guia de campo para el estudio de la fauna icticola de

GUIA DE CAMPO PARA EL ESTUDIO DE LA FAUNA
ICTICOLA DE LA RESERVA PROVINCIAL DE LOS
ESTEREOS DEL IBERA. VIAJE DE CAMPAÑA CATEDRA
DE ZOOLOGIA III (VERTEBRADOS), FCNyM, UNLP
AÑO 2014
Autores: Martin Montes, Adriana Almirón, Jorge Casciotta
ELEMENTOS NECESARIOS PARA TRABAJAR
• Ropa cómoda para pescar: malla, short, remera, gorro y no
olvidar el protector solar.
• Botas de goma (indispensable).
• libreta de campo y lápiz.
• guantes de látex, pinzas, tijeras(al menos un juego por
grupo).
• Caña de pescar (o línea).
• Una Guía de Métodos de Muestreo y una Guía de Análisis
de Comunidades y Poblaciones (al menos cada 15 personas)
OBJETIVOS:






Reconocer las diferentes metodologías que se pueden utilizar en el campo para la
colecta de peces.
Identificar la fauna ictícola característica de la laguna de Ibera mediante el uso de
claves dicotómicas.
Conocer los parámetros físicos-químicos que caracterizan un cuerpo de agua.
Identificar problemas al momento de encarar un estudio ecológico de las
poblaciones y comunidades ictícolas.
Introducir al uso de herramientas propias al estudio de los peces
Introducción al conocimiento de paquetes y metodologías estadísticas.
HIPOTESIS: “El sitio 2 (camping) presentara una menor biodiversidad ya que
representa un ambiente mucho más disturbado con respecto al sitio 1 (playita)”
1
CRONOGRAMA TENTATIVO DE LAS ACTIVIDADES A
REALIZAR: (hora aproximada de comienzo y finalización de las actividades)
1- Charla en el camping sobre artes de pesca (métodos pasivos y activos)9 -10hs.
2-Muestreo en La Playa1.10-11:30 hs.
3-Determinacion taxonómica de los peces en el camping.12-13:30 hs.
4-Almuerzo (en medio de la determinación, para darle gustito al almuerzo)!)
5- Muestreo en el Muelle16-17hs.
6- Determinación taxonómica de los peces en el camping.17-18 hs.
7.-Diseccion de peces (reconocimiento de la anatomía y búsqueda de parásitos) 18hs.
8- Actividad Nocturna
TENER EN CUENTA PARA LA CONFECCION DEL INFORME:
1.- Recolectar datos de sus compañeros, deberán tener 5 planillas con los dos sitios que se
han muestreado (deberían estar en la computadora, por las dudas siempre es bueno anotar
todo en la libreta de campo).
2.- Con la lista de especies y sus abundancias se debe confeccionar una sola lista
correspondiente al año 2014 (una para cada sitio). Como hemos muestreado siempre los
mismos ambientes cada día es una pseudoréplica (no es independiente de la muestra
anterior).
3.- Realizar una curva de acumulación de especies con el método de rarefacción para
calcular (y comparar) la riqueza especifica.
4.- Calcular la biodiversidad de cada sitio aplicando el Índice de Shannon-Wiener y la
equitabilidad con el programa Ecosim y el método de rarefacción (estadística frecuentista)
y con el WinBUGS (estadística bayesiana). Calcular el índice de Simpson con el programa
WinBUGS.
5.- Discutir diferencias entre sitios y entre metodologías aplicadas. ¿La hipótesis está bien
planteada?
6.- Comparar la abundancia de cada orden en total con respecto a las especies citadas, entre
sitios y con respecto a otros años.
1
Solo ingresaran al agua los que lleven botas.
2
7.- ¿Que otras actividades podrían realizarse en el sistema? ¿Cómo mejorarían el estudio
que hemos realizado?
El informe debe constar de:
Introducción (donde se realizó el trabajo, antecedentes, objetivos).
Materiales y Métodos (que hicieron y que usaron, ambientes que compararon).
Resultados (Lista de especies encontradas, índices calculados, gráficos obtenidos).
Discusión (explicaciones de lo observado tanto en las comparaciones entre sitios, años y
metodologías).
