Enfermedades Foliares

UNIVERSIDAD NACIONAL DE ROSARIO
FACULTAD DE CIENCIAS AGRARIAS
CÁTEDRA DE FITOPATOLOGÍA
Dra. Ing. Agr. Rosanna Pioli
Profesor Asociado
AÑO 2014
DIAGNÓSTICO
CUANTIFICACIÓN y ESTIMACIÓN
SELECCIÓN DE GENOTIPOS
CONTROL
ENFERMEDADES
FOLIARES
Promover expresión de Síntomas y Signos
Recolección
Herborizado
Acondicionamiento en cámara húmeda
Identificación del patógeno y enfermedad
FOLIARES FÚNGICAS
MANCHA MARRÓN
causada por Mycosphaerella – Septoria
MANCHA MARRÓN
causada por Mycosphaerella - Septoria
Ubicación observada usualmente en períodos
Vegetativos iniciales
SÍNTOMAS FOLIARES por Mycosphaerella - Septoria
Manchas irregulares con centro oscuro necrótico (desde puntos a 4mm) rodeado por halo clorótico amarillento.
Las manchas coalescen, causan amarillamiento y desfoliación .
a.
En estadios vegetativos los síntomas se
observan en hojas basales o inferiores.
b.
En estadios reproductivos la enfermedad
avanza hacia los estratos superiores.
a
R. Pioli
b
MANCHA MARRÓN
causada por Mycosphaerella - Septoria
MANCHA EN OJO DE RANA
MOR
Causada por Cercospora sojina
MANCHA EN OJO DE RANA
MOR
Causada por Cercospora sojina
MOR - causada por Cercospora sojina
Iowa Univ.
TIZÓN DEL TALLO y MANCHA
PÚRPURA DE LA SEMILLA
LA PLANTA
Síntomas en hojas
Síntoma más avanzado
Aspecto escamoso y seco
R. Pioli
Síntomas de Tizón por
Cercospora kikuchii
en hojas
R. Pioli
R. Pioli
Síntomas de Tizón por
Cercospora
en hojas y vainas
R. Pioli
R. Pioli
Síntomas de Tizón por
Cercospora
en hojas y vainas
Síntomas en hojas
R. Pioli
por C. kikuchii, C. sojina
y otras foliares como Tizón Bacteriano
o Septoriosis
Síntomas en hojas
y vainas
Síntomas en hojas
por C. kikuchii
R. Pioli
Síntomas de Tizón por
Cercospora
en hojas y vainas
Síntomas en hojas
y vainas
R. Pioli
Síntomas en hojas
R. Pioli
Síntomas en vainas
Síntomas: Mancha púrpura en Semillas
Iowa Univ.
R. Pioli
Signos:
R. Pioli
Conidióforos agrupados y oscuros, sosteniendo
conidios filiformes hialinos.
Otorga una coloración gris-acerada a las lesiones.
Hongos Hemi-biotrofos
Condiciones predisponentes
Temperaturas 18 -21 ºC
HR >80 %
24 hs follaje mojado
Inoculo 1º Semillas y rastrojo infectados
Supervivencia y transmisión:
Inoculo 1º Semillas y rastrojo infectados
Aparición usual - R1
Defoliación prematura – 20% de baja pérdidas
en rendimiento
Manejo de la enfermedad
Rotación con gramíneas
Genético- cultivares de buen comportamiento
Químicos combinación de triazoles y estrobirulinas
MANCHA por Phyllosticta
Phyllosticta sojicola
picnidios
Iowa Univ.
Iowa Univ.
Mancha foliar ocasional en soja
Síntomas
Plantas pueden infectarse durante todo el ciclo
Mancha foliar circular, oval o en V.
Color grisáceo o bronceadas según el cultivar.
