TP 3 y demas

TRABAJO PRÁCTICO N° 3
MORFOLOGÍA EXTERNA DE LAS PLANTAS VASCULARES
Objetivo: Estudio de la morfología externa de la raíz, tallo y hojas.
Procedimientos y Observaciones.
a) Morfología de la raíz. Observe las principales características morfológicas de una
raíz pivotante: Reconozca las zonas del meristema apical, de los pelos absorbentes y
de raíces laterales. Compare un sistema radicular pivotante y uno fibroso.
b) Morfología del vástago. Observe las características del sistema caulinar: nudos,
entrenudos, yemas axilares. Observe la disposición de las hojas (filotaxis), forma y
división de la lámina, presencia de pecíolo.
c) Observación de modificaciones de raíz y vástago. Observe e informe las
características morfológicas que presentan los diferentes ejemplos.
Análisis de los resultados.
1.- Realice un informe en el que represente sus observaciones mediante dibujos
rotulados.
1
TRABAJO PRÁCTICO N° 4
TEJIDOS VEGETALES
Objetivo: Analizar las características morfológicas y funcionales de los principales
tipos de tejidos vegetales.
Procedimientos y Observaciones.
a) Epidermis en vista superficial. Observación de células epidérmicas y estomas
(células oclusivas y ostíolos).
b) Epidermis, colénquima y parénquima en corte transversal. Observe en detalle un
sector del preparado que contenga dichos tejidos.
c) Xilema y floema primarios en corte transversal. Enfoque un hacecillo en el corte
transversal de tallo de Cyperus sp. Reconozca metaxilema, protoxilema, vasos,
floema, parénquima y fibras.
Análisis de los resultados.
1- ¿Qué diferencias observó con respecto al tamaño relativo de las células y el
espesor de sus paredes celulares? En su madurez funcional, ¿todas las células deben
estar vivas? Relacione los datos morfológicos observados con las funciones de los
tejidos en cuestión.
2- Realice un informe que incluya los dibujos, claros y correctamente rotulados, de las
células observadas. Trate de mantener las proporciones del tamaño de las células y
de sus paredes celulares. Indique los aumentos correspondientes.
2
TRABAJO PRÁCTICO N° 5
ANATOMÍA DE RAÍZ, TALLO Y HOJAS
Objetivo: Estudio de la morfología interna de la raíz, tallo y hojas.
a) Meristema apical de raíz en corte longitudinal. Observe caliptra, zona meristemática,
protodermis, meristema fundamental, procambium y los tejidos de ellos derivados.
b) Raíz primaria en corte transversal. Observe los diferentes tejidos que la componen y
su posición dentro del órgano: Epidermis, corteza y cilindro vascular (protostela).
c) Meristema apical de vástago en corte longitudinal. Observe túnica, corpus y
primordios foliares.
d) Tallos primarios en corte transversal. Observe los cortes representativos de tallos
con eustela y atactostela. Reconozca epidermis, corteza, médula y tejidos vasculares
(comparando las diferentes disposiciones dentro del órgano).
e) Hojas en corte transversal. Observe epidermis, mesófilo (reconozca mesófilo en
empalizada y esponjoso) y haces vasculares. Señale Xilema, Floema y vaina/s del
haz. ¿Encuentra otros tejidos?
Análisis de los resultados.
Realice un informe que incluya los esquemas completos de los cortes observados.
Para esto deberá representar a los distintos tejidos usando los símbolos de Metcalfe y
Chalk (ver figura adjunta). Indique los aumentos correspondientes.
Realice un dibujo detallado y representativo de las células, cuando sea necesario
1 ¿Cuál es la función de cada uno de los tejidos en los órganos observados?
