de toxinas en mariscos de la XI Región Cienc. Tecnol. Mar, 27 (2): 33-42, Detección 2004 33 DETECCIÓN DE TOXINAS PARALIZANTE, DIARREICA Y AMNÉSICA EN MARISCOS DE LA XI REGIÓN POR CROMATOGRAFÍA LÍQUIDA DE ALTA RESOLUCIÓN (HPLC) Y BIOENSAYO EN RATONES DETECTION OF PSP, DSP AND ASP IN SHELLFISH COLLECTED ON XI REGION OF CHILE BY HPLCFLUOROMETRY AND MOUSE BIOASSAY ORIALIS VILLARROEL G. Subdepartamento Laboratorios del Ambiente Instituto de Salud Pública de Chile Casilla 48, Santiago, Chile. e-mail:ovillarr@ispch.cl Recepción: 20 de noviembre de 1999 – Versión corregida aceptada: 23 de diciembre de 2003. RESUMEN El objetivo de este trabajo fue determinar el nivel tóxico presente en los mariscos de la Región de Aysén, tanto para la toxina paralizante (VPM) como para la toxina diarreica (VDM), mediante el bioensayo de ratón. Además, investigar la presencia de toxina amnésica (VAM) por cromatografía líquida de alta resolución (HPLC). También se identificó la presencia de saxitoxina (STX), neosaxitoxina (neoSTX), gonyautoxinas (GTX1-4), ácido okadaico (OA) y dinophysis toxina-1 (DTX-1) por HPLC en los mariscos recolectados. Se detectó toxina paralizante en todas las estaciones del área geográfica estudiada por HPLC. Además, se detectó en niveles bajos la toxina diarreica por HPLC solamente en la estación Nº 5 (Melinka). No se encontró toxina amnésica en ninguna de las muestras estudiadas. El per fil tóxico de la toxina paralizante muestra la presencia de STX, neoSTX y GTX1-4. Palabras claves: Marea roja, toxinas marinas, cromatografía líquida de alta resolución, bioensayo. ABSTRACT The objective of the present work was to determine the toxicological status of the amnesic, diarrheic and paralytic shellfish poisons in the XI Region of Chile. This was achieved with the mouse bioassay, the only international method accepted to certify shellfish wholeness for human consumption. Furthermore, the presence and quantities of saxitoxin (STX), gonyautoxins (GTX1-4), okadaic acid (OA) and dinophysistoxin1 (DTX-1) was determined by high performance liquid chromatographic (HPLC) method in different shellfish species from the Aysén Region. Our HPLC results show that paralytic toxin was found in shellfish from all stations studied. Diarrheic toxin was found only in station No 5 (Melinka) but in low quantities, and amnesic toxin was not detected at all. Paralytic toxin profile shows presence of STX, neoSTX and GTX1-4. Key words: Red tide, marine toxins, high performance liquid chromatography, bioassay. 34 Revista Ciencia y Tecnología del Mar, Vol. 27 (2) - 2004 INTRODUCCIÓN Marea roja o floraciones algales nocivas se refiere al fenómeno de proliferación de microalgas nocivas en el fitoplancton. Conocer los perfiles de los venenos presentes en las áreas afectadas es de vital importancia epidemiológica, dado que las toxinas paralizantes y diarreicas se han presentado en la X, XI y XII Regiones del país ocasionando numerosas intoxicaciones masivas por el consumo de mariscos contaminados. Toxina paralizante: se presentó por primera vez en el país en 1972, en la Región de Magallanes y desde 1993 en la Región de Aysén. Es producido por Alexandrium catenella aunque últimamente también se ha citado en el país a Alexandrium ostenfeldi (Lembeye, G; Uribe, J. C.). El mecanismo de acción de las toxinas paralizantes consiste en el bloqueo selectivo de los canales de sodio, lo que impide el flujo necesario de iones sodio para transmitir