••• TRATAMIENTO DE AGUAS Análisis mediante LC-MS/MS de hormonas y pesticidas en el agua de laboratorio antes y después de la purificación En los últimos años, se ha utilizado la unión de la cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) o la cromatografía líquida de ultra-alta resolución (UHPLC) con la espectrometría de masas para el análisis de trazas y de ultratrazas de compuestos orgánicos para abordar las preocupaciones sobre salud y seguridad humana y ambiental. Por ejemplo, se han detectado contaminantes emergentes, como las hormonas, los compuestos farmacéuticos y los pesticidas polares, en las aguas ambientales y potables de todo el mundo, aunque a nivel de trazas.1,2 Anastasia Khvataeva1, Mikael Tilli2, Jevgeni Parshintsev2, Josep Lluis Lliberia3, Anne Chartogne4, Stephane Mabic1 Los contaminantes emergentes podrían ejercer efectos ecotoxicológicos, incluso a concentraciones muy bajas.3 Para afrontar los peligros de los contaminantes emergentes, la Agencia de protección ambiental (APA)4 y la Comisión Europea5 han publicado varios cambios en las nuevas normativas y métodos reguladores. Otra área afectada por la seguridad humana y ambiental es el sector agroalimentario, que recientemente ha sido obligado a realizar una caracterización más profunda de la cadena alimentaria, desde la materia prima hasta el producto acabado, en respuesta a las demandas de los consumidores de una mayor garantía de calidad, seguridad y origen de los productos que consumen. Esto implica la medición de componentes a nivel de trazas, que pueden ser beneficiosos (como los polifenoles), indeseables (los pesticidas) o prohibitivos (como las toxinas).6 En el campo de la cromatografía líquida-espectrometría de masas (LC-MS), los avances en los equipos y las columnas dieron lugar a sis68 MAYO/JUNIO15 temas seguros que producen resultados constantes y fiables.7 Además, los avances en los equipos, junto con el rápido progreso en el desarrollo de métodos analíticos, han hecho posible detectar compuestos al nivel de trazas y de ultratrazas.8 Por consiguiente, es importante que los científicos que trabajan en el campo de los análisis orgánicos de ultratrazas recuerden que la contaminación a concentraciones muy bajas es crítica y debe evitarse o, por lo menos, minimizarse. Los componentes del equipo de HPLC o UHPLC, el espectrómetro de masas,9 el manejo y la manipulación de la muestra1 y los reactivos y disolventes utilizados en los análisis contribuyen a la contaminación. El agua desempeña un papel importante en la HPLC y la UHPLC, donde se utiliza ampliamente en el procedi- miento de trabajo. Los análisis de trazas y de ultratrazas realizados usando esas técnicas requieren el menor ruido basal.10 Por consiguiente, es importante examinar la idoneidad del agua ultrapura utilizada en estos tipos de análisis. Los contaminantes orgánicos ionizables del agua aumentarán el ruido de fondo, lo que disminuirá la sensibilidad. En separaciones de gradiente usando columnas de fase inversa, la etapa de equilibrado normalmente requiere de 5 a 10 volúmenes de columna de la fase móvil inicial,11,12 que contiene un elevado porcentaje de agua. Los contaminantes orgánicos presentes en la fase móvil acuosa se absorberán en la cabeza de la columna y eluirán en forma de picos en los ulteriores análisis de gradiente. La aparición de picos extraños en un cromatograma es crítica para 1 Merck Millipore, Lab Solutions, Lab Water, rue Jacques Monod, 78280 St.-Quentin-en-Yvelines, Francia 2 University of Helsinki, Faculty of Science, Department of Chemistry, Laboratory of Analytical Chemistry, P.O.Box 55, 00014 University of Helsinki, Finlandia 3 Waters Cromatografia, S.A., Ronda de Can Fatjó, 7-A, 08290 Cerdanyola del Valles, Barcelona, España 4 Waters S.A.S, BP 608, 78280 St.