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FACULTAD DE CIENCIAS
·Universidad de Córdoba·
Edificio de Gobierno (Campus de Rabanales) 14071-Córdoba
Curso académico: 2014 - 2015
DATOS BÁSICOS DE LA ASIGNATURA
Titulación:
Asignatura:
Curso en el que se
imparte:
Créditos:
Bioquímica
Código:
Biosíntesis de Macromoléculas y Regulación del Metabolismo
Carácter:
2
(Anual, 1er ó 2º
cuatrimestre)
Tipo:
Anual
Teóricos
Prácticos
LRU
10
7
3
ECTS
8,9
Inglés o
español (a
elegir por
los
alumnos)
Dirección Web
asignatura:
Troncal
(Troncal, Obligatoria, Optativa, Libre elección)
Totales
Idioma en el que se
imparte:
8988
http://www.uco.es/organiza/centros/ciencias/grados/bioquimica/index.html
DATOS BÁSICOS DE LOS PROFESORES
Nombre y apellidos
Departamento
Ubicación
Área de
conocimiento
Responsable o
coordinador:
Gabriel Dorado Pérez
(segunda parte de teoría de la asignatura)
<bb1dopeg@uco.es>
Bioquímica y
Biología Molecular
Campus Rabanales,
C6-1-E17
Bioquímica y
Biología Molecular
Otros:
Carmen Alicia Padilla Peña
(primera parte de teoría de la asignatura)
<bb1papec@uco.es>
Bioquímica y
Biología Molecular
Campus Rabanales,
C6-1-E16
Bioquímica y
Biología Molecular
Enriqueta Moyano Cañete
(prácticas de laboratorio de la asignatura)
<bb2mocae@uco.es>
Bioquímica y
Biología Molecular
Campus Rabanales,
C6-0-S03
Bioquímica y
Biología Molecular
DATOS ESPECÍFICOS DE LA ASIGNATURA
Descriptores
BOE
Situación
Mecanismos de síntesis de ácidos nucleicos y de proteínas y su regulación. Descripción de las vías metabólicas, integración y
regulación. Metabolismo intermediario de carbohidratos, lípidos, aminoácidos y nucleótidos.
Prerrequisitos: ninguno (según indica el BOE).
Contexto dentro de la Titulación: importante para la licenciatura en Bioquímica, ya que se estudian aspectos fundamentales de la
misma, que son de especial relevancia en la investigación y empresa.
Recomendaciones: Asistencia a clase, participación en clase y uso de la tutoría virtual.
Competencia
s
Transversales/genéricas: interpretar resultados experimentales e identificar elementos consistentes e inconsistentes.
Específicas: tener una visión integrada del funcionamiento celular tanto del metabolismo como de la expresión génica.
Cognitivas (saber): metabolismo bioquímico; regulación metabólica; biología molecular.
Procedimentales/instrumentales (saber hacer): interpretar resultados experimentales e identificar elementos consistentes e
Inconsistentes; gestionar la información; resolver problemas.
Actitudinales (ser): interés; comportamiento; puntualidad.
Objetivos
Metodología
Nº de horas de
Familiarizar al alumno con los aspectos más significativos del metabolismo intermediario y su regulación, así como de la expresión
génica y su regulación, y el análisis experimental de la regulación metabólica. Potenciar su capacidad de análisis y síntesis,
comunicación oral y escrita, capacidad de gestión de la información y resolución de problemas.
Primer cuatrimestre (nº de horas): 129
 Clases teóricas: 24
1
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trabajo
del alumno
 Clases prácticas: 21
 Exposiciones y seminarios: 0
 Tutorías especializadas (presenciales o virtuales): 1 virtual y 2 presenciales
A) Colectivas: 1
B) Individuales: 2
 Realización de actividades académicas dirigidas: 13
A) Con presencia del profesor:
B) Sin presencia del profesor: 13
 Otro trabajo personal autónomo: 65
A) Horas de estudio: 32 hora para teoría y 16 horas para prácticas
B) Preparación de trabajo personal: 17
 Realización de exámenes: 2
A) Examen escrito: 2
B) Exámenes orales (control del trabajo personal):
C) Examen práctico:
Segundo cuatrimestre (nº de horas): 109
 Clases teóricas: 28
 Clases prácticas:
 Exposiciones y seminarios:
Tutorías especializadas (presenciales o virtuales): 4
A) Colectivas: 4
B) Individuales:
 Realización de actividades académicas dirigidas: 10
A) Con presencia del profesor:
B) Sin presencia del profesor: 10
 Otro trabajo personal autónomo: 63
A) Horas de estudio: 42
B) Preparación de trabajo personal: 21
 Realización de exámenes: 4
A) Examen escrito:
B) Exámenes orales (control del trabajo personal): 4
C) Examen práctico:
Técnicas
Docentes
Señalar con una X
las técnicas que va a
utilizar en el
desarrollo de la
asignatura
Bloques
temáticos
Dividir el temario en
bloques
(sin nº máximo ni
mínimo)
Bibliografía
Sesiones académicas teóricas
Sesiones académicas prácticas
Exposición y debate
Visitas y excursiones
Tutorías especializadas
Otras (indicar) Búsqueda de información, análisis crítico de la misma, elaboración de informes y resolución de problemas.
