FOSFITOS DE POTASIO COMO ALTERNATIVAS DE MANEJO DEL MILDIU VELLOSO DEL ROSAL (Rosa spp.) Pablo Israel Álvarez-Romeroa,c, Rómulo García-Velascoa, Martha Elena MoraHerreraa, Martha Lidya Salgado-Siclánb, Justino Gerardo González-Díaza. a Centro Universitario Tenancingo-Universidad Autónoma del Estado de México, km 1.5 Carretera Tenancingo Villa Guerrero, C. P. 52400. b Facultad de Ciencias Agrícolas-Universidad Autónoma del Estado de México, El Cerrillo Piedras Blancas, Toluca, Edo. de México C. P. 50200 México. Correspondencia: rgarciave@uaemex.mx c Departamento Técnico El Agro- Importadores. Riobamba. pablo.i.alvarez@elagroec.com Resumen El mildiu velloso (Peronospora sparsa Berkeley) del rosal es uno de los mayores problemas fitosanitarios en este cultivo. La búsqueda de alternativas biocompatibles para el manejo de esta enfermedad es una necesidad urgente, debido a que actualmente el manejo de esta enfermedad se hace exclusivamente con fungicidas y las aplicaciones consecutivas tienen la desventaja de favorecer la aparición de razas resistentes. Los objetivos del trabajo fueron evaluar el efecto de dos diferentes formulaciones de fosfito de potasio, solas y en combinación con el fungicida mefenoxam para el manejo de la enfermedad en el cultivo de rosa y determinar su efecto en la longitud, diámetro de tallo y contenido de clorofila total. Las aplicaciones de productos fueron cada 8 días durante 7 semanas. Se utilizó un diseño experimental de bloques al azar con 5 tratamientos y 4 repeticiones. Las aplicaciones de fosfito de potasio y fosfipéptido solos y en combinación con mefenoxam mostraron los niveles más bajos de incidencia y severidad de la enfermedad. El fosfito de potasio incrementó en un 56.5 % la longitud de tallo (61.4 cm) en comparación con el testigo. El fosfipéptido más mefenoxam incrementó el diámetro de tallos en 18.9 % y contenido de clorofila total (58.5 %) con valores de 4.8 mm y 2.5 mg.g -1 respectivamente. Estos incrementos en el tamaño de los tallos de rosa pueden convertir a los fosfitos, solos o combinados, en una alternativa biocompatible y eficiente en el manejo del mildiu velloso en rosal. Palabras clave adicionales: Peronospora sparsa, fosfito, fosfipéptido, severidad, mefenoxam. Abstract The Downy mildew of rose crop (Peronospora sparsa Berkeley) is one of the biggest problems in this crop. Search biocompatible alternatives for managing this plant disease is urgently needed, because currently the management of this disease is made exclusively with fungicides and consequent applications have the disadvantage of favoring the emergence of resistant strains. The objectives were to evaluate the effect of two different formulations of potassium phosphite, alone and in combination with mefenoxam for disease management in rose crop and determine its effect on the length, stem diameter and total chlorophyll content. Applications products were every 8 days for 7 weeks. The statistic design was randomized block with 5 treatments and 4 replications. Applications of phosphipeptid and potassium phosphite alone and in combination with mefenoxam showed lower levels of incidence and severity of disease . Phosphite increased by 56.5 % stem length (61.4 cm) in comparison with the control. The phosphipeptid + mefenoxam increased stem diameter in 18.9 % and the total chlorophyll content (58.5 %) with values 4.8 mm and 2.5 mg.g-1 respectively. These increases in the size of the stems of rose can convert phosphites alone or in combination, in a biocompatible alternative and efficient in handling downy mildew of rose crop. Additional key words: Peronospora sparsa, phosphite, phosphipeptide, severity, mefenoxam. Introducción En México, la producción de rosa deja un ingreso económico importante de 1, 225,457.39 miles de pesos. En el año 2012 se cultivaron 712.20 ha obteniéndose una producción de 5, 559,218.51 gruesas (una gruesa equivale doce docenas de tallos) (SIAP, 2012). El mildiu velloso de la rosa causado por Peronospora