Mecanismos de control para Drosophila suzukii, dentro de la GIP Cartagena, 19 y 20 de noviembre de 2013 Ricard Sorribas Royo Anna Lekunberri Gómez Servei de Sanitat Vegetal Introducción Los drosofílidos son dípteros de pequeño tamaño, generalmente asociados a frutos sobremadurados o restos vegetales en descomposición Una de las especies más conocidas es Drosophila melanogaster o mosca del vinagre Foto: R. Sorribas Servei de Sanitat Vegetal Asia 1937 Este de Rusia 1965 Norte de India 2005 Pakistan Federación Rusa 1937 Este de China 1937 Corea del Norte 1931 Japón 1968 Corea del Sur 1977 Taiwan 1976 Tailandia 1991 Birmania Europa 2009 Francia Montpellier, Minière de Vallauria, Alps Marítims 2011 Alemania 2011 Suiza 2012 Holanda 2009 Italia Trento 2011 Bélgica 2010 España Girona 2009 España Barcelona 2012 Austria 2010 Eslovenia 2011 Croacia 2008 PRIMERA CITA DE EUROPA España Tarragona 2010 Córcega 2011 España Navarra, Murcia, Andalucía… 2008 California Santa Cruz Nord Amèrica 2009 Oregon 2011 Wisconsin 2009 Washington 2011 Michigan 2011 New York 2009 California 20 Condados 2012 Massachusetts 2010 Utah 2009 Carolina del Norte 2009 Carolina del Sur 2009 Columbia Británica - Canadá 2009 Florida 2009 Lousiana ~1980 Hawaii 2011 México Año 2010 EPPO inclusión en la lista de alertas Frutos susceptibles Cerezas Fresas Frambuesas Arándanos Moras Ciruelas Melocotones Albaricoques Higos Uva Manzanas, Peras, Kiwis, … Impacto Problemática global para la producción de fruta en amplias zonas Amplio rango de hábitats y huéspedes donde se reproduce Poblaciones del insecto con crecimiento explosivo Costes adicionales para la protección de cultivos La Producción ecológica fuertemente amenazada Daños en cerezas Fotos: A. Lekunberri / R. Sorribas Servei de Sanitat Vegetal Rhagoletis cerasi Drosophila suzukii Fotos: Núria Cuch- Andreu Vila- Ricard Sorribas Rhagoletis cerasi Drosophila suzukii Fotos: Núria Cuch- Ricard Sorribas Cataluña. Daños en cerezas 2011 Variedades tempranas Variedades media Variedades tardías Superficie afectada 95 Ha de 3.300 Ha 10 al 80% 30% cercanas al 100% 2012 Baja o nula presencia de la plaga. Confusión con daños ocasionados por Rhagoletis cerasi 2013 Lenta evolución por bajas temperaturas. Daños en frutos. Necesidad de protección fitosanitaria. Daños en fresa Fotos: Ricard Sorribas Royo Servei de Sanitat Vegetal Daños en fresa Fotos: A. Lekunberri Gómez/ Ricard Sorribas Servei de Sanitat Vegetal Daños en fresa Fotos: Anna Lekunberri Gómez Servei de Sanitat Vegetal Cataluña. Daños en fresas 2011. Pérdidas del 20% al 100%. Los cultivos más afectados han sido los de producción ecológica. Superficie aproximada afectada en fresas ha sido de 30 Ha. de las 60 Ha. actuales 2012. Hasta finales de septiembre escasa presencia del insecto. A partir de octubre aumento exponencial de las poblaciones y detección de daños 2013. Aumento de las poblaciones en otoño y detección de daños. Necesidad de proteger el cultivo Características morfológicas dos manchas negras alares, dos pares de pintas tarsales oviscapto serrado y alargado Fotos: Ricard Sorribas Royo / Anna Garreta Gornals Servei de Sanitat Vegetal Ciclo biológico. Huevo: En el interior del fruto, donde eclosionan y se desarrollan las larvas Larva: Pasan por 3 estadios antes de pupar Pupa: La pupa puede formarse tanto fuera como dentro del fruto 7-9 días a 21,1ºC Fotos: Víctor Sarto / J. Orlando Moreno .Servei de Sanitat Vegetal Ciclo biológico 7-9 días a 21,1ºC y 12-15 días a 18,3ºC Entre 3 y 13 generaciones Los adultos, sexualmente maduros después de 1 a 2 días. Pueden vivir entre 21 y 66 días y una hembra puede poner entre 1 y 3 huevos en cada punto de oviposición, depositando una media de 380 huevos durante toda su vida Tan sólo los adultos sobreviven