Desarrollo y justificación: se llevará a cabo según la normativa del Sistema Europeo de Transferencia y Acumulación de Créditos
(ECTS) del Espacio Europeo de Educación Superior (EEES).
BLOQUE 1. REGULACIÓN DEL METABOLISMO. Prof. Carmen Alicia Padilla Peña.
BLOQUE 2. BIOSÍNTESIS DE MACROMOLÉCULAS Y REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GÉNICA. Prof. Gabriel Dorado Pérez.
BLOQUE 3. PRÁCTICAS DE LABORATORIO. Prof. Enriqueta Moyano Cañete
General:
Libros (marcados con asterisco en el primer autor los libros recomendados para el primer bloque)
Alberts* B, Johnson A, Lewis J, Raff M, Roberts K, Walter P (2007): “Molecular Biology of the Cell”, 5ª ed. Garland Science (Abingdon).
Baumberg S (1999): “Prokaryotic Gene Expression”. Oxford University Press (Oxford).
Berg JM, Tymoczko JL, Stryer L (2011): “Biochemistry”, 7th ed. Freeman (New York).
Devlin* TM (2006): “Bioquímica. Libro de Texto con Aplicaciones Clínicas”, 4ª ed. (Reverté, Barcelona).
Devlin TM (2010): “Textbook of Biochemistry with Clinical Correlations”, 7th ed. Wiley (Hoboken).
Eisenthal R, Danson MJ (2002) : “Enzyme Assays. A Practical Approach”, 2nd ed. IRL Press (Oxford).
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Fell* DM (1997): “Understanding the Control of Metabolism”. Portland Press (Colchester).
Garret RH, Grisham CM (2012): “Biochemistry”, 5th ed. Brooks/Cole (Belmont).
Heath JK (2001): “Principles of Cell Proliferation”. Blackwell (Oxford).
Keith* NF (1998): “Regulación del Metabolismo. Una Perspectiva Humana”, 1ª ed. Omega (Barcelona).
Kim CH, Ozawa, T (1991): “Bioenergetics: Molecular Biology, Biochemistry and Pathology”. Springer (New York).
Klug WS, Cummings MR, Spencer C, Palladino MA (2011): “Concepts of Genetics”, 10th ed. Cummings (London).
Krebs JE, Goldstein ES, Kilpatrick ST (2012): "Lewin's Genes XI", 11th ed. Jones & Bartlett (Sudbury).
Latchman DS (2008): “Gene Regulation: A Eukaryotic Perspective”, 2nd ed. Springer (New York).
Lawrence PA (1995): “The Making of a Fly”. Blackwell (Oxford).
Lodish H, Berk A, Kaiser CA, Krieger M, Bretscher A, Ploegh H, Amon A, Scott MP (2012): “Molecular Cell Biology”, 7th ed. Freeman
(New York).
Lodish H, Berk A, Matsudaira P, Kaiser CA, Krieger M (2008): “Biología Celular y Molecular”, 5ª ed. Editorial Médica Panamericana
(Buenos Aires).
Lozano JA, Galindo JD, García-Borrón JC, Martínez-Liarte JH, Peñafiel R, Solano F (2005): “Bioquímica y Biología Molecular para
Ciencias de la Salud”, 3ª ed. McGraw-Hill-Interamericana (Madrid).
Mathews* CK, VanHolde KE, Appling DR, Anthony-Cahill SJ (2012): "Biochemistry", 4th ed. Prentice-Hall (Nueva Jersey).
