Mutación

GENETICA BACTERIANA
1
Mutaciones
Transferencia de material genético
de un organismo a otro
Procesos que producen cambios en la
información genética de un organismo
y pueden tener como consecuencia un
cambio en su fenotipo y adaptación a
distintos ambientes.
Recombinación genética
Transposición
Estos procesos permiten el análisis de la
estructura génica de un organismo y tienen
importancia y uso para la construcción de
nuevos organismos con aplicaciones
prácticas.
2
Mutación: cambio heredable en la secuencia de bases del genoma
de un organismo.
Mutante: la cepa que lleva ese tipo de cambio.
Genotipo: dado por la secuencia de nucleótidos en el ADN (ej. hisC).
Fenotipo: dado por las propiedades observables del organismo (His-).
3
Bacteria sensible a antibiótico
Se hace crecer en un medio con antibiótico
Se aíslan colonias que poseen una resistencia a la
droga (heredable).
¿Las mutaciones se indujeron a causa del antibiótico?
4
En general la mutación es un evento espontáneo que ocurre al azar y no está
relacionado a una adaptación al medio ambiente.
Luria y Delbruck (1943): investigaron el origen de la mutación que le confiere a E. coli
resistencia al fago T1
B
A
o
1
2
3
20
10 ml conteniendo
103 células/ml
20 erlenmeyers
conteniendo 103 células /ml
Se crecen hasta alcanzar 109 células/ml
Cada uno se plaquea en una placa con fago T1
0,2 ml / placa
Se plaquean 20 placas que contienen el fago,
0,2 ml de cultivo / placa.
5
A
B
Mutación adaptativa
6
Tasa de mutación para un determinado fenotipo: La probabilidad de que una célula mute a un
determinado fenotipo cada vez que la misma se divide.
a=
m
d
=
a= tasa de mutación
m= número de mutaciones surgidas en el cultivo
en el tiempo t
d= número de divisiones ocurridas en ese tiempo t
N= número de células
m
N2 – N1
Aplicación a experimento en placa
Placas con igual número de bacterias
sembradas
t1
t2
Se agrega fago
Eventos de mutación ≠ número de mutantes
Si se hace en cultivo líquido hay que hacer
correcciones en base a cálculos estadísticos
Se agrega fago
Incubar
Contar número de mutantes (y en réplicas que no fueron sometidas al fago contar el número de células totales)
También se puede aplicar esta aproximación
M/N
Pendiente= a
La tasa de mutación se saca experimentalmente
y depende del tamaño, secuencia del gen,
secuencia de aa y estructura tridimensional del
producto del gen que se está mutando.
Tasa de mutación espontánea: 10-6-10-8
tiempo
Se debe trabajar con cultivos densos en fermentador
7
Mutaciones
Puntuales: sustitución de pares de bases
microinserciones
microdeleciones
Elementos de inserción
Mutaciones debidas a cambio de muchos pares de bases (genes enteros): inserciones
deleciones
inversiones
Mutaciones puntuales
Sustitución de pares de bases: El
cambio fenotípico depende de donde
exactamente ocurre la mutación en el
gen, que cambio de nucleótido tuvo
lugar y que producto codifica dicho
gen.
Recombinación
UAC
Codón de tirosina
CAC
Codón de
Histidina
Proteína defectuosa
Mut de contrasentido
UAG
codón de
terminación
Proteína incompleta
Mut sin sentido
UAU
codón de
tirosina
Proteína normal
Mut silenciosa
Mutaciones por desfase: Por
inserción o deleción se origina un
desfase en el marco de lectura. La
traducción resulta alterada.
8
Por errores en la replicación: los errores ocurren
Ocurrir
naturalmente
con alta frecuencia pero
existen mecanismos de
corrección muy eficientes
Por alteración espontánea de ciertos nucleótidos
que lleva a un apareamiento equivocado
Tautomerismo, Hot Spots.
Mutaciones
Mutágenos químicos y físicos
Provocadas
Para aislar una mutante:
Mutágenos biológicos: mutagénesis por transposón
Mutagénesis dirigida: Tecnología de ADN
recombinante.