-Quentin-en-Yvelines, Francia quienes quieren identificar compuestos desconocidos presentes en una muestra. El pico extraño podría interpretarse erróneamente como un componente de la muestra.13 Dados los bajos límites de detección que son posibles con los modernos equipos de HPLC/UHPLC y MS, y las muy bajas concentraciones involucradas en los análisis de trazas y de ultratrazas, es importante poder establecer que los analitos detectados proceden de verdad de las muestras y no del agua utilizada en las diversas etapas del experimento. En este estudio, demostramos que un sistema de purificación de agua de laboratorio elimina los contaminantes emergentes (hormonas y pesticidas) encontrados en el agua corriente, produciendo agua ultrapura exenta de contaminantes que podrían influir en la precisión y la sensibilidad de los análisis de trazas y de ultratrazas. Parte experimental Equipos, condiciones cromatográficas y de MS Para la investigación de las hormonas, se utilizó un sistema de HPLC Agilent 1290 Infinity® acoplado a un sistema de LC-MS Agilent® 6420 triple cuadrupolo. La columna era FARMESPAÑA INDUSTRIAL ••• tratamiento de aguas Condiciones de la HPLC Condiciones de la MS Columna Purospher STAR RP-18e (2 µm) 50 - 2,1 Modo de ionización para análisis hormonal ESI+, MRM Caudal 0,5 ml/min Modo de ionización para análisis de pesticidas ESI+ 0-6 min, ESI- 6-13 min; scan Volumen de inyección 40 µl de muestra, 10 µl de patrones Capilar 4000 V Eluente A Ácido acético al 1 % en agua Milli-Q Nebulizador 37 psi Eluente B Acetonitrilo (LiChrosolv® Hipergrado) Gas secante N2, 7,5 l/min, 300 °C Gradiente (tiempo, minutos; %B) 0, 0%; 2, 0%; 5, 100%; 6, 100%; 9, 0%; 13, 0% ® ® Tabla 1. Parámetros de HPLC y MS para LC-MS/MS (análisis de hormonas) y LC-MS (investigación preliminar de pesticidas) usando los sistemas de triple cuadrupolo (QQQ) Agilent® 1290 HPLC y Agilent® 6420 Ion precursor (m/z) Fragmentos (m/z) Androstenodiona Compuesto 287 97, 269, 109 (a) LC-MS (QQQ) Atrazina Androsterona 291 273, 255, 174 Dietilatrazina Corticosterona 347 329, 311, 293 Cortisona 361 343, 163, 325 Estradiol 273 Estrona Progesterona (b) UHPLC-MS (QTOF) Metamidofos Monolinuron Acefato Clortoluron Simazina Metomilo Metobromuron Propazina Dicrotofos Atrazina 255, 159, 135 Cianazina Atrazina-desetil Linuron 271 253, 157, 197 Ácido 2,4-diclorofenoxiacético Metoxuron Sebutilazina 315 297, 97, 279 Ácido 2,4,5-triclorofenoxiacético Cianazina Terbutilazina OH-Progesterona 331 313, 295, 271 Paraquat Simazina Metolaclor Testosterona 289 96, 253, 271 Glifosato Hexazinona Buprofezin Tabla 2. Transiciones de monitorización de reacciones múltiples (MRM) en la ionización por electrospray (ESI+) para las hormonas (el fragmento más intenso aparece en negrita, el orden de los fragmentos aparece por intensidad relativa). Tabla 3. Lista de pesticidas que se analizaron mediante LC-MS (a) usando los sistemas de triple cuadrupolo Agilent® 1290 HPLC y Agilent® 6420, y mediante UHPLC-MS (b) usando un sistema de UPLC ACQUITY® acoplado a un espectrómetro de masas Xevo® G2-S QTof. Condiciones de la UHPLC Condiciones de la MS Columna ACQUITY® BEH C18 2.1x100mm Modo de ionización ESI+, MSE Caudal 0,450 ml/min Voltaje capilar 1,00 kV Volumen de inyección 100 µl Cono 20 V Eluente A 10 ml de acetato de amonio (pH 5) en 990 ml de agua Milli-Q® Temperatura fuente 120 o C Eluente B 10 ml de acetato de amonio (pH 5) en 990 ml de MeOH Gas de desolvatación (nitrógeno) 1000 l/hr, 550 o C Gradiente (tiempo, minutos; %B) 0, 2%; 0,25, 2%; 12,25, 99%; 13, 99%; 13,01, 2%; 17, 2% Tabla 4. Parámetros de UHPLC-MS para el cribado de pesticidas usando el sistema ACQUITY® UPLC y el espectrómetro de masas Xevo® G2-S QTof. una Purospher® STAR RP-18 desactivada (2 µm) Hibar® HR 50–2,1 mm (Merck Millipore). Para la detección de las hormonas se utilizó LC-MS/MS. En la Tabla 1 se presentan los parámetros instrumentales de la HPLC y la MS para LC-MS/ MS. En la Tabla 2 se muestran las transiciones de monitorización de reacciones múltiples (MRM). Se midieron las concentraciones de nueve hormonas mediante el método de adición de patrón. Se realizó una investigación preliminar de la presencia de FARMESPAÑA INDUSTRIAL pesticidas en muestras de agua usando LC-MS. Los pesticidas se identificaron provisionalmente emparejando los valores m/z. En un conjunto separado de análisis, se llevó a cabo un procedimiento de cribado de pesticidas establecido por Waters Corporation usando una mezcla de 18 patrones de pesticidas (Tabla 3(b)). Se utilizó un sistema de UPLC ACQUITY® acoplado a un espectrómetro de masas Xevo® G2-S QT; los parámetros se muestran en