Murray RK, Bender DA, Botham KM, Kennelly PJ, Rodwell VW, Weil PA, (2012): "Harper’s Illustrated Biochemistry", 29th ed.
McGraw-Hill (Columbus).
Nelson* DL, Cox MM (2009): “Lehninger. Principios de Bioquímica”, 5ª ed. Omega (Barcelona).
Nelson DL, Cox MM (2012): "Lehninger Principles of Biochemistry", 6th ed. Freeman (New York).
Newsholme E, Leech A (2012): "Functional Biochemistry in Health and Disease", 2nd ed. Wiley (Hoboken).
Ptashne MA (2004): “Genetic Switch: Phage Lambda Revisited”, 3rd ed. Cold Spring Harbor Laboratory Press (Woodbury).
Snyder L, Peters JE, Henkin TM, Champness W (2012): “Molecular Genetics of Bacteria”, 4th ed. ASM Press (Washington).
Stryer* L, Berg JM, Tymoczko JL (2008): “Bioquímica”, 6ª ed. Reverté (Barcelona).
Voet D, Voet JG (2010): "Biochemistry", 4th ed. Wiley (Hoboken).
Voet* D, Voet JG, Pratt CW (2007): “Fundamentos de Bioquímica. La Vida a Nivel Molecular”, 2ª ed. Médica Panamericana (Madrid).
Voet D, Voet JG, Pratt CW (2012): “Fundamentals of Biochemistry: Life at the Molecular Level”, 4th ed. Wiley (Hoboken).
Watson JD, Baker TA, Bell SP, Gann A, Levine M, Losick R (2007): “Biología Molecular del Gen”, 5ª ed. Editorial Médica Panamericana
(Buenos Aires).
Watson JD, Witkowski JA, Myers RM, Caudy AA (2007): “Recombinant DNA: Genes and Genomics: A Short Course”, 3rd ed. Freeman
(New York).
White RJ (2001): “Gene Transcription. Mechanisms and Control”. Blackwell (Oxford).
Específica:
Publicaciones periódicas
Investigación y Ciencia, Mundo Científico, Science, Nature, etc.
Trends in Biochemical Sciences, Trends in Genetics, Annual Review Biochemistry, etc.
Técnicas de
evaluación
Enumerar, tomando
como referencia el
catálogo de la guía
común.
NINGUNA, YA QUE LA ASIGNATURA SE EXTINGUIÓ EL CURSO 2013/14 Y TODOS LOS ALUMNOS APROBARON EN JUNIO
DE 2014. ESTE PROGRAMA ES POR TANTO INNECESARIO, PERO SE HA GENERADO POR REQUERIMIENTO PURAMENTE
BUROCRÁTICO.
Incluir criterios de
evaluación y
calificación (referidos
a las competencias
trabajadas durante el
curso)
Organización Docente Semanal
Distribución del número de horas que se especifican en el apartado de Metodología en 18 semanas para una asignatura cuatrimestral y 36 para una anual (clases + periodo de exámenes).
Indicar el número de horas que, a cada tipo de sesión, va a dedicar el estudiante cada semana.
Semanas
Primer cuatrimestre
2ª semana
3ª semana
4ª semana
5ª semana
6ª semana
7ª semana
8ª semana
Nº de horas
sesiones
teóricas
Nº de horas
sesiones
prácticas
24
2
2
1
2
2
2
2
21
Nº de horas
exposiciones y
seminarios
Nº de horas
visita y
excursiones
Nº de horas
tutorías
especializadas
3
1
11
10
3
Nº de horas
control de
lecturas
obligatorias
Exámenes
(resolución de
preguntas)
Temas del
temario a tratar
2
Temas 1 y 2
Temas 3 y 4
Tema 5 y CL1
Temas 5 y 6
Tema 6
Tema 7
Tema 7
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9ª semana
10ª semana
11ª semana
12ª semana
13ª semana
14ª semana
17ª semana
18ª semana
20ª semana
Segundo cuatrimestre
1ª semana
2ª semana
3ª semana
4ª semana
5ª semana
6ª semana
12ª semana
13ª semana
14ª semana
15ª semana
1
2
2
0
2
1
1
2
0
28
3
3
3
3
3
3
3
3
3
1
1
Tema 8 y CL2
Tema 8
Temas 8 y 9
1
4
2
4
1
1
1
1
1
1
1
1
Tema 9
Tema 9
Tema 10/Probl.
