IDENTIFICACIÓN MEDIANTE PCR DEL SEXO DE LA PAPAYA

agronomía mesoamericana 20(2):311-317. 2009
ISSN: 1021-7444
identificación mediante pcr del sexo de la papaya (Carica
papaya L.), híbrido “Pococí”1
Ericka Saalau-Rojas2, Walter Barrantes-Santamaría3, Carlos Luis Loría-Quirós3, Arturo Brenes-Angulo2,
Luis Gómez-Alpízar2
RESUMEN
ABSTRACT
Identificación mediante PCR del sexo de la papaya
(Carica papaya L.), híbrido “Pococí”. El objetivo de la presente investigación fue identificar plantas hermafroditas del
híbrido de papaya “Pococí”. Para la identificación del sexo
de las plantas del híbrido “Pococí”, se utilizó el protocolo
descrito por Deputy et al. (2002), con algunas modificaciones. Esta metodología emplea un PCR múltiple que permite
la amplificación simultánea de dos fragmentos (1.300 y 800
pb respectivamente) para plantas hermafroditas y de un solo
fragmento (1.300 pb) para plantas femeninas. El ADN se
extrajo a partir de hojas de plantas de invernadero o campo
con dos metodologías de extracción, CTAB y lisis alcalina
(NaOH). La amplificación por PCR del ADN extraído de
muestras foliares de papaya híbrido “Pococí”, con ambos
métodos de extracción, produjo los fragmentos del tamaño
esperado. La determinación del sexo de 1.500 plántulas en
almácigo mostró un 46 % de plántulas hermafroditas y un 54
% de plantas femeninas. La proporción observada de plantas
femeninas: hemafroditas no varió de la esperada (1:1) según
la prueba de chi-cuadrado (p= 0,4237). Las plantas hermafroditas fueron llevadas al campo y al momento de la floración
se determinó su sexo. La correspondencia entre el sexado por
PCR y la expresión sexual en campo fue de un 98 %.
Sex determination of papaya (Carica papaya L.)
“Pococí” hybrid by PCR. The objective of this work
was to identify papaya hermaphrodite plants of the hybrid
“Pococí” at the seedling stage using the Polymerase Chain
Reaction (PCR). Sex identification was achieved according
to the methodology described by Deputy et al. (2002) with
some modifications. This methodology employs a multiplexPCR assay that allows simultaneous amplification of two
fragments (800 bp and 1300 respectively) for hermaphrodite
plants and one fragment (1300 bp) for female plants.
Genomic DNA was extracted from leaves and two extraction
protocols were evaluated, CTAB and rapid alkaline lysis
(NaOH). The amplification reaction yielded the expected
size of the fragments with both methods of DNA extraction.
PCR sex determination of 1500 seedlings yielded 46 %
of hermaphrodite and 54 % of female plants. The female:
hermaphrodite plant ratio observed did not vary from the
expected (1:1) ratio according to the chi-square test (p =
0.4237). Hermaphrodite plants were planted in the field
in San Carlos region, Costa Rica, and sex was determined
at flowering. The correspondence between the PCR sexed
plants and sexual expression in the field was 98 %.
Palabras clave: Plantas hembra, hermafroditas, marcadores moleculares, extracción de ADN, genes ligados al sexo.
Key words: Female plants, hermaphrodites, molecular
markers, DNA extraction, sex-linked genes, sex expression.
Re­ci­bi­do: 16 de marzo, 2009. Acep­ta­do: 16 de noviembre, 2009. Proyecto de investigación “Innovación tecnológica en almacigos de papaya”
de la Universidad de Costa Rica.
2
Laboratorio de Biotecnología de Plantas, Centro de Investigaciones Agronómicas, Universidad de Costa Rica. San José, Costa Rica.
esaalau@gmail.com, arturo.brenes@ucr.ac.cr, luis.gomezalpizar@ucr.ac.cr
3
Estación Experimental Agrícola Fabio Baudrit Moreno, Universidad de Costa Rica. Alajuela, Costa Rica. walter.barrantes@ucr.ac.cr,
clloria@gmail.com.