el potencial de acción de la membrana. La intoxicación por PSP en el ser humano, produce desde un ligero adormecimiento u hormigueo en la región peribucal hasta una parálisis total y muerte por insuficiencia respiratoria, siendo lo más frecuente la sensación de picazón alrededor de los labios, de las encías y de la lengua al cabo de los primeros 5 minutos. En los casos moderados o graves, esta sensación en un período de 4 a 6 horas se extiende a los brazos, piernas y cuello de manera que es necesario un gran esfuerzo para realizar movimientos. En los casos mortales el paciente suele fallecer debido a parálisis respiratoria al cabo de 2 a 12 horas después de haber ingerido el alimento contaminado. El tratamiento consiste en la administración de suero glucosado al 10%. Adicionalmente, se aconseja la administración de diuréticos con excepción de aquellos pacientes en que su uso está contraindicado. En los casos de mayor gravedad se requiere de ventilación mecánica permanente. Toxina diarreica de los moluscos se presentó por primera vez en la X Región durante 1979 y, posteriormente, en la XI Región en febrero de 1984 causando numerosos casos de diarrea en la población siendo el agente causal Dinophysis acuta, posteriormente reapareció en 1991 provocando la intoxicación de aproximadamente 150 personas por consumo de choritos, permaneciendo en forma endémica hasta la fecha en la Región de Aysén. En Chile se pueden citar además de D. acuta, a D. acuminata y D. rotundata en la bahía de Concepción; D. argus, D. caudata y D. operculata en el archipiélago de Juan Fernández. Últimamente también se ha detectado D. acuminata en la XI Región. D. acuta es el organismo más frecuente en nuestro país. El mecanismo de acción del ácido okadaico y sus derivados no ha sido completamente dilucidado hasta ahora, pero se sabe que son potentes inhibidores de las proteínas fosfatasas, enzimas que revier ten los efectos de las proteínas quinasas, removiendo grupos fosfatos. Luego de la ingestión de mariscos contaminados con toxina diarreica, los síntomas en humanos comienzan entre los 30 minutos y las 12 horas, con un promedio de 4 horas. Una vez que se presentan éstos, el estado puede durar por 3 días. Los síntomas más frecuentes son: escalofríos, dolor abdominal difuso, náuseas, vómitos, diarrea abundante y deshidratación. El tratamiento es sintomático, se deben tomar las siguientes medidas: Si no se presenta vómito, evacuar el veneno del estómago induciendo el vómito o efectuar un lavado gástrico con suero fisiológico. En caso de dolor, administrar antiespasmódicos inyectables. Aparte de las consecuencias inmediatas de la intoxicación por toxina diarreica, se ha reportado que el ácido okadaico y DTX-1 son potentes promotores de tumores. La yessotoxina (YTX) producida por Protoceratium reticulatum es una sustancia polietérea disulfatada, está clasificada en el grupo de las diarreicas a pesar que no tiene efectos diarreicos ya que no inhibe la proteína fosfatasa, (en la actualidad se está reevaluando esta clasificación). Aunque el mecanismo de acción no está totalmente dilucidado, estudios con linfocitos humanos sugiere que actúa sobre los canales de calcio celulares, aumentando los niveles de estos iones. Las dosis letales en ratón oscilan entre 100 y 400 µg/kg siendo el corazón el órgano diana. Las YTXs presentan menor toxicidad por vía oral por lo que la legislación europea (Decisión 2002/225/CEE) permite un nivel