2 Compare la disposición de los tejidos vasculares en las distintas estelas observadas
(protostela, atactostela, eustela)
3
Simbolos de Metcalfe Y CHALK para representar a los distintos tejidos vegetales
COLÉNQUIMA
ESCLERENQUIMA
XILEMA
CLORÉNQUIMA
FLOEMA
PARÉNQUIMA
PERIDERMIS
CORTE LONGITUDINAL DE RAÍZ PRIMARIA
4
DETALLES DE LA ENDODERMIS
Endodermis con bandas de
Caspary y engrosamientos en “U”
Detalle de las bandas
de Caspary y su
representación
tridimensional
CORTE LONGITUDINAL Y TRANSVERSAL DE TALLO
5
TIPOS DE ESTELA
Plantas
vasculares
inferiores
Helechos
Gimnospermas
Dicotiledoneas
Distintos
modelos
Monocotiledoneas
de
disposición
de
tejidos
vasculares
primarios
que
corresponden a estadíos en la evolución del sistema vascular primario.
6
TRABAJO PRÁCTICO N° 6
MERISTEMAS LATERALES Y CRECIMIENTO SECUNDARIO EN TALLO Y RAIZ
a) Raíz con crecimiento secundario en corte transversal. Observe los distintos tejidos
presentes. Reconozca peridermis, xilema y floema primario y secundario y los
meristemas laterales.
b) Tallo con crecimiento secundario en corte transversal. Observe los distintos tejidos
como se indica arriba
c) Cortes de madera. Observe los cortes longitudinal tangencial, longitudinal radial y
transversal de madera.
d) Células del xilema en macerados de madera. En los macerados de madera los
tejidos son tratados con hidrólisis ácida que disuelven la laminilla media, dejando las
células libres.
i- En madera de gimnospermas: Observar traqueidas, fibras y parénquima con
pared secundaria.
ii- En madera de angiospermas: Observe elementos de vaso con placas de
perforación simples, fibras y parénquima con pared secundaria.
Análisis de los resultados.
Realice un informe que incluya los esquemas completos de los cortes observados.
Para esto deberá representar a los distintos tejidos usando los símbolos de Metcalfe y
Chalk
1) Indique a que estructuras dan origen los meristemas laterales: felógeno y cambium.
2) Compare las estructuras de raíz y tallo secundarios. Relacione con las estructuras
primarias correspondientes. Compare el origen de los meristemas laterales en raíz y
tallo.
Estadíos en el desarrollo del xilema y del floema a partir del cambium vascular.
7
Exterior
Interior
RAIZ SECUNDARIA EN CORTE
TRANSVERSAL
peridermis
parénquima
del periciclo
derivado
fibras del floema
radios
floema secundario
cambium
xilema secundario
xilema primario
8
ESTRUCTURA TRIDIMENSIONAL DE LA MADERA
Cara transversal
Cara
longitudinal
radial
Cara
longitudinal
tangencial
9
TRABAJO PRACTICO N° 7
ADAPTACIONES MORFOLÓGICAS EN ALGAS
Introducción
La mayoría de las algas viven en cuerpos de agua dulce o salada., ya sea
permanentes o temporarios. Pueden estar en suspensión, conformando el
fitoplancton o de lo contrario, crecer sobre o adheridas a algún sustrato sumergido
(perifiton). Si crecen en el fondo de un cuerpo de agua, pertenecen al bentos.
Estos microrganismos poseen diferentes adaptaciones relativas a la optimización del
crecimiento, reproducción y supervivencia en relación con las características físicoquímicas del cuerpo de agua. Por ejemplo, el límite de distribución de algas dentro de
un cuerpo de agua estará determinado por la profundidad hasta la que pueda penetrar
la luz, indispensable para que tenga lugar la fotosíntesis (aprox. hasta los 200 m de
profundidad).
Sin embargo, en el agua la intensidad de luz fotosintéticamente activa (o sea la banda
espectral que absorben los fotosistemas) disminuye hiperbólicamente con la
profundidad. Como las algas son organismos fotosintéticos, para que puedan crecer y
reproducirse el balance neto de la fotosíntesis debe estar por encima del punto de
compensación.
Además de las adaptaciones relacionadas con el aprovechamiento de la luz
fotosintéticamente activa, habrá otras relacionadas con la resistencia al oleaje y
movimientos turbulentos del agua, la flotabilidad, los cambios bruscos de salinidad, la
desecación periódica del cuerpo de agua, la herbivoría, el aprovechamiento de
nutrientes, etc.
Objetivos
. Observar diferentes adaptaciones morfológicas en algas de distintos hábitats (o
comunidades): del plancton, del perifiton y del bentos de agua dulce y marino.