1
312
Saalau et al.: Identificación con PCR del sexo en papaya
Introducción
La papaya presenta tres tipos de plantas de acuerdo al sexo de las flores que produce: hembras, machos
y hermafroditas. Diferentes hipótesis han sido planteadas para explicar la genética de la determinación
del sexo en papaya, incluyendo el control por un solo
gen con al menos tres alelos, el control por dos genes
diferentes, un grupo de genes fuertemente ligados, la
presencia de un sistema de cromosomas XY, balance
génico de cromosomas sexuales sobre autosomas,
elementos reguladores de la vía de desarrollo floral y
el control ejercido por dos cromosomas Y levemente
diferentes (Y y Yh) (Hofmeyr 1938, Storey 1938, 1953
y 1976, Sondur et al. 1996, Gaurab et al. 2007, Ming
Yu y Moore 2007, Qingyi et al. 2008).
Las plantas con flores hermafroditas son las que
producen frutos con las mejores características comerciales: forma alargada y piel gruesa, lo cual les
permite resistir más los daños mecánicos en poscosecha y una cavidad interna pequeña, es decir una mayor
relación pulpa/semillas (Chaves y Nuñez 2007, Mora
y Bogantes 2005). Sin embargo, el sexo de las plantas
de papaya solo puede ser determinado hasta que las
plantas llegan a la floración (de dos a tres meses).
Por lo tanto, para obtener una plantación con plantas
mayoritariamente hermafroditas, el productor debe
sembrar de tres a cuatro plantas por punto de siembra
y eliminar al momento de la floración los fenotipos no
deseados (machos y hembras). Esta práctica resulta en
un aumento de los costos de producción como consecuencia del mayor número de plántulas sembradas y el
mantenimiento de las mismas hasta el momento de ser
removidas. Además, requiere de personal capacitado
que conozca bien la morfología floral de la papaya y
sepa distinguir las flores hermadrofitas de las femeninas. Por otro lado, existe siempre el inconveniente de
obtener frutas con un menor valor comercial, ya que
no siempre se elimina certeramente los genotipos indeseables y la constitución final de la plantación es de un
92 a un 94 % de plantas hermafroditas solamente, y no
del 100 % deseado (Mora y Bogantes 2005).
La determinación del sexo de plantas de papaya
en etapas tempranas de su desarrollo permite el ahorro
de recursos, al facilitar la siembra de plantas 100 %
hermafroditas (Parasnis et al. 1999). Diferentes estudios han sido conducidos para el establecimiento de
un sistema temprano para la determinación del sexo en
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papaya. Los mismos incluyen análisis morfológicos,
citológicos, isoenzimáticos y de contenido de fenoles
(Magdalita y Mercado 2003). Hasta la fecha, ninguno
de estos métodos permite determinar el sexo de las
plantas de papaya en el estado de plántula o semilla.
La mayoría de los sistemas evaluados distinguen plantas hembra de plantas macho pero no de plantas hermafroditas y no son aptos para el análisis de grandes
grupos de muestras. Esto ha generado interés por desarrollar estrategias de identificación del sexo en papaya
a través de marcadores moleculares, particularmente
mediante la aplicación de técnicas basadas en la reacción en cadena de la polimerasa o PCR (por sus siglas
en inglés). Varios autores han diseñado iniciadores de
PCR a partir de marcadores moleculares que permiten
el diagnóstico del sexo de plantas de papaya en estados
tempranos de desarrollo (Gill et al. 1998, Parasnis et
al. 2000, Deputy et al. 2002, Urasaki et al. 2002 a, b,
Chaves y Nuñez 2007). Normalmente, el diseño de los
imprimadores se basa en la determinación de marcadores RAPDs (Fragmentos polimórficos de ADN Amplificados al Azar) asociados a un tipo sexual. Luego
los fragmentos se clonan y se secuencian para generar
SCARs (Secuencias Caracterizadas Amplificadas al
Azar), y finalmente se emplean las secuencias para
diseñar los imprimadores que permiten la amplificación mediante PCR de fragmentos específicos para el
tipo sexual. Por lo general es posible distinguir plantas
hembra de hermafroditas y masculinas; pero no plantas hermafroditas de masculinas (Deputy et al. 2002,
Urasaki et al. 2002 a,b, Chaves y Nuñez 2007).