Hay que tratar de aumentar la tasa de mutación
Hay que buscar un método eficiente de selección
9
Tautomerismo
T- - - A
T- - - G
TA
CG
forma
enol
5% de las citosinas están metiladas
C - - -G
MeC - - -G
Tanto C como MeC pueden perder el NH2
C
MeC
U
T- - -A
MeCG
TA
Hot Spots
10
Por errores en la replicación: ocurre con alta frecuencia
Ocurrir
naturalmente
Existen mecanismos de
corrección
Por alteración espontánea de ciertos nucleótidos
que lleva a un apareamiento equivocado
Tautomerismo, Hot Spots.
Mutaciones
Mutágenos químicos y físicos
Provocadas
Para aislar una mutante:
Mutágenos biológicos: mutagénesis por transposón
Mutagénesis dirigida: Tecnología de ADN
recombinante.
Hay que tratar de aumentar la tasa de mutación
Hay que buscar un método eficiente de selección
11
Hipoxantina (APAREA CON CITOCINA)
Uracilo (APAREA CON ADENINA)
(la transforma en comp.
que se aparea con A)
y deleciones
Daño por especies reactivas de oxígeno: radicales libres, agua oxigenada
mutaciones puntuales por errores en apareamiento
Análogo de base
T
T(forma enol) (aparea con G)
BU
BU (forma enol)
BU - - - G
Más frecuentemente
AT
GC
12
Por errores en la replicación: ocurre con alta frecuencia
Ocurrir
naturalmente
Existen mecanismos de
corrección
Por alteración espontánea de ciertos nucleótidos
que lleva a un apareamiento equivocado
Tautomerismo, Hot Spots.
Mutaciones
Mutágenos químicos y físicos
Provocadas
Para aislar una mutante:
Mutágenos biológicos: mutagénesis por transposón
Mutagénesis dirigida: Tecnología de ADN
recombinante.
Hay que tratar de aumentar la tasa de mutación
Hay que buscar un método eficiente de selección
13
Sistemas de reparación
Mecanismos de reparación específicos para determinado tipo de mutación
Daño por Deaminación: Actúan DNA glicosilasas específicas reconocen (hipoxantina, xantina y uracilo).
Rompen entre el azúcar y la base alterada. Luego actúan las AP endonucleasas que
cortan en el esqueleto azúcar-fosfato y finalmente actúa la ADN polimerasa I rellenando.
Desaminación de citocinas metiladas
C
MeC
U
Uracil-glicosilasa
T- - -A
MeCG
TA (sobre las T en mismatch con G en el contexto
No se saca con una glicosilasa
El sistema de reparación por mismatch no puede
distinguir cual es la base equivocada
Hot spot
de determinada secuencia actúa otro sistema
de reparación llamado VSP (very short patch)
Daño por alquilación: glicosilasas específicas, AP endonucleasas y la ADN pol I
metiltransferasas específicas
Daño por especies reactivas de oxígeno: Formación de 8-oxo G. Aparea con A en lugar de C
Paricipan los genes mutM, mut T y mutY.
mut M codifica para una glicosilasa específica para 8-oxo G.
mutY codifica para una glicosilasa específica para A.
mutT inhibe la formación de 8-oxo G.
También en daño al ADN por especies reactivas de oxígeno
actúa el sistema de reparación por escisión
Daño por Radiación UV (formación de dímeros de timina). Fotoreactivación: ocurre en presencia de
la luz. Actúa una Fotoliasa que separa las bases unidas
También hay N-glicosilasas específicas para dímeros de timina
14
Mecanismos de reparación general
Actividad correctora de la ADN polimerasa III durante la replicación (MutD)
Reparación de mismatch dependiente de metilo:
Reconocen cambios en la estructura del ADN debido a un apareo indebido
(pequeñas distorsiones en la hélice). Participan los genes mutS, mut L y
mut H. Además participa el gen dam (metila Adenina dentro de determinada
secuencia después de la replicación, la nueva hebra esta temporalmente
no metilada). Entonces cuando el daño y la formación de mismatch ocurre
durante la replicación puede ser corregido correctamente.
Análogos de base
Cambio en el marco de lectura por incorporación de algún reactivo (colorantes
Intercalantes).