. Relacionar dichas adaptaciones con las características físico-químicas del ambiente
del que proceden
. Identificar características particulares de los grandes grupos de algas
Materiales
. Muestras de agua de cuerpos de agua dulce, marinas y de cultivos de algas
. Porta y cubreobjetos
. Colorantes
. Microscopio y lupa
Procedimiento y observaciones
Hacer preparados del material que se le entregue y observar:
.
10
Nivel de organización (unicelular cocoide o monadoide, filamentosa simple o
ramificada, laminar, masiva, etc)
. Observación de los cloroplastos: forma y disposición
Localización de la sustancia de reserva
. Presencia de características particulares: vainas, aerocistos, ornamentaciones, etc.
. Observación de estructuras relacionadas con el movimiento: presencia o no de
flagelos, rafe en diatomeas, estigmas
. Observación de estructuras reproductivas. Relacionarlas con el ciclo de vida.
Presentación de los Resultados
Realice un informe que incluya los dibujos claros y correctamente rotulados, Indique el
aumento bajo el cual se observó cada ejemplar.
Indique en cada caso el tipo de adaptación al hábitat particular que presenta cada alga
observada.
11
TRABAJO PRACTICO N° 8
BRIOFITAS
Objetivo: Análisis de las principales características de ejemplares pertenecientes a las
Briofitas.
Materiales.
- Muestras de hepáticas, musgos y antoceros.
- Microscopio.
- Lupa.
- Elementos de disección.
- Porta y cubreobjetos.
Procedimientos y Observaciones.
a) Dvisión Hepatophyta (hepática), Marchantia sp. Observe el aspecto general del
gametofito en vista dorsal donde verá conceptáculos, arquegonióforos y anteridióforos.
En vista ventral observe los rizoides.
b) División Bryophyta (musgos): Observe el gametofito de un musgo con sus talluelo,
frondes y rizoides, y el esporofito con la seda, la cápsula y el opérculo. Haga un
preparado y observe el peristomio y las esporas.
c) División Anthocerophyta, Anthoceros sp. (antoceros). Observe el aspecto general
del gametofito en vista dorsal y ventral. Luego analice al esporofito con sus valvas,
columela, esporas, y pseudoelaterios.
Análisis de los resultados.
Realice un informe que incluya los dibujos representativos de los ejemplares
observados. Rotule y agregue el complemento cromosómico de cada estructura.
Complete los tres ciclos de vida que se encuentran en la Guía de TP.
a) Mencione las características que permitieron a las Briofitas colonizar la Tierra.
Indique que otras características las hacen independientes del agua.
b) ¿Qué similitudes y diferencias existen entre los gametofitos de los diferentes grupos
de Briofitas? ¿Y entre los esporofitos?. Esquematícelo.
12
TRABAJO PRACTICO N° 9
PLANTAS VASCULARES SIN SEMILLAS
Objetivo: Análisis de las principales características de ejemplares pertenecientes a
este grupo.
Procedimientos y Observaciones.
a) Género Selaginella (licopodiófitos). Observe el aspecto general y los estróbilos.
b) Género Equisetum (sphenófitos). Observe el aspecto general y los estróbilos.
c) Orden Filicales (helechos). Dibuje el aspecto general de un helecho. Observe un
megafilo fértil con sus soros. Al microscopio los esporangios y las esporas
Análisis de los resultados
Realice un informe que incluya los dibujos representativos de los ejemplares
observados. rotule y agregue el complemento cromosómico de cada estructura.
Complete los ciclos de vida que se encuentran en la guía de trabajos prácticos.
13
TRABAJO PRACTICO N° 10
PLANTAS VASCULARES CON SEMILLAS DESNUDAS
Objetivo: Observación y reconocimiento de representantes de este grupo.
Procedimientos y Observaciones.
a) División Cycadophyta. Género Cycas sp. (cicas). Observe el megafilo (¿Cómo es su
lámina?; el microsporofilo (¿Cómo se agrupan? ¿Dónde se hallan los
microsporangios?); y el megasporofilo (¿Dónde se ubican sus óvulos?).
b) División Coniferophyta (coníferas). Género Pinus sp. (pinos). Observe una rama y
sus hojas (¿Cómo son sus ramas y sus tipos de hojas?); un cono megasporangiado
con detalle de brácteas, escamas ovulìferas y óvulos; y un cono microsporangiado con
sacos polínicos y granos de polen (¿Qué diferencias encuentra con respecto a las
cicas?).