El método descrito por Deputy et al. (2002) es
particularmente útil ya que emplea un PCR múltiple
que permite la amplificación simultánea de dos fragmentos (1.300 y 800 pb respectivamente) en plantas
hermafrodita y de un solo fragmento (1.300 pb) en
plantas femeninas. El fragmento de 1.300 pb es común
a ambos sexos, lo que sirve como control interno de
la amplificación, obviando los falsos negativos que
se presentan en los sistemas que utilizan presencia y
ausencia de una sola banda (PCR simple) para la determinación del sexo. La presencia de la banda indica
que la planta es femenina y la ausencia que es hermafrodita o viceversa. De manera que si el ADN extraído
no es amplificable podrían obtenerse falsos negativos.
La ausencia del producto de PCR se debe no a que
la planta sea femenina o hermafrodita, sino a que la
cantidad o calidad del ADN no fue apropiada para su
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Saalau et al.: Identificación con PCR del sexo en papaya
amplificación, lo que se obvia con el PCR múltiple
(Urasaki et al. 2002b).
La aplicabilidad del método de Deputy et al.
(2002) para la determinación del sexo de plantas de
papaya de diferentes genotipos ha sido demostrada en
Hawai (Deputy et al. 2002) y Filipinas (Magdalita y
Mercado 2003). Sin embargo, en Colombia, Chaves y
Nuñez (2007) indicaron que el uso de imprimadores de
PCR desarrollados a partir de genotipos de papaya de
otras localidades falló cuando se aplicaron a genotipos
locales y concluyeron que es necesario validar los métodos de sexado de plantas con los materiales locales.
En el híbrido “Pococí” la población resultante sigue
una relación 1:1 femeninas-hermafroditas. Los machos
están ausentes, lo que abre la posibilidad de emplear el
método de Deputy et al. (2002) para diferenciar entre
plantas hermafroditas y hembras de este híbrido en
etapas tempranas del desarrollo de las plantas.
El presente trabajo tuvo como objetivos: 1) validar el método de Deputy et al. (2002) para la determinación de sexo en plantas de papaya del híbrido
“Pococí”; 2) comparar dos métodos de extracción de
ADN, CTAB (Rogers y Bendlich 1988) y NaOH (GE
Healthcare 2005), con el propósito de disminuir el
tiempo necesario para procesar una muestra y 3) establecer la concordancia entre la determinación del sexo
por PCR y la morfología floral.
MATERIALES Y MÉTODOS
Material vegetal
Se recolectaron hojas de 1500 plántulas de invernadero de tres semanas de edad y de 146 plantas en
estado de prefloración en el campo del híbrido “Pococí”. Ambos materiales provinieron de la Estación Experimental Agrícola Fabio Baudrit Moreno (EEFBM)
en Alajuela, Costa Rica en el año 2007.
La extracción de ADN se efectuó en el Centro de
Investigaciones Agronómicas (CIA).
1. Extracción del ADN con CTAB
Para la extracción de ADN con CTAB (bromuro de
cetril-trimetil amonio) se siguió el método descrito por
Rogers y Bendlich (1988), con algunas modificaciones.
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Secciones de hoja de 1 cm² de tamaño se colocaron en
un tubo Eppendorf plástico de 1,5 ml. Luego se agregó
nitrógeno líquido y se maceró el tejido con la ayuda de
un taladro manual al que se le colocó un pistilo plástico.
Al macerado resultante se adicionaron 300 μl de amortiguador de extracción CTAB (CTAB 2 %, Tris-HCl
0.2M, 0.05M EDTA, 2.0M NaCl) y la mezcla se incubó
a 65 ºC por 30 min. Posteriormente se agregaron 300
μL de cloroformo-fenol-alcohol isoamílico (25:24:1) y
se mezcló suavemente por inversión. Para separar las
fases se centrifugó a 12.000 rpm durante 15 min y se
transfirió la fase acuosa a un nuevo tubo Eppendorf. Se
repitió la extracción orgánica con cloroformo-fenol-alcohol isoamílico y se recuperó la fase acuosa, a la que
se le agregaron 20 µl de NaOAc 3,0 M (pH 5,2) y 300
μl de isopropanol frío, para la precipitación del ADN.