Genes mut: genes mutadores
15
Mecanismos que reconocen distorsiones grandes en la hélice principalmente daños por UV
y cruzamiento entre cadenas
Reparación por escisión
Reparación recombinatoria
Reparación por mecanismo de SOS (mutagénico)
Reparación por escisión
Reparación recombinatoria
Intervienes los productos de los genes uvrA, uvrB, uvrC, uvrD y
DNA polimerasa. Son inducibles por daño al ADN
16
Reparación por mecanismo de SOS (mutagénico)
Por acción de mutágenos
Daño al ADN
grande
Se induce el sistema de SOS
(normalmente reprimido por LexA)
RecA se une al ADN dañado y sufre un cambio
conformacioal que induce una actividad autoproteolítica en LexA
se induce el regulon SOS
constituído por genes que participan en la reparación
del ADN.
Cuando el daño es muy grande ocurre la Reparación mutagénica. Se dejan de reprimir los genes
umuD y umuC (se requieren niveles mayores de RecA que tambien activa la autoproteolisis de UmuD).
La presencia de los productos de estos genes permite que la ADN polimerasa replique sobre el ADN
dañado (bypass replicativo) pero metiendo errores.
17
Por errores en la replicación: ocurre con alta frecuencia
Existen mecanismos de
corrección
Ocurrir
naturalmente
Por alteración espontánea de ciertos nucleótidos
que lleva a un apareamiento equivocado
Tautomerismo, Hot Spots.
Mutaciones
Mutágenos químicos y físicos
Provocadas
Para aislar una mutante:
Mutágenos biológicos: mutagénesis por transposón
Mutagénesis dirigida: Tecnología de ADN
recombinante.
Hay que tratar de aumentar la tasa de mutación
Hay que buscar un método eficiente de selección
18
Elevada tasa de mutación general
Mutación de Genes mutadores
Stress, alta dosis de radiación UV o de sustancias
reactivas de oxígeno
(Ej: mutación en la función Correctora)
Hipermutación por inducción del sistema SOS
19
Mutación adaptativa
Tasa de mutación general regulada por el ambiente
Stress
Amplificación adaptativa
Hipermutación por inducción del sistema SOS
Incrementada tasa de mutación en sitios específicos regulada por el ambiente
En células que no están creciendo se produce una amplificación de los genes que limitan el crecimiento
Al haber más, es más probable que muten.
Una bacteria oscila entre dos condiciones ambientales. Ha desarrollado un mecanismo de aumento de
la tasa de mutacion de un gen particular que en una condición debe ser funcional y en otra no (Inversión
reversible de un segmento en el genoma.
20
Reversiones
Una revertante es una cepa en la que se restauró el fenotipo silvestre que se había perdido.
Secuencia que al traducir da el mismo fenotipo
Revertante de un mismo sitio
Se vuelve a la secuencia original: revertante verdadera
Mutación en el mismo gen: corrigen el marco
de lectura.
Mutación en otro gen que restaura el fenotipo
silvestre produciendo la misma proteína.
Ej. : mutación en genes de tRNA. Supresora informacional
Revertantes
También pueden
ocurrir naturalmente
o ser provocadas
Revertantes de segundo sitio o
mutaciones supresoras
Supresoras por sobrexpresión
Supresoras por interacción
Mutación que produce una vía metabólica
alternativa que permite el mismo fenotipo. Supresora
por bypass
21
Supresora informacional
22
Por errores en la replicación: ocurre con alta frecuencia
Ocurrir
naturalmente
Existen mecanismos de
corrección
Por alteración espontánea de ciertos nucleótidos
que lleva a un apareamiento equivocado
Tautomerismo, Hot Spots.
Mutaciones
Mutágenos químicos y físicos
Provocadas
Para aislar una mutante:
Mutágenos biológicos: mutagénesis por transposón
Mutagénesis dirigida: Tecnología de ADN
recombinante.
Hay que tratar de aumentar la tasa de mutación
Hay que buscar un método eficiente de selección
23
Aislamiento de mutantes
Detección en placa
Detección por replica en placa y rastreo (screening)
Ej.: pérdida de pigmentación
Ej.: mutante auxótrofa
mutante sensible a antibiótico
s/Ab
c/Ab
Selección
Selección positiva: La mutación proporciona una ventaja para el crecimiento
bajo ciertas condiciones ambientales.
