel absorbente para secar los pocillos de la
microplacas.
6.- Cubierta plástica para tapar las microplacas durante
las incubaciones.
7.- Aspirador al vacío (opcional) para los procesos de
lavado.
8.- Reloj cronómetro.
9.- Materiales de control de calidad.
PRECAUCIONES:
Para uso de diagnóstico in Vitro.
No es para usar externa o internamente en humanos o
animales.
Todos los productos que contienen suero humano han
sido probados no-reactivos a Hepatitis B antígeno de
superficie, HIV 1 y 2 y HCV por los exámenes de la
FDA . Puesto que ninguna prueba conocida puede
asegurar completamente la ausencia de agentes
infecciosos, todos los productos que contienen suero
humano deben ser manejados como potencialmente
peligrosos y capaces de transmitir enfermedades
infecciosas.
Los procedimientos de las Buenas Prácticas de
Laboratorio para el manejo de productos sanguíneos
se pueden encontrar en el Centro de Control de
Enfermedades del Instituto Nacional de Salud ,
RECOLECCION Y PREPARACION DE LAS
MUESTRAS:
Las muestras deben ser suero humano y se deben
tener las debidas precauciones en el momento de su
recolección y manejo. Las muestras de sangre deben
tomarse en tubos al vacío tapa roja sin aditivos. Dejar
que la sangre coagule. Centrifugar las muestras para
separar el suero de las células.
Las muestras deben refrigerarse de +2º a + 8º C por un
máximo período de 5 días. Si la muestra no puede ser
Examinada en este tiempo debe almacenarse a – 20º
C hasta por 30 días. Evitar descongelar repetidas
veces. Cuando se va a trabajar por duplicado, se
necesita 0.100 ml de muestra.
PREPARACION DE LOS REACTIVOS:
1.- Bufer de lavado:
Diluir el contenido de la solución de lavado concentrada
en 1,000 ml de agua destilada o desionizada en un
depósito adecuado. Almacenar a temperatura
ambiente de + 20º a + 27º C
2.- Solución de reactivo de trabajo:
Almacenar de + 2º a + 8º C. Determinar la cantidad de
reactivo necesario y preparar mezclando en
proporciones iguales el reactivo A y reactivo B en un
depósito limpio.
Por ejemplo agregar 1 ml de A y 1 ml de B para 2 tiras
de 8 pocillos.
PROCEDIMIENTO DE ENSAYO:
Antes de proceder con el ensayo llevar todos los
reactivos, sueros de referencia y controles a
temperatura ambiente (20 a + 27°C)
1. Marcar los micropocillos para cada suero de
referencia, control y muestra de paciente a ser
ensayada en duplicado.
NOTA: Cubrir los pocillos sin usar con el sellador de
placas, sellar en la bolsa de plástico con desecante,
y almacenar a 2-8 ºC
2. Pipetear 0.025 ml (50 ul) del apropiado suero de
referencia, control o muestra en los pocillos
asignados.
3. Agregar 0.100 ml (100 ul) de reactivo de Ferritina
Biotina a cada pocillo. Es muy importante dispensar
todos los reactivos cerca del fondo del pocillo
recubierto.
4. Mover suavemente la placa por 20 a 30 segundos
para mezclar y cubrir.
5. Incubar 30 minutos a temperatura ambiente.
6. Descartar el contenido de las microplacas por
decantación o aspiración. Si se decanta dar un
golpecito y secar con papel absorbente.
7. Agregar 350 μl de bufer de lavado (ver preparación
de reactivos) decantar (golpear y secar) o aspirar.
Repetir 4 veces adicionales para un total de 5
lavados. Se puede usar un lavador manual o
automático. Seguir las instrucciones del fabricante
para el uso apropiado. Si se emplea una pizeta ,
llenar cada pocillo por inclinación del depósito
(evitando formar burbujas)
para dispensar la
solución de lavado. Decantar la sol. De lavado y
repetir el procedimiento 4 veces adicionales.
8. Agregar 0.100 ml (100 ul) de reactivo Trazador de
Ferritina a todos los pocillos (ver Preparación de
reactivos). Siempre agregar los reactivos en el
mismo orden para minimizar las diferencias en el
tiempo de reacción de cada pocillo.