Pueden tener margen oscuro
Signos
Sobre lesiones más antiguas, se forman picnidios
Condiciones predisponentes
Temperaturas frescas y humedad
Inóculo 1º- residuos de cosecha infectados
Manejo
Rotaciones
Hongos Biotrofos - parásitos
obligados
ROYA ASIÁTICA DE
LA SOJA
SÍNTOMAS de RAS
Biotrofo
SÍNTOMAS de RAS Biotrofo
a
Punteado clorótico
centro amarronado
halo amarillamiento
a.b.
b
Miles, Frederick and Hartman
c
SIGNOS
En el envés foliar se forman
Uredinios sobre las lesiones
c.
BIOTROFO Phakopsora pachyrhizi
Plantas inoculadas
de Alta Variabilidad Genética
LESIONES
b
a
a. Bronceadas – TAN
b-c. Marrón rojizas - RB
Imágenes Miles, Hartamn
c
Características biológicas particulares
de RAS
Roya de ciclo incompleto
Uredinios y urediniosporas constituyen el inóculo 1º
exógeno o endógeno sobre hospedantes alternativos
o rebrotes de soja.
Telios – teliosporas --- rol biológico hasta ahora no dilucidado
Formación de apresorios – ventaja adaptativa
Amplía rango de Hospedantes.
Manejo de la enfermedad
E. Genéticas – Evaluación y Selección de variedades
En base al comportamiento de Líneas
portadoras de genes de Rpp1- Rpp4
E. Qúimicas – Aplicaciones fungicidas combinados
E. Culturales –
Prácticas que no promuevan Micro ambientes
conductivos de RAS (Densidad de plantas)
Controlar hospedantes alternativos y rebrotes.
DOWNY MILDIU
Hongo Biotrofo - parásito obligado
DOWNY MILDIU
Hongo Biotrofo - parásito obligado
Reino: Protistas
Chromistas
D. Heterokontophyta - Stramenopiles
Sub.D Pseudofungi
C. Oomycetes
O. Peronosporales
F. Peronosporaceae
G. y E. Peronospora manshurica
SÍNTOMAS
Peronospora manshurica
b
R. Pioli
R. Pioli
Fotos APS
a. Puntos cloróticos iniciales color limóm
b. Lesiones con necrótico y halo clorótico
a
R. Pioli
Fotos APS
OIDIO ó
OIDIO ó
Diferenciar y Comparar Mildius y Oidios
F. sexual
F. Asexual
Deuteromycota
Hyphomycetes
Oidium
OIDIO ó
El hongo sobrevive en residuos infectados
(hojarasca)
Condiciones predisponentes:
nuboso y fresco
más severo en siembras tardías
Manejo
Resistencia genética
Fungicidas, uso no frecuente
FOLIARES BACTERIANAS
TIZÓN BACTERIANO
Pseudomonas savastanoi pv. glycinea
ex P. syringae
TIZÓN BACTERIANO
Pseudomonas savastanoi pv. glycinea
Ex P. syringae
Iowa Univ.
SINTOMAS Y SIGNOS
La enfermedad suele aparecer en el cultivo en cualquier momento
de su desarrollo, desde la emergencia de los cotiledones.
Puede llegar a dañar el hipocótilo y la plántula muere.
Las lesiones se observan en las hojas y con frecuencia en los
tallos, pecíolos y vainas.
En las hojas se ven manchas pequeñas, angulares, translúcidas o
de aspecto acuoso, posteriormente se tornan de color amarillo
(cloróticas) a marrón claro (necróticas).
Los centros se secan rápidamente, se tornan oscuros de color
marrón rojizo a negro, y son rodeados por un margen humedecido
bordeado por un halo verde amarillento.
Las hojas jóvenes son más susceptibles, con frecuencia muestran
menor desarrollo, distorsiones y clorosis.
TIZÓN
BACTERIANO
Iowa Univ
Respecto al halo amarillo alrededor de las manchas, cabe consignar
que no siempre se lo ha encontrado,
Se aisló el agente causal de manchas con o sin halo (Gotuzzo,
1965),
este hecho confirma la capacidad de formar halo
varía con la raza o biotipo bacteriano
Además el halo estaría relacionado con la temperatura, (<T > halo)
luego de 12 días de incubación a 10ºC el halo mide hasta
5 mm
y sólo 2 mm si la temperatura era de entre 18,5 y 28ºC.