sparsa Berkeley es uno de los mayores problemas fitosanitarios afectando los rendimientos y calidad en el cultivo (Castillo et al., 2010) su distribución es mundial (Ayala et al., 2008; Wheeler 1981). Los daños mayores de la enfermedad, coinciden con elementos del clima relacionados con temperaturas que oscilan entre 15 y 20 °C durante el proceso de infección y de 20 a 25 °C para la colonización del patógeno; la infección está influenciada por la presencia de una lámina de agua libre sobre la superficie del tejido por un período mínimo de dos horas; sin embargo, el proceso infectivo se incrementa significativamente cuando dichas condiciones de humedad superan las 10 horas (Aegerter et al., 2003). Para el manejo de esta enfermedad, no se dispone de variedades o híbridos comerciales de rosa con resistencia a P. sparsa (Ayala et al., 2008), existiendo por lo tanto la necesidad de recurrir a diferentes prácticas de manejo como el control químico. De los grupos químicos de fungicidas utilizados en el control de este patógeno, las fenilamidas (mefenoxam) han sido reportados como específicos y eficientes en el control de hongos fitopatógenos de la clase Oomycetes como P. sparsa en rosa (Aegerter et al., 2002), Plasmopora viticola (Berk y Curt) Berl Toni en uva (Gisi et al., 1985), y Phytophthora infestans (Mont) de Bary en papa (Gisi y Cohen, 1996). Las aplicaciones consecutivas de estos fungicidas durante el ciclo del cultivo, tienen la desventaja de favorecer la aparición en poco tiempo de razas en los oomycetes con resistencia a fungicidas, como es el caso de mefenoxam con P. destructor (Develash y Sungla, 1997), P. viticola (Gisi y Sierotz, 2008) y P. infestans (Rubin et al., 2008); cuando esto sucede, la estrategia del agricultor consiste en aumentar la frecuencia de aplicaciones o una sobredosificación del fungicida, ocasionando mayores costos de producción y riesgo de contaminación ambiental (Velandia et al., 2012). Lo anterior indica que la búsqueda de alternativas para el manejo de P. sparsa es una necesidad que se debe investigar. En esta investigación se tuvo por objetivos: (i) evaluar el efecto de las aplicaciones de diferentes formulaciones de fosfito de potasio solas y en combinación con el fungicida mefenoxam para el manejo de P. sparsa en condiciones de campo en el cultivo de Rosa spp. y (ii) determinar el efecto de estos productos en la longitud, diámetro de tallo y contenido de clorofila total. Materiales y métodos Evaluación del fosfito de potasio, fosfipéptido, fosfito de potasio + mefenoxam y fosfipéptido + mefenoxam sobre la incidencia y severidad de P. sparsa en Rosa spp. var. Samurai En campo se utilizaron 20 unidades experimentales que consistieron en parcelas de 1.2 m de largo por 1 m de ancho con 10 plantas de rosa var. Samurai® (Meilland Internacional) de ocho meses de edad, plantadas a una hilera, en camas de suelo adicionada con materia orgánica. Se indujeron brotes nuevos homogéneos mediante poda. Para la infección natural del patógeno la humedad relativa se incrementó mediante nebulizaciones y la temperatura cerrando el invernadero. El experimento se realizó durante el otoño del 2013. Las aplicaciones de los productos fueron cada 8 días durante 7 semanas, con un total de 7 aplicaciones por ensayo; la aplicación se realizó con una aspersora manual (RL-PROFLO, modelo 614 RL) de 15.2 L. Los tratamientos y productos utilizados en este ensayo fueron los siguientes: T1. Control (agua destilada). T2. Fosfito de potasio 2.5 mL.L-1 (Nutriphite magnum®, 2 % N; 40 % P2O5; 16 % K2O). T3. Fosfipéptido 2.5 mL.L-1 (Optimus®, 1 % N; 30 % P2O5; 20 % K2O; aminoácidos libres 4%). T4. Fosfito de potasio 2.5 mL.L-1 (Nutriphite magnum®) + Mefenoxam 2 mL.L-1 (Ridomil Gold®, 33 g de i.a.L-1 de mefenoxam + 330 g i.a.L-1de clorotalonil). T5. Fosfipéptido 2.5 mL.L-1 (Optimus®) + Mefenoxam de 2 mL.L-1 (Ridomil Gold®, 33 g de i.a.L-1 de mefenoxam + 330 g i.a.L-1de clorotalonil). La incidencia se evaluó de acuerdo a Velandia-Monsalve y