Cvindv2.pdf

SUMARIO
V
VII
AUTORES
PRÓLOGO
El virus rábico: morfología, morfogénesis y
crecimiento en cultivos celulares
E. HERNÁNDEZ BAUMOARTEN, M.V.Z., M.S., Ph.D.
l. Introducción
11. Morfología y morfogénesis
111.Crecimiento del virus rábico en cultivos celulares
Referencias
1
2
22
34
La rabia, los murciélagos y el control de
los hematófagos
R. FLORES CRESPO, Biol.
l. Introducción
11. La Rabia y los murciélagos
111. Los murciélagos hematófagos
IV. El control de los murciélagos hematófagos
V. Discusión y conclusiones
Referencias
38
38
40
45
6
3
67
Patogenia de la rabia
E. HERNÁNDEZ BAUMOARTEN, M.V.Z., M.S., Ph.D.
I. Introducción
II. Penetración del virus en animales
III. Patogénesis para el sistema nervioso central
IX
72
72
7
8
x
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
IV. Infectividad y patogenicidad: efecto en el sistema nervioso central
V. Rabia abortiva
82
94
VI. Modo de acción de las vacunas y terapia antiviral post-
exposición
Referencias
96
100
Epidemiología de la Estomatitis Vesicular
JOHN MASON, DV.M., M.P,R.
1. Introducción
104
II. Características clínicas
104
III. Agentes virales
105
IV. Diferencias entre los serotipos New Jersey e Indiana
de Estomatitis Vesicular
105
V.
Características epidemiológicas de la Estomatitis Ve-
sicular
106
VI. Patogenia y transmisión de la Estomatitis Vesicular
108
VII. Producción de anticuerpos e inmunidad a la Estomatitis Vesicular
112
VIII. Vacunación contra la Estomatitis Vesicular
113
IX. Estomatitis Vesícular en poblaciones de animales siI~
vestres.
114
X. Estomatitis Vesicular en humanos
116
XI. El papel de los artrópodos en la transmisión de la Estomatitis Vesicular
XII. El virus de .la Estomatitis Vesícular como virus de
plantas
XIII. Un' mecanismo alternativo de transmisión
117
121
122
XIV. Sobrevivencia interepidémica del virus de la Estomatitis
Vesícular.
125
XV. Preguntas a ser resueltas en relación. a la epidemiología
de la Estomatitis Vesicular
XVI. Propuestas para estudios ulteriores de campo
Referencias
127
129
130
SUMARIO
XI
Estomatitis Vesicular en México
J. MASON, D.V.M., M.P.ll., A· HERRERA, M.V.Z.,
W. J. TURNER, D.V.M., y J. GAY, M.V.Z., Dip.
I. Introducción
II. Estomatitis Vesicular en México
III. Discusión
Referencias
138
138
151
154
Arbovirus y arbovirosis en México
MARÍA LUISA ZÁRATE, M.C.,
Ph.D.
l. Introducción n.
Antecedentes
In. Arbovirus aislados en México IV.
Arbovirosis en México
Referencias
157
159
160
171
180
Experimentación con vacunas ribosomales de
Salmonella typhimurium y de Salmonella typhi
Ty2
J. 1.. MOLlNARI, M.C.
I. Introducción
II. Material y métodos
III. Resultados
IV. Discusión
Referencias
183
184
189
209
211
Infecciones mixtas del aparato respiratorio
C. PIJOAN AGUADE, M.V.Z., Dip. Bact. (Lond.), Ph.D.
l. Introducción 216 11. Mecanismos de defensa de las vías respiratorias
profundas 216
nI. Mecanismos de patogenicidad de los microorganismos
219
IV. Los microorganismos secundarios y su patogenicidad
223
V.Conclusiones
Referencias
227
228
XII
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
Ciclo biológico de Babesia en la garrapata
R. D. SMITH, M.V.z., M.S., Ph.D.
I. Introducción
II. Clasificación de Babesia
III. Ciclo evolutivo en la garrapata
IV. Relación vector-parásito-huésped
V.