al invierno, hembras principalmente Prefiere un clima moderado, pero sobreviven en condiciones frías Isla de Hokkaido (Japón), inviernos con T. medias de - 4º C a -12 º C Máxima actividad a 20ºC. Reducción a temperaturas > a 30ºC y < a 0ºC Muy sensible a la desecación Influencia de la meteorología. Primavera Influencia de la meteorología. Otoño Monitoreo de las poblaciones Anna Botta & Manel Carrión Departamento I+D. División Fisiología Vegetal. BIOIBERICA, S.A.. Consideraciones sobre el monitoreo de D. suzukii Monitoreo laborioso. Identificación de individuos Degradación de atrayentes (vinagre, vino, levadura…) Estandarización de sistemas de monitoreo Muestreo de zonas cultivadas y limítrofes Ubicación de las trampas Interacción plaga/cultivo Áreas refugio Fotos: A. Lekunberri / R. Sorribas Servei de Sanitat Vegetal Protocolo de monitoreo de D. suzukii . 2013 Objetivos del monitoreo Determinar zonas de presencia Drosophila suzukii Establecer puntos de seguimiento poblacional Material Trampa: Hemitrap® Atrayente: SuzukiiTrap® Medidas de control. Gestión Integrada Profilácticas Captura masiva Tratamientos fitosanitarios Fauna auxiliar, control biológico Medidas profilácticas Recoger también los frutos no comerciales de las parcelas para evitar la proliferación de la plaga Gestionarlos correctamente. Contenedores herméticos, enterrarlos en profundidad Evitar plantaciones abandonadas. La ley de Sanidad Vegetal obliga a los propietarios a gestionar correctamente la sanidad de sus cultivos Reservorios en huéspedes silvestres: moras, madroños… Conocer los puntos de entrada, movimiento de la plaga Medidas mancomunadas CAPTURA MASIVA. Técnica actualmente en experimentación Colocación de las trampas con anticipación Los atrayentes basados en vinagre de sidra, vino, levadura… se degradan rápidamente y pierden capacidad de atracción. Son buenos indicadores si se renuevan semanalmente Necesidad de atrayentes más selectivos y de más lenta degradación Trampas de alta capacidad para recoger picos de población que pueden llegar a ser muy altos Determinar la densidad de trampas Captura masiva invierno. Cerezo Invierno: Perimetral cada 4 - 5m. Captura masiva primavera inicio floración Primavera: Perimetral cada 4- 5m. Trampas indicadoras dentro de la parcela Captura masiva Cultivo: 200 trampas/ha Captura masiva fresa y frambuesa Cultivo: 200 trampas/ha Fotos: R. Sorribas Servei de Sanitat Vegetal Evaluación captura masiva fresa y frambuesa Sistema Suzukii Trap Tratamiento insecticida Reposición atrayente Anna Botta & Manel Carrión Departamento I+D. División Fisiología Vegetal. BIOIBERICA, S.A.. Medidas de control. Tratamientos fitosanitarios Tratamientos fitosanitarios La erradicación no es posible Soluciones de urgencia a corto plazo Rotación de materias activas y modos de acción Falta de autorizaciones específicas Riesgo de residuos Objetivo: Gestión integrada Autorización excepcional cerezo 2012 / 2013. 120 días Dimetoato 40%p/v[EC Dosis: Año 2012: 75 cc/Hl (750 cc/Ha) / Año 2013: 35 cc/Hl (350 cc/ha) Volumen del caldo: 1000L/Ha Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo: 1 Plazo de seguridad : Año 2012: 21 días / Año 2013: 14 días Spinosad 48% p/v[SC] Dosis: 20-25 cc/Hl Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3 Plazo de seguridad : Año 2012: 7 días / Año 2013: 14 días Autorización excepcional cerezo 2013. 120 días Spinetoram 25% p/p [WG] Dosis: 30cc/Hl (300 cc/Ha). Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo: 2 Plazo de seguridad : 3 días. Autorización excepcional Frambuesa y mora 2013. 120 días Spinosad 48% p/v[SC] Dosis: 20-25 cc/Hl Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3 Deltametrin 1.5% p/v [EW] Dosis: 0,05-0,083 l/Hl Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3 Autorización excepcional Arándanos 2013. 