Recogida de muestras más habituales en Urgencias (II).

Infecciosas
RECOGIDA DE MUESTRAS MÁS HABITUALES EN EL SERVICIO DE URGENCIAS (II)
A.I. Alvaro Varela1, R. Muguerza Iraola2, I. Dorronsoro Ibero3
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MIR de Microbiología del Hospital de Navarra. 2FIR de Análisis Clínicos del Hospital de
Navarra. 3Jefa de Servicio de Microbiología del Hospital de Navarra.
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ABSCESO ABIERTO
• Modo: limpiar la superficie con gasa impregnada en salino estéril. Aspirar con jeringa o
pasar hisopo.
• Recipiente y volumen: jeringa de aspiración cerrada; 1-5 mL.
• Transporte y conservación: 2 horas a Tª ambiente.
• Procesamiento: antes de las 2 horas a Tª ambiente
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ABSCESO CERRADO
• Modo: limpieza de la zona con alcohol de forma concéntrica. Repetir la operación con
povidona y dejar secar al menos 1 min. para que ejerza su acción antiséptica. Realizar
punción y aspiración del absceso con jeringa y aguja.
• Recipiente y volumen: jeringa de aspiración cerrada; 1-5 mL.
• Transporte y conservación: 2 horas a Tª ambiente.
• Procesamiento: antes de las 2 horas a Tª ambiente.
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CONJUNTIVA
• Modo: tomar muestra de ambos ojos girando un hisopo previamente humedecido
sobre cada conjuntiva. Para investigación de Chlamydia trachomatis, everter el párpado
y frotar con una torunda la superficie conjuntival.
• Recipiente y volumen: hisopo en medio de transporte. Para Chlamydia se utilizará un
medio de transporte específico.
• Transporte: antes de 2 horas a Tª ambiente.
• Observaciones: enviar muestra de ambas conjuntivas aunque solamente en una haya
signos de infección. El ojo no infectado puede servir de control de flora habitual y
comparar con el resultado del ojo infectado.
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DERMATOFITOS
• Modo: Limpiar la zona con alcohol 70% usando una gasa, no algodón. A continuación:
◦ Escamas: lesiones cutáneas secas: raspar las escamas con un bisturí sobre todo
en la periferia de la lesión y hacerlas caer en una placa de Petri. Pitiriasis
versicolor: aplicar sobre la lesión tira adhesiva transparente, tirar enérgicamente
y adherirla sobre un portaobjetos. Lesiones cutáneas rezumantes: hacer la toma
con un escobillón estéril humedecido con solución salina fisiológica.
◦ Cabellos y pelos: elegir los cabellos parasitados con la luz de Wood. Los cabellos
enfermos (rotos o contorneados) deben ser arrancados del folículo piloso. Recoger
el material en una placa de Petri.
◦ Uñas: coger escamas por debajo de las uñas introduciendo un bisturí o lanceta en
el lecho subungueal anterior hasta la zona dolorosa, donde se encuentra el
material de mejor calidad. Después, cortar fragmentos de la uña afectada.
Recoger el material obtenido en una placa de Petri.
• Recipiente y volumen: recipiente estéril, cerrado.
• Transporte: antes de las 24 horas a Tª ambiente.
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ESPUTO EXPECTORADO
• Modo: supervisar la toma de muestra. Hacer que el paciente se enjuague la boca con
agua estéril o solución salina y que produzca tos profunda para conseguir muestra
procedente de vías bajas.
• Recipiente y volumen: recipiente estéril con cierre de rosca. 2-5 mL.
• Transporte: antes de 2 horas a Tª ambiente.
• Procesamiento: antes de 24 horas a 4ºC.
• Nº muestras necesarias: 1. (Para micobacterias, recoger muestra dos días
consecutivos)
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EXUDADO ÓTICO
• Modo: usar un hisopo húmedo estéril para limpiar el canal externo. Obtener la muestra
con otro hisopo girando firmemente.
• Recipiente: hisopo con medio de transporte.
• Transporte: antes de las 2 horas a Tª ambiente.
• Procesamiento: antes de las 24 horas a 2-8ºC.
• Observaciones: suele tratarse de muestras de mala calidad y poco representativas de
los microorganismos del oído medio.