9. Incubar a temperatura ambiente por 30 minutos.
10. Descartar el contenido de las microplacas por
decantación o aspiración. Si se decanta dar un
golpecito y secar con papel absorbente.
11. Agregar 350 μl de bufer de lavado (ver preparación
de reactivos) decantar (golpear y secar) o aspirar.
Repetir 4 veces adicionales para un total de 5
lavados. Se puede usar un lavador manual o
automático. Seguir las instrucciones del fabricante
para el uso apropiado. Si se emplea una pizeta ,
llenar cada pocillo por inclinación del depósito
(evitando formar burbujas)
para dispensar la
solución de lavado. Decantar la sol. De lavado y
repetir el procedimiento 4 veces adicionales.
12. Agregar 0.100 ml (100 ul) de reactivo de trabajo a
todos los pocillos (ver Preparación de reactivos).
Siempre agregar los reactivos en el mismo orden
para minimizar las diferencias en el tiempo de
reacción de cada pocillo.
13. Incubar a temperatura ambiente por 5 minutos en
oscuridad.
14. Leer las unidades relativas de luz en cada pocillo,
por 0.2 – 1.0 segundos, usando un luminómetro de
microplacas. Los resultados deberán ser leídos
entre los 30 minutos después e agregar la solución
de sustrato.
Muestra
ID
Pozo
#
ULR
(A)
CONTROL DE CALIDAD
Cal A
Cada laboratorio debe correr controles en niveles bajo,
medio y alto para poder monitorear el perfomance de la
prueba. Estos controles deben ser trabajados como
desconocidos y los valores determinados en cada
prueba. Se debe llevar un registro del control de
calidad para monitorear el perfomance de los reactivos.
Se deben emplear métodos estadísticos pertinentes.
Cada laboratorio individualmente debe establecer sus
propios límites de aceptación. Una desviación
significante de los resultados puede indicarnos un
cambio no percibido en las condiciones experimentales
o la degradación de los reactivos del kit. Se deben
usar reactivos frescos para determinar las razones de
las variaciones.
Cal B
RESULTADOS:
Paciente
A1
B1
C1
D1
E1
F1
G1
H1
A2
B2
C2
D2
E2
F2
G2
H2
A3
B3
162
187
4794
4930
26319
26198
60003
59788
82368
81381
99571
100429
6994
6195
50230
50270
37647
35499
Se usa una curva de respuesta para determinar la
concentración de Ferritina circulante en la muestra del
paciente.
1.
Registrar el URL (Unidad de Luz Relativa)
obtenido en el impreso del lector de
microplaca como se indica en el ejemplo 1.
2.
Plotear las URL para cada suero de
referencia versus la concentración de
Ferritina correspondiente en ng/ml en un
papel lineal gráfico (no promediar los
3.
4.
duplicados de los sueros de referencia
antes de plotearlos)
Dibujar la curva que mejor se ajusta a
través de los puntos ploteados.
Para determinar la concentración de
Ferritina en un desconocido, localice la
media RLU para cada desconocido en el
eje vertical de la gráfica, encontrar el punto
de intersección de la curva, y leer la
concentración (en ng / ml) en el eje
horizontal de la gráfico (los duplicados de lo
desconocido puede ser un promedio, como
se indica). (Ver Figura 1) En el siguiente
ejemplo el promedio de los URL (36573)
del desconocido interfecta la curva de
calibración (73 ng/ml) indicando así la
concentración de Ferritina. (ver Figura 1)
instrumentos que se pueden utilizar para medir la
producción de luz.
FIGURA 1
120000
100000
80000
ULR
“Bioseguridad en Microbiología y Laboratorio
Biomédicos” 2º Ed. 1988 HHS.
60000
40000
20000
Paciente
0
0
Nota 1: Aplicaciones informáticas de reducción
de datos diseñado para
ensayos de quimioluminiscencia también puede
ser utilizado para la reducción de datos. Los
duplicados de lo desconocido puede ser un
promedio, como se indica (ver Figura 1).
Nota 2: Monobind puede ayudar al laboratorio en
la compra e implementación de equipos y
software para medir e interpretar los datos de
quimioluminiscencia.