120 días Spinosad 48% p/v[SC] Dosis: 20-25 cc/Hl Núm. máximo de aplicaciones por ciclo de cultivo : 3 Ensayo insecticidas laboratorio. IRTA-DAAM. 2012 Sobre adultos Sobre huevos Persistencia en hoja Judit Arnó, Rosa Gabarra, y col. IRTA Cabrils Eficacia sobre adultos (residuos 0-3 dd) Eficacia Persitencia (fruto infestado) (edad residuo mort.>75%) Planta Fruto Fruto Persistencia B. bassiana (Naturalis) 1 1 1 n B. bassiana ( Botanigard) 1 2 3 n Azadiractin (Aling) 1 1 2 n Sí (3d) Si (3d) Azadiractin (Neemazal ) 2 1 1 n Si (3d) No Spinosad (Spintor) 4 4 4 28-31 dd Sí (1d) No Deltametrin (Decis) -- 4 -- -- Si (3d) Si (7d) Lambda Cihalotrin (Karate) 4 4 4 28-31 dd Si (3d) Si (7d) Acetamiprid (Epik) 4 2 4 0-3 dd No Si (14d) Emamectina (Affirm) -- 4 -- -- Si (1d) No Dimetoat (Danadim) 4 4 4 28-31 dd No No Materia activa Eficacia (OILB) : 1 - 25 % : 26 - 50 % : 51 - 75 % Sí (np) Sí (np) No No : >75 % Judit Arnó, Rosa Gabarra, y col. IRTA Cabrils Estrategia de control en cerezo Caída de pétalos Inicio de captura masiva perimetral / total Envero (de color verde a paja) Según muestreo y condiciones meteorológicas. Inicio de tratamientos Maduración (de color rosado a rojo) Tratamientos periódicos Respetar plazo de seguridad Consideraciones sobre los tratamientos fitosanitarios Replanteamiento de los Programas de Gestión Integrada de Plagas y manejo de resistencias Proteger el cultivo desde el inicio de la maduración Alternar Sustancias activas de los grupos organofosforados, piretroides, neonicotinoides y espinosinas Falta de autorizaciones específicas para los diferentes cultivos susceptibles a D. suzukii Efecto adulticida, bajo efecto larvicida En general poca compatibilidad con control biológico Control biológico No es habitual que una nueva plaga venga acompañada de sus enemigos naturales, por lo que será preciso esperar un tiempo para que los potenciales depredadores y parasitoides visualicen la nueva fuente de alimento Parasitoides identificados sobre la plaga en Cataluña – Pachycrepoideus vindemmiae – Leptopilina boulardi Control biológico Pachycrepoideus vindemmiae Hembra ovopositando en pupa de tefrítido Larva sobre pupa de mosca doméstica Fotos: Max E. Badgley. Cortesia de http://www.bugsinthenews.com Control biológico Pachycrepoideus vindemmiae Ectoparasitoide pupal, idiobionte Utilizado como OCB en Hawái, Costa Rica, Argentina y Colombia Distribuido en 60 países del mundo Parásito primario de diferentes órdenes (Díptera, Hemíptera, Himenóptera y Lepidóptera). Principalmente dípteros de 12 familias. Destacan, Anastrepha fraterculus, Anastrepha suspensa, Bactrocera oleae y Ceratitis capitata Hiperparasitoide de muchos parasitoides beneficiosos (Wang y Messing, 2004) En España: Lanzarote del año 1985, Monegros del año 1992 , en la comarca del Segrià en Lleida, recientemente se ha localizado en Begues (Barcelona) en cerezas y fresas (Maresme) infestadas con D. suzukii. Control biológico Leptopilina boulardi • Drosophila sp., activa mecanismos de autodefensa • Leptopilina boulardi provoca un aumento de hematocitos en Drosophila sp. que encapsula la puesta del parasitoide • Respuesta inmunitaria Foto: http://www.plosbiology.org/article/info:doi/10.1371/journal.pbio.0020255 Control biológico Potencialmente existen hongos, bacterias, virus, depredadores o parasitoides. Información sobre D. melanoganster Prospección de las zonas colindantes a los cultivos y parcelas con baja presión de tratamientos. Baja compatibilidad con la mayoría de tratamientos fitosanitarios actuales Dificultad de control debido a explosión de las poblaciones. Poblaciones insuficiente de fauna auxiliar 49 MUCHAS GRACIAS !!! Más información en: www.gencat.cat/agricultura/sanitat