PROGRAMAS QUE SE UTILIZARAN, PEQUEÑO INSTRUCTIVO:
ECOSIM
Usa archivos con terminación “.txt”
Ir a Filenew
Ir a Editresizematrix se establecen los números de filas (especies) y columnas (sitios)
Ir a EditEditmatrix as textaquí se abre una ventana desde la que se pueden incorporar
los datos uno a uno o ser copiados y pegados desde el Excel. Para esto último debe
utilizarse la combinación de teclas para copiar (CTRL + c) y pegar (CTRL + v). En caso
contrario la base quedara mal armada. Las columnas se separan por espacio, razón por la
cual no debe haber espacios extra entre las palabras de las especies u otra categoría. Los
puntos dividen a los números decimales.
Una vez terminado el proceso de editar la matriz, se clickea sobre “Close” y se aceptan los
cambios.
Ir a Analize (Fig. 2)species diversitymarcar individuos
Abundanceclickear sobre “user defined”, se abrirá una nueva ventana y
pondremos las cantidades de individuos sobre los cuales querremos más adelante calcular
los diversos índices.
Randomization algoritm marcaremos la “rarefacción”
Species diversity calcularemos para en este viaje únicamente “species
Richness” y “Shannon”
column to analize elegimos el sitio que deseamos se analice.
Se presionara el botón de “RUN” y se abrirá una nueva ventana.
Se elegirá “diversity curve”, y nos mostrara el índice calculado para cada valor que
habíamos determinado en “Abundance”. Se salvaran los datos en un archivo (que tendrá
extensión “.txt”.) y que luego recuperaremos con el Excel.
3
¿Cómo recuperar el archivo desde Excel?
 “abrir archivo” se selecciona el directorio y se pide que nos muestre todos los
archivos del directorio. Se selecciona el archivo con la extensión “txt” que nos interesa.
se abrirá una ventana se elegirá ”delimitación” y posteriormente se marcara
“tabulación” y “espacio”, se dará click en “siguiente”, luego en “finalizar” y se creara un
archivo de Excel el cual deberemos guardar con la extensión del programa.
BIODAP
También usa archivos con extensión “.txt”.
Ir a “File”newse abrirá una ventana donde se elegirán la cantidad de sitios y especies y
se pondrá las abundancias. Se salvara el archivo. Si no funciona crear desde fuera del
programa con el “Worpad” o el “blog de notas” un archivo “.txt” donde cada columna está
separada de la siguiente por un espacio (en nuestro caso serán 3 columnas, una para
especie, una para “playita” y otra para “camping”).
Ir a File open y seleccionar el archivo creado por cualquiera de los dos métodos
anteriores.
Presionar en “Raw data”  de esta forma aparece en pantalla el archivo que creamos.
Clickear sobre “Diversity Index” seleccionar el índice que se quiera calcular (en nuestro
caso son dos índices, “Shannon” y “Simpson”.
WinBUGS
Se escribe el script o se consigue, en nuestro caso utilizaremos dos scripts [1].
Clickear sobre “File” open  para abrir el archivo con el script.
Se cargan los datos a ser modelados y se corre el programa de la siguiente forma.
Se clickea sobre “Model” aparece un cuadrito que dice “specification tool”. Nos
posesionamos fuera del modelo establecido, sobre la palabra “list”, por ejemplo y
apretamos en “Checkmodel” (si no hay errores en el margen izquierdo inferior aparecerá un
cartel que dice “model is sintectally correct”).
Se marca la palabra “list” y se presiona en el mismo cuadrito anterior el botón de “load
data” (en el margen izquierdo inferior “data loaded”).
Se apretara el botón que dice “compile” y posteriormente “gen inits” (con esto se generan
los valores iniciales desde los que partirá el sistema, podrían ser definidos por nosotros,
pero es más sencillo en este caso que los genere el mismo programa).
Se abrirá ahora de la barra superior la opción “Inference”sample. Aquí se observan los
“percentiles”, es decir definimos cual es la probabilidad a la cual deseamos trabajar. En
donde dice “node”se pondrá el nombre de la variable que se desea calcular (en nuestro
caso son “Shan” y “Simp”) y se apretara la opción “set”. Donde dice “beg” y “end” se
indicara desde que cadena se quiere empezar a calcular los índices propuestos, solo
modifiquen el cuadrito “beg” y pongan 10 mil.
Ir a “Model””update” aquí se colocara la cantidad de cadenas de Montecarlo que
quieran que se produzcan, a mayor cantidad el proceso tardara más tiempo, pero a su vez se
4
obtendrá un valor con menor varianza, más puntual. Si ponen 100 mil, estará bien. De esta
forma diremos al programa que empiece a partir de la muestra 10001 (o sea que estas
primeras 10mil muestras no las considere) y haga un total de 100 mil replicas para calcular
los índices que pretendemos.