Tema 11
Examen
Bloque 2
Introducción
1y2
3y4
5y6
7y8
9 y 10
Temas 1 a 10
Temas 1 a 10
Temas 1 a 10
Temas 1 a 10
BLOQUE 1. REGULACIÓN DEL METABOLISMO
Prof. Carmen Alicia Padilla Peña
Programa de
contenidos
Teóricos:
Con indicación de las
competencias que se van
a trabajar en cada lección
1. Introducción a la regulación metabólica. Visión global del metabolismo. Definición y funciones. Estrategias tróficas. Rutas
metabólicas y su regulación. Regulación y control. Aproximaciones experimentales al estudio de la regulación metabólica.
Mecanismos de regulación y control. Consideraciones termodinámicas en la regulación del metabolismo.
2. Regulación de las rutas metabólicas. Visión general de la regulación de las rutas metabólicas. Regulación de la concentración de
enzima (síntesis y degradación). Regulación de la actividad enzimática: inhibición, alosterismo, modificación covalente (irreversible
o proteolisis controlada y reversible o interconversión). Regulación hormonal. Disponibilidad de sustrato. Ciclos de sustrato.
3. Comunicación intercelular. Introducción a la comunicación celular. Tipos de receptores: intracelulares y de membrana plasmática.
Mecanismos de señalización intercelular: dependiente de contacto, paracrina, sináptica, endocrina y autocrina. Respuestas
celulares frente a distintas señales: diferenciación, división, supervivencia o muerte. Diferentes tipos celulares responden de forma
diferente frente a la misma señal. Señalización del óxido nítrico.
4. Comunicación intracelular. Vías de transducción de señales (I). La superfamilia de los receptores intracelulares. Mecanismos
moleculares de la interacción DNA-proteína. Bases moleculares de la acción de los receptores intracelulares. Tipos de receptores
de membrana. Receptores unidos a canales iónicos. Receptores serpentina y proteínas G (Gs, Gi y Gq). Transducción de señales
mediante S/T-quinasas (S/T PK). La PK dependiente de AMPc. Las PK dependientes de Ca2+. La PK dependiente de DAG. La PK
dependiente de AMP. Otras S/T PK. Fosfatasas de proteínas.
5. Comunicación intracelular. Vías de transducción de señales (y II). Receptores ligados a enzima. Transducción de señales
mediante fosforilación de proteínas en residuos de tirosina (YPK). Receptores tirosina quinasa: activación de la proteína Ras y la
vía de las MAP quinasas. Fosforilación de factores de transcripción, proliferación celular y desarrollo embrionario. Receptores
asociados a tirosinas quinasas. “Receptores” tirosina fosfatasa. Receptores serina/treonina quinasa. Receptores guanilato ciclasa:
la PK dependiente de GMPc. Receptores asociados a histidina quinasa.
6. Regulación del ciclo de Krebs, cadena respiratoria y fosforilación oxidativa. Funciones del ciclo de Krebs. Formación de citrato e
isomerización. Descarboxilaciones oxidativas. Fosforilación a nivel de sustrato. Regeneración de oxalacetato. Balance energético y
regulación del ciclo de Krebs. Carácter anfibólico y reacciones anapleróticas. Cadena de transporte de electrones: complejos y
proteínas transportadoras. Estructura y mecanismo de la ATP sintasa. Fosforilación oxidativa y control respiratorio. Desacoplantes.
Mecanismo quimiosmótico.
7. Metabolismo glucídico y su regulación. Visión global de metabolismo glucídico. La glucolisis y su regulación. Entrada de otros
azúcares y del glicerol a la glucolisis. El piruvato como encrucijada metabólica. Fermentación láctica y alcohólica. Descarboxilación
oxidativa del piruvato: complejo de la piruvato deshidrogenasa y su regulación. La gluconeogénesis a partir de piruvato. La
gluconeogénesis a partir de lactato, alanina, glicerol y propionato. Regulación de glucolisis y gluconeogénesis. Ruta de las pentosas
fosfato: interrelación con la glucolisis y gluconeogénesis. Multivalencia de la vía de las pentosas fosfato. Metabolismo del
glucógeno: síntesis y degradación. Glucógeno fosforilasa y glucógeno sintasa: regulación a varios niveles.