Presentación de los resultados.
Información adicional
En los siguientes sitios, encontrará videos sobre el ciclo de vida de Gimnospermas
http://www.youtube.com/watch?v=r1wWgIcyEXo
http://www.youtube.com/watch?v=Sc9zfQWMpmU
http://www.youtube.com/watch?v=vsdtDijCXFo
http://www.youtube.com/watch?v=GlSHuWpAe1g
http://www.youtube.com/watch?v=SI8iy2wRJ0Q
14
DESARROLLO EN PINUS (rotule adecuadamente)
15
TRABAJO PRACTICO N° 11
PLANTAS VASCULARES CON FLOR Y FRUTO (ANTHOPHYTA)
A- INFLORESCENCIAS
Objetivo: Reconocimiento de distintos tipos de inflorescencias.
Procedimientos y Observaciones.
Observe los distintos tipos de inflorescencias e indique el sentido de maduración de
las flores.
B- FLOR Y FRUTO
Objetivo I: Estudiar la morfología floral.
Materiales.
- Flores
- Elementos de disección.
- Lupa.
Procedimientos y Observaciones.
a) Morfología de la flor. Observe la flor en su conjunto y ubique todos sus ciclos.
Realice la disección de los sépalos, los pétalos, los estambres y el ovario.
b) Ovario en corte transversal. Observe los carpelos y los óvulos. ¿Cómo es el tipo de
placentación?
c) Antera en corte transversal. Observe las tecas y sacos polínicos.
Presentación de los resultados.
Realice un informe que incluya los dibujos rotulados. Caracterice a la flor según su
simetría, presencia o ausencia y disposición de los ciclos florales, posición del ovario,
y tipo de placentación (ver láminas).
Objetivo II: Establecer la correspondencia de la flor con el fruto.
16
Materiales
Flores y frutos de Jacaranda mimosifolia o Passiflora coerulea o alguna especie
similar.
Procedimiento
1.- Descripción detallada de cada una de las partes que componen la flor, (ciclo de
cáliz, corola, androceo y gineceo).
2.- Ubicación del gineceo y su posición con respecto a los otros ciclos florales. Tipo de
placentación y número de carpelos. Marcar el número de óvulos.
3.- Descripción del desarrollo paulatino del gineceo luego de la fecundación o no.
Desarrollo del fruto, marcar las partes que lo constituyen, si es dehiscente o no, volver
a observar la placentación y número de carpelos. El tipo de dehiscencia. Marcar el
número de semillas.
17
TIPOS DE FLORES
Según la simetría:
Flor actinomorfa
18
Ortótropo
Anátropo
Campilótropo
19
DESARROLLO DEL GAMETOFITO FEMENINO
A
B
3 mitosis
C
R!
D
Megaspora
Funcional
Saco embrionario =
gametofito femenino
Célula
Tetrada
madre de megasporas
de las
megasporas
A – sinérgidas
B – oósfera (gameta femenina)
C – célula central con 2 “núcleos polares”
D – antípodas
FÓRMULA Y DIAGRAMA FLORAL
Ejemplo: Flia . Crassulaceae
Número de lóculos
K5 C(5) A5+5 G (3)3
Número de óvulos por lóculo
Subíndices: número de piezas en cada verticilo
( ): soldadura de piezas
G: gineceo súpero
: numerosos
20
TRABAJO PRACTICO N° 12
FRUTO
Objetivo: Analizar la morfología y el mecanismo de dispersión de distintos
tipos de frutos.
Procedimientos y Observaciones.
Determine para distintos frutos: Tipo de fruto, forma de dehiscencia, modo de
diseminación, pericarpo y elementos anexos.
