UNIVERSIDAD NACIONAL MAYOR DE SAN MARCOS (Universidad del Perú, Decana de América) FACULTAD DE CIENCIAS BIOLÓGICAS ESCUELA ACADÉMICO PROFESIONAL DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA DEPARTAMENTO ACADÉMICO DE MICROBIOLOGÍA Y PARASITOLOGÍA SYLLABUS SEMESTRE ACADÉMICO: 2015– II (Agosto-Diciembre) I. DATOS GENERALES 1.1. NOMBRE DEL CURSO : INMUNOSEROLOGÍA 1.2. CÓDIGO DEL CURSO : B03164 1.3. NÚMERO DE CRÉDITOS : 3.0 1.4. DURACIÓN DEL CURSO : 17 SEMANAS 1.5. AÑO DE ESTUDIOS : CUARTO O QUINTO 1.6. NÚMERO DE HORAS :5 1.6.1 TEORÍA : 1 horas semanales; 17 semestrales 1.6.2. PRÁCTICA : 4 horas semanales; 64 semestrales 1.7. PRE-REQUISITO : INMUNOLOGÍA 1.8. PROFESORA RESPONSABLE: Dra. Libertad Alzamora Gonzales (5h semanales) 1.8.1. PROFESORES DE TEORÍA: Dra. Libertad Alzamora Gonzales Biólogo Erasmo Colona Vallejos Bióloga Jeanne R. Alba Luna 1.8.2. PROFESORES DE PRÁCTICA: Dra. Libertad Alzamora Gonzales Biólogo Erasmo Colona Vallejos Bióloga Jeanne R. Alba Luna 1.8.3. PROFESORES INVITADOS: Biólogo Waldo Medina Corrales (FARVET) Biólogo Daniel Gómez Bellido (Emp. La Ensenada S.A.) Biólogo Enrique Castillo (Ex miembro DIRINCRI) Bach. Emely Chauca T. (Lab. de Inmunología-FCBUNMSM) 1.8.4. ASISTENTES DE LABORATORIO: Est. Luis Rodríguez Carnero (EAP Genética y Biotecnología) Egres. Ricardo Arones Farfán (EAP Microbiología y Parasitología) 1.9. HORARIOS Y AMBIENTES: 1.9.1. Teoría: Miércoles 13-14 hrs (Aula 211) 1.9.2. Seminarios: Miércoles 9-13 hrs (Lab. 301) 1.9.3. Laboratorio: Miércoles 9-13 hrs (Lab. 301) II. SUMILLA El curso trata sobre los métodos inmunoserológicos, su manejo e interpretación para ser empleados en la investigación y diagnóstico de enfermedades de origen inmunológico, genético o infeccioso; así como en el control de calidad de aguas, alimentos y en la caracterización taxonómica de los serogrupos de organismos. III. OBJETIVOS DEL CURSO 3.1. GENERALES Establecer el aspecto práctico de la Inmunología que sea útil en la determinación de epítopes presentes en células normales y transformadas, y en microorganismos patógenos, ambientales o empleados en la industria. 3.2. ESPECÍFICOS Adiestrar al estudiante en la aplicación de distintas metodologías que permitan la extracción de antígenos que puedan ser empleados en las pruebas serológicas convenientes. Proveer de adecuada información teórica que permita interpretar las reacciones inmunológicas. Promover en el estudiante su capacidad para adaptar las técnicas de laboratorio a sus necesidades, conservando la eficacia de las mismas. Adiestrar al estudiante en el conocimiento de las pruebas inmunoserológicas más utilizadas y otras de mayor sofisticación. IV. EVALUACIÓN El Curso consta de dos capítulos. Se realizarán dos evaluaciones teóricas. Las sesiones de Laboratorio serán evaluadas semanalmente, al término de cada capítulo se obtendrá la nota que será promediada con la que se obtenga en el examen de teoría. SUSTITUTORIO: Se sustituirá una de las dos evaluaciones programadas. Las fechas programadas son INALTERABLES. PRIMERA EVALUACIÓN: Miércoles 07 de Octubre (T1-T6; P1-P6) SEGUNDA EVALUACIÓN: Miércoles 02 de Diciembre (T7-T12; P7-P14) SUSTITUTORIO: Miércoles 09 de Diciembre V. METODOLOGÍA El alumno deberá participar activamente en el desarrollo del curso. Las prácticas de laboratorio se desarrollarán de manera individualizada en la medida de lo posible a fin de cumplir con los objetivos del Curso. La evaluación es permanente. Cada sesión de Laboratorio es calificada, el promedio de las notas obtenidas equivale a la nota de Laboratorio por cada capítulo. El promedio de notas por Capítulo comprende los siguientes aspectos: Promedio de Teoría 50% Promedio de Laboratorio 50% (considera resultados obtenidos en cada sesión, intervenciones orales, exposición de temas asignados, evaluación de destreza en el manejo de las técnicas inmunoserológicas). Para el promedio final se suman los promedios de cada Capítulo y se divide entre 2. La