8. Metabolismo lipídico y su regulación. Visión global de metabolismo lipídico. Catabolismo de los triacilgliceroles: reservas grasas,
lipolisis y su regulación. Activación, entrada en la mitocondria y β-oxidación de los ácidos grasos. Balance energético. Metabolismo
de los cuerpos cetónicos. Biosíntesis de ácidos grasos y triacilgliceroles. Regulación de la síntesis de ácidos grasos. Metabolismo
de esteroides y lipoproteínas. Clasificación y funciones de las lipoproteínas. Entrada del colesterol en las células. Biosíntesis del
colesterol y su regulación. Biosíntesis de ácidos biliares y hormonas esteroideas y su regulación.
9. Metabolismo de biomoléculas nitrogenadas y su regulación. Visión global de metabolismo de biomoléculas nitrogenadas.
Catabolismo de aminoácidos: destino del nitrógeno y destino del esqueleto carbonado. Biosíntesis de aminoácidos: incorporación
del nitrógeno a esqueletos carbonados. Regulación de la glutamina sintetasa. Aminoácidos esenciales. Metabolismo de los
nucleótidos. Biosíntesis de nucleótidos de purina y su regulación. Biosíntesis de nucleótidos de pirimidina y su regulación.
Biosíntesis de desoxirribonucleótidos y su regulación. Ruta de rescate de bases púricas. Degradación de nucleótidos y bases
nitrogenadas. Excreción del nitrógeno. Ciclo de la urea: descripción, regulación y relación con el ciclo de Krebs.
10. Integración del metabolismo de glúcidos, lípidos y compuestos nitrogenados en el organismo completo. Principales puntos de
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conexión entre el metabolismo de glúcidos, lípidos y proteínas. Características metabólicas de los órganos y tejidos (hígado,
cerebro, músculo esquelético, corazón, tejido adiposo, riñón). Regulación hormonal del metabolismo energético. Visión integrada
del metabolismo.
11. Respuesta y regulación metabólica en situaciones extremas. Respuesta y regulación metabólica frente al ayuno. Respuesta y
regulación metabólica frente al ejercicio. Alteraciones del metabolismo de las lipoproteínas. Alteraciones metabólica en la diabetes
mellitus. Balance energético y regulación del peso corporal.
Competencias que se trabajan en cada tema:
Específicas: tener una visión integrada del funcionamiento celular (metabolismo).
Cognitivas (saber): metabolismo bioquímico; regulación metabólica.
Procedimentales/instrumentales (saber hacer): gestionar la información; resolver problemas.
Actitudinales (ser): interés; comportamiento; puntualidad.
BLOQUE 2. BIOSÍNTESIS DE MACROMOLÉCULAS Y REGULACIÓN DE LA EXPRESIÓN GÉNICA
Prof. Gabriel Dorado Pérez
1. Material genético. DNA y RNA. Número de tipos celulares vs tamaño de genomas. DNA repetitivo. Superenrollamiento. Histonas.
2. Replicación. Tipo de replicación. Inicio. Elongación. Terminación. Telómeros y telomerasa.
3. Regulación de la expresión génica. Dogma central. Procariotas vs eucariotas. Transcripción en procariotas. Transcripción en
eucariotas. Ayustamiento. Código genético. Traducción en procariotas. Traducción en eucariotas.
4. Expresión génica en procariotas (I). Introducción. Operón. Control positivo/negativo de inducción/represión. Operón lac, ara y gal.
Regulón SOS. Esporulación. Fagos: lisis/lisogenia.
5. Expresión génica en procariotas (y II). Atenuación. RNA antisentido. Zona codificante. Autorregulación. Respuesta severa.
Ayustamiento de proteínas.
6. Expresión génica en eucariotas (I). Amplificación génica. Reorganización génica. Regulación transcripcional y postranscripcional.
Factores de transcripción (TF). Fosforilación/desfosforilación de TF. Estructura de los TF.
7. Expresión génica en eucariotas (y II). Histonas. Metilación. Ayustamiento alternativo. Extremos 5’ y 3’ del mRNA. Transporte del
mRNA. Degradación del mRNA. Traducción.
8. Plegamiento y transporte de proteínas. Plegamiento. Chaperonas. Chaperoninas. Chaperonas intramoleculares. Enfermedades.
Transporte.
9. Ciclo celular. Procariotas: metilación. Eucariotas: factor promotor de la mitosis (MPF) (kinasas y ciclinas). P53 y apoptosis.
Transducción de señales: kinasas de MAP (MAPK). Control del ciclo celular en vertebrados: MAPK (kinasa); CDK (kinasa) y ciclinas
A, E y D; cdc2 (kinasa) y ciclinas B.