la Tabla 4. Muestras y patrones Para los análisis de hormonas mediante LC-MS/MS y la investigación preliminar de los pesticidas mediante LC-MS, las muestras procedían de laboratorios de Finlandia, Francia, España, China e India. Había dos conjuntos de muestras: (1) agua corriente y (2) agua ultrapura procedente de unidades de purificación de agua Milli-Q®. Se desecharon dos litros de muestras de agua antes de la recogida de las muestras en botellas de borosilicato que se enjuagaron tres veces con agua ultrapura inmediatamente antes de su uso. Estas botellas se limpiaron meticulosamente con agua ultrapura y ultrasonidos, y se enjuagaron con acetona y agua ultrapura, antes de secarlas y cerrarlas herméticamente, listas para su uso. Se enriquecieron muestras de un litro mediante extracción en fase sólida antes de los análisis de LC-MS/MS. Para las muestras de Francia, Finlandia, China e India se utilizó Merck Millipore LiChrolut® EN (polímero de divinilbenceno) y para la muestra del MAYO/JUNIO15 69 ••• tratamiento de aguas Experimento Sistema de purificación de agua utilizado Finlandia Milli-Q® Integral Francia Milli-Q® Integral con filtro LC-Pak® España Elix® + Milli-Q® Advantage A10® con filtro Millipak® China Elix® + Milli-Q® Advantage A10® con filtro Millipak® India Milli-Q® Integral Hormona del vertido municipal de aguas residuales o residuos agrícolas.16 La concentración de androsterona en el agua corriente del laboratorio francés fue de 515,3 ng/l y en el español de 1635 ng/l. Se detectó corticosterona en el agua corriente del laboratorio de China (14,91 ng/l). Concentración (ng/l) Muestras de agua corriente Después de la purificación Estradiol Androsterona Corticosterona 265,4 ND 297,9 ND 515,3 ND 1635 ND 14,9 ND Tabla 5. Concentraciones de hormonas en el agua corriente del laboratorio y el agua ultrapura producida a partir del sistema de purificación de agua*. Límite de detección del instrumento (LDI): 10–50 ng/l. Límite de detección el método (LDM): 10–50 pg/l. *Todos los datos comunicados son datos de un lugar y un momento concretos, no son representativos del agua en los diversos países en los que se obtuvieron las muestras. laboratorio español se utilizó Phenomenex® Strata-X™ (polímero de divinilbenceno). En el experimento de cribado de pesticidas, se prepararon seis conjuntos de mezclas de pesticidas usando patrones; cada pesticida tenía concentraciones finales de 1, 5, 10, 50, 100 y 1000 ng/l. Se utilizó agua Milli-Q® recién producida para preparar los blancos, los patrones y la fase móvil para investigar cualquier interferencia que pudiera proceder del agua. Sistemas de purificación de agua Los sistemas Milli-Q® producen agua ultrapura con resistividad de 18,2 MΩ·cm y una concentración de carbono oxidable total (TOC) inferior a 5 µg/l (excepto en India, donde el valor de TOC era de 48 ppb). Discusión de resultados El agua utilizada para análisis de trazas y de ultratrazas mediante HPLC (UHPLC)-MS/ MS debe contener la menor concentración posible de contaminantes orgánicos para asegurar precisión y obtener la sensibilidad óptima ofrecida por el instrumento. Detección mediante LC-MS/ MS de hormonas en el agua corriente y el agua ultrapura de laboratorio De las cinco muestras de agua corriente analizadas (de los laboratorios de Finlandia, Francia, España, China e India), se detectaron estradiol y androsterona en el agua corriente de los laboratorios de Francia y de España, mientras que se detectó corticosterona en la muestra de agua de China (Figura 1). Concentración de hormonas en las muestras de agua corriente El estradiol es un estrógeno (esteroide) natural y sus fuentes son la excreción humana (orina) y las medicinas de prescripción.14 Se ha detectado en varios sistemas acuáticos, entre ellos algunos que se usan como fuentes de agua potable.15 Las muestras de agua corriente se analizaron por triplicado para detectar la presencia de hormonas. Se encontraron concentraciones de estradiol en el agua corriente de la muestra francesa de 265,4 ng/l, mientras que en las muestras españolas fueron de 297,9 ng/l. La androsterona es una hormona esteroide andrógena excretada por humanos y animales que acaba llegando a las aguas superficiales