0140400037BIMEI nmunología-P12 - A14 -

Facultad de Ciencias
Exactas y Naturales
Programa Analítico
ASIGNATURA:
PLAN DE ESTUDIOS:
ANO ACADEMICO:
CARRERA/S:
PROFESOR A CARGO:
OTROS DOCENTES:
CUATRIMESTRE:
BIOLOGÍA MOLECULAR E INMUNOLOGÍA
2012 y Planes de transición 2008
2014
1404-FARMACIA
Dra. Silvia Adriana González
Lic. María Rauddi
1er Cuatrimestre
1. OBJETIVOS:
- Proveer al alumno los conocimientos, conceptos y fundamentos de tópicos esenciales de la
biología molecular y de la inmunología.
- Proveer al alumno los conocimientos, conceptos y fundamentos sobre el clonado, aislamiento de
genes así como de sus transcriptos, y los polipéptidos codificados por éstos, dando especial énfasis
en las estrategias utilizadas actualmente para la producción de
biofármacos en la industria farmacéutica
- Adiestrar al alumno en las técnicas moleculares e inmunológicas utilizadas para el diagnóstico y
evaluación de enfermedades, así como para la producción de proteínas en sistemas recombinantes
2. CONTENIDOS:
a. Contenidos Mínimos:
Estructura de los ácidos nucleicos y mecanismos de replicación y transcripción. Técnicas de ADN
recombinante. Secuenciación de ADN y bioinformática. Diagnóstico genético de enfermedades: su
relevancia para el tratamiento terapéutico. Estrategias para estudiar las interacciones proteínaproteína y su aplicación en el desarrollo de nuevos fármacos. Reacción en cadena de la polimerasa
(PCR): aplicaciones en diagnóstico, estudios de filiación y medicina forense. Sistemas recombinantes
de expresión de proteínas: sistemas procariotes y eucariotes. Genómica, proteómica, metabolómica
y farmacogenómica. Mecanismos epigenéticos de silenciamiento génico. ARNs interferentes y
microARNs. Impronta genómica. Organismos modificados genéticamente. Animales transgénicos.
Clonado de animales por transferencia nuclear. Células madre (“stem cells”) y aplicaciones
terapéuticas. Mecanismos de la respuesta inmune innata: tipos celulares, receptores y vías de
señalización involucrados. La respuesta inmune adaptativa. Antígenos. Anticuerpos. Inmunización
activa y pasiva. Vacunas y adyuvantes. Proteínas del complejo principal de histocompatibilidad.
Sistema del complemento. Autoinmunidad. Inmunodeficiencias. Tolerancia inmunológica. Ensayos
inmunológicos para la detección, cuantificación y/o purificación de anticuerpos. Anticuerpos
monoclonales.
b. Contenidos Básicos:
Unidad 1Tecnología de ADN recombinante: enzimas de restricción; plásmidos; fagos; etc. Clonado de genes:
librerías genómicas y de ADN copia. Reacción en cadena de la polimerasa (PCR), y RT-PCR.
Aplicaciones de la metodología de PCR en tiempo real.
Unidad 2Sistemas recombinantes para la expresión de proteínas: sistemas bacterianos y eucariotas: Ventajas
y desventajas. Expresión en levadura; en células de mamífero; y en células de insecto: parámetros a
considerar en cada sistema.
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Unidad 3Genoma, transcriptoma, proteoma, y metaboloma: Microchips de ácidos nucleicos "microarrays");
estrategias para estudiar las interacciones proteína-proteína; sistema del doble híbrido; "phage
display", ensayos de captura específica de proteínas y de coinmunoprecipitación.
Unidad 4Clonado de animales transgénicos: transferencia nuclear y transducción de genes en células; su
utilización para la producción de biofármacos. Células madre troncales ("stem cells"): características
de las células madre embrionarias versus las adultas. Reprogramación de células adultas por medio
de la inducción de la expresión de factores de transcripcón específicos; su relevancia para el
tratamiento terapéutico delas enfermedades neurodegenerativas y autoinmunes
Unidad 5Composición del sistema inmune: Organos linfoides primarios y secundarios; tejido linfoide asociado
a tejido cutáneo Células que participan de la respuesta inmune.