colaboradores (2012) con las siguientes modificaciones: La severidad de la enfermedad se estimó con una escala de porcentaje de infección de acuerdo a Rebollar y colaboradores (2012), que contiene las siguientes categorías: clase 0: hojas sanas, clase 1: hasta el 5 %, clase 2: 5-10 %, clase 3: 10-25 %, clase 4: 25-50 %, clase 5: 50-75 %, clase 6: > 75 %; para estas dos variables se hicieron seis evaluaciones. La primera evaluación se realizó 25 días después de la poda de inducción de brotes, y posteriormente cada 8 días se continuaron con las evaluaciones hasta que las flores alcanzaron la madurez comercial, los datos de incidencia y severidad se transformaron a área bajo la curva del progreso de la enfermedad (AUDPC) mediante el método de integración trapezoidal (Madden et al., 2006) para su posterior análisis. Evaluación del fosfito de potasio, fosfipéptido, fosfito de potasio + mefenoxam y fosfipéptido + mefenoxam sobre la longitud, diámetro de tallos y contenido de clorofila total La longitud y diámetro de tallos se midieron con un vernier (Truper® CALDI-6MP) cuando estos tuvieron un estadío cuatro de apertura floral (hasta 90° de apertura) de acuerdo a López y colaboradores (2008). El contenido de clorofila total se cuantificó en folíolos apicales de tallos en estadío cuatro de apertura floral utilizando un medidor de unidades SPAD (Konica Minolta 502). Para transformar las unidades SPAD en mg.g-1 de peso fresco de clorofila total, se correlacionaron las unidades SPAD obtenidas, con los contenidos de clorofila de 15 folíolos en diferentes estados de senescencia, de acuerdo a Lichtenthader y Wellburn (1983) con modificaciones de Mora-Herrera y colaboradores (2011). El diseño experimental fue de bloques al azar con cuatro repeticiones, el análisis de varianza (ANOVA) y la prueba de Tukey con un α=0.05 % se hicieron con el programa estadístico Infostat, version 2013 (Di Rienzo et al., 2013). Resultados Efecto del fosfito de potasio, fosfipéptido, fosfito de potasio más mefenoxam y fosfipéptido más mefenoxam sobre la incidencia y severidad de P. sparsa en rosa var. Samurai Los tratamientos de fosfito de potasio, fosfipéptido, fosfito de potasio más mefenoxam y fosfipéptido más mefenoxam sobre plantas de rosa mostraron niveles bajos de incidencia (P<0.0009), reduciendo la incidencia en 56.3 %, 37.6 %, 50.8 % y 46.3 % respectivamente, en relación al control (Tabla 4). Para la variable severidad, existieron diferencias estadísticas significativas (P< 0.0001), los tratamientos con fosfito de potasio, fosfipéptido, fosfito de potasio más mefenoxam y fosfipéptido más mefenoxam mostraron los niveles más bajos de severidad reduciendo esta variable en 77.8 %, 74.5 %, 75.5 % y 73.4 en relación al control que alcanzó el valor más alto de severidad (Tabla 4). Tabla 4. Efecto de los tratamientos sobre el área bajo la curva del progreso de la enfermedad para las variables incidencia y severidad de P. sparsa en rosa var. Samurai. Tratamiento Control Fosfito de potasio Fosfipéptido Fosfito de potasio+mefenoxam Fosfipéptido+mefenoxam * AUDPC Incidencia 3430.00 1500.00 2140.00 1690.00 1830.00 b a a a a * AUDPC Severidad 1825.00 405.00 465.00 446.67 485.00 b* a a a a Literales diferentes indican diferencias significativas según Tukey (α<=0,05) Efecto de fosfito de potasio, fosfipéptido, fosfito de potasio más mefenoxam y fosfipéptido más mefenoxam sobre la longitud, diámetro de tallos y contenido de clorofila en rosa var. Samurai Diferencias significativas fueron observadas en el experimento para la variable longitud de tallo (P<0.0001). El tratamiento de fosfipéptido sobre plantas de rosa (fosfito de potasio + aminoácidos) ayudó el desarrollo de tallos al conseguir un incremento en la longitud de 56.5 %, en relación al control (Tabla 5). Respecto, a la variable diámetro de tallo los resultados indicaron que los tratamientos de fosfipéptido y fosfipéptido + mefenoxan presentaron un incremento en el diámetro de tallo de 18.9 % y 9.3 % con respecto al testigo (Tabla 5). El contenido de clorofila total de plantas de rosa se vio incrementado en 58.5 % y 55.9 % con los tratamientos de fosfipéptido más mefenoxam y fosfito de potasio más mefenoxam (Tabla 5). Tabla 5. Efecto de los tratamientos sobre la longitud, diámetro de tallo y contenido de clorofila en rosa var. Samurai. Tratamiento Control Fosfito de potasio Fosfipéptido Fosfito de potasio + mefenoxam Fosfipéptido + mefenoxam * Longitud (cm) 39.2 c 51.9 b 61.4 a 48.4 b 49.4 b Diámetro (mm) 4.1 b 4.4 b 4.5 a b 4.4 b 4.8 a Clorofila total (mg.g-1 PF) 1.6 d 2.1 c 2.2 b c 2.5 a b 2.5 a Literales diferentes indican diferencias significativas según Tukey (α<=0.05) Discusión Los valores de incidencia y severidad de P. sparsa fueron bajos en el experimento con el tratamiento de fosfito de potasio, fosfipéptido, fosfito de potasio + mefenoxam y fosfipéptido + mefenoxam respecto al tratamiento control que obtuvo el valor más alto de incidencia y severidad. Reportes en zarzamora indican que dos aplicaciones de fosfito de potasio seguidas de tres aplicaciones de Bacillus subtilis y tres aplicaciones de fosfito de potasio seguidas de dos aplicaciones de agente sanitizante redujeron significativamente la incidencia y severidad de P. sparsa, en relación a programas sin fosfitos, como la del mancozeb seguida de mefenoxam, dos aplicaciones de oxicloruro de cobre y una aplicación de Bacillus subtillis (Rebollar et al., 2012). En el cultivo de cebolla de bulbo, aplicaciones de fosfito de potasio alternadas con mefenoxam más mancozeb fueron las más efectivas en el manejo de la incidencia y severidad de P. destructor comparándolas con una aplicación de mefenoxam más mancozeb y el control (Velandia et al., 2012). Los fosfitos son compuestos resultantes de la reacción del ácido fosforoso con iones de metales alcalinos como el K, Ca, Mg y Na, considerados como fuente importante de nutrimentos para los cultivos (Velandia et al., 2012). Los fosfitos de potasio monobásico (KH2PO3) y dibásico (K2HPO3) se caracterizan por ser más solubles en agua y móviles en la planta, tanto en sentido ascendente como descendente, que los fosfatos (PO4), el fosfito de potasio pertenece al grupo químico de los fosfonatos, categoría toxicológica III de bajo impacto ambiental; por lo que la aplicación del tratamiento de fosfito de potasio es inocua al hombre, a los animales y al ambiente (Velandia et al., 2012), conociendo estas ventajas Thizy y colaboradores (1997), al evaluar el ácido fosforoso y los fosfitos como una fuente de fósforo en cítricos, descubrieron la eficiencia del fosfito de potasio en el control de Phytophthora palmivora, agente causal de la gomosis de los cítricos, con base en este descubrimiento, el fosfito de potasio fue patentado por los mismos investigadores como fungicida para el control de oomycetes. A partir de entonces, diferentes trabajos han confirmado la eficiencia del fosfito de potasio en el control de esta clase de fitopatógenos en diferentes cultivos como P. sparsa en rosa (Chavarro et al., 2014) y zarzamora (Rebollar et al., 2012), Phytophthora infestans (Machinandiarena et al., 2012) en papa y P. destructor en cebolla (Velandia et al., 2012). La eficiencia del fosfito de potasio en el control de fitopatógenos de la clase oomycetes es atribuida a un efecto directo e indirecto; directamente, la incorporación de fosfito en el medio de cultivo tuvo un efecto fungistático al restringir el crecimiento e inhibir la esporulación de Pythium (Lobato et al., 2008) y la aplicación de fosfitos a la base de las plantas en lupino (Lupinus angustifolius L.) las protegió del ataque de Phytophthora cinnamomi (Rands), en tabaco (Nicotiana tabacum L. Hicks) de P. nicotianae y en papaya (Carica papaya Tourn. ex L) de P. palmivora (Smillie et al., 1989); indirectamente, el fosfito de potasio ha sido considerado como un inductor de la Resistencia Sistémica Adquirida (SAR), la cual consiste en un mecanismo natural desarrollado por las plantas para defenderse del ataque de