La mezcla se dejó reposar a -20 ºC durante la noche.
Luego se centrifugó por 15 min a 13.000 rpm y se eliminó el sobrenadante. El precipitado se lavó dos veces
con 70 µl de etanol frío al 70 % y se centrifugó durante
5 min (cada vez) a 13.000 rpm. El precipitado final
se secó en una cámara de flujo laminar y se rehidrató
en 40 μL de agua doble destilada-doble autoclavada.
Posteriormente se preparó una dilución 1:10 en agua
para su uso en PCR. La calidad y rendimiento del ADN
genómico se determinó en un gel de agarosa al 1 % corrido en TBE 0.5X (Tris 10 mM, Borato 20 mM, EDTA
1,0 mM) y teñido con bromuro de etidio.
2. Extracción de ADN con NaOH
Al igual que en el método anterior, se colocaron
secciones de hoja de 1 cm² en tubos Eppendorf plásticos de 1,5 ml. Según la metodología descrita por GE
Healthcare (2005), se agregaron 150 µl de NaOH 0,25
M con 0,1 % Tween 20 v/v a cada tubo y se maceró
cada muestra con la ayuda de un taladro manual al que
se le colocó un pistilo plástico. Al macerado resultante
se adicionaron 150 µl de solución neutralizadora (80
mM Tris-HCl, pH 8,0, 1,0 mM EDTA) y la mezcla se
incubó a 70 ºC durante 30 min. Para separar las fases
se centrifugó a 12.000 rpm durante 15 minutos y se
transfirió la fase acuosa a un nuevo tubo. Esta se diluyó en agua en una relación 1:25 para su uso en el PCR.
La calidad y rendimiento del ADN genómico extraído
se determinó de la misma manera que con el método
de extracción CTAB.
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Saalau et al.: Identificación con PCR del sexo en papaya
Determinación del sexo mediante PCR
La reacción de amplificación por PCR del ADN
extraído de muestras foliares de plantas de papaya híbrido “Pococí” provenientes de invernadero y campo,
con ambas metodologías de extracción, se realizó de
acuerdo al protocolo descrito por Deputy et al. (2002).
Se emplearon los imprimadores W11-F (CTGATGGCGTGTGTGGCTCTA), W11-R (CTGATGCGTGATCATCTACT), T1-F (TGCTCTTGATATGCTCTCTG) y T1-R (TACCTTCGCTCACCTCTGCA) en
una reacción de PCR múltiple. La reacción fue llevada
a cabo en un volumen total de 25 μl con una concentración final de 1X de amortiguador de reacción de PCR
(Tris-HCl 75 mM pH 8,8; (NH4)2 SO4 20 mM y 0,01
% de gelatina), 1,7 mM MgCl2, 0,16 mM dNTP, 0,18
µM de cada imprimador, 0,8 mg/ml BSA, una unidad
de Taq ADN polimerasa y 4 μl de una dilución 1/10 de
ADN para muestras procesadas con el protocolo de extracción de CTAB y de 1:25 para aquellas con el protocolo de NaOH (aproximadamente entre 10 y 50 ng
de ADN). Los reactivos utilizados fueron de la marca
comercial Fermentas UAB, Life Sciences, Lithuania.
Las amplificaciones se realizaron en un termociclador
Perkin Elmer GeneAmp PCR System 2.400 y consistieron de una desnaturalización inicial a 95 ºC por tres
minutos, seguida por 30 ciclos de 95 ºC por un min,
58 ºC por un minuto, 72 ºC por dos minutos y un período final de extensión a 72 ºC por siete minutos. Los
productos de la reacción de amplificación fueron visualizados en geles de agarosa al 1,6 % peso/volumen
preparados en 0,5X TBE (Tris 10 mM, Borato 20 mM;
EDTA 1,0 mM) suplementados con 1 μl de bromuro
de etidio (10 mg/ml). La electroforesis se realizó a 70
V durante 1,5 horas. Las bandas se observaron con luz
UV en un transiluminador Kodak EDAS 290.