de tolerancia superior al establecido para el resto de las toxinas liposolubles, quedando el nivel máximo aceptado en 1 mg/kg de cuerpo entero o cualquier parte comestible por separado del marisco. Detección de toxinas en mariscos de la XI Región Toxina amnésica. El ácido domoico, también conocido como toxina amnésica es producido por las diatomeas del plancton marino Pseudonitzschia multiserie, Pseudonitzschia australis y Pseudonitzschia pseudodelicatissima. Cuando esta toxina, es consumida a través de los moluscos por el ser humano, produce un cuadro de intoxicación que puede causar problemas gastrointestinales y neurológicos como pérdida de memoria de corto tiempo, ya que daña las células del hipocampo y en aquellos casos de intoxicaciones más graves, ha ocasionado la muerte. Los objetivos de este trabajo son: * Determinar el nivel tóxico de los mariscos tanto para la toxina paralizante como diarreica, utilizando el bioensayo en ratón. * Investigar la presencia de toxina amnésica por HPLC. * Identificar y cuantificar la presencia de saxitoxina, neosaxitoxina y gonyautoxina 1, 2, 3 y 4 (VPM); ácido okadaico y dinofisistoxina1 (VDM) por HPLC en los mariscos recolectados en la Región de Aysén. MATERIAL Y MÉTODOS Las muestras se recolectaron durante el crucero oceanográfico Cimar 4 - Fiordos realizado en los fiordos y canales comprendidos entre la Boca del Guafo y el estero Elefantes (XI Región), a bordo del AGOR “Vidal Gormaz” embarcación de la Armada de Chile, entre el 25 de febrero y el 9 de marzo de 1999 (Fig. 1). 35 tón (UR) empleando la Tabla de Sommer y la concentración de toxina se calcula usando el Factor de Conversión, asumiendo que la toxina corresponde a saxitoxina. El análisis se considera positivo si 2 de los 3 ratones inyectados mueren en el lapso de 1 hora con los síntomas característicos de la intoxicación. El método es cuantitativo y el límite de detección en nuestro Laboratorio es de 32 µg STX eq/100 g de carne. El estándar de STX es suministrado por la FDA de EE.UU. Valores superiores a 80 µg/100 g se considera peligroso y no apto para el consumo. b) Cromatografía líquida de alta resolución (Oshima et al., 1995). Las toxinas son extraídas en medio ácido y a ebullición, centrifugadas y purificadas a través de cartridge Sep-pak C18. Posteriormente el extracto se analiza por HPLC provisto de un detector de fluorescencia mediante derivatización post columna. Las condiciones cromatográficas fueron: columna RP C-8 (250 mm-4), T° columna: 30 °C, T° de reactor: 78 °C, flujo fase móvil: 0,8 ml/min, flujo de oxidante y acidificante: 0,3 ml/min, λ de Ex: 330 nm y de Em: 390 nm. Fase móvil para STX y NeoSTX: 1-heptanosulfonato de sodio 2 mM en fosfato de amonio 30 mM, pH 7,1: acetonitrilo (100+3) y para GTX1-GTX4: 1-heptanosulfonato de sodio 2mM en fosfato de amonio 10 mM, pH 7,1. Como reactivo oxidante se usó ácido periódico 7 mM en buffer de fosfato de potasio 50 mM, pH 9 y como reactivo acidificante el ácido acético 0,5 M. Toxina diarreica: Se muestrearon 8 de las 11 estaciones programadas. Las muestras fueron recolectadas por buzos mariscadores (Tabla I). Los métodos utilizados fueron: Toxina paralizante: a) Bioensayo en ratón (A.O.A.C., 1984). Este método consiste en inyectar intraperitonealmente 1 ml del sobrenadante de un extracto ácido de moluscos bivalvos a cada uno de 3 ratones de la cepa CF-1 de 19 a 21 gramos de peso y la determinación del tiempo de muerte. La sensibilidad de