microorganismos fitopatógenos y de insectos plaga (Daniel et al., 2005). En la planta el fosfito de potasio es disociado en las formas de ácido fosforoso (H3PO3) y K; el ácido fosforoso al ser reconocido por la planta como un metabolito del patógeno, activa los mecanismos de defensa estimulando la producción de fitoalexinas, las cuales son reconocidas por sus propiedades biocidas contra diferentes grupos de agentes causales de enfermedades de la clase oomycetes, hyphomycetes (Botrytis cinerea) y aganomycetes (Rhizoctonia solani) (Kofoet et al., 2007). La aplicación del tratamiento de fosfipéptido sobre plantas de rosa presentó efectos significativos (P<0.0001) que repercutieron además de la sanidad del cultivo en la longitud, y fosfipéptido + mefenoxam en el diámetro de tallos y contenido de clorofila total; lo anterior sugiere que los tratamientos con fosfipéptidos posiblemente modificaron las condiciones nutrimentales de las plantas, por lo que se incrementó la longitud, diámetro de tallo y contenido de clorofila total. El fosfipéptido (Optimus®) es un hidrolizado enzimático de proteínas con fósforo en forma de fosfito de potasio, especialmente diseñado por el departamento de Investigación y Desarrollo de Bioibérica S.A. para combatir estrés biótico y abiótico al activar como elicitor las respuestas de defensa de las plantas, mediante la estimulación de la expresión de proteínas específicas de patogenicidad (PRs) y el aumento de la actividad de enzimas pertenecientes a la ruta de síntesis de compuestos fenilpropanoides (Botta et al., 2007). La eficacia del tratamiento de fosfipéptido 3 mL.L -1 ha sido probada en vid (Vitis vinifera L. cv. Chardonnay) de seis años con un acentuado historial de ataque de mildiu (Plasmopara viticola); con un programa de cuatro aplicaciones del tratamiento de fosfipéptido, la evaluación de parámetros de eficacia del control de mildiu sobre hojas y sobre frutos (bayas y/o racimos) se realizó a partir de la aparición de síntomas de ataque de mildiu; el tratamiento de fosfipéptido mostró una eficacia del 80% a nivel de hojas; a nivel de racimos, la incidencia y severidad del daño de mildiu fueron bajos e inferiores al control no tratado (Botta et al., 2007). El fungicida mefenoxam, es un fungicida ampliamente utilizado para el manejo de mildius vellosos en cultivos como papa, hortalizas, tabaco y aguacate (Gisi, 2002); sin embargo, Quiroga y Arbeláez (2004), reportaron que nueve aplicaciones de mefenoxam al suelo y al follaje cada cinco días no obtuvieron un control eficaz de P. sparsa en un cultivo comercial de rosa en Colombia, la falta de control de este producto, posiblemente se debió a que el patógeno ha perdido sensibilidad a este producto, como ha pasado con otros mildius, aunque en el presente experimento cabe destacar que las combinaciones de mefenoxam con las dos distintas formulaciones de fosfitos, redujeron la incidencia y severidad de P. sparsa en rosa; Gisi y Sierotzki (2008), proponen la aplicación alternada de productos a base de fosfitos con fungicidas, con el fin de prevenir o reducir la aparición de resistencia de organismos fungosos. Las aplicaciones de fosfipéptido, fosfito de potasio, fosfipéptido más mefenoxam, y fosfito de potasio más mefenoxam redujeron el daño causado por P. sparsa en términos de incidencia y severidad, pero en los tratamientos de fosfipéptido y fosfipéptido + mefenoxam sobre plantas de rosa se vieron incrementos en la longitud y diámetro de tallo y en el contenido de clorofila total, debido posiblemente a la presencia de aminoácidos libres en el fosfipéptido. La aplicación exógena de aminoácidos libres ha mostrado efectos positivos de los cultivos en condiciones de estrés; por ejemplo en el estrés por calor el tratamiento de aminoácidos libres incrementa la eficiencia fotoquímica y evita la destrucción de pigmentos fotosintéticos en plantas estresadas por altas temperaturas, en comparación al control, respuestas positivas de la aplicación de aminoácidos suponen