Evaluación en campo de las plantas hermafroditas
sexadas
Una vez sexadas, se trasplantaron a campo 360
plántulas hermafroditas en la zona de San Carlos,
Alajuela. El manejo agronómico de las plantas fue el
utilizado por el productor en su plantación. Al momento
de la floración, aproximadamente dos meses después de
la siembra, se determinó morfológicamente el sexo de
cada una de las plantas establecidas en el campo.
Los datos totales de sexado por PCR se sometieron a una prueba de chi-cuadrado para determinar si la
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relación hermafroditas:hembras determinada correspondía a la proporción 1:1 esperada para el híbrido
“Pococí”.
Resultados
El ADN extraído con ambos métodos, CTAB y
NaOH, resultó adecuado para su amplificación mediante PCR. Cada muestra presentó el mismo patrón
de bandas, independiente del método de extracción
(Figura 1). La reacción de amplificación produjo los
fragmentos del tamaño esperado, 1.300 pb para la
combinación de imprimadores T1-F y T1-R y 800
pb para la combinación W11-F/W11-R. Las plantas
hermafroditas presentaron el patrón de dos bandas,
1.300 y 800 pb respectivamente; mientras que en las
plantas hembra un patrón de una sola banda de 800 pb,
independientemente del estado de desarrollo: plántulas
de invernadero (Figura 2a) o en prefloración en campo
(Figura 2b). La aplicación de la técnica de PCR para
la determinación del sexo de 145 plantas de papaya
de sexo conocido provenientes del campo, mostró una
coincidencia del 96 % entre PCR y la morfología floral
(Cuadro 1).
Figura 1. Productos de PCR obtenidos a partir de ADN
extraído de hojas de papaya del híbrido “Pococí”
de plantas de invernadero, mediante los métodos
de lisis alcalina NaOH (celdas 1, 3, 5, 7, 9) y
CTAB (celdas 2, 4, 6, 8, 10. Patrón de doble banda
corresponde a plantas hermafroditas, patrón de
una banda a plantas femeninas. Celda 11, control
negativo sin ADN. M = Marcador molecular de
100 bp. Centro de Investigaciones Agronómicas
(CIA). San José, Costa Rica. 2007.
Debido a que la metodología de extracción con
NaOH resulta más barata y es más rápida, se procedió
Agronomía Mesoamericana 20(2):311-317. 2009
Saalau et al.: Identificación con PCR del sexo en papaya
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DISCUSIÓN
Figura 2. Amplificación por PCR múltiple del ADN extraído
de muestras foliares de plántulas de invernadero
de tres semanas de edad (a) y plantas de campo
(b) del híbrido “Pococí”. Patrón de doble banda
corresponde a plantas hermafroditas, patrón de
una banda a plantas femeninas. Celda 11, control
negativo sin ADN, M= Marcador molecular de
100bp. Centro de Investigaciones Agronómicas
(CIA). San José, Costa Rica. 2007.
Cuadro 1. Determinación de sexo en plantas de papaya del
híbrido Pococí, mediante PCR y morfología floral
(145 muestras evaluadas). San José, Costa Rica.
2007.
Tipo de planta
Hermafroditas
Femeninas
PCR
Morfología floral
82
77
63
68
a extraer el ADN de muestras foliares de plántulas en
invernadero (n=1.500) con esta metodología. Posteriormente se procedió a determinar su sexo mediante
el PCR múltiple (Figura 2a). Un 46 % de las plántulas
resultaron hermafroditas y un 54 % hembras. Esta
proporción no varió significativamente de la relación
1:1 esperada, según la prueba de chi-cuadrado (p=
0,4237).
Las plantas hermafroditas fueron llevadas a campo donde al momento de la floración se determinó su
sexo. La correspondencia entre el sexado por PCR y la
expresión sexual en campo fue de un 98 %.