la colonia de ratones usada en el ensayo debe determinarse calculando el Factor de Conversión (CF) después de la inyección intraperitoneal del estándar de saxitoxina (STX). El tiempo de muerte se convierte a unidad ra- a) Bioensayo en ratón, (Yasumoto, 1984 modificado). Este procedimiento es aplicable a los análisis de ácido okadaico (AO) y dinofisistoxinas (DTXs), pectenotoxinas (PTXs) y yesotoxinas (YTXs) en moluscos bivalvos. Consiste en homogeneizar el hepatopáncreas de mariscos y extraer con tres volúmenes de acetona, evaporar y luego eliminar la toxina paralizante por partición en diclorometano, evaporar este último solvente y resuspender en tween 60, luego inyectar 1 mL intraperitoneal a cada uno de los tres ratones de 18 a 20 gramos de peso. El bioensayo se considera positivo cuando se produce la muerte de al menos 2 de 3 ratones inyectados en un período menor o igual a 24 horas tras la inyección. El límite de detección es 0,8 µg de AO eq/g de hepatopáncreas. 36 Revista Ciencia y Tecnología del Mar, Vol. 27 (2) - 2004 74° W 73° Golfo Corcovado 3 2 B.Tic-toc 4 1 5 44° 6 Canal Jacaf P. Puyuguapi 7 8 P. Cisnes 9 10 Canal Puyuguapi 45° 11 I. Meninea Canal Darwin 15 35 14 36 32 33 24 21a 31 23 46° P. Chacabuco Seno Aysén 22 34 21 19 16 30 Estero Quitralco 80° W an lef oE ter 20° Isla San Ambrosio Isla Salas y Gómez 30° 30° o 105 20’ 109o 20’ Isla de Pascua Arch. Juan Fernández I. 60o 46’ o dr an ej lkirk Se Al o 33 37’ Es Estero Cupquelán 60° W o 80 05’ Isla San Félix o 26 27’ 26 29 o 26 27’ tes 20° S 25 53o 46’ 37 17 17a 18 12 13 I. Robins on Crusoe 78o 49’ 40° 40° 27 90°W 60° 53° W rio Chileno Antártico Territo 60° 50° 47° 47 S Fig. 1: Posición de las estaciones de muestreo oceanográfico en el área de estudio. Fig. 1: Locations of oceanographic sampling stations in the study area. 37 Detección de toxinas en mariscos de la XI Región Tabla I. Procedencia y recursos muestreados. Table I. Origin of shellfish samples collected. Nº Estación Fecha 5 27.02.99 Melinka Localidad 43° 54’ S-73° 48’ W 18 01.03.99 Punta Tortuga 45° 20’ S-73° 06’ W 27 03.03.99 Islotes Ruiz – Punta Leopardo 46° 30’ S-73° 51’ W 30 04.03.99 Estero Quitralco 45° 46’ S-73° 32’ W 33 37 04.03.99 04.03.99 Puerto Harchy Boca Estero Duble Norte 45° 43’ S-73° 53’ W 45° 29’ S-73° 18’ W 35 05.03.99 Punta San Emilio, Canal Darwin 45° 27’ S-73° 47’ W 11 05.03.99 Islote El Morro 45° 09’ S-73° 38’ W Los síntomas que presenta el ratón debido a las YTXs mediante inyección intraperitoneal son similares a VPM con un tiempo de supervivencia por encima de 20 minutos, preferentemente entre 40 min y 5 h. b) Cromatografía líquida de alta resolución para detectar AO y DTXs (Lee et al., 1989). El método consiste en una extracción metanólica de la toxina presente en el hepatopáncreas del molusco, derivatización con 9-7antr yldiazometano (ADAM) y posterior separación y cuantificación por cromatografía líquida de alta resolución (HPLC) utilizando detector de fluorescencia. Las condiciones cromatográficas fueron: columna RP C-18 (4 µm, 250 mm x 4 mm); λ excitación 365 y λ emisión 415 nm; fase móvil acetonitrilo-agua (75+25); flujo 1,1 mL/ min; temperatura 40 ºC. Coordenadas Recurso almejas locos cholgas picorocos cholgas choritos cholgas choritos cholgas choritos choros ostiones (músculo) ostiones (vísceras) locos (músculo) locos (vísceras) choritos choritos locos (músculo) locos (vísceras) choritos almejas locos (músculo) locos (vísceras) choritos