que la diferencias entre tratamientos no fue debido a los niveles de fertilidad, sino al efecto biostimulante ejercido por los aminoácidos (Bota, 2013). Siete aplicaciones consecutivas semanalmente de fosfito de potasio y fosfipéptido redujeron considerablemente la incidencia y severidad de P. sparsa en rosa, estadísticamente no hubo diferencia con los tratamientos de cada uno de ellos mezclados con el mefenoxam en estas dos variables, por lo que se puede inferir que no hay razón para mezclar estos productos para el manejo de P. sparsa pero si puede incrementar los costos de producción, sin embargo aunque los fosfitos se clasifican como de bajo riesgo de desarrollar resistencia según el comité de acción a la resistencia a los fungicidas (FRAC) (Brent and Hollomon, 2007), reportes previos han demostrado que los mildius vellosos y otros oomycetes pueden desarrollar resistencia a fosfitos (Brown et al., 2004; Dobrowolski et al., 2008). Por lo tanto, un programa de manejo de resistencia debe ser diseñado utilizando productos con diferentes mecanismos de acción, como fungicidas del grupo de las estrobilurinas, fenilamidas, inductores de resistencia sistémica, biológicos y extractos vegetales (Rebollar et al., 2012). El mismo autor señala que, debido a que el patógeno tiene la capacidad de desarrollarse sistémicamente en ocasiones sin mostrar síntomas, los programas de manejo deben iniciar con productos sistémicos como fosfitos y mefenoxam y continuar con fungicidas de diferente mecanismo de acción especialmente los que tienen un movimiento translaminar como azoxystrobin. Conclusiones Los tratamientos de fosfito de potasio y fosfipéptido sobre plantas de rosa reducen la incidencia y severidad de P. sparsa en rosa. El fosfipéptido se convierte en una alternativa biocompatible eficiente en el manejo de mildiu velloso en rosal, que tiene efectos positivos sobre la longitud y diámetro de las plantas de rosa. Fosfito de potasio y fosfipéptido fueron más eficientes que las combinaciones con el fungicida mefenoxam para el manejo de mildiu velloso en rosal. Literatura citada Aegerter, B.J., Nuñez, J.J. and Davis, R.M. 2002. Detection and management of downy mildew in rose rootstock. Plant Disease 86(12): 1363-1368. Aegerter, B.J., Nuñez, J.J. and Davis, R.M. 2003. Environmental factors affecting rose downy mildew and development of a forecasting model for a nursery production system. Plant Disease 87(6): 732-738. Ayala, V.M., Argel, R.L., Jaramillo, V.S. y Marín, M.M. 2008. Diversidad genética de Peronospora sparsa (Peronosporaceae) en cultivos de rosa de Colombia. Acta Biol. Colomb. 13(1): 79-94. Botta, A., Ruz, L., Marín, C., Sierras, N., Carrión, M., Montesinos, E. y Piñol, R. 2007. Estudio del mecanismo de acción de un nuevo producto para el control de enfermedades fúngicas. Actas de horticultura 48: 198-201. Botta, A. 2013. Enhancing plant tolerance to temperature stress with amino acids: an Approach to their mode of action. Acta Hort. 1009: 29-36. Brent, K. and Hollomon, D. 2007. Fungicide resistance in crop pathogens. 2ed. Published by Fungicide Resistance Action Committee. Brussels. Belgium. 58 p. Brown, S., Koike, S.T., Ochoa, O.E., Laemmlen, F. and Michelmore, R.W., 2004. Insensitivity to the fungicide fosetyl-aluminum in California isolates of the lettuce downy mildew pathogen, Bremia lactucae. Plant Dis. 88: 502-508. Castillo, C.F., Álvarez, E., Gómez, E., Llano, G.A. y Castaño, J. 2010. Mejoramiento nutricional de la rosa para el manejo de Peronospora sparsa Berkeley, causante del mildiu velloso. Rev. Acad. Colomb. Ciencias Exactas, Físicas y Naturales 34(131): 137-142. Chavarro-Carrero, E.A., García-Velasco, R., González-Díaz, J.G., González-Cepeda, L.E. y Jiménez-Ávila, L.J. 2014. Uso del fosfito de potasio para el manejo de Peronospora sparsa en Rosa spp. Revista Colombiana de Fitopatología 36(2). En prensa. Daniel, R. and Guest, D. 2005. Defence responses induced by potassium phosphonate in Phytophthora palmivora challenged