PRÁCTICAS DE BIOTECNOLOGÍA VEGETAL MICROPROPAGACIÓN Y ENRAIZAMIENTO DE EXPLANTOS DE OLIVO CULTIVADOS IN VITRO 1. INTRODUCCIÓN La finalidad de la multiplicación vegetativa es obtener plantas genéticamente idénticas entre sí y con respecto a la planta materna y que si se cultivan en condiciones iguales darán lugar a un mismo fenotipo básico. Formación de yemas adventicias Organogénesis por vía directa Segmentos nodales Desarrollo de yemas preexistentes Yemas axilares En esta práctica se utilizará un método de multiplicación vegetativa por organogénesis directa, concretamente la multiplicación mediante segmentos nodales. 2. OBJETIVO. Hacer que el alumno practique procedimientos de micropropagación vegetativa y de manipulación de material vegetal en condiciones de asepsia. 3. MATERIAL Explantos de olivo cultivados in vitro Tubos para cultivo in vitro con medio DKW para multiplicación vegetativa de olivo Tubos para cultivo in vitro con medio DKW para enraizamiento Pinzas y bisturíes autoclavados Azulejo y papeles de filtro estériles Agua destilada estéril Etanol del 70% Recipiente con etanol absoluto para sumergir el material de disección antes de flamearlo Cámara de flujo laminar Mechero de alcohol Cerillas 4. METODOLOGÍA Los alumnos extraerán los explantos del tubo de cultivo, los depositarán sobre una superficie estéril y los cortarán en fragmentos que tengan un mínimo de dos pares de hojas. Al explanto basal se le elimina el callo, en caso de existir. La mitad de los fragmentos se introducirán en medio de crecimiento y la otra mitad en medio de enraizamiento 4.1. Multiplicación vegetativa de explantos de olivo. 4.2.1. Composición de medio litro de medio de crecimiento para el olivo 50 ml de Solución A del medio DKW 50 ml de Solución B " 50 ml de Solución C " 50 ml de Solución D " 1 1 ml de Solución E del medio DKW 5 ml de Solución F1 " 5 ml de Solución F2 " 50 ml de Solución G " 50 ml de Solución H " Añadir 15 g de sacarosa Añadir H2O destilada hasta los 450 ml y agitar. Estos ingredientes serán comunes a los tres tipos de medio de cultivo, que difieren entre sí sólo en el contenido en hormonas del crecimiento: Medio de cultivo A: Le añadiremos: 500 l de solución stock de IBA de 1 g/l (1000X) (para prepararla vamos a pesar 0.01 g y lo vamos a llevar a 10 ml finales con agua destilada) 1ml de solución stock de BAP (8g/l) (1000X) (para prepararla vamos a pesar 0.04 g y lo vamos a llevar a 10 ml finales con agua destilada) Medio de cultivo B 500 l de solución stock de IBA de 1 g/l (1000X) (para prepararla vamos a pesar 0.01 g y lo vamos a llevar a 10 ml finales con agua destilada) Añadiremos 500 l de una solución stock de zeatina de 2 g/l (1000X) (para prepararla pondremos 0.02 g de zeatina y lo vamos a llevar a 10 ml finales con agua destilada) Medio de cultivo C: 500 l de solución stock de IBA de 1 g/l (1000X) (para prepararla vamos a pesar 0.01 g y lo vamos a llevar a 10 ml finales con agua destilada) Añadiremos 1ml de una solución stock de 2iP de 4 g/l (1000X) (para prepararla pondremos 0.02 g de 2iP y lo vamos a llevar a 10 ml finales con agua destilada) Enrasar a 500 ml. Ajustar el pH = 5.8 Añadir 3.5 g de agar Se disuelve el agar en un microondas Se reparte en tubos de cultivo a razón de 15 ml/tubo, se tapan y se autoclavan 20 minutos a 121 ºC 4.2.2. Condiciones de cultivo Una vez fragmentado el explanto inicial, los segmentos nodales se introducen en el tubo de cultivo, se flamea su boca, se tapa y se lleva a la cámara de cultivo con un fotoperiodo de 16 h de luz y 8 de oscuridad y temperatura diurna de 25 ºC y nocturna de 20 ºC. 4.2. Enraizamiento de explantos de olivo 4.2.1. Composición de medio litro de medio de enraizamiento 25 ml de Solución A del medio DKW 25 ml de Solución B " 25 ml de Solución C " 25 ml de Solución D " 0.5 ml de Solución E " 25 ml de Solución H " 2 Añadir H2O destilada sin llegar al litro y agitar. Añadir 10 g de Sacarosa Medio de enraizamiento A Añadir 500 l de solución stock de AIA de 4 g/l (1000X) Ajustar a pH = 5.8 Enrasar a 1 litro Añadir 3.5 g de agar. Medio de enraizamiento B Añadir 1 ml de solución stock de IBA Ajustar a pH = 5.8 Enrasar a 1 litro Añadir 3.5 g de agar. Medio de enraizamiento C Añadir 750 l de solución stock de IBA Ajustar a pH = 5.8 Enrasar a 1 litro Añadir 1 g de gelrite. Se disuelve el agar en un microondas Se reparte en tubos de cultivo a razón de 15 ml/tubo, se tapan y se autoclavan 20 minutos a 121 ºC 4.2.2. Condiciones de cultivo para el enraizamiento Para el enraizamiento se necesita tomar un explanto que tenga un mínimo de dos entrenudos, es decir, 2 pares de hojas. Se deben mantener en oscuridad durante 15 días y a 25º C. 5. BIBLIOGRAFÍA Driver, J.A., Kuniyuki, A.H. (1984). In vitro propagation of Paradox walnut rootstock. Hort. Science, 19 44: 507-509. Revilla, M.A.; Pacheco, J.; Casares, A. y Rodríguez, R. In vitro reinvigoration of mature olive trees (Olea europaea L.) through micrografting. In vitro Cell. Dev. Biol. Plant 32:257-261 1996 Mencuccini, M.; Michelli, M.; Standardi, A. 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