locos (músculo) locos (vísceras) siste en extraer la YTX desde la glándula digestiva (1 g) con metanol/agua (8+2), limpieza por sep-pak y derivatización con DMEQ-TAD. El análisis se realiza mediante detector de fluorescencia, observándose en el cromatograma dos peaks debido a la formación de dos epímeros producidos por el reactivo de derivatización. El estándar de YTX y el reactivo DMEQ-TAD fueron proporcionados por Dr. T. Yasumoto. Toxina amnésica: Método HPLC: Consiste en extraer el ácido domoico de los mariscos con metanol (1+1), siguiendo el procedimiento descrito por Quilliam et al. (1995). Los estándares fueron adquiridos en Wako Chemicals USA y derivatizados de la misma forma que las muestras. El equipo utilizado fue un HPLC con detector de arreglo de diodos, λ 242. Las condiciones de trabajo fueron: columna RP C18 de 250 x 4,6 mm D. I., 40 ºC, fase móvil acetonitrilo: 0,1% ácido trifluoroacético (15+85) y volumen de inyección 20 µl. c) Cromatografía líquida de alta resolución para detectar YTXs (Yasumoto & Takizawa). Con- Se separó cromatográficamente el ácido domoico del triptofano (aminoácido presente 38 Revista Ciencia y Tecnología del Mar, Vol. 27 (2) - 2004 en los mariscos) ya que éste puede dar falsos positivos. Este método permite confirmar la toxina ya que el detector arreglo de diodos nos muestra el espectro de absorbancia del compuesto y además nos indica su pureza. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Como consecuencia del brote ocurrido en enero de 1991 el Ser vicio de Salud Aysén y el Instituto de Salud Pública de Chile iniciaron un programa de vigilancia de la toxina diarreica en moluscos bivalvos en todo el litoral de la región, principalmente de los recursos choritos, cholgas y almejas, detectándose en mayo de 1992 la presencia de la toxina paralizante, hecho no descrito hasta ese momento en Aysén. Los resultados obtenidos hasta esta fecha nos indicaban concentraciones globales de estas toxinas (método bioensayo en ratón), sin embargo ante la adquisición de un cromatógrafo líquido de alta resolución (HPLC) e implementación de nuevas técnicas analíticas, el laboratorio tiene la oportunidad de conocer tanto las concentraciones como los per files de las toxinas presentes en base a los estándares disponibles en el Instituto de Salud Pública de Chile. Considerando estos antecedentes se estimó conveniente efectuar este estudio para conocer la realidad de las toxinas durante el período en que se realizó este crucero. El crucero se realizó entre el 25 de febrero al 9 de marzo de 1999 en el área geográfica donde frecuentemente se detecta la presencia de las toxinas paralizantes y diarreicas y contempló 8 estaciones de muestreo entre la Boca del Guafo y el estero Elefantes de la XI Región (Fig. 1). Los resultados obtenidos para la cuantificación del VPM y VDM por bioensayo en ratones y VAM por HPLC, se muestran en la Tabla II. Veneno Paralizante de Moluscos (VPM) por bioensayo en ratón: En Chile como en la mayor Tabla II. Resultados Table II. Results. Nº Estación Localidad 5 Melinka 18 Punta Tortuga 27 Islotes Ruiz – Punta Leopardo 30 Estero Quitralco 33 37 Puerto Harchy Boca Estero Dublé Norte 35 Punta San Emilio, Canal Darwin 11 Islote El Morro Recurso almejas locos cholgas picorocos cholgas choritos cholgas choritos cholgas choritos choros ostiones (músculo) ostiones (vísceras) locos (músculo) locos (vísceras) choritos choritos locos (músculo) locos (vísceras) choritos