Ej.: resistencia a un antibiótico.
s/Ab
c/Ab
Selección negativa: La mutación causa una desventaja: Ej.: mutantes auxótrofas,
mutantes sensibles a un antibiótico.
Enriquecimiento (penicilina, incorporación de precursor metabólico
radioactivo)
Mutantes leaky
Mutantes condicionales
24
Mutagénesis y carcinogénesis: Test de Ames
Uso de cepas bacterianas mutantes para identificar sustancias potencialmente
carcinogénicas.
Se usa mutantes auxotróficas, puntuales (S. typhimurium, auxótrofa para histidina;,
E. coli, auxótrofa para triptofano).
La mutante auxótrofa no puede crecer en un medio carente del nutriente para el cual
es auxotrófica, si revierte entonces crece.
Una sustancia con capacidad mutagénica incrementa la frecuencia de reversión en la
mutante puntual.
Control
Disco de papel
Placa con bacterias
auxotróficas para
histidina
Medio con concentración muy baja de histidina
Disco de papel
Con sustancia a ensayar
activada
25
Mutaciones
Transferencia de material genético
de un organismo a otro
Procesos que producen cambios en la
información genética de un organismo
y pueden tener como consecuencia un
cambio en su fenotipo y adaptación a
distintos ambientes.
Recombinación genética
Transposición
Estos procesos permiten el análisis de la
estructura génica de un organismo y tienen
importancia y uso para la construcción de
nuevos organismos con aplicaciones
prácticas.
26
Existen 3 formas de transferencia de ADN a una bacteria
TRANSFORMACION
TRANSDUCCION
CONJUGACION
27
Mutaciones
Transferencia de material genético
de un organismo a otro
Procesos que producen cambios en la
información genética de un organismo
y pueden tener como consecuencia un
cambio en su fenotipo y adaptación a
distintos ambientes.
Recombinación genética
Transposición
Estos procesos permiten el análisis de la
estructura génica de un organismo y tienen
importancia y uso para la construcción de
nuevos organismos con aplicaciones
prácticas.
28
Recombinación: proceso por el que, en parte o por completo, las
moléculas de ADN de dos fuentes distintas se intercambian o juntan
en una unidad.
RECOMBINACION GENERAL
U HOMOLOGA
Entre fragmentos iguales o muy similares
RecA
RECOMBINACION NO HOMÓLOGA
Transposición
Recombinación sitio específica
Resolvasas
Integrasas
Transposasas
Invertasas y más..
29
RECOMBINACION GENERAL U HOMOLOGA
Intercambio de
cadenas homólogas
Modelo de
Holliday o de
invasion de
doble cadena
A
Isomerización
Dos cortes en cs
En el mismo lugar
Entrecruzamiento de
Extremos libres
Apareamiento con
Secuencia complementaria
Y formación de heteroduplex
Resolución
Secuencias homólogas
Sinapsis
Heteroduplex
Endonucleasas, ligasas, polimerasas
RecA
Migracion de ramificacion
Estructura de Holliday
Parches
Empalmes
(recombinación verdadera)
30
Las dos cadenas de
una de las moléculas
de ADN se cortan y los
extremos 5´se degradan
Uno de los extremos 3´
invade la otra molécula
de ADN y encuentra su
secuencia complementaria
La ADN polimerasa
Desplaza y rellena
Ligación
Se forman dos estructuras
de Holliday.
Si las dos estructuras están
en distinta configuración
entonces hay recombinación
Modelo de reparación de ruptura de
doble cadena
31
Enzimas que participan en la recombinación homóloga:
RecBCD: nucleasa se une a extremos de doble cadena.
Reconoce una secuencia determinada (sitio chi, χ) que determina
donde se va a formar un extremo 3´ que va a constituír la hebra invasora.
RecA: Se une al extremo 3´de la cadena invasora, lo fuerza a adoptar la conformación de una hélice y permite que se meta
en la doble hélice de la cadena complementaria formando una hélice triple en la cual tiene lugar el apareamiento de
la hebra invasora con su complementaria.