Volvemos a la ventanita “Sample Monitor Tool” ponemos la variable que queremos
calcular (por ejemplo “Shan”) en “node”. Al apretar sobre el botón de “stats” se abre una
nueva ventana con los resultados del índice. Estos pueden copiarse y pegarse en una hoja de
Excel.
Figura 1.- Captura inicio del programa, panel desplegado al calcular los diferentes índices
y pantalla de resultados del programa EcoSim.
5
Figura 2.- Captura de pantalla inicial, pantalla para elegir los índices a calcular, del
programa BIODAP.
Figura 3.- Pantalla de inicio y pantalla “model” (WinBUGS).
.
Figura 4.- Pantalla “inference” y “Sample Monitor Tool” (WinBUGS).
6
Figura 5.- Ventanas de resultados obtenidos con WinBUGS.
7
Especies registradas en diferentes viajes de campaña y en la
bibliografía
Muestreo de los viajes
de campaña
Orden
Characiformes
1998 1999 2000 2001 2002
Según
bibliografía[2]
2012
2013
X
X
X
X
X
X
Laguna
Ibera
Sistema
Ibera
CHARACIDAE
Acestrorhynchus pantanerio
X
X
Aphyocharax anisitsi
X
X
X
X
X
X
X
Aphyocharax rathbuni
Aphyocharax nattereri
Astyanax asuncionensis
Astyanax bimaculatus
X
X
Astyanax eigenmanniorum
Astyanax rutilus
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Astyanax pynandi
Bryconamericus iheringi
X
X
X
Charax leticiae
Charax stenopterus
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Diapoma terofali
X
X
Hemigrammus ulreyi
Heterocheidoron yatay
Hypessobrycon anisitsi
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Hypessobrycon elachys
Hypessobrycon eques
X
Hypessobrycon igneus
Hypessobrycon luetkenii
X
Hypessobrycon meridionalis
Hypessobrycon wajat
X
X
X
X
Moennkhausia intermedia
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Moennkhausia
sanctaefilomenae
Odontostilbe pequira
Oligosarcus jenynsii
X
X
X
Hyphessobricon auca
X
X
X
X
X
Cheirodon interruptus
Hemigrammus mahnerti
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
8
X
X
X
X
Oligosarcus paranensis
Oligosarcus sp
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Psellogrammus kennedyi
Roeboides affinis
Roeboides descalvadensis
Serrapinus calliurus
Serrapinus kriegi
X
X
X
X
X
X
X
X
X
SERRASALMIDAE
Serrasalmus maculatus
Pygocentrus nattereri
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
Metynnis mola
PROCHILODONTIDAE
Prochilodus lineatus
X
X
X
CURIMATIDAE
Steindachnerina brevipinna
Steindachnerina conspersa
X
Cyphocharax saladensis
Cyphocharax spilotus
x
x
Cyphocharax voga
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
ERYTHRINIDAE
Hoplerytrynus unitaeniatus
Hoplias malabaricus
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
LEBIASINIDAE
Pyrrhulina australis
ANOSTOMIDAE
Leporinus lacustris
Leporinus obtusidens
X
CRENUCHIDAE
Characidium zebra
Characidium rachovii
9
X
Orden
Gymnotiformes
RHAMPHICHTHYIDAE
Rhamphichthys hahni
X
STERNOPYGIDAE
Eigenmania trilineata
X
X
GIMNOTIDAE
Gymnotus inaequilabiatus
X
X
X
HYPOPOMIDAE
Brachyhypopomus gauderio
X
X
Brachyhypopomus draco
Brachyhypopomus bombilla
X
X
Orden
Siluriformes
PIMELODIDAE
Pimelodus sp
Pimelodella gracilis
Pimelodella laticeps
Rhamdia quelen
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
CALLICHTHYIDAE
Callichthy callichthys
Corydoras undulatus
Corydoras aeneus
X
X
X
X
X
X
Corydoras hastatus
X
X
Hoplosternum littorale
X
Lepthosplosternum pectorale
X
X
X
LORICARIDAE
Loricariichthys platymetopon
X
Loricariichthys melanocheilus
Rineloricaria parva
X
X
X
X
X
X
X
10
X
X
x
X
X
x
X
TRICHOMYCTERIDAE
Homodiaetus anisitsi
X
X
AUCHENIPTERIDAE
Trachelyopterus galeatus
X
X
X
ASPREDINIDAE
Bunocephalus doriae
X
X
X
Orden
Cyprinodontiformes
CYPRINODONTIDAE
Melanorivulus punctatus
X
X
X
X
ANABLEPIDAE
Jenynsiia multidentata
X
X
POECILIDAE
Cnesterodon decemmaculatus
X
X
Phalloceros caudimaculatus
Orden
Perciformes
X
CICHLIDAE
Apistogramma borellii
Apistogramma commbrae
Australoheros facetus
Cichlasoma dimerus
Crenicichla lepidota
Crenicichla vittata
Gymnogeophagus balzanii
Laetacara dorsigera
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
X
SCIAENIDAE
Pachyurus bonariensis
11
X
X
Orden
Synbranchiformes
SYNBRANCHYDAE
Synbranchus marmoratus
X
X
X
X
X
X
X
X
Orden
Clupeididae
CUPLEIDIDAE
Platanichthys platana
X
X
X
Resultados del Año 2013
Durante los muestreos con red de arrastre se registraron 29 especies
correspondientes a 5 órdenes diferentes (en su mayoría Characiformes).