Arabidopsis thaliana. Physiological and Molecular Plant Pathology 67(3-5): 194-201. Develash, R.K. and Sugha, S.K. 1997. Management of downy mildew (Peronospora destructor) of onion (Allium cepa). Crop Protection 16(1): 63-67. Di Rienzo, J.A., Casanoves, F., Balzarini, M.G., Gonzalez, L., Tablada, M. and Robledo, C.W. 2013. InfoStat, versión 2013, Grupo InfoStat, FCA, Universidad Nacional de Córdoba, Argentina. Dobrowolski, M.P., Shearer, B.L., Colquhoun, I.J., O’Brien, P.A. and Hardy, G.E.St.J., 2008. Selection for decreased sensitivity to phosphite in Phytophthora cinnamomi with prolonged use of fungicide. Plant Pathol. 57: 928-936. Gisi, H.B., H. Binder and Rimbach, E. 1985. Synergistic interactions of fungicides with different modes of action. Transactions of the British Mycological Society 85(2): 299306. Gisi, U. and Cohen, Y. 1996. Resistance to phenylamide fungicides: A case study with Phytophthora infestans involving mating type and race structure. Annual Review of Phytopathology 34: 549-572. Gisi, U. and Sierotzki, H. 2008. Fungicide modes of action and resistance in downy mildews. European Journal of Plant Pathology 122(1): 157-167. Kofoet, A. and Fischer, K. 2007. Evaluation of plant resistance improvers to control Peronospora destructor, P. parasitica, Bremia lactucae and Pseudoperonospora cubensis. Journal of Plant Disease and Protection 114(2): 54-61. Lobato, M.C., Olivieri, F.P., González, A.E.A., Wolski, E.A., Daleo, G.R., Caldiz, D.O. and Andreu, A.B. 2008. Phosphite compounds reduce disease severity in potato seed tubers and foliage. Eur. J. Plant Pathol. 122: 349-358. López, P., Neisa, D.P., Bacca, C. y Flórez, V.J. 2008. Evaluación de preservantes florales en la poscosecha de tres variedades de clavel estándar. Agronomía Colombiana 26(1): 116-126. Machinandiarena, M., Lobato, M., Feldman, M., Daleo, G. and Andreu, A. 2012. Potassium phosphite primes defense responses in potato against Phytophthora infestans. Journal of Plant Physiology 169: 1417-1424. Madden, L.V., Hughes, G. and Van den Bosch, F. 2006. The Study of Plant Disease Epidemics. APS Press. American Phytopathological Society, St. Paul Minnesota, USA. pp. 106-109. Mora-Herrera, M.E., Peralta Velázquez, J., López-Delgado, H.A., García-Velasco, R. y González-Díaz, J.G. 2011. Efecto del ácido ascórbico sobre crecimiento, pigmentos fotosintéticos y actividad peroxidasa en plantas de crisantemo. Revista Chapingo Serie Horticultura 17(2): 73-81. Rebollar, A.A., Silva, R.H., López, C.I., Boyzo, M. and Ellis, M.A. 2012. Fungicide sprays programs to manage downy mildew (dryberry) of blackberry caused by Peronospora sparsa. Crop Protection 42: 49-55. Rubin, A.E., Gotlieb, D., Gisi U. and Cohen Y. 2008. Mutagenesis of Phytophthora infestans for resistance against carboxylic acid amide and phenylamide fungicide. Plant Disease 92(5): 675-683. SIAP (Servicio de Información Agroalimentaria y Pesquera). 2012. Cierre de la producción agrícola. Disponible en línea: http: //www.siap.gob.mx/ index.php ? option = com_wrapper & view = wrapper & ltemid = 350 (consulta, octubre de 2013). Smillie, R., Grant B.R. and Guest D. 1989. The mode of action of phosphite: Evidence for both direct and indirect modes of action on three Phytophthora spp. in plants. Phytopathology 79(9): 921-926. Thizy, A. Pillon, D., Debourge J.C. and Lacroix, G. 1997. Fungicidal compositions containing phosphorous acid and derivates thereo. US PATENT 4119724. En: http://www.patentstorm.us/patents/4119724/description.html (consulta, Abril 2014). Velandia-Monsalve, J., Viteri-Rosero, S.E., Rubio-Cárdenas, N.J. y Tovar-Duarte, F.O. 2012. Efectos del Fosfito de Potasio en combinación con el fungicida metalaxil+mancozeb en el control de mildeo velloso (Peronospora destructor Berk.) en cebolla de bulbo (Allium cepa L.). Revista Facultad Nacional de AgronomíaMedellín 65(1): 6317-6325. Wheeler, B. 1981. Downy mildew of ornamentals. In: Spencer, D.M. (ed.). The Downy Mildews. Academic Press, London. England. pp. 476-477.