Las lesiones angulares se agrandan y bajo condiciones ambientales
de tipo frío y lluvioso (condiciones favorables) se fusionan caen o se
rasgan dando a la hoja una apariencia desgarrada.
Puede haber defoliación temprana
En cotiledones, ramas, pecíolos y frutos se suelen
observar pequeñas manchas de color castaño a
negro.
Signo de la enfermedad
si bien no siempre aparece,
pequeñas gotas de exudado, de color
grisáceo, acumuladas sobre las lesiones.
Este exudado puede
aparecer en el haz o en el envés de la hoja
TIZÓN BACTERIANO
Etiología
Pseudomonas savastanoi pv. glycinea (1999)
Pseudomonas syringae pv. glycinea (1989, 1993)
Es un bastón móvil, gram negativo,
Las colonias en el agar nutritivo son circulares,
lisas, translúcidas y poseen un borde entero.
Son blancas, elevadas pero no viscosas.
La temperatura óptima de crecimiento es de 24-26ºC,
la máxima superior a 35ºC y la mínima a 2ºC.
Patogenia:
La bacteria puede sobrevivir en residuos de cultivo y en la
semilla.
Las infecciones primarias de los cotiledones serían la mayor
fuente de inóculo que permitiría la infección secundaria.
Penetra a través de los estomas y se multiplica en los espacios
intercelulares del mesófilo.
La bacteria se propaga durante las tormentas con lluvias
ventosas y durante el cultivo mientras las hojas estén húmedas.
Condiciones ambientales
El clima fresco y lluvioso lo favorece.
Las semillas se pueden infectar durante el período de
crecimiento a través de las vainas
por daño de insectos,
durante la recolección
o durante el almacenamiento.
Control:
Genético
Evitar la siembra de cultivares muy susceptibles.
Se han identificado genes de resistencia.
Existen varias razas del patógeno
Cultural
Sembrar semillas libres de la enfermedad.
Rotar con cultivos no susceptibles (cereales-maíz,
granos pequeños, alfalfa, girasol)
No realizar tareas culturales cuando el follaje está
húmedo.
PÚSTULA BACTERIANA
PÚSTULA
BACTERIANA
Suele observarse con temperaturas más cálidas Usualmente al
final de vegetativo y reproductivo
Síntomas Suelen coexistir con Septoria, Tizón, RAS y Mildiu
Iowa Univ
PÚSTULA BACTERIANA
Xanthomonas axonopodis
pv. glycines
Fotos Univ. Illinois
PÚSTULA BACTERIANA
Iowa Univ.
Univ. Illinois
PÚSTULA
BACTERIANA
Iowa Univ
Xanthomonas sobrevive en
residuos de cosecha y semillas
Es diseminada por viendo,
lluvia – salpicaduras.
Penetra por heridas y estomas
Se adapta a Tº > que el Tizón
Manejo de la enfermedad
Evitar la siembra de cv susceptibles
Rotación de cultivos con alfalfa, maíz y
granos pequeños
ENFERMEDADES VIRALES
Patógenos Biotrofos
Partículas constituidas por 2 bio moléculas
Ac Nucleico + Proteína
MORFOLOGÍA
Alrededor de 1930 con el auxilio del microscopio electrónico se pudieron ver los
virus.
Pueden ser:
bastones rígidos como tubos con un eje longitudinal hueco,
ej. Virus del Mosaico del Tabaco (TMV);
bastones flexibles ej. Virus Y de la Papa (PVY);
baciliformes semejantes a bacilos alargados con los extremos
redondeados y cerrados,
ej. Virus del Mosaico de la Alfalfa (AMV);
icosaédros poliedro isométrico con 20 caras planas,
ej. Virus del Mosaico del Coliflor (CMV).
ESTRUCTURA
Los fitovirus están formados esencialmente por
un ácido nucleico (ADN o ARN), o ambos
y por una proteína que constituye la cubierta.
En los virus alargados (bastones) la proteína se engarza en una hélice formada
por el ácido nucleico.