Unidad 6Inmunidad innata: receptores tipo Toll, tipo RIG-I, y tipo NOD; vías de señalización involucradas;
patrones moleculares asociados a patógenos (PAMPs)
Unidad 7Inmunidad adaptativa: Receptor de células B; activación y expansión clonal; células de memoria.
Inmunoglobulinas: dominios funcionales; isotipos. Anticuerpos monoclonales.
Unidad 8Inmunidad mediada por células T: Receptor de células T; linfocitos T colaboradores y T citotóxicos.
células presentadoras de antígeno; rol del complejo principal de histocompatibilidad. Citoquinas,
quimioquinas, y mediadores de la respuesta celular: funciones biológicas
Unidad 9Métodos y técnicas inmunológicos: ensayos ELISA; Western blotting, inmunoprecipitación de
complejos antígeno-anticuerpo, RIA; etc. Citometría de flujo. Ensayos para la evaluación de la
respuesta mediada por células T : ELISPOT: proliferación de células T; etc
Unidad 10Sistema del complemento: vías clásica, alternativa, y de la lectina: componentes y mecanismos
involucrados
TP 1: Problemas y cuestionarios sobre ADN recombinante y bioinformática
TP 2: Trabajo de Laboratorio. Aislamiento de ADN plasmídico y mapeo con enzimas de restricción
TP 3: Trabajo de Laboratorio. Amplificación de genes por PCR a partir de muestras de ADN:
aplicaciones en el diagnóstico de enfermedades y de patógenos
TP 4: Problemas y cuestionarios sobre producción de proteínas recombinantes y sus aplicaciones en
el área farmacéutica
TP 5: Trabajo de Laboratorio. Producción y purificación de proteínas recombinantes
TP 6: Genoma, transcriptoma, proteoma, y metaboloma. Resolución de Problemas y cuestionarios.
TP 7: Taller: Discusión de trabajos científicos sobre células madre y reprogramación celular
TP 8: Problemas y cuestionarios Sistema inmune..
TP 9: Problemas y cuestionarios. Inmunidad innata: receptores tipo Toll, tipo RIG-I, y tipo NOD; vías
de señalización involucradas; PAMPs ..
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TP 10: Taller: Discusión de trabajos sobre la caracterización de anticuerpos de amplia capacidad de
neutralización: su aplicación al desarrollo de vacunas contra influenza y HIV-1
TP 11: Problemas y cuestionarios Anticuerpos monoclonales: hibridomas. Obtención de anticuerpos
monoclonales por técnicas de ADN recombinante
TP 11: Presentación Trabajos de Alumnos. Inmunidad mediada por células T. Enfermedades
relacionados al sistema inmune.
TP 12: Discusión de trabajos científicos. Ensayos inmunológicos y sus aplicaciones
TP 13: Presentación Trabajos de Alumnos. Vacunas.
3. BIBLIOGRAFIA
3.1 BASICA
- Molecular Biology of the Cell. Bruce Alberts. Alexander Johnson, Julian Lewis, Martin Raff , Keith
Roberts, Peter Walter.Fourth Edition. Garland Publishing, New York. 2002
- Introducción a la Inmunología Humana. L. Fainboim, J. Geffner. 5da ed, Edit Médica
Panamericana, Buenos Aires, 2005
-Introducción a la Inmunología Humana L. Fainboim, J. Geffner. 6ta Edición. Ed. Panamericana.
2011
- Inmunología Celular y Molecular. A.K Abbas, A.H. Lichman, J.B. Pober. Interamericana- Mc.
Graw Hill. (Versiones en Español 2da o en Inglés 4ta)
- Immunobiology. Janeway, C.A., Travers, P., Walport, M., Shlomchik, M. 2001. Garland Science
(New York & London).