200
400
600
800
1000
Valores de Ferritina en mUI/ ml
PARAMETROS DE CONTROL DE CALIDAD
Para que los resultados del análisis sean considerados
válidos los siguientes criterios deben cumplirse:
1. La curva de respuesta de dosis debe estar dentro de
los parámetros establecidos.
2. Cuatro de cada seis puntos ploteados de control de
calidad deben estar dentro de los rangos establecidos.
ANALISIS DE RIESGO
EJEMPLO 1
A.
Cal C
Cal D
Cal E
Cal F
Cont 1
Cont 2
Media
URL
(B)
162
Valor
(ng/ml)
4862
10
26259
50
59896
150
81875
400
100000
800
6594
13
50250
114
36573
73
0
* Los datos presentados en el Ejemplo 1 y Figura 1 es
sólo para ilustración y no debe ser utilizado en lugar de
una curva dosis-respuesta preparada con cada ensayo.
Además, los RLU de los calibradores han sido
normalizados a 100,000 RLU / s para el calibrador F
(mayor salida de luz). Esta conversión minimiza las
diferencias causadas por la eficiencia de los distintos
Perfomance de la prueba
1. Es importante que el tiempo de reacción en cada
pozo se mantiene constante para obtener resultados
reproducibles.
2. Pipeteo de muestras no debe extenderse más allá
de diez (10) minutos para evitar la deriva del análisis.
3. altamente lipémicas, hemolizadas o muy
contaminación de la muestra (s) no debe utilizarse.
4. Si más de un (1) placa se utiliza, se recomienda
repetir la curva dosis-respuesta.
5. La adición de reactivos de la señal inicia una
reacción cinética, por lo tanto el reactivo de la señal (s)
se debe agregar en la misma secuencia para eliminar
cualquier desviación de tiempo durante la reacción.
6. Si no se retira la solución adecuadamente en la
aspiración o la decantación (s) puede dar lugar a la
réplica pobre ya resultados falsos.
7. Utilizar los componentes del mismo lote. No mezcle
los reactivos de diferentes lotes.
8. Precisa y una dosificación precisa, así como
después de la hora exacta y los requisitos de
temperatura prescrita son esenciales. Cualquier
desviación de las instrucciones de uso Monobind los
resultados pueden ser inexactos.
9. Todas las normas nacionales aplicables,
reglamentos y leyes, incluyendo pero no limitado a, los
procedimientos de laboratorio adecuadas, deben ser
estrictamente seguidas para asegurar el cumplimiento
y el uso adecuado del dispositivo.
10. Es importante para calibrar todo el equipo por
ejemplo, Pipetas, lectores, lavadoras y / o los
instrumentos automatizados utilizados con este
dispositivo, y para realizar el mantenimiento preventivo
de rutina.
11. Análisis de riesgos-como exige el marcado CE IVD
Directiva 98/79/CE - para este y otros dispositivos,
mediante Monobind, se puede solicitar a través de
correo electrónico de Monobind@monobind.com
B.
Interpretación
1 Los resultados de laboratorio sólo son sólo un
aspecto para la determinación de la atención al
paciente y no debe ser la única base para la terapia,
particularmente si el conflicto resultados con otros
determinantes.
2 Para los resultados de pruebas válidas, los controles
adecuados y otros parámetros deben estar dentro de
los rangos de la lista y los requisitos de ensayo.
3 Si los estuches de pruebas se alteran, por ejemplo,
partes de mezcla de diferentes kits, lo que podría
producir resultados falsos de las pruebas, o si los
resultados son mal interpretados, Monobind no tendrá
ninguna responsabilidad.
4 Si la reducción de datos de la computadora
controlada se utiliza para interpretar los resultados de
la prueba, es imperativo que los valores previstos para
los calibradores comprendidos dentro del 10% de las
concentraciones asignadas.