TIPOS DE FRUTO
A) FRUTOS MONOTALÁMICOS SIMPLES (una flor con un solo pistilo)
FRUTOS SECOS
dehiscentes
indehiscentes
(siempre multiseminados)
un carpelo 2 o + carpelos uniseminados
multiseminados
Cápsula
-folículo
silicua
-legumbre silícula
aquenio
cipsela
nuez
sámara
cariopse
lomento
esquizocarpo
legumbre indehiscente
FRUTOS CARNOSOS
(en general indehiscentes)
Baya s.l. (meso y endocarpo
carnosos)
Baya s.s.
Hesperidio
Pomo
Pepónide
Drupa (mesocarpo carnoso,
endocarpo leñoso, en gral
uniseminado)
21
B) FRUTOS MONOTALÁMICOS MÚLTIPLES (una SOLA flor con varios
pistilos = gineceo dialicarpelar)
Polifolículo
Poliaquenio
Conocarpo
C) FRUTOS POLITALÁMICOS o INFRUTESCENCIAS (provienen de una
inflorescencia)
Sorosio (bayas acrescentes)
Sicono (aquenios dentro de un receptáculo carnoso)
22
23
24
25
DEFINICIONES DE FRUTO
Folículo: deriva de un ovario unicarpelar. Dehiscencia por la unión del carpelo.
Ej: Grevillea sp. (roble sedoso).
Polifolículo: deriva de un gineceo dialicarpelar; cada uno de los carpelos
produce un folículo. Ej: Magnolia, Brachychyton.
Legumbre: deriva de un ovario unicarpelar pluriseminado; dos líneas de
dehiscencia; a veces indehiscente. Ej: Leguminosae (habas, arvejas, porotos)
Lomento: legumbre indehiscente que se corta transversalmente en artejos. Ej:
mimosa.
Silicua: deriva de un ovario bicarpelar, alargado; dos líneas de dehiscencia.
Placentación parietal. Las semillas quedan adheridas al replum (marco formado
por las uniones de los nervios placentarios). Ej.: Cruciferae (alelí, repollo,
brócoli).
Silícula: silicua corta y ancha. Ej: bolsa de pastor.
Cápsula: deriva de un ovario pluricarpelar, uni o plurilocular; dehiscencia
variada. Ej: Jacaranda, Chorisia speciosa (palo borracho), Papaver somniferum
(amapola).
Aquenio: fruto pequeño, unilocular, uniseminado, con semilla adherida al
lpericarpo por un solo punto; pericarpo fácilmente separable de la cubierta de la
semilla. Ej: Cyperus sp. Y compuestas en general (girasol).
Sámara: aquenio con el pericapo dilatado formando un ala. Ej.: tipa, fresno,
olmo.
Disámara: sámara con el pericarpo bialado. Ej.: arce.
Cariopse: uniseminado, con el pericarpo soldado a la semilla. Ej.: maíz, trigo,
gramíneas en general.
Nuez: fruto uniseminado, con el pericarpo esclerenquimático y unido al
receptáculo, semilla grande. Generalmente con involucro. Ej.: avellana, bellota.
Drupa: uniseminado con un solo carozo, ovario súpero; endocarpo
esclerificado, mesocarpo carnoso, exocarpo membranoso.
Baya (s.s.): generalmente de colores vivos a la madurez. Puede provenir de un
ovario súpero o ínfero, uni o pluricarpelar. Mesocarpo carnoso o jugoso. Ej.:
tomate, uva, banana.
Pomo: deriva de un ovario ínfero, pluricarpelar con placentación axilar.
Endocarpo papiráceo, mesocarpo y exocarpo delgados que se sueldan al
receptáculo carnoso y acrescente que cubre al gineceo. Ej: manzana, pera,
membrillo.
Hesperidio: deriva de un ovario súpero, pluricarpelar con placentación axilar.
Exocarpo delgado y glanduloso, mesocarpo esponjoso y endocarpo
membranoso con numerosos pelos pluricelulares jugosos. Ej: cítricos.
Pepónide: deriva de un ovario ínfero con placentación parietal. Receptáculo
grueso, esclerificado o coriáceo. Ej: pepino, zapallo, sandía.
Conocarpo: fruto formado por un receptáculo convexo que crece y se hace
carnoso después de la fecundación. Los carpelos se transforman en aquenios
o bayas. Ej: frutilla.