234235
236
249
Mantenimiento de B. argentina en Boophilus microplus
bajo condiciones de laboratorio
Referencias
257
260
Efectos del stréss térmico sobre la fertilidad del
ganado bovino
H. ROMÁN PONCE, M.V.Z., M.S., Ph.D.
1. Introducción
265
Ir. Asociaciónde los parámetros cIimáticos ambientales con
la eficiencia reproductiva
In. Modificaciones ambientales para reducir los efectos del
stréss térmico
266
272
IV. Mecanismos fisiológicos responsables de la reducción de
la fertilidad bajo condiciones de stréss térmico
Referencias
277
288
La aparición de la pubertad en vaquilIas
E. GONZÁLEZ PADILLA, M.v.Z., M.S., Ph.D.
1. Introducción
n. Factores que afectan la aparición de la pubertad en
vaquillas
293
295
III. Mecanismos fisiológicos que determinan la aparición de
la pubertad
IV. Inducción de la pubertad en vaquillas
Referencias
298
314316
SUMARIO
XIII
Fuentes de energía y proteínas para la alimentación de
las aves
M. CUCA G., Ing. Agr., M.S., Ph.D. yE. AVILA G.,.M.V.Z.,
M.S.
1. Introducción
n. La avicultura es una industria dinámica y tecnificada
In. Fuentes de energía
IV. Fuentes de proteína
Referencias
326
326
328
337
352
Métodos de contención y manejo de los animales de
zoológico
M. CABRERA VALTIERRA, M.V.Z.
I. Introducción
II. Descripción de métodos
III. Complicaciones y accidentes
Referencias
359
361
369
371
XIV
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
LISTA DE CUADROS
Vampiros muertos por día subsiguiente al tratamiento de I entre
20 con 2 mI de Vampirinip II, en una colonia cautiva
Resultados del tratamiento con Vampirinip II, de 20 vampiros
con 2 mI c/u.
Porcentaje acumulativo de mortalidad en una colonia cautiva de 10
vampiros cuyas mordeduras en los dos bovinos de que se
alimentaban fueron tratados por 3 días consecutivos con 1
mI
de Vampirinip II.
Resultados del tratamiento tópico de las mordeduras de vampiro
en el ganado de tres ranchos de Yucatán, con Vampirinip II. 58
Resultado del tratamiento al ganado por vía intramúscular con
Vampirinip III {Rancho San Carlos, Y ucatán) .
53
53
56
60
Resultado del tratamiento al ganado por vía intrarnuscular con
Vampirinip III (Rancho San Pedro, Yucatán)
60
Resultado del tratamiento al ganado por vía intramuscular con
Vampirinip III (Rancho Kanto, Yucatán)
61
Resultado del tratamiento al ganado por vía intramuscular
con Vampirinip III (Rancho Ojo de Agua, S.L.P.)
61
Arbovirus aislados en México
161
Porciento de sobrevida y tiempo leta1 a! 50% en ratones inmunizados subcutáneamente con preparación ribosomal de 1 día,
obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 30 días después por vía intraperitoneal con 100 DL50 de Salmonella
virulenta.
189
Porciento de sobrevida y tiempo letal al 50% en ratones inmunizados subcutáneamente con preparación ribosomal almacenada
durante 90 días, obtenida de Salmonella typhimurium y
desafiados 30 días después intraperitoneaImente con 100
DL50 de Salmonella virulenta
190
Porr:iento de sobrevida y tiempo letal al 50% en ratones inmuniw zados
subcutáneamente con diferentes dosis de preparación ribosomal
obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 75 días
después intraperitonealmente con 10 DL50 de Salmo191
nella virulenta
Porciento de sobrevivientes de ratones vacunados por vía subcutánea
con 2 dosis de fracción ribosomaI de Salmonella typhimurium
str y desafiados por vía ora! con 5.5 x lO' UFC de Salmonella
typhimurium strr; siete días después de la 2a.
inmunización.