almejas locos (músculo) locos (vísceras) choritos locos (músculo) locos (vísceras) VPM VDM VAM bioensayo HPLC ND ND ND ND 36 ND ND ND 450 158 52 35 ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND - ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND 42 ND ND 41 55 129 165 42 35 142 54 35 ND 60 33 ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND ND (mg/100g) bioensayo Detección de toxinas en mariscos de la XI Región parte de los países que realizan control de toxinas VPM en los mariscos, se utiliza el bioensayo en ratón. Todas las estaciones desde el paralelo 45° 09’ S al sur, excepto la estación Nº 27 Islote Ruiz-Punta Leopardo (46° 30’ S - 73° 51’ W) ubicada en el extremo sur del estero Elefantes, presentaron toxina paralizante por bioensayo en ratón. La concentración más alta de VPM correspondió al estero Quitralco (45° 46’ S - 73° 32’ W) con 450 µg/100 g de mariscos en el recurso cholguas. Se obser vó que en la misma estación el recurso más contaminado fue cholga (Aulacomya ater) con 450 µg/100 g, seguida de chorito (Mytilus chilensis) con 158 µg/100 g, choros (Choromytilus chorus) con 52 µg/100 g, locos (Concholepas concholepas) con 41 µg/ 100 g de músculo) y ostiones (Argopecten purpuratus) con 35 µg/100 g de músculo. En las estaciones Nº 33, 35 y 37 solamente los choritos contenían concentraciones de toxina paralizante por sobre los 80 µg/100 g, límite máximo establecido en nuestra legislación. La estación Nº 5 correspondiente a la localidad de Melinka no presentó VPM ni VDM por bioensayo en ratón Si comparamos estos resultados con los obtenidos durante el año 1992 en que los niveles de VPM se encontraban entre 30 y 50 µg/100 gramos de carne y considerando que con el transcurso de los años estas concentraciones fueron aumentando, para alcanzar el año 1994 niveles de 550 µg/100 gramos y en 1998 niveles de 99.000 µg/100 gramos en choritos del estero Quitralco, podemos concluir que esta toxina se ha mantenido en forma endémica en la región aunque en niveles más bajos que los presentados en los últimos años. Veneno Paralizante de Moluscos (VPM) por HPLC: Se analizó por HPLC un recurso de cada estación muestreada para conocer el per fil de las toxinas paralizantes. Se obser va en todas las muestras, incluida la Est Nº 5 saxitoxina, neosaxitoxina, gonyautoxinas 1, 2, 3 y 4 (Figs. 2, 3). En todos los casos las concentraciones encontradas de GTX 2 y GTX 3 fueron más altas que GTX 1 y GTX 4. Estos resultados concuerdan con los encontrados por Lagos en choritos recolectados en canal Errázuriz, XI Región, en 1994. 39 Veneno Diarreico de Moluscos (VDM) por bioensayo en raton: Para analizar el veneno diarreico de los moluscos se usó el método Yasumoto 1984 modificado ya que en el área estudiada estaba presente la toxina paralizante, por lo que se tuvo que eliminar esta toxina previo a la inyección intraperitoneal a los ratones. No se detectó veneno diarreico en ninguna de las muestras analizadas. Veneno Diarreico de Moluscos (VDM) por HPLC: En cuanto al análisis de ácido okadaico (OA) y dinofisistoxina-1 (DTX-1) por HPLC, se detectó la toxina solamente en la muestra procedente de la Estación Nº 5 (Melinka) y en niveles trazas. Yesotoxina (YTX): Posteriormente y aunque no estaba en los objetivos de este trabajo se analizaron tres recursos correspondientes a las estaciones 5, 27 y 35 para detectar esta toxina considerada componente del VDM, encontrándola solamente en la Estación