- Libros en las áreas de Biología Molecular e Inmunología, cuyas versiones completas se pueden
obtener de: http://www.ncbi.nlm.nih.gov/sites/entrez?db=books
3.2 Adicional
Lectura complementaria:
Se discutirán trabajos científicos recientes en el área de inmunología publicados en revistas tales
como “Nature ”, “Science”, “Proceedings of the National Academy of Sciences, USA”, "Trends in
Immunology"; etc
4. METODOLOGIA DE LA ENSEÑANZA
A-El curso se desarrollará a través de clases teóricas y prácticas combinadas con la lectura y
discusión de artículos científicos.
Todos los temas irán acompañados de una serie de problemas y cuestionarios con el objetivo de fijar
los conocimientos adquiridos en las clases teóricas y prácticas.
B- Para los tópicos de Biología Molecular relacionados al área de la bioinformática, se trabajará en la
sala de computación utilizando los programas de análisis de secuencias nucleotídicas y proteicas
disponibles en GenBank (http://www.ncbi.nlm.nih.gov/) y en Expasy (expasy.org/tools/). Para la
realización de las actividades prácticas, se cuenta con el siguiente equipamiento: micropipetas;
fuentes de poder; cubas de electroforesis para ácidos nucleicos y para proteínas; microcentrífugas;
transiluminador ultravioleta para la visualización de ácidos nucleicos; termociclador para las
reacciones de PCR; aparatos para la electrotransferencia de geles; reactivos para Western blotting; y
lector ELISA.
5. CRITERIOS DE EVALUACION
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En primera instancia se realizará la evaluación diagnóstica que permitirá al docente conocer las
características del grupo y a los alumnos conocer los saberes previos que le serán necesarios para el
cursado de la asignatura.
La evaluación del curso se realiza a través de:




Un parcial teórico/práctico obligatorio e individual,
Aprobación de trabajos prácticos
Examen final
Parcial Teórico-Práctico
El parcial teórico/práctico debe rendirse en la fecha estipulada por la Facultad (ver Planificación de
actividades).
En caso que el alumno desapruebe el parcial cuenta con una instancia de recuperación. Si el alumno
estuviese ausente (con causas justificadas o injustificadas) dispondrá de la fecha de recuperación
El desaprobar o no asistir a la recuperación (teniendo el parcial desaprobado) tiene como
consecuencia desaprobar el curso de la materia.

Aprobación de Trabajos Prácticos
Para aprobar los trabajos prácticos de laboratorio se requieren las siguientes condiciones.
 Asistencia a los Trabajos Prácticos (75%)
 Desarrollo de manualidades y criterio en el Laboratorio
 Resolución de los cuestionarios así como la lectura y exposición de trabajos originales
 Participación en las discusiones generales
 Presentación de los informes de Trabajo Práctico y aprobación
 Aprobación de los trabajos individuales o colectivos encomendados por la cátedra,
cuestionarios, y/o resolución de problemas.

Examen final
Para estar en condiciones de rendir el examen final de la materia, los alumnos deberán cumplir con
los siguientes requerimientos:
a) Aprobar el parcial Teórico –Práctico
b) Aprobar los trabajos prácticos, de acuerdo a las condiciones fijadas por la Cátedra
c) Cumplir con las condiciones de asistencia de la asignatura.
ANEXO I
A1 - Carga Horaria - Modalidad de Enseñanza
Modalidad
Teóricas
Act. Prácticas
Horas cátedra
50
40
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Evaluaciones
Total del curso
6
96
A2 – Carga Horaria de Actividades Prácticas
Tipo Actividad
Horas cátedra
1.- Resolución Problemas
12
2.- Prácticas de Laboratorio
22
3.- Prácticas de Simulación
4.- Prácticas de Programación
5.- Prácticas de Diseño y Proyecto
6.- Presentaciones Alumnos
6
7.- Trabajos de Campo y Visitas a Plantas
Total Actividades Prácticas
40
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