191
XIV
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
LISTA DE CUADROS
Vampiros muertos por día subsiguiente al tratamiento de I entre
20 con 2 mI de Vampirinip II, en una colonia cautiva
Resultados del tratamiento con Vampirinip II, de 20 vampiros
con 2 mI c/u.
Porcentaje acumulativo de mortálidad en una colonia cautiva de 10
vampiros cuyas mordeduras en los dos bovinos de que se
alimentaban fueron tratados por 3 días consecutivos con 1 mI
de Vampirinip II.
Resultados del tratamiento tópico de las mordeduras de vampiro
en el ganado de tres ranchos de Yucatán, con Vampirinip II. 58
Resultado del tratamiento al ganado por vía intramúscular con
Vampirinip III (Rancho San Carlos, Yucatán) .
53
53
56
60
Resultado del tratamiento al ganado por vía intrarnuscular con
Vampirinip III (Rancho San Pedro, Yucatán)
60
Resultado del tratamiento al ganado por vía intramuscular con
Vampirinip III (Rancho Kanto, Yucatán)
61
Resultado del tratamiento al ganado por vía intramuscular
con Vampirinip III (Rancho Ojo de Agua, S.L.P.)
61
Arbovirus aislados en México
161
Porciento de sobrevida y tiempo leta1 a! 50% en ratones inmunizados subcutáneamente con preparación ribosomal de 1 día,
obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 30 días después por vía intraperitoneal con 100 DL50 de Salmonella
virulenta.
189
Porciento de sobrevida y tiempo letal al 50% en ratones inmunizados subcutáneamente con preparación ribosomal almacenada
durante 90 días, obtenida de Salmonella typhimurium y
desafiados 30 días después intraperitoneaImente con 100
DL50 de Salmonella virulenta
190
Porciento de sobrevida y tiempo letal al 50% en ratones inmuniw zados
subcutáneamente con diferentes dosis de preparación ribosomal
obtenida de Salmonella typhimurium y desafiados 75 días
después intraperitonealmente con 10 DL50 de Salmonella virulenta
191
Porciento de sobrevivientes de ratones vacunados por vía subcutánea
con 2 dosis de fracción ribosomaI de Salmonella typhimurium
strs y desafiados por vía ora! con 5.5 x lO' UFC de Salmonella
typhimurium strr; siete días después de la 2a.
inmunización.
191
XVI
CIENCIA VETERINARIA 2-1978
Concentraciones séricas de hormonas en muestras colectadas a
intervalos de 6 horas en seis vaquillas prepúberes.
310
Peso de pollos alimentados con diferentes niveles de pulido de
arroz.
331
Composición química de 30 variedades de yuca.
333
Efectos de la utilización de la melaza de caña de azúcar en la
dieta de las aves en crecimiento, a las 20 semanas de edad. 334
Efectos de la utilización de la melaza de caña de azúcar, en la
dieta de aves en postura.
335
Efectos de la harina de pescado anchoveta peruana, en dietas
de pollos de engorda.
338
Disponibilidad biológica de lisina en cuatro harinas de pescado mexicanas.
339
Composición nutritiva de algunas fuentes proteicas de origen
vegetal.
340
Efecto de someter a la pasta de soya cruda" la autoclave, en la
ganancia de peso, el peso del pancreas de pollos de 7 a 20
dias de edad y la actividad ureásica.
341
Respuesta de los pollos de 7 a 21 dias de edad a la suplementación de DL- metionina con raciones de pasta de soya cruda
y pasta de soya cocida al 20% de proteina.
343
Efecto de la suplementación de sulfato ferroso en la coloración
de la yema de huevo.
344
Efecto de la suplementación de lisina en pollos alimentados con
dietas semipurificadas a base de pasta de cártamo tamizada .. 348 Especies animales, equipo y procedimientos
generalmente usados
para su contención y manejo en cautiverio ..
Dosificación del Rompún en Rumiantiae
Dosificación del Rompún en carnívoros.
Dosificación del Rompún en équidos.
Dosificación del Rompún en primates.