Se compararon dos sitios con diferente grado de vegetación flotante. El sitio 1
corresponde a un ambiente abierto y el sitio 2 presento gran cantidad de plantas flotantes y
juncos.
Con el programa ECOSIM y el método de rarefacción se calculó la riqueza
específica y se graficaron los resultados (grafico 1). Se puede observar que los límites de
credibilidad no se superponen, con lo cual la riqueza especifica en ambos sitios es
significativamente diferente siendo mayor en el sitio 2. Con el mismo programa y método
se calculó el índice de Shannon-Wiener (grafico 2), nuevamente se observa una diferencia
significativa entre los sitios al no superponerse los límites de confianza y siendo el sitio 2 el
que presenta una mayor biodiversidad. El alto valor obtenido para el sitio 2 hace pensar que
la disponibilidad de diversas plantas flotantes provee una mayor diversidad de nichos para
ser ocupados por las diferentes especies ictícolas.
Se realizó una curva de acumulación de individuos y especies para cada sitio en
particular al fin de constatar si se lograba una meseta que asegurar que se habían
muestreado todas las especies del sistema y/o determinar el tamaño muestreal mínimo que
debería ser tomado para obtener una muestra representativa de los ambientes. En ninguno
de los casos (grafico 3 y grafico 4) se logra esta asíntota, con lo cual aún deberían
muestrearse muchos más ejemplares para que estén representadas todas las especies de la
laguna de Ibera.
Gráficos: Leyendas, en color negro se presentan los valores obtenidos para el sitio 1
(no vegetado) y en color rojo se representan los valores obtenidos para el sitio 2
(Vegetado). El eje de las X corresponde al número de ejemplares.
12
Gráfico 1.- Riqueza específica y límites de credibilidad obtenido con el método de
rarefacción para cada sitio de muestreo.
40
35
30
25
20
15
10
5
0
100
200
300
400
500
600
700
800
900
1000
1154
Gráfico 2.- Índices de diversidad de Shannon-Wiener y límites de credibilidad obtenidos
con el método de rarefacción para cada sitio de muestreo.
3
2,5
2
1,5
1
0,5
0
100
200
300
400
500
600
13
700
800
900
1000
1154
Gráfico 3.- Curva de acumulación del sitio 1 (No vegetado).
35
30
25
20
15
10
5
0
Gráfico 4.- Curva de acumulación del sitio 2 (Vegetado).
40
35
30
25
20
15
10
5
0
14
Frecuencias relativas de cada sitio de muestreo Año 2013.
Orden Characiformes
Playita
Camping
Mañana Tarde
Día 1
CHARACIDAE
108
8
0
54
0
0
94
10
0
17
0
0
0
0
0
0
8
0
225
0
207
0
407
0
269
0
0
1
0
0
8
0
0
103
Aphyocharax anisitsi
Aphyocharax rathbuni
Aphyocharax nattereri
Astyanax asuncionensis
Astyanax bimaculatus
Astyanax eigenmanniorum
Astyanax rutilus
Astyanax pynandi
Bryconamericus iheringi
Charax leticiae
Charax stenopterus
Cheirodon interruptus
Diapoma terofali
Hemigrammus mahnerti
Hemigrammus ulreyi
Heterocheidoron yatay
Hypessobrycon anisitsi
Hypessobrycon elachys
Hypessobrycon eques
Hypessobryconigneus
Hypessobrycon luetkenii
Hypessobrycon meridionalis
Hypessobrycon wajat
Hyphessobricon auca
Moennkhausia intermedia
Moennkhausia sanctaefilomenae
Odontostilbe pequira
Oligosarcus jenynsii
Oligosarcus paranensis
Oligosarcus sp.