En los virus baciliformes e icosaédricos la proteína forma una cápsula dentro de
la cual se ubica el ácido nucleico.
IDENTIFICACIÓN
El diagnóstico en laboratorio se basa también en los Postulados
de Koch
La metodología utilizada para el aislamiento y la identificación de
un virus (2º Postulado) difiere bastante de la utilizada para la
identificación de un hongo o una bacteria.
Tanto los hongos como las bacterias forman colonias que
pueden verse a simple vista y en el microscopio de luz pueden
verse detalles de su morfología.
Las partículas virales solo pueden verse al microscopio
electrónico en cortes ultrafinos de tejidos o en savia infectada.
VIRUS DEL MOSAICO
DE LA SOJA
El virus del mosaico de la soja, o virus del “mosaico común”
de la soja, causal de la enfermedad, es el más importante de
este cultivo
por su capacidad de transmitirse por semilla, está presente
en todo el mundo, donde se cultiva la soja.
En la Argentina, fue detectado por primera vez en 1979, en el
área central del país y posteriormente en otras áreas de
producción, como las provincias de Córdoba, Santa Fe,
Buenos Aires, Entre Ríos, Santiago del Estero, Tucumán y
Salta.
En estas regiones, los niveles de infección detectados varían
entre 0.5 y 40 %.
Las pérdidas de rendimiento causadas por esta enfermedad
virósica varían, según los cultivares de que se trate y el
momento de la infección, entre 0.5 y 33.4 %.
.
VIRUS DEL MOSAICO DE LA SOJA
Síntomas
Son variables, observándose en las hojas pequeños puntos o áreas cloróticas
mosaico suave o marcado, aclaramiento de las nervaduras, disminución del
tamaño, deformación de los folíolos y ampollamiento de la lámina foliar.
VIRUS DEL MOSAICO DE LA SOJA
Deformación de los folíolos y ampollamiento de la lámina foliar.
Las vainas pueden ser más pequeñas y deformadas, con
menor producción de semillas o vanas.
Se ha mencionado que el virus afecta el normal desarrollo de
los nódulos, disminuyendo el tamaño, número y eficiencia de
los mismos.
Las semillas producidas en plantas infectadas pueden
presentar o no diversos tipos de manchado, que van desde
un “moteado” a diseños o anillos concéntricos y la mancha
tipo “montura”, siendo esta última la más común. Si el
moteado ocurre, tiene el mismo color que el hilo de la
semilla.
Estos síntomas de corrimiento del hilo pueden también ser
de origen genético.
VIRUS DEL MOSAICO DE LA SOJA
También se produce acortamiento de entrenudos
y áreas necróticas en tallos y pecíolos, en caso de infección con
razas severas del virus
Síntomas en semillas
Organismo Causal
Soybean mosaic potyvirus (SMV).
El SMV es un miembro del grupo de los Potyvirus, con una longitud
modal entre 650 y 700 nm y longitud media de 760nm por 15 a 18nm.
El tipo de ácido nucleico es RNA de cadena simple.
Razas del Virus
La acción patogénica del virus varía con la raza involucrada en la
infección.
El SMV posee razas poco virulentas, que pueden ocasionar una
sintomatología clorótica apenas perceptible,
Razas moderadas que producen deformación de lámina foliar y
disminuyen el desarrollo de las plantas y el rendimiento,
Y razas necróticas, con severos daños que pueden ocasionar la
muerte de éstas. Las razas necróticas han sido mencionadas
especialmente en Corea, Japón y Brasil.
Se han descripto hasta el momento numerosas razas del SMV, siendo las más
comunes la G1, G2, G3, G4, G5, G6, G7 y C14. Asimismo, Almeida distingue tres
aislamientos diferentes: MS1, MS2 y MS3, de virulencia creciente.
En la Argentina, diferentes aislamientos provenientes de las provincias de Córdoba
y Buenos Aires, fueron identificados como razas G1, G5 y G6 y MS1, MS2,
similares a las descriptas por Cho and Goodman y Almeida respectivamente.