Dosificación del Sernylan y Promazina .. 368
362
365
366
367
367
SUMARIO
XVII
LISTA DE
FIGURAS
Modelos de las subunidades del virus rábico.
4
Cuatro modelos de Rhabdovirus.
5
Vista de núcleoproteínas a las que se les han removido 106 peplomeros.
7
Vista tridimensional de un Rhabdovirus en formación con un
cuadrante seccionado.
8
Células BHK-21, trece horas después de la infección con virus
V-319, 15000X.
10
Célula 13S infectada con virus V-319, 16 horas después de la
infección. 15 000X.
11
Célula 13S infectada con virus cepa ERA, 52500X.
12
Parte de dos células 13S infectadas con cepa ERA. Punto medio
de la infección, 48 horas después de iniciada. 22 500X.
13
Parte de una célula 13S infectada con virus Mazatán, 22 500X.
17
Células 13S infectadas con virus V-319, 120 horas después de la
infección. 30000X.
18
Células BHK-21 infectadas con virus ERA, 148 horas después
de la infección. 22 500X.
19
Ciclo de infección del virus rábico (representación esquemática). 26
Corteza cerebral normal de rat60, 9 000X.
84
Corteza cerebral normal de ratón. 9 000X.
85
Citoplasma de una neurona de la corteza cerebral del ratón
infectada con virus V-319. 45000X.
86
Neurona de corteza cerebral de ratón infectada con virus Ma-
zatán. 30000X.
Célula de Purkinje de cerebelo de ratón infectado con V-319.
15000X.
87
90
Célula de Purkinje en estado avanzado de degeneración.
15000X.
Estomatitis Vesicular en México. 1962-1975.
,
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Nueva Jersey) en
México. 1949-1975.
91
141
142
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Indiana) en Mé-
xico. 1949-1976.
143
Relación entre precipitación pluvial y número de investigaciones
de campo positivas a Estomatitis Vesícular.
Investigaciones sobre enfermedades vesiculares.
Arbovirus y arbovirosis en México:, Mapa de su distrioución
geográfica actual.
145
148
172
SUMARIO
XVII
LISTA DE
FIGURAS
Modelos de las subunidades del virus rábico.
4
Cuatro modelos de Rhabdovirus.
5
Vista de núcleoproteínas a las que se les han removido 106 peplomeros.
7
Vista tridimensional de un Rhabdovirus en formación con un
cuadrante seccionado.
8
Células BHK-21, trece horas después de la infección con virus
V-319, 15000X.
10
Célula 13S infectada con virus V-319, 16 horas después de la
infección. 15 000X.
11
Célula 13S infectada con virus cepa ERA, 52500X.
12
Parte de dos células 13S infectadas con cepa ERA. Punto medio
de la infección, 48 horas después de iniciada. 22 500X.
13
Parte de una célula 13S infectada con virus Mazatán, 22 500X.
17
Células 13S infectadas con virus V-319, 120 horas después de la
infección. 30000X.
18
Células BHK-21 infectadas con virus ERA, 148 horas después
de la infección. 22 500X.
19
Ciclo de infección del virus rábico (representación esquemática). 26
Corteza cerebral normal de rat60, 9 000X.
84
Corteza cerebral normal de ratón. 9 000X.
85
Citoplasma de una neurona de la corteza cerebral del ratón
infectada con virus V-319. 45000X.
86
Neurona de corteza cerebral de ratón infectada con virus Ma-
zatán. 30000X.
Célula de Purkinje de cerebelo de ratón infectado con V-319.
15000X.
87
90
Célula de Purkinje en estado avanzado de degeneración.
15000X.
Estomatitis Vesicular en México. 1962-1975.
,
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Nueva Jersey) en
México. 1949-1975.
91
141
142
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Indiana) en Mé-
xico. 1949-1976.
143
Relación entre precipitación pluvial y número de investigaciones
de campo positivas a Estomatitis Vesícular.·
Investigaciones sobre enfermedades vesiculares.
Arbovirus y arbovirosis en México:, Mapa de su distribución
geográfica actual.