5 de ferritina en suero contiene 20-25% de hierro: su
concentración es una buena medida de las reservas de
hierro en las personas normales y personas con
deficiencia de hierro. Los niveles de ferritina <10 ng /
ml, la anemia por deficiencia de hierro por lo general
indican. Niveles por encima de 250 ng / ml
normalmente indican hemocromatosis causado por
ciertas enfermedades hepáticas. El ayuno, la leucemia
aguda, enfermedades inflamatorias, el consumo regular
de alcohol y algunas inflamaciones del hígado que
causa niveles elevados de ferritina en plasma también
RANGO DE VALORES ESPERADO
Hombres
Mujeres
15 – 230 ng/ml
10 – 126 ng/ml
Es importante tener en cuenta que el establecimiento
de rangos de valores los cuales pueden ser esperados
por un método determinado para una población de
“personas normales” depende de una multiplicidad de
factores : la especificidad del método ,la población
examinada y la precisión del método en las manos del
analista. Por estas razones cada laboratorio debe
establecer sus propios rangos de valores esperados.
CARACTERISTICAS DE PERFOMANCE
A. Precisión:
Los ensayos de precisión interno y externo de este
método se determinó por análisis en tres diferentes
niveles de sueros control. El número, el valor medio,
desviación estándar y coeficiente de variación para
cada uno de estos sueros de control se presentan en
los cuadros 2 y 3.
TABLA 2
Prueba de precisión interno( ng/ml)
Método
Este método (X)
Referencia (Y)
Media
56.2
55.3
Coef Co.
0.994
Y= -0.2028 + 0.989 (X)
Muestra
Nivel 1
Nivel 2
Nivel 3
N
20
20
20
X
54.4
107.1
310.2
S.D.
2.9
8.7
18.5
C.V.
5.3%
8.1%
6.0%
TABLA 3
Prueba de precisión externo ( ng/ml)
Muestra
Nivel 1
Nivel 2
Nivel 3
N
10
10
10
X
52.4
112.8
301.5
S.D.
2.3
9.4
21.2
C.V.
4.4%
8.3%
7.0%
* Medido en 10 experimentos por duplicado.
B. Sensibilidad
La sensibilidad (límite de detección) fue comprobada
por la determinación de la variabilidad del suero
calibrador 0mIU/ml y el uso de la 2σ (95% de certeza)
estadística para el cálculo de la dosis mínima. Se
determinó que 0,5 ng / ml.
C. Especificidad
La reacción cruzada de este método a sustancias
seleccionadas por adición de la sustancia interferente a
un suero matriz fue determinada en varias
concentraciones. La reacción cruzada fue calculada
derivando un radio entre la dosis de interferencia de la
sustancia y la dosis de Ferritina necesaria para
producir la misma intensidad de luz
Sustancia
Ferritina de Higado
Ferritina de Bazo
Ferritina de corazon
humano
Hemoglobina
Reacción Cruzada
100 %
100 %
< 1.0 %
< 0.1 %
D. Exactitud
La ferritina AccuLite ™ prueba de CLIA fue comparado
con un inmunoensayo enzimático de referencia
microplaca (ELISA). Las muestras biológicas de las
concentraciones bajas, normales y elevadas fueron
analizadas. El número total de especimenes fue 126.
La ecuación de regresión del cuadrado y el coeficiente
de correlación se calcularon para este método en
comparación con el método de referencia. Los datos
obtenidos se muestran en la Tabla 4
TABLA 4
Análisis de regresión cuadrada
Monobind ofrece varios instrumentos el Impuls 2
Luminómetro CLIA Lector de placa, diseñado mano a
mano con nuestros productos y capacidad de 2 puntos
de calibración. Visite nuestro sitio en Internet para
mayor información.
REFERENCIAS:
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quelable y ferritina en la hemocromatosis idiopática", el
H. Jour Hematología, 27, 219 (1974).
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Un Burtis Saunders tercera edición, el Banco Mundial,
Filadelfia (1999).
Versión: 2 Fecha: 112.210 ACA: 0383 Gato #: 2875300
INSTRUMENTOS Y APLICACIONES
Los inmunoensayos de Monobind son productos
diseñados para trabajar en ambos ambientes de
laboratorio Manual y Automatizado. AccuBind y
AccuLite son compatibles con cualquier equipo abierto
incluyendo analizadores químicos, lectores y lavadores
de microplaca. Podemos tener la aplicación
desarrollada para su equipo en particular, visite nuestra
página en Internet.
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