RuvA, RuvB: involucradas en la migración de la remificación.
RuvC: resuelve la estructura de Holliday
Hay otros genes que participan en recombinación y que pueden reemplazar parcialmente los
Anteriores: RecF, RecG
32
33
Consecuencias de la recombinación homóloga
Mutación ó complementación
Para que aparezca un nuevo fenotipo a
raíz de la recombinación homóloga, las
dos cadenas que se intercambian deben
tener alguna diferencia
Integración al cromosoma
La recombinación entre dos regiones de una
misma molécula de ADN que presentan
similitud puede ser la causa de:
Deleciones
Inversiones
34
Transformación
Proceso por el cual el ADN libre
se incorpora en una célula
receptora y lleva a cabo un cambio
genético heredable.
No todas las bacterias son transformables naturalmente.
Ejemplos de bacterias transformables naturalmente: Bacillus, Streptococcus, Haemophilus, Neisseria, Azotobacter,
Pseudomonas
Célula competente: célula capaz de tomar
una molécula de ADN y ser
transformada.
La competencia natural depende de la especie, de la fase de crecimiento, del pH, etc.
Algunas especies presentan el 100% de las células en una cultivo competentes al final
de la fase exponencial (10-15´) (Streptococcus pneumoniae) y otras un 1-20 % de
células competentes y solo en fase Estacionaria (Bacillus subtilis)
En el proceso de transformación natural intervienen proteínas de membrana que
asocian ADN, autolisinas de pared celular, nucleasas.
35
Desarrollo de la competencia
Observado para Streptococcus pneumoniae (G+)
A medida que la célula crece, secreta al medio un péptido que se llama CSP (péptido estimulador de la
competencia. Existen proteínas sensoras en la membrana celular que sensan la concentración de CSP.
Cuando CSP llega a determinada concentración, esto es sensado por las proteínas sensoras que transmiten
la señal a una proteína reguladora (sistema de regulación de dos componentes) que a su vez activa la
transcripción de varios genes entre los que se encuentran aquellos que codifican para la maquinaria necesaria
para la captación del ADN exógeno, su entrada y recombinación (proteínas unidoras del ADN cd, endonucleasas,
exonucleasas, autolisinas de la pared, canales de membrana, proteínas protectoras contra la degradación de la
cadena simple que entra, proteínas necesarias para la recombinación.
En Haemophilus influenzae (G-): no produce el factor de competencia y el DNA es primero captado por
Vesículas de membrana.
La captación de ADN es inespecífica
salvo para Neisseria y Haemophilus en
los que se reconoce una secuencia de
11 pb.
36
Gram (-)
Gram (+)
37
Se puede inducir el estado de competencia: mecanismo de transformación distinto al que
ocurre en células naturalmente competentes.
Ej.: Tratamiento con Cl2Ca y shock térmico.
Electroporación
Replicable
Complementación
Transformación con plásmidos
Complementación
no replicable (suicida)
Eficiencia de
= número de colonias
Transformación
μg ADN
recombinación
mutación
38
Se debe tener un método de
selección
39
Transducción
Infección lítica y lisogénica
40
Generalizada
Transducción
Especializada
41
Formación de fago transductor para transducción generalizada
Fago
transductor
42
Transducción generalizada
Recombinación
homóloga
43
Transducción especializada
Formación de fago transductor con fago atemperado
Célula
lisogénica
44
Transducción especializada
Recombinación
homóloga
45
Conjugación
PLASMIDOS
Elementos genéticos, doble cadena, generalmente circulares, que se replican en forma
independiante del cromosoma del hospedador
No llevan genes que codifiquen para funciones esenciales para la supervivencia del organismo
Se conocen miles de tipos diferentes
Se encuentran en la mayoría de las bacterias
Tamaño entre 1000- 106 pb
Plásmido típico: circular, bicatenario 0,2-0,4% del ADN cromosómico
Forma superenrollada. Con rotura en una cadena da círculo abierto. Con rotura en las dos
cadenas da forma lineal.
En forma similar al cromosoma.