a través Concentraciones de hormonas en las muestras de agua ultrapura Los laboratorios de Finlandia, Francia, España, China e India tenían sistemas de purificación de agua que producían agua ultrapura a partir del agua corriente. El agua ultrapura se analizó por triplicado para detectar la presencia de hormonas. En Francia, España y China, donde se detectaron trazas de hormonas en el agua corriente del laboratorio, no se detectaron hormonas en el agua ultrapura producida. Los sistemas de purificación de agua de los laboratorios eliminaron eficazmente las trazas de hormonas que estaban presentes en el agua del grifo. En la Tabla 5 se resumen los resultados de la investigación de hormonas. Investigación preliminar mediante LC-MS/MS de pesticidas en el agua corriente y el agua ultrapura de laboratorio Se utilizó LC-MS para hacer una investigación preliminar sobre la presencia de pesticidas en el agua corriente y en el agua ultrapura producida des- Figura 1A, 1B y 1C: Cromatogramas MRM de hormonas en el agua corriente del laboratorio y después de pasar por la purificación. (A) estradiol (B) androsterona (C) corticosterona. 70 MAYO/JUNIO15 FARMESPAÑA INDUSTRIAL ••• tratamiento de aguas Figura 2. Cromatograma de iones extraídos del ácido 2,4,5-triclorofenoxiacético en agua corriente y agua ultrapura producida en el laboratorio español. pués de la purificación. En la Figura 2 se muestra el cromatograma de iones extraídos del ácido 2,4,5-triclorofenoxiacético en el agua del grifo (trazo azul oscuro) que alimentaba al sistema de purificación de agua en un laboratorio de España. Los picos aparecidos a los minutos 9,6 y 10,5 indican la probable presencia de ácido 2,4,5-triclorofenoxiacético en el agua corriente. Los picos no aparecen después de que se purificara el agua (Figura 2, trazo azul claro). Este estudio preliminar sugiere que el sistema de purificación de agua del laboratorio podría eliminar eficazmente los restos de compuestos orgánicos con valores script que corresponden a los pesticidas seleccionados para análisis. Los resultados obtenidos justifican más investigación ya que no hay interferencias causadas por pesticidas u otros compuestos que puedan poseer la misma masa. Detección de pesticidas La detección de pesticidas mediante UHPLC-MS (QTOF) requiere el uso de agua ultrapura en la preparación de la fase móvil, los patrones, los blancos y las muestras. Durante los análisis de laboratorio, los analitos suelen estar presentes en las muestras en concentraciones de ng/l e incluso en concentraciones menores, de 10 ng/l. La mezcla de FARMESPAÑA INDUSTRIAL Figura 3. Diagrama de calibrado para simazina. La magnitud de la contaminación orgánica es extremadamente importante en los análisis LC-MS/MS de trazas porque los contaminantes orgánicos presentes en el agua afectan al rendimiento del equipo, influyendo así en la calidad de los datos generados patrones puede utilizarse para evaluar la idoneidad del agua ultrapura, así como el rendimiento de la técnica de UHPLC-MS (QTOF) para el análisis de bajas concentraciones de pesticidas. Aparentemente el efecto de la contaminación del agua será más pronunciado cuando se analizan patrones de concentraciones bajas de pesticidas. Por tanto, se analizó la idoneidad del agua ultrapura para un método de detección de pesticidas, usándola para preparar mezclas de concentraciones conocidas de pesticidas al nivel de ng/l, en concreto, a 1, 5, 10, 50, 100 y 1000 ng/l, así como para preparar el blanco (muestra cero) y la fase móvil acuosa. El resultado fue que no se detectaron pesticidas en el blanco de agua ultrapura. Además, se detectaron satisfactoriamente en sus concentraciones iniciales los patrones a bajos niveles de concentración sin interferencias del agua ultrapura. En general, el uso del agua ultrapura de gran calidad contribuyó al excelente rendimiento de la técnica UHPLC-MS (QTOF) y, por tanto, al éxito del análisis. En la Figura 3 se representa un ejemplo de una gráfica de calibrado del experimento de detección de pesticidas. La importancia de la concentración de carbono oxidable total (TOC) en el agua La magnitud de la contaminación orgánica es extremadamente importante en los análisis LC-MS/MS de