10. Desarrollo embrionario. Pérdida de núcleo y cromosomas. Totipotencia. Desarrollo embrionario: genes de efecto materno y
genes zigóticos (genes de segmentación y genes homeóticos). Comunicación celular. Apoptosis.
Competencias que se trabajan en cada tema:
Específicas: tener una visión integrada del funcionamiento celular (expresión génica).
Cognitivas (saber): biología molecular.
Procedimentales/instrumentales (saber hacer): gestionar la información; resolver problemas.
Actitudinales (ser): interés; comportamiento; puntualidad.
BLOQUE 3. PRÁCTICAS DE LABORATORIO
Prof. Enriqueta Moyano Cañete
Programa de
contenidos
Prácticos:
Con indicación de las
competencias que se van
a trabajar:
Mecanismo de
Control y
Seguimiento:
Sistema de un híbrido en levaduras para el estudio de la activación de factores de transcripción. Caracterización de interacciones
DNA-proteínas.
Competencias que se trabajan en la práctica:
Transversales/genéricas: interpretar resultados experimentales e identificar elementos consistentes e inconsistentes.
Procedimentales/instrumentales (saber hacer): interpretar resultados experimentales e identificar elementos consistentes e
inconsistentes.
Actitudinales (ser): interés; comportamiento; puntualidad.
Interacción diaria con los alumnos (retroalimentación) en clase, tutorías presenciales y virtuales. Evaluación del progreso semanal,
mensual y cuatrimestral. Encuestas a los alumnos.
Al margen de las
contempladas a nivel
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general para toda la
experiencia piloto, se
recogerán aquí los
mecanismos concretos
que los docentes
propongan para el
seguimiento de cada
asignatura
6
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Distribución ECTS
(a) 1 ECTS = 26,67 horas trabajo. (b) Estudio personal del alumno durante el curso 18 (cuatrimestral) o 36 (anual) semanas: 1,5 horas de estudio por cada hora de teoría y 0,75 horas de estudio por cada hora de prácticas.
(c)Las tutorías se encuentran incluidas en el total de Actividades Académicamente Dirigidas.
Actividad
Actividad Docente
Evaluación
Horas
presenciales
Horas no
presenciales
Horas ECTS a
24%
52 h
74 h b
126 h
Problemas numéricos. Se valorarán
razonamientos, unidades y convenios,
resultados, lenguaje, etc.
%
nº h
nhb
nh
Exposición del seminario en
el aula
Se valorará contenido, exposición,
presentación, etc.
%
nº h
nº h b
nº h
Presentación de
normas. Explicación
de las prácticas
Cuaderno de laboratorio,
anotaciones, experimentos,
ejercicios, informe, etc.
Evaluación continuada, cuaderno,
ejercicios, informes, actitud
10%
21 h
16 h b
37 h
Prácticas de campo
Explicación de las
prácticas
Cuaderno de campo,
anotaciones, ejercicios,
informe, etc.
Evaluación continuada, cuaderno,
ejercicios, informes, actitud
%
nº h
nº h b
nº h
Ejercicios y
problemas,
realización de
trabajos, informes,
seminarios, etc.
Preparar colección
base de cuestiones
teóricas y problemas
Resolver cuestiones y
problemas propuestos por
el profesor y por el alumno
Ejercicios, trabajos, informes, etc.
66%
4h
30 h
34 h
Preparación de examen
(nº horas)
Realización de examen
(nº horas)
6h
38 h
44h
Preparación de examen
(nº horas)
Realización de examen
(nº horas)
nº h
nº h
nº h
83 h
158 h
241h
Materia
Profesor
Alumno
Procedimiento
Peso en la nota
final
Teoría
Exposición de la
Teoría. Apoyo con
audiovisuales
Tomar apuntes, copiar el
material audiovisual
Tipo de preguntas. Se valorará
razonamiento y capacidad de síntesis
Ejercicios y
problemas
Respuestas y
soluciones
Apuntes. Formulación de
preguntas y dudas
Seminarios
Distribución de los
trabajos, recomendar
bibliografía, orientar
Clases en laboratorio
Prácticas de
laboratorio
Clases en campo
Actividades dirigidasc
Clases en aula
Teoría y/o problemas
Poner, vigilar y
corregir el examen.
Calificar globalmente
al alumno
Exámenes
Prácticas
TOTAL CARGA DOCENTE DEL ALUMNO
7
100 %