Replicación theta
Los plásmidos se replican a partir de un origen de replicación.
En círculo rodante
46
47
Los genes necesarios para la replicación pertenecen en su mayoría al hospedador pero
el plásmido lleva información:
‹ Para algunas de las enzimas necesarias para la iniciación de la replicación (esto determinará si
es de amplio o estrecho rango de huésped y que tipo de replicación sigue).
‹ Para el control temporal de la iniciación de la replicación determinando el número de copias
por célula. Plásmidos de alto y bajo número de copias.
‹ Para la regulación de la partición de los plásmidos entre las células hijas en la división celular
‹ Puede determinar su capacidad de compartir la célula con otros tipos de plásmidos
incompatibilidad.
48
Número de copias:
Es característico del plásmido
Bajo número de copias (1-3)
Alto número de copias (10-100)
Represor de la replicación codificado por el plásmido para el caso de plásmidos de alto número
de copias.
Curación:
Los plásmidos se pueden eliminar de la célula hospedadora por distintos tratamientos:
colorantes de acridina, detergentes, elevada temperatura, electroporación. Ocurre una dilución
del plásmido en la división celular.
Partición:
La segregación de los plásmidos en las dos células hijas, para plásmidos de bajo
número de copias está regulada. Si no estuviese regulada, la fracción curada sería 2 x (1/2)n
pero empiricamente se ve que es menor.
Incompatibilidad:
Plásmidos distintos pero estrechamente relacionados no pueden permanecer juntos en forma
estable en una misma célula. Los plásmidos que no pueden coexistir forman parte del mismo
grupos de incompatibilidad. Los plásmidos que pertenecen al mismo grupo de incompatibilidad comparten el mecanismo de regulación de número de copias o el mecanismo de partición.
Hay numerosos grupos de incompatibilidad
49
Incompatibilidad
50
Hay distintos tipos de plásmidos en cuanto a genes extra que contienen y que le confieren al
hospedador un cierto fenotipo o una cierta capacidad.
51
Plásmidos conjugativos (F en E. coli)
Conjugación
4 etapas:
1) formación del par receptor-donor
G (-)
2)Preparación para la transferencia
del ADN.
3)Transferencia del ADN.
4) Formación de una réplica funcional
en el aceptor.
Conjugación en G(+): producción por parte de células
aceptoras de feromonas que inducen en la superficie de las
células donadoras la acumulación de sustancias de agregación que
median la unión entre los dos tipos celulares (Enterococcus)
52
53
Plásmido autotransferible o conjugativo (F):
llevan genes que permiten el contacto efectivo
y lleva la información necesaria para la
transferencia
Plásmido movilizable o transferible:
lleva la información necesaria para la
transferencia
Plásmido no transferible: no tiene los
genes necesarios para el efectivo
contacto ni para la transferencia del
ADN.
Donación
Conducción
54
PLASMIDOS
Conjugación
Cl2Ca
Transformación
inducida
Electroporación
Autotransferibles (conjugativos y transferibles)
PLASMIDOS
Transferibles (necesito la presencia de otro conjugativo)
Conjugacón biparental y
triparental
55
Conjugación triparental
56
Naturales
PLASMIDOS
Obtenidos por tecnología de ADN recombinante
Replicativos
Amplio o estrecho
rango de huesped
PLASMIDOS
Suicidas
Transformación o
Conjugación con plásmidos
Replicable
Complementación o introducción de gen nuevo
Complementación
no replicable (suicida)
recombinación
mutación
Tecnología de ADN recombinante
57
Conjugación
Medio de contraselección apropiado para seleccionar células
aceptoras (con la nueva
información) y no las dadoras
Complementación
A-
A
+
A
Vector Amp r
Cm r
Replicativo
Vector de expresión
Aceptora
Medio c/Amp y c/ Cm
Crece aceptora con plásmido
Dadora
Mutación
E. coli (no crece en sacarosa)
Rhizobium
Plásmido suicida, debe
ocurrir recombinacion
homologa
A
+
Crece en
AB sacarosa
A-
Gm
Vector suicida en cepa aceptora
Ampr
Un evento de recombinación
Ampr
Medio selectivo c/ Gm
(AB Sac Gm)
2 eventos de recombinación
Amps
58
Movilización del cromosoma
El plásmido F es un episoma. Se puede integrar al cromosoma y es capaz de transferir una
porción del cromosoma a una célula aceptora. Conducción
F+: plásmido F no integrado (donadora)
F-: no tiene plásmido F (receptora)
Hfr: células que tienen el plásmido F integrado al cromosoma (donadora)
F´: Ocasionalmente el plásmido F integrado se puede escindir del cromosoma y existe la posibilidad de que se incorporen
al mismo genes cromosómicos adyacentes (donador si no perdió ninguno de los genes necesarios para el proceso)
59
La integración del plásmido F al
cromosoma es a través de las
Secuencias de Inserción, IS,
que se encuentran tanto en el
plásmido como en determinados
lugares del cromosoma.