Nº 5 (Fig. 4). Veneno Amnésico de Moluscos (VAM) por HPLC: No se detectó la toxina amnésica en ninguna de las muestras analizadas. Lamentablemente no se pudieron obtener las muestras correspondientes al canal Puyuhuapi y canal Yacaf localidades presumiblemente contaminadas con toxina diarreica y que se habían programado en este crucero. CONCLUSIONES Se encontró toxina paralizante en todas las estaciones del área geográfica estudiada por HPLC. Se detectó toxina diarreica (ácido okadaico y dinophysis toxina-1) solamente en la estación Nº 5 (Melinka) y en niveles trazas. No se detectó toxina amnésica en el período de muestreo realizado entre el 25 de febrero y el 09 de marzo en la región de Aysén. El per fil de las toxinas paralizantes evidenció la presencia de saxitoxina, neosaxitoxina y gonyautoxinas 1, 2, 3 y 4. Los niveles de toxina paralizante fueron inferiores a los reportados con anterioridad por el Servicio de Salud Aysén. Se detectó yesotoxina en la estación Nº 5. 40 15,80, SAXITOXINA 5,42 6,05 2,25 40 2,98 3,38 3,87 Revista Ciencia y Tecnología del Mar, Vol. 27 (2) - 2004 35 30 25 20 13,50, NEOSAXITOXINA 15 8,26 5 12,17 10 0 0 4 2 8 6 10 Retention Time (min) 12 14 16 18 20 Fig. 2: Cromatograma por HPLC de STX y neoSTX en una muestra de Aulacomya ater. Fig. 2: HPLC chromatogram of STX and neoSTX in a sample of Aulacomya ater. 3,31 150 140 130 12,97, GTX 3 120 110 100 17,00, GTX 2 90 80 70 60 11,81 10 10,47 5,32 5,97 20 9,07, GTX 1 4,61 4,81 30 7,64, GTX 4 2,73 50 40 0 0 2 4 6 8 10 12 14 Retention Time (min) 16 Fig. 3: Cromatograma por HPLC de GTXs en una muestra de Aulacomya ater. Fig. 3: HPLC chromatogram of GTXs in a sample of Aulacomya ater. 18 20 22 24 41 Detección de toxinas en mariscos de la XI Región CH. I C. S 2.50 A - 21 ATT 3 OFFS 10 08/09/00 STANDARD YESSOTOXINA 5 9.07 10 1.04 3.52 3.44 7.91 YTX 14.96 15 01:38 20 23.94 25 30 ESCAPE CH. I C. S NOISE CH. 20.00 ATT 3 33 I C. S 2 .50 A - 21 ATT 3 OFFS 10 08/09/00 05:57 ESTACIONES ESTACIÓN MELINKA CHOLGAS 1.94 5 4.93 4.59 7.42 10 S .P A00 11.00 8.99 10.07 17.23 20 25 30 S .P 1600 Fig. 4: Cromatograma por HPLC de YTX en una muestra de Aulacomya ater. Fig. 4: HPLC chromatogram of YTX in a sample of Aulacomya ater. YTX 14.16 15 9.63 42 Revista Ciencia y Tecnología del Mar, Vol. 27 (2) - 2004 AGRADECIMIENTOS Se agradece al Comité Oceanográfico Nacional, al personal del AGOR “Vidal Gormaz”. Se agradece también la colaboración de la Srta. Valeria Fuentealba y Sr. Luis Molina en los análisis de laboratorio y la cooperación de la Unidad de Mantención de Animales del ISP, en especial al Dr. Julio Maldonado y Sr. Humberto Domenech. (Proyecto Cona-C4F 98-14). REFERENCIAS AOAC. 1990. Paralytic shellfish poison. Biological method. Sec. 959.08. pp. 881-882 En: Official Methods of Analysis. 15th Edition. Association of Official Analytical Chemists, Arlington, Virginia, USA. MANUAL DE MÉTODOS DE ANÁLISIS FISICOQUIMICOS DE ALIMENTOS, AGUAS Y SUELOS. 1998. Instituto de Salud Pública de Chile. OSHIMA, Y. 1995. Post-column derivatization HPLC methods for paralytic shellfish poisons. Pp. 81-94 En: Hallegraeff, G. M., D. M. Anderson and A. D. Cembella (eds.) Manual on Harmful Marine Microalgae, IOC Manuals and Guides Nº 33, UNESCO. QUILLIAM, M. A. 1995. Analysis of diarrhetic shellfish poisoning toxins in shellfish tissue by liquid chromatography with fluorometric and mass spectrometric detection. J. 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