trazas porque los contaminantes orgánicos presentes en el agua afectan al rendimiento del equipo, influyendo así en la calidad de los datos generados. La contaminación orgánica en el agua utilizada para preparar la fase móvil podría aumentar el ruido basal, lo que produce una disminución en S/N y dificulta la detección de las concentraciones pequeñas de los analitos. También podría mostrarse como picos fantasma, lo que hace más difícil la interpretación de los datos. La concentración de carbono oxidable total (TOC) es una indicación general de la contaminación orgánica del agua. Se recomienda una concentración de TOC por debajo de 5 ppb para la LC-MS/MS. Los sistemas de purificación de agua de laboratorio, como los utilizados en los experimentos descritos en este artículo, están equipados con monitores de TOC incorporados de forma que los usuarios conozcan el valor de TOC del agua ultrapura que están utilizando. El agua ultrapura o de tipo 1 procedente de un sistema Milli-Q® adecuadamente instalado y con buen mantenimiento tiene un valor de TOC de 5 ppb. Hay casos en los que el monitor de TOC registra valores superiores a la especificación de 5 ppb; esas situaciones deberían abordarse de inmediato. Eliminación de trazas orgánicas en el agua corriente por los sistemas de purificación de agua Los sistemas de purificación de agua de laboratorio utilizados en este estudio combinan las tecMAYO/JUNIO15 71 ••• tratamiento de aguas Tabla 6. Tecnologías de purificación del agua usadas en la producción de agua ultrapura a partir del agua corriente. nologías mostradas en la Tabla 6 para eliminar con eficacia los contaminantes del agua corriente que los abastecen. Debe tenerse en cuenta que, para asegurar la calidad óptima del agua, deben utilizarse y mantenerse adecuadamente sistemas de purificación de agua. Conclusiones Utilizando LC-MS/MS se detectaron trazas de hormonas en muestras de agua corriente del laboratorio. Una vez purificada el agua corriente usando un sistema de purificación de agua de laboratorio, ya no se detectaron las hormonas. La investigación inicial indica que el sistema elimina con eficacia las trazas de pesticidas encontradas en el agua corriente que lo abastece. Un sistema de purificación de agua similar produjo agua ultrapura para 72 MAYO/JUNIO15 Referencias bibliográficas 1. M.J. Capdeville, and H. Budzinsk, TrAC Trend Anal Chem 30, 586–606 (2011). 2. S.A. Snyder, E.C. Wert, H. Lei, P. Westerhoff, and Y. Yoon, Removal of EDCs and Pharmaceuticals in Drinking and Reuse Treatment Processes. (AWWA Research Foundation, 2007). 3. C.J. Sinclair, W. Beinum, C. Adams, R. Bevan, L. Levy, S. Parsons, et al. Final Report for Drinking Water Inspectorate. York: Food and Environment Research Agency, (2010). http://dwi.defra.gov.uk/research/completedresearch/reports/DWI70-2-232.pdf 4. S. D. Richardson, Anal. Chem. 79, 4295-4324 (2007). 5. M.-H. Dévier, K. Le Menach, L. Viglino, L. Di Gioia, P. Lachassagne, and H. Budzinski, Sci Total Environ 443, 621–632 (2013). 6. V. Di Stefano, G. Avellone, D. Bongiorno, V. Cunsolo, V. Muccilli, S. Sforza, A. Dossena, L. Drahos, and K. Vékey, J Chromatogr A. 1259, 74-85 (2012). 7. J. W. Dolan, LCGC North America. 31, 854-859 (2013). preparación de fase móvil y patrones en un protocolo de detección de pesticidas usando UHPLC- MS de alta resolución (QTOF). En el análisis de mezclas que contienen concentraciones conocidas de pesticidas, el agua ultrapura no introdujo interferencia alguna, y las gráficas de calibrado exhibieron una excelente linealidad. Los 8. W. W. Buchberger, J. Chromatogr A, 1218, 603–618 (2011). 9. M. Oehme, U. Berger, S. Brombacher, F. Kuhn, and S. Kolliker, TrAC Trend Anal Chem, 21, 322-331 (2002). 10. J. W. Dolan, LCGC North America, 23, 1256-1260 (2005). 11. L. R. Snyder, J. J. Kirkland, and J. L. Glajch. Practical HPLC Method Development, 2nd Ed (E-Book). 2012. 12. M.C. Ringo, J.R. Allen, and D.M. Mattocks, LCGC North America, 21, 168-178 (2003). 13. M. Tarun , C. Monferran , C. Devaux , S. Mabic, LC-GC The Peak, 7-14 (2009). 14. C.P. Silva, M.Otero, V.Esteves, Environmental Pollution, 165, 38-58 (2012). 15. A. Wise, K. O’Brien, and T. 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