agua ultrapura Agua ultrapura sin impurezas biológicamente activas apta para técnicas PCR Resumen L as técnicas PCR se utilizan ampliamente en el sector biotecnológico para la amplificación de material genético, desde la investigación genómica fundamental hasta aplicaciones forenses y biomédicas avanzadas. La necesidad de reactivos y soluciones sin nucleasas (DNasa, RNasa) que puedan provocar la fragmentación de los oligonucleótidos está ampliamente reconocida; sin embargo, la influencia de otros contaminantes transmisores de enfermedades a través del agua raramente se considera. Estos pueden provocar problemas con los resultados de las pruebas, por lo que es vital que el agua utilizada esté libre de contaminantes transmisores de enfermedades. garantizar que todos los reactivos y soluciones utilizados en las aplicaciones de PCR carezcan de nucleasas. La necesidad de un agua “libre de nucleasas” en las aplicaciones de PCR está ampliamente reconocida; sin embargo, hay otros contaminantes que se encuentran comúnmente en el agua que pueden impedir la amplificación del ADN por PCR, incluyendo: Bacterias La presencia de ADN de bacterias puede llevar a resultados erróneos, especialmente en las técnicas qPCR, así como en la amplificación de secuencias no diana. Además, muchas bacterias liberan nucleasas extracelulares y otras pequeñas moléculas e iones que interfieren con la polimerización del ADN. Introducción La llegada de las técnicas de reacción en cadena de la polimerasa (PCR) revolucionó la genómica a principios de la década de 1980, y los métodos basados en PCR, como la PCR de transcripción inversa (RT-PCR) y la PCR cuantitativa (q-PCR), ahora son esenciales en una amplia gama de aplicaciones en la investigación médica y biológica. La amplificación del ADN por PCR se basa en el uso de enzimas de polimerasa de ADN para sintetizar moléculas de ADN de cadena doble a partir de “plantillas” de cadena única, usando cortas secuencias de iniciación de oligonucleótidos para identificar el gen de interés. Aunque este proceso emplea generalmente polimerasas de ADN termoestables, tanto la especificidad del gen diana como la eficiencia de la reacción catalizada de la enzima dependen en gran medida de las condiciones físicas (pH, temperatura, etc.) y de la composición de la mezcla de la reacción1. La presencia de nucleasas (enzimas que rompen los enlaces de fosfodiéster entre las subunidades de los ácidos nucleicos) dentro del recipiente de reacción llevará a la interrupción severa del proceso de PCR, ya que el material genético se fragmentará rápidamente bajo las condiciones de reacción. Por lo tanto, es fundamental técnicas de LABORATORIO 22 Nº 368 ENERO/FEBRERO 2012 agua ultrapura Iones Las polimerasas de ADN termoestables requieren un cofactor de magnesio (Mg2+) para la unión efectiva al sustrato. La concentración de Mg2+ es por tanto crucial para la optimización de la actividad de la polimerasa3. Las enzimas de polimerasas también son muy sensibles a otros cationes divalentes comunes (Cu2+, Fe2+, Ni2+, etc.), que interfieren con la coordinación del cofactor y entorpecen la unión del sustrato dentro del punto activo. Además, la presencia incluso de cantidades de trazas de iones de metales pesados (como el cadmio) inhibirá la actividad enzimática. Compuestos orgánicos Las partículas pueden causar daños en la bomba de la HPLC y también provocar que las columnas se bloqueen. Este efecto es aún más significativo en los usuarios de UHPLC, ya que los tamaños de partículas mucho más pequeños y con diámetros más reducidos de estas columnas hacen que sean más susceptibles al bloqueo prematuro que sus homólogas HPLC. Los coloides pueden ser adsorbidos irreversiblemente en la fase inmóvil, resultando en un cambio en la eficiencia de la separación de la columna. Radiación ultravioleta (UV) Dado que las moléculas de ADN llevan carga negativa, otras biomoléculas cargadas negativamente dentro del entorno de reacción pueden interferir con la unión del sustrato introduciéndose en el entorno activo cargado positivamente y causando una interferencia estérica, lo que provoca una menor producción de sustrato. Purificación del agua para PCR La optimización de los procesos de PCR requiere el uso de agua sin nucleasas, microorganismos, compuestos orgánicos ni tra- técnicas de LABORATORIO 24 zas de elementos para la elaboración de todos los reactivos y tampones. Para garantizar que todos estos contaminantes no estén presentes, el agua de grado ultrapuro (Tipo I) (con una resistividad de 18,2 MW cm, un valor de carbono orgánico total, TOC, inferior a 10 ppb, niveles de bacterias por debajo de 1 CFU/ml y endotoxinas por debajo de 0,01 EU/ml) es muy recomendable para aplicaciones4 PCR. El PureLab Ultra Genetic de Elga utiliza un proceso de purificación multietapa para producir agua de grado ultrapuro adecuada para PCR, incluyendo: Radiación ultravioleta (UV) El paso del agua a través de un haz de luz ultravioleta descompone de forma efectiva los compuestos orgánicos incluyendo bacterias y moléculas bioactivas como las nucleasas y endotoxinas. La longitud de onda de 185 nm oxida las macromoléculas con contenido de carbono, produciendo fragmentos ionizados para la posterior eliminación por intercambio de iones, mientras que la radiación UV de longitud de onda más larga (254 nm) interrumpe la actividad de las enzimas bacterianas, evitando la reproducción. Para maximizar la fragmentación de las moléculas orgánicas, el PureLab Ultra Genetic emplea una lámpara UV de espectro total con un manguito de cuarzo sintético de pureza ultra alta. Ultrafiltración Los ultrafiltros (UF) son filtros de membrana con poros típicamente de 1 a 50 nm, frecuentemente en forma de fibras huecas, que ofrecen altas velocidades de flujo por unidad de volumen. Normalmente están hechos de fibras asimétricas con la capa activa, con los poros más finos, en un lado. Los UF se caracterizan por la eficiencia con la que eliminan contaminantes específicos a niveles aceptables. La ultrafiltración es útil junto con los UV para maximizar la eliminación de macromoléculas y bacterias. Nº 368 ENERO/FEBRERO 2012 agua ultrapura Conclusión El agua ultrapura con alta resistividad (>18,2 MW cm) y sin nucleasas, compuestos orgánicos ni endotoxinas debe ser utilizada para todas las aplicaciones PCR para garantizar la amplificación optimizada de las secuencias diana. Para saber más sobre las tecnologías y soluciones para el tratamiento del agua de Elga LabWater para aplicaciones biotecnológicas, véase www.elgalabwater.com. Referencias El PureLab Ultra Genetic de Elga utiliza la foto-oxidación UV y cartuchos de purificación de alta capacidad combinados con un ultrafiltro, para proporcionar de forma fiable agua ultrapura sin endotoxinas. La resistividad en tiempo real y el control de los valores TOC garantizan la eliminación comprobable de los contaminantes orgánicos e inorgánicos, y el sistema ofrece trazabilidad validada y calidad garantizada. 1.Bogetto, P et al. (2000). Helpful tips for PCR. Focus, 22 (1), 12. 2.Sambrook, J and Russell, DW (2001). Chapter 8: In vitro Amplification of DNA by the Polymerase Chain Reaction, Molecular Cloning: A Laboratory Manual (3rd ed). 3.Yang, L et al. (2004). Critical role of magnesium ions in DNA polymerase beta’s closing and active site assembly, J Am Chem Soc, 126 (27), 8441-8453. 4.ASTM “Standard Guide for Bio-applications Grade Water”, D 5196-06. www.elgalabwater.com