145
148
172
SUMARIO
XVII
LISTA DE
FIGURAS
Modelos de las subunidades del virus rábico.
4
Cuatro modelos de Rhabdovirus.
5
Vista de núcleoproteínas a las que se les han removido 106 peplomeros.
7
Vista tridimensional de un Rhabdovirus en formación con un
cuadrante seccionado.
8
Células BHK-21, trece horas después de la infección con virus
V-319, 15000X.
10
Célula 13S infectada con virus V-319, 16 horas después de la
infección. 15 000X.
11
Célula 13S infectada con virus cepa ERA, 52500X.
12
Parte de dos células 13S infectadas con cepa ERA. Punto medio
de la infección, 48 horas después de iniciada. 22 500X.
13
Parte de una célula 13S infectada con virus Mazatán, 22 500X.
17
Células 13S infectadas con virus V-319, 120 horas después de la
infección. 30000X.
18
Células BHK-21 infectadas con virus ERA, 148 horas después
de la infección. 22 500X.
19
Ciclo de infección del virus rábico (representación esquemática). 26
Corteza cerebral normal de rat60, 9 000X.
84
Corteza cerebral normal de ratón. 9 000X.
85
Citoplasma de una neurona de la corteza cerebral del ratón
infectada con virus V-319. 45000X.
86
Neurona de corteza cerebral de ratón infectada con virus Ma-
zatán. 30000X.
Célula de Purkinje de cerebelo de ratón infectado con V-319.
15000X.
87
90
Célula de Purkinje en estado avanzado de degeneración.
15000X.
Estomatitis Vesicular en México. 1962-1975.
,
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Nueva Jersey) en
México. 1949-1975.
91
141
142
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Indiana) en Mé-
xico. 1949-1976.
143
Relación entre precipitadón pluvial y número de investigaciones
de campo positivas a Estomatitis Vesícular.·
Investigaciones sobre enfermedades vesiculares.
Arbovirus y arbovirosis en México:, Mapa de su distribución
geográfica actual.
145
148
172
SUMARIO
XVII
LISTA DE
FIGURAS
Modelos de las subunidades del virus rábico.
4
Cuatro modelos de Rhabdovirus.
5
Vista de núcleoproteínas a las que se les han removido 106 peplomeros.
7
Vista tridimensional de un Rhabdovirus en formación con un
cuadrante seccionado.
8
Células BHK-21, trece horas después de la infección con virus
V-319, 15000X.
10
Célula 13S infectada con virus V-319, 16 horas después de la
infección. 15 000X.
11
Célula 13S infectada con virus cepa ERA, 52500X.
12
Parte de dos células 13S infectadas con cepa ERA. Punto medio
de la infección, 48 horas después de iniciada. 22 500X.
13
Parte de una célula 13S infectada con virus Mazatán, 22 500X.
17
Células 13S infectadas con virus V-319, 120 horas después de la
infección. 30000X.
18
Células BHK-21 infectadas con virus ERA, 148 horas después
de la infección. 22 500X.
19
Ciclo de infección del virus rábico (representación esquemática). 26
Corteza cerebral normal de rat60, 9 000X.
84
Corteza cerebral normal de ratón. 9 000X.
85
Citoplasma de una neurona de la corteza cerebral del ratón
infectada con virus V-319. 45000X.
86
Neurona de corteza cerebral de ratón infectada con virus Ma-
zatán. 30000X.
Célula de Purkinje de cerebelo de ratón infectado con V-319.
15000X.
87
90
Célula de Purkinje en estado avanzado de degeneración.
15000X.
Estomatitis Vesicular en México. 1962-1975.
,
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Nueva Jersey) en
México. 1949-1975.
91
141
142
Distribución de Estomatitis Vesicular (Tipo Indiana) en Mé-
xico. 1949-1976.
143
Relación entre precipitación pluvial y número de investigaciones
de campo positivas a Estomatitis Vesícular.
Investigaciones sobre enfermedades vesiculares.
Arbovirus y arbovirosis en México:, Mapa de su distribución
geográfica actual.
145
148
172