Recombinación homóloga
60
61
Existen diferentes secuencias de inserción y para cada tipo existen distintos sitios
en el cromosoma donde se pueden integrar, o sea se pueden tener diferentes cepas Hfr.
Como se detecta si hubo o
no transferencia de ADN
cromosómico y
recombinación
62
Mediante el uso de una variedad de cepas Hfr se pudo determinar en E. coli la disposición y orientación
de un gran número de genes cromosómicos
Conjugación de:
Hfr a+ b+ c+ d+ e+ Strs
X
F- a- b- c- d- e- Strr
Producto de conjugación
(Se corta la conjugacion a distintos tiempos
Por agitación)
Plaqueo en medio con estreptomicina
y todos los aa menos:
a
b
c
d
e
63
64
Recombinación sitio específica
TRANSPOSONES
El ADN de bacterias, virus y células eucariotas contienen elementos que se pueden
mover de un lugar a otro del mismo.
El movimiento se llama transposición.
Secuencias de inserción
Transposones compuestos
Transposones no compuestos
Fago Mu
65
IR
Secuencias de inserción
Transposones compuestos
Tn5, Tn9, Tn10
IR
Transposasa
E.coli contiene distintos IS,
algunos estan repetidos.
se los encuentra tanto en cromosoma
como en los plásmidos
Transposones no compuestos
Tn3
66
8-38 pb
Reconocimiento del
blanco:
Transposasa
Target: 3-12 pb
Conservativo (Tn5)
Mecanismo de transposición
Replicativo (Tn3, Fago Mu) (hay un intermediario)
67
Transposición replicativa
Transposición conservativa
Recombinación
específica no homóloga
Transposición
(Transposasas)
Reombinación
sitio específica
(Transposasas y
Resolvasas)
IS y transposones compuestos
Tn3 y fago Mu
68
Consecuencias de la transposición
Mutagénesis: Se utilizan transposones para mutagenizar. La resistencia a antibióticos
para la cual codifican es útil para seleccionar las mutantes. Se utilizan como portadores
del transposón, plásmidos suicidas. Se utilizan transposones modificados: miniTn5 (no
codifica para la transposasa).
Inducción de la expresión: por secuencias promotoras que contiene y que quedan
rio arriba de algún gen.
Rearreglos: por inserción de transposones compuestos
(deleciones e inversiones)
69
Mutagenesis generalizada por transposición
Rhizobium
E. Coli (no crece en sacarosa)
+
Crece en
AB sacarosa
Vector suicida en Rhizobium con
Tn5 (Kmr)
Medio selectivo c/ Km
(AB Sac Km)
Plásmido suicida, debe
ocurrir transposición
La transposasa del transposón es inactiva y va otra copia intacta en el plásmido fuera del transposón
70
Rearreglos
Out-side end transposition (transposición externa)
In-side end transposition (transposición interna)
71
Recombinaciones sitio especificas: integración de fago (integrasas)
transposición replicativa (transposasas y
resolvasas)
inversión (invertasas)
Integrasas
Invertasas
Ejemplo de mecanismo empleado en
mutacion adaptativa especifica de sitio
regulada por factores ambientales.
Variación de fase en Salmonella
72
Thomas D. Brock and Michael T. Madigan. Microbiología
Prescot, Harley and Klein. Microbiology
Snyder and Champness. Molecular genetics of bacteria
73