Se obtuvieron cinco aislamientos de SMV: Manfredi, Marcos Juárez, Venado Tuerto
(síntomas moderados), Noreste Argentino (síntomas suaves) y ¨planta vinosa¨.
Este último es el más severo, ocasionando necrosis en las hojas, pecíolos y tallos y
manchas en las vainas.
Características Epidemiológicas
El SMV es un Potyvirus que se transmite en la naturaleza
por áfidos
por semilla
A nivel experimental se transmite también en forma mecánica
Es transmitido en forma no persistente por treinta y cuatro especies de
áfidos (Aphis glycines)
En Argentina se determinó una asociación entre mayores nivelas de
infección de la virosis y mayor nivel poblacional de M. persicae,
Acyrthosiphon pisum, Rhopalosiphum pisum, R. maydis
La transmisión por semilla es muy importante para la dispersión de la
enfermedad, ya que en esa forma persiste el virus de un año al otro,
pudiendo permanecer infectivo en la semilla por dos años.
El porcentaje de transmisión por semillas depende de la raza del virus, el
genotipo, el momento de infección y las condiciones ambientales.
En Argentina, se comprobaron porcentajes variables de transmisión,
que llegaron al 5 al 30 %, según el cultivar.
Manejo de la Enfermedad
-Empleo de cultivares resistentes o tolerantes.
-Escape a la infección con épocas de siembra tempranas,
a fin de evitar el pico poblacional de los vectores en el momento
de mayor susceptibilidad del cultivo.
-Uso de semillas libre de virus o con muy bajos niveles de infección
y no manchada.
VIRUS CALICO de la ALFALFA
VIRUS CALICO de la ALFALFA
INTA Paraná
El virus del mosaico de la alfalfa (AMV) o “mosaico cálico”,
agente causal del mosaico de la alfalfa, se detectó en el cultivo
de soja en la Argentina en el período agrícola 1993-94
.
Ha sido observado en las provincias de Córdoba, Santa Fe,
Chaco, Santiago del Estero y Tucumán, con valores de
frecuencia variables entre el 8 y el 38%.
Suelen observarse mayores niveles de infección en predios
cercanos a cultivos de alfalfa, en los que ésta enfermedad es
común.
Se comprobó que esta virosis disminuye el crecimiento de las
plantas, así como el número de vainas por planta y el número
de granos por vaina.
El efecto sobre el rendimiento es variable según los cultivares,
llegando a un máximo del 10%.
Iowa Univ
Transmitidos por afidos y otros vectores
Asociado a cultivos de alfalfa, otras leguminosas
y solanaceas
Se han identificado genes de R pero aun no son
Comerciales
Químicos
Para control de vector pero las aplicaciones
No son siempre efectivas.
PATOLOGÍA DE SEMILLAS
Presentaciones Anexas
continua
B- Práctica – Identificación de patógenos asociados a
semillas paso previo a su CuantificaciónI
Cercospora kikuchii
Muestra de semillas infectadas con
Cercospora kikuchii
Muestra de semillas infectadas
con Cercospora kikuchii
Muestra de semillas infectadas con Cercospora kikuchii
Cercospora desarrollado
por método en papel filtro
Colonias de Cercospora kikuchii
desarrollado por método en agar
conidios
Cercospora kikuchii
Continua
Conidióforos
B- Práctica – Identificación de patógenos asociados a
semillas paso previo a su CuantificaciónI
Cladosporium
Colonias de Cladosporium y germinación en
Soja
Cladosporium
Colonias de Cladosporium y germinación
en Girasol
Cladosporium
Epicoccum
Conidios de diversas morfología
y conidióforos de Cladosporium
B- Práctica – Identificación de patógenos asociados a
semillas paso previo a su CuantificaciónI
Chaetomium
Chaetomium globosum
en semillas de soja
Chaetomium globosum
y Ch. sp.
ascos
Chaetomium globosum
Ascos y ascospora
Muchas gracias
MANCHA MARRÓN
causada por Mycosphaerella – Septoria
TIZÓN DEL TALLO y MANCHA
PÚRPURA DE LA SEMILLA
PÚSTULA
BACTERIANA