Sorosio: receptáculo convexo, común y carnoso, sobre el cual se asientan
bayas. Ej: ananá
Sicono: receptáculo común carnoso, en forma de copa o botella con un
abertura apical. Sobre la pared interior se disponen los frutos, que son
pequeños aquenios. Ej: higo.
26
TRABAJO PRACTICO N° 13
SEMILLA
Objetivo: Analizar y comparar la morfología de dos tipos de la semillas.
Materiales.
- Semillas de Phaseolus sp. y Ricinus sp. previamente remojadas.
- Lupa.
- Elementos de disección.
Procedimientos y Observaciones.
a) Semilla de Phaseolus sp. (poroto).
-Morfología externa. Ubique el hilio, la micrópila y el rafe.
-Morfología interna. Abra la semilla por el plano que pasa por el hilio y
observe el tegumento y el embrión (cotiledones y epicótile e hipocótile).
b) Semilla de Ricinus sp. (ricino).
-Morfología externa. Ubique el rafe y la carúncula.
-Morfología interna. Abra la semilla por el plano mayor y observe los
tegumentos, el endosperma y el embrión (cotiledones y epicótile e
hipocótile).
Análisis de los resultados.
1- Realice un informe que incluya los dibujos, claros y correctamente rotulados,
de las semillas analizadas.
2- En base a lo observado...¿Qué diferencias encuentra entre los cotiledones
de Phaseolus sp. y de Ricinus sp? ¿Cómo entra el agua en cada una de estas
semilla?
3- ¿Qué sustancias de reserva almacena el endosperma?
4- ¿Qué parte del embrión sale primero de la semilla? ¿Qué ventaja adaptativa
representa?
G
F
B
E
D
C
A
Referencias: A, carúncula; B, rafe; C, radícula; D, plúmula; E, endosperma; F,
cotiledón; G, tegumentos
27
CUADRO COMPARATIVO ENTRE LOS SIGUIENTES GRUPOS:
(EX GRUPO PTEROPSIDA)
Pteridofitos
Gimnospermas
Angiospermas
Raíces, rizoma y hojas
Raíces, tallos y hojas
Raíces, tallos y hojas
Hierbas. Algunos
arborescentes
Arbustos y árboles
Hierbas, arbustos y
árboles
Dictiostela o
Solenostela
Sifonostela o Eustela
Eustela, Atactostela o
Sifonostela
Sin vasos
Sin vasos
(excepto Gnetophyta)
Con vasos
Sin cambium.
(excepto
Ophioglossales)
Con cambium
Con y sin cambium
Isosporados o
heterosporados
Heterosporados
Heterosporados
Esporangios sobre
hojas (esporofilos) o
esporocarpos.
Microsporofilos y
megaespofilos en
estróbilos
Flores:
Microsporofilo = estambre
Megasporofilo = carpelo
Sin óvulos
Óvulos(megasporangio
recubierto por
tegumentos) sin
estructuras de protección
Óvulos(magasporangio
recubierto por
tegumentos) protegidos
por los carpelos
(ovario)
Sin semilla
Semilla con tejido de
reserva n (proviene del
gametofito femenino)
Semilla con endosperma
3n
(proviene de triple fusión)
Fem: pequeño,
multicelular, dentro del
óvulo.