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FARINGE
• Modo: mantener la lengua deprimida con ayuda de un depresor. Con un hisopo estéril,
frotar la parte posterior de la faringe, amígdalas y zonas inflamadas o con exudado o
membranas. No tocar la mucosa oral, lengua o úvula.
• Recipiente: hisopo en medio de transporte.
• Transporte: antes de 2 horas a Tª ambiente.
• Procesamiento: antes de 24 horas a Tª ambiente.
• Observaciones: se investiga rutinariamente Streptococcus beta-hemolítico del grupo
A; para investigar otros microorganismos debe especificarse en la petición.
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GENITALES
¾ Tracto genital femenino:
◊ Exudado vaginal:
• Modo: limpiar el exceso de secreciones. Obtener la muestra con hisopo
estéril de la zona de mayor exudado o del fondo del saco vaginal.
• Recipiente: hisopo en medio de transporte.
• Transporte: antes de las 2 horas a Tª ambiente.
• Observaciones: se recomienda extensión en Gram para la confirmación de
vaginosis bacteriana. Los cultivos con frecuencia no aportan información
fidedigna.
◊ Exudado uretral:
• Modo: esperar al menos 1 h después que la paciente ha orinado o recoger
antes de la primera orina de la mañana. Limpiar el orificio de la uretra y
recoger la secreción con un hisopo.
• Recipiente: hisopo con medio de transporte o inoculación directa en placas.
• Transporte: antes de las 2 horas a Tª ambiente.
• Observaciones: si no existe secreción introducir el hisopo de 2-4 cms
dentro de la uretra y hacerlo girar.
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¾ Tracto genital masculino:
◊ Exudado uretral:
• Modo: insertar un hisopo de 2-4 cms dentro del humen de la uretra, girarlo y
mantenerlo unos segundos dentro para facilitar la absorción.
• Recipiente: hisopo en medio de transporte o inoculación directa en placas.
• Transporte: antes de las 2 horas a Tª ambiente.
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LÍQUIDO ASCÍTICO, BILIAR, PLEURAL, ARTICULAR
• Modo: toma de muestra por punción percutánea con jeringa de forma aséptica.
• Recipiente y volumen: enviar las muestras en frascos de hemocultivo o en la aguja de
aspiración cerrada, o en tubo estéril de cierre de rosca. Enviar la mayor cantidad posible.
Nunca enviar un hisopo impregnado en fluido.
• Volumen mínimo: para bacteriología: 5 mL; para micobacterias u hongos: >10 mL. En
frascos de hemocultivo, inocular 5-10 mL.
• Transporte: antes de 15 min a Tª ambiente.
• Procesamiento: antes de 2 horas a Tª ambiente. Para cultivo de hongos y
micobacterias, antes de 24 horas a 4ºC.
• Observaciones: el transporte en frascos de hemocultivo es un sistema adicional
particularmente indicado en envíos que se pueden retrasar o en líquidos que pueden
coagularse.
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ÚLCERAS Y HERIDAS SUPERFICIALES
• Modo: limpiar la superficie con una gasa impregnada en salino estéril. Pasar el hisopo
sobre la lesión presionando sobre la misma.
• Recipiente y volumen: hisopo en medio de transporte.
• Transporte: antes de 2 horas a Tª ambiente.
• Procesamiento: antes de 24 horas a Tª ambiente.
BIBLIOGRAFÍA
1. Sociedad Española de Enfermedades Infecciosas y Microbiología Clínica. Madrid: SEIMC;
2002 [acceso 20 de abril de 2005]. Procedimientos en Microbiología Clínica. Disponible en:
http://www.seimc.org/protocolos/microbiologia/
2. Engelkirk PG, Engelkirk JD, Dowell VR. 1ª ed. Principles and practice of clinical anaerobic
bacteriology. Belmont: Star Publishing Co; 1992.
3. Simor AE, Roberts FJ, Smith JA. Infections of the skin and subcutaneous tissues.
Washington DC: American Society of Microbiology; 1988.
4. Jones DB, Liesegang TJ, Robinson NM. Laboratory diagnosis of Ocular Infections.
Washington DC: American Society for Microbiology; 1981.
5. Clyde WA, Kenny GE. Laboratory Diagnosis of Female Genital Tract Infections. Washington
DC: American Society for Microbiology; 1984.
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