Psellogrammus kennedyi
Roeboides affinis
Roeboides descalvadensis
Serrapinus calliurus
15
15
8
0
54
0
0
156
28
0
1
0
0
0
0
0
8
3
0
12
1
58
0
54
0
219
0
0
0
0
0
18
0
2
135
3
1
0
16
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
2
0
8
0
1
0
1
0
39
0
0
0
0
0
14
0
0
17
2
5
0
Acestrorhynchus pantanerio
11
6
3
SERRASALMIDAE
0
2
1
0
0
2
1
4
0
1
0
0
0
2
0
0
0
0
0
37
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
0
2
12
0
0
1
0
1
0
8
0
0
0
10
0
0
25
0
0
1
0
0
0
0
0
2
0
0
1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
Serrapinus kriegi
ACESTRORHYNCHIDAE
Serrasalmus maculatus
Pygocentrus nattereri
Metynnis mola
CURIMATIDAE
Steindachnerina brevipinna
Steindachnerina conspersa
Cyphocharax saladensis
Cyphocharax spilotus
Cyphocharax voga
ERYTHRINIDAE
Hoplerytrynus unitaeniatus
Hoplias malabaricus
LEBIASINIDAE
Pyrrhulina australis
ANOSTOMIDAE
Leporinus lacustris
Leporinus obtusidens
CRENUCHIDAE
Characidium cf. zebra
Characidiumranchovii
Orden Gymnotiformes
RHAMPHICHTHYDAE
Eigenmania trilineata
Rhamphhichthys hahni
GIMNOTIDAE
Gymnotus inaequilabiatus
16
HYPOPOMIDAE
Brachyhypopomus gauderio
Brachyhypopomus bombilla
Brachyhypopomus draco
0
0
1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
Orden Siluriformes
PIMELODIDAE
Pimelodus sp
Pimelodella gracilis
Pimelodella laticeps
Rhamdia quelen
CALLICHTHYIDAE
Callichthy callichthys
Corydoras undulatus
Corydoras aeneus
Corydoras hastatus
Hoplosternum littorale
Lepthosplosternum pectorale
LORICARIDAE
Loricariichthys platymetopon
Loricariichthys melanocheilus
Rineloricaria parva
TRICHOMYCTERIDAE
Homodiaetus anisitsi
AUCHENIPTERIDAE
Trachelyopterus galeatus
ASPREDINIDAE
Bunocephalus doriae
Orden Cyprinodontiformes
RIVULIDAE
Melanorivulus punctatus
17
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
0
1
1
0
1
0
19
0
1
2
2
0
0
0
16
0
0
2
0
0
0
0
0
0
5
7
0
SYNBRANCHYDAE
0
0
0
Synbranchus marmoratus
1
0
0
0
0
0
Platanichthys platana
1238
249
1
Total
2815
1154
112
ANABLEPIDAE
Jenynsiia multidentata
POECILIDAE
Cnesterodon decemmaculatus
Phalloceros caudimaculatus
Orden Perciformes
CICHLIDAE
Apistogramma borellii
Apistogramma commbrae
Cichlasoma dimerus
Australoheros facetus
Crenicichla lepidota
Crenicichla vittata
Gymnogeophagus balzanii
Laetacara dorsigera
SCIAENIDAE
Pachyurusbonariensis
Orden Synbranchiformes
Orden Clupeididae
CUPLEIDIDAE
Bibliografia:
[1].- GOLICHER D. J., O`HARA R. B., RUIZ-MONTOYA L. & CAYUELA L. 2006.Lifting a veil
ondiversity: a bayesian approach to fitting relative-abundance models. Ecological Applications 16(1): 202212.
[2].- CASCIOTTA, J. R.; A. E. ALMIRÓN & J. BECHARA. 2005. Peces del Iberá - Hábitat y Diversidad.
Grafikar, La Plata, Argentina; UNDP, Fundación Ecos, UNLP y UNNE; 244 pp. ISBN 987-05-0375-6.
18