Fem: saco embrionario 7
– celular, dentro del óvulo
Esporofito:
Gametofito:
Verde, independiente
Masc: grano de polen
germinado
Masc: grano de polen
germinado
Anterozoides
Anterozoides o gametas
no móviles
Gametas no móviles:
células espermáticas
Arquegonios
parcialmente incluidos
en el gametofito
Arquegonios muy
reducidos, totalmente
incluidos en el gametofito
o sin arquegonios
(Gnetophyta)
Sin arquegonios
28
EQUIVALENCIA ENTRE LOS TERMINOS USADOS EN EL CICLO DE VIDA
GENERAL DE PLANTAS HETEROSPORADAS Y EN ANTHOPHYTA
CICLO DE VIDA GENERAL
CICLO DE VIDA DE ANGIOSPERMAS
Microsporofilo
Estambre
Microsporangio
Saco polínico
Microspora
Microspora
Gametofito masculino jóven
Grano de polen
Gametofito masculino maduro
Grano de polen germinado
Megasporofilo
Megasporangio
--------------------------------
Carpelo
Nucelo
Óvulo
Megaspora
Gametofito femenino
Embrión
---------------------------------------------------------------
Megaspora
Saco embrionario
Embrión
Endosperma
Semilla
CARACTERES PRIMITIVOS Y EVOLUCIONADOS EN ANTHOPHYTA
(angiospermas)
PRIMITIVOS
Plantas tropicales
Árboles
Plantas perennes
Hojas perennes
Sifonostela
Elementos de vaso con placas de
perforación escalariforme, largos y
delgados
Flores solitarias
Flores actinomorfas
Flores completas
Flores perfectas
Disposición espiralada de piezas
florales
Piezas libres entre si (dialipétalas)
Numerosas piezas florales
Flores hipóginas (ovario súpero)
Estambres no diferenciados en antera
y filamento
Placentación axilar
EVOLUCIONADOS
Plantas de lugares templados
Hierbas
Plantas anuales o bianuales
Hojas caducas
Atactostela
Elementos de vaso cortos y anchos
con placa de perforación simple
Flores en inflorescencias
Flores zigomorfas
Flores incompletas
Flores imperfectas
Disposición cíclica de piezas florales
Piezas soldadas entre si (gamopétalas)
Pocas piezas florales
Flores epíginas (ovario ínfero)
Estambres diferenciados
Placentación parietal(por reducción de
carpelos)
Placentación central( por desaparición
de tabiques)
29
DIFERENCIAS ENTRE MONOCOTILEDONEAS Y DICOTILEDONEAS
MONOCOTILEDONEAS
Un cotiledón
Hojas generalmente paralelinervadas
Cambium generalmente ausente
Atactostela
DICOTILEDONEAS
Dos cotiledones
Hojas generalmente retinervadas
Cámbium generalmente presente
Eustela – Sifonostela
Piezas florales de cada ciclo cuando
Piezas florales, cuando en nº definido,
están en nº definido, generalmente 5,
generalmente 3 o múltiplo de 3, rara
menos frecuentemente 4 ó 2,
vez 4, nunca 5
raramente 3
Polen monocolpado
Polen típicamente tricolpado
Raíz fibrosa (adventicia)
Raíz axonomorfa (embrionaria)
Generalmente herbaceas
Leñosas, semileñosas y herbáceas
30
Ciclos de Vida
En los siguientes Ciclos de Vida, reconozca, cuando corresponda









Individuo adulto (n)
Individuo adulto (2n)
Esporofito y gametofito
Gametas
Cigota
Esporas
Ubicación de la Meiosis
Complementos cromosómicos
Tipo de Ciclo de Vida.
31
CICLOS DE VIDA GENERALES
61
1) Meiosis cigótica (Individuo adulto n )
Gametas
Individuo
adulto
n
F!
2n
Cigota
R!
2) Meiosis gametogénica (Individuo adulto 2 n )
2n
Gametas
R!
n
F!
Cigota
Individuo
adulto
3) Meiosis esporogénica (Alternancia de generaciones)
Individuo
adulto
Gametas
n
F!
R!
Espora
2n
Cigota
Individuo
adulto
32
Ciclo de vida de Chlamydomona sp.
33
Ciclo de vida de Ulva sp.
34
Ciclo de vida de Spirogyra sp.
Ciclo de vida de Codium sp.
35
Ciclo de vida de Diatomeas.
36
Ciclo de vida de Polysiphonia sp.
37
Ciclo de vida de Macrocystis sp
38
Ciclo de vida de Anthoceros sp.
39
Ciclo de vida de Marchantia sp.
40
Ciclo de vida de los Musgos
41
Ciclo de vida de Selaginella sp.
42
Ciclo de vida de Equisetum sp.
43
Ciclo de vida de los Helechos:
44
Ciclo de vida de Cycas sp.
45
Ciclo de vida de Pinus sp.
46
Ciclo de Vida de Angiospermas
47
Ciclo de vida de Saprolegnia sp.
48
Ciclo de vida de Absidia sp.
49
Ciclo de vida de los Ascomicetes
50
Ciclo de vida de los Basidiomicetes
51