asistencia a las clases teóricas y prácticas de laboratorio es obligatoria. El alumno será automáticamente excluido si su inasistencia es superior al 30%. Cualquier inasistencia debe justificarse de manera oficial. La nota del sustitutorio se publicará al final del curso, una vez inscritos invalidarán la nota obtenida en el capítulo que deseen sustituir, de manera que si no asisten a dicho examen tendrán la nota de CERO. Se sugiere una inscripción RESPONSABLE Y MEDITADA. Está terminantemente prohibido salir del laboratorio de prácticas sin la autorización del profesor de su grupo. El ingreso a las teorías y a laboratorio es hasta 13:10 hrs. y 9:10 respectivamente, pasada esta hora deberán esperar el intermedio para ingresar, teniendo falta en la primera hora de teoría o práctica respectiva. Se ruega no insistir. VI. PROGRAMACIÓN CALENDARIZADA DEL CURSO FECHA TEMA PROF. RESPONSABLE M 19-Agos T-1 Presentación del curso (Syllabus). Organización de actividades lectivas L. Alzamora M.26-Agos T-2 P-1 Métodos de obtención de antígenos Preparación de material para IEF, CIEF E. Colona L. Alzamora M.02-Set P-2 T-3 Métodos de obtención de antígenos Elaboración de patrones de hemólisis Métodos de obtención de antígenos de Secreción - excreción E. Chauca E. Colona M.09-Set P-3 Liberación de Ags. de membrana por citolisis Pruebas de verificación de los métodos empleados Antígeno: Componentes de un antígeno complejo E. Chauca E. Chauca T-5 Liberación de Antígenos por shock Térmico Categorías de las técnicas inmunoserológicas M.23-Set P-5 T-6 Liberación de Antígenos por sonicación Métodos Inmunoserológicos I E. Colona L. Alzamora M.30-Set P-6 Obtención de antígeno secretor-excretor de Fasciola hepática Obtención de antígenos recombinantes E. Colona T-4 M.16-Set P-4 S-1 M.07-Oct L. Alzamora L. Alzamora L. Alzamora EXAMEN DEL CAPÍTULO I (T1-T6; P1-P6) M.14-Oct P-7 T-7 Pruebas de unión primaria Inmunoensayo ligado a enzima (ELISA) Métodos Inmunoserológicos II E. Colona W. Medina M.21-Oct P-8 T-8 Citometría de flujo (Práctica en FARVET) Exposición de temas asignados W. Medina L. Alzamora M.28-Oct P-9 M.04-Nov P-10 T-9 Pruebas de Unión Secundaria Aglutinación en látex: Determinación de Factor Reumatoideo Inmunocromatografía Métodos Inmunoserológicos III P-11 Inmunoelectroforesis L. Alzamora L. Alzamora L. Alzamora E. Colona T-10 Métodos Inmunoserológicos IV E. Colona M.11-Nov P-12 T-11 Contrainmunoelectroforesis Inmunoserología Forense E. Colona E. Castillo M.18-Nov P-13 Aplicación médico legal de las reacciones serológicas Inmunoserología aplicada a control de calidad de alimentos L. Alzamora T-12 M.25-Nov P-14 S-2 Inmunoserología aplicada a control de calidad de D. Gómez-J. Alba Alimentos Técnicas inmunoserológicas en fitopatología L. Alzamora M.02-Dic EXAMEN DEL CAPÍTULO II (T7-T12; P7-P14) M 09-Dic SUSTITUTORIO VII. J. Alba BIBLIOGRAFÍA Abbas, A. Lichtman,A. y Pillai, S. Inmunología Celular y Molecular 7ª Ed. Elsevier. 2012. Burmester Gerd-Rüdiger y Antonio Pezzuto. Color Atlas of Immunology. Edit. Grammlich, Pliezhausen. 2003. Burrell, R. and Mascole. Experimental Immunology. 1987. Janeway, Ch.; Travers, P.; Walport, M. and Capra, D. Inmunobiología. Edit. Masson S.A. 4ª Edic. 2000. Peakman, M y Vergani, D. Inmunología Básica y Clínica. Edit. Elsevier. 2011. Regueiro, J. y López Larrea, C. Inmunología. Biología y Patología del sistema inmune. Edit. Médica Panamericana S.A. 4ª Edic. 2010. Roitt, I.; Brostoff, J. and Male, D. Inmunología. Edit. Harcourt Brace de España. 5ª Edic. 2002. Tizard, I. Inmunología Veterinaria. Edit. McGraw-Hill Interamericana. 8ª Edic. 2009. Weir, Donald. Handbook of experimental Immunology in four volumes. 5ª Edic. 1997. Enlaces importantes Peter Delves / Seamus Martin / Dennis Burton / Ivan Roitt- Inmunología. 2008 Immunology Methods for Medical Students. Second edition. Department of ImmunologyChina Medical University. September,2007. http://www.cmu.edu.cn/jc_sys1/upl_files/200858184159474.pdf