ISSN: 1021-7444
La técnica de PCR para la determinación de sexo
en papaya con imprimadores derivados de marcadores
RAPDs ligados al gen Sex 1 (Deputy et al. 2002),
permitió la diferenciación de plantas hermafroditas
y hembras del híbrido “Pococí”, mejorado en Costa
Rica. Estos resultados coinciden con los obtenidos en
Hawai (Deputy et al. 2002) y en Filipinas (Magdalita
y Mercado 2003). En Colombia, sin embargo, Chaves
y Nuñez (2007) indicaron que el método no fue aplicable a los genotipos de papaya cultivados en ese país.
Las condiciones de PCR y la calidad de reactivos
influyen en la amplificación por PCR de las diferentes regiones del ADN, lo que podría explicar la falta
de producto de PCR cuando se empleó el ADN de
los genotipos colombianos. En adición, las condiciones óptimas para realizar la amplificación varían de
acuerdo a la calidad y cantidad del ADN, es decir,
están relacionadas con el método de extracción del
ADN. Alternativamente, diferencias genéticas (en la
secuencia del ADN) entre los materiales colombianos
y los empleados por Deputy et al (2002), en la región
de unión de los imprimadores utilizados para PCR,
harían que los iniciadores no funcionaran con los
primeros materiales. Deputy et al (2002) emplearon
materiales hawaianos en su trabajo original. El padre
del híbrido “Pococí” es de ascendencia hawaiana del
grupo “Solo” (Mora y Bogantes 1999-2002), de manera que existe una relación genética entre el híbrido
“Pococí” y los genotipos hawaianos. Los cultivares
hawaianos son genéticamente muy similares (Stiles et
al. 1993). Deputy et al. (2002) y Magdalita y Mercado
(2003), sin embargo, aplicaron con éxito el método
de sexado a plantas de papaya de diferentes acervos
genéticos.
Ambos métodos de extracción de ADN evaluados
permitieron la obtención de ADN de papaya amplificable mediante PCR. El método de lisis alcalina con
NaOH presentó varias ventajas sobre el método con
CTAB, entre ellas fácil implementación e inocuidad,
pues no utiliza reactivos corrosivos ni peligrosos para
la salud como el fenol y el cloroformo, bajo costo y
rapidez ya que se necesita de solamente 30 minutos en
comparación con un mínimo de dos horas para el método con CTAB. Esto representa un ahorro sustancial
de tiempo en la preparación de las muestras y facilita
su procesamiento a gran escala. Ventajas que han sido
Agronomía Mesoamericana 20(2):311-317. 2009
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Saalau et al.: Identificación con PCR del sexo en papaya
previamente señaladas por otros autores (Mathias et
al. 2007, De Jesús et al. 2005).
La coincidencia entre la predicción del sexo por
PCR y por morfología floral fue entre un 96 % y un
98 %, independientemente del estado de desarrollo de
las plantas de papaya (plantas adultas o plántulas). Esto
confirma que la técnica permite determinar el sexo de
las plantas en estados tempranos del desarrollo (tres semanas de edad) y sería útil para establecer plantaciones
comerciales con solo plantas hermafroditas, particularmente cuando la producción se destina a la exportación.
La utilización de técnicas moleculares representa
un costo directo para los productores y para quienes
se dedican a la producción de almácigos de papaya.
Su implementación dentro del sistema de producción
comercial de papaya dependerá de la relación costo/beneficio resultante de establecer plantaciones con
mayores rendimientos comerciales (solo hermafroditas) en relación a la reducción de los costos indirectos,
como la inversión de recursos y tiempo para el mantenimiento de plantas hembra no deseadas.
La técnica de PCR empleada para la determinación de sexo en papaya tiene también aplicación dentro de los programas de mejora genética del cultivo,
para la determinación del sexo de las líneas utilizadas
como padres en los cruzamientos para la obtención
de híbridos y en la micropropagación, para evaluar
la estabilidad de las líneas hermafroditas producidas
mediante esta técnica.
En conclusión, la técnica de PCR validada para
identificar el sexo de plantas de papaya en estados
tempranos de su desarrollo, podría ser una herramienta
efectiva para planificar la producción de la fruta y obtener mayor productividad por área. Su uso en la producción comercial depende de que sea costo/efectiva.
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