Evaluación de Trichoderma spp. contra Rhizoctonia solani in vitro e invernáculo Cúndom, María A. - Mazza, Silvia Gutiérrez, Susana A. - Mazzanti de Castañón, María A. Cátedra de Fitopatología - Facultad de Ciencias Agrarias - UNNE. Sargento Cabral 2131 - (3400) Corrientes - Argentina. E:mail: macundom@agr.unne.edu.ar ANTECEDENTES Rhizoctonia solani Kühn, es un patógeno de suelo, que causa enfermedades en un amplio rango de hospedantes de cultivos agrícolas, hortícolas y florícolas (11). En el nordeste de Argentina, ocasiona severos daños en cultivos hortícolas, que comúnmente ocurren en las fases de pre-emergencia y post-emergencia de plántulas, con pudrición de cuellos y raíces, marchitamiento y muerte, pudiendo ser un factor limitante en la producción de plantines (8, 9). Actualmente las medidas utilizadas para el control de las enfermedades causadas por R. solani, son el uso de productos químicos y prácticas culturales (11). Sin embargo, el control por medio de estas prácticas se ve restringida por razones económicas y ecológicas. Las posibilidades de sustituir o disminuir el uso de productos químicos en el control de enfermedades producidas por hongos de suelo, por técnicas alternativas, como el control biológico, está siendo investigado desde las últimas décadas por varios investigadores. Se han realizado numerosos estudios de laboratorio e invernáculo, que prueban la influencia de antagonistas de diversas especies de hongos saprófitos, entre ellos, Trichoderma spp. sobre R. solani (1, 2, 3, 4, 5, 6, 7, 9, 10). Las pruebas in vitro reflejan la capacidad y variabilidad genética del antagonista, y la del fitopatógeno para resistir el antagonismo permitiendo la selección preliminar para ser evaluados en condiciones de invernáculo, determinando de esta forma su capacidad antagónica (1). El objetivo de este trabajo, es evaluar el potencial antagónico de Trichoderma spp. contra R. solani, a través de la velocidad de crecimiento en cultivos duales, y la reducción de muerte de plántulas en condiciones de invernáculo. MATERIALES Y METODOS Ensayo in vitro. Para la evaluación comparativa de la actividad antagónica en cultivos duales se utilizaron como fitopatógeno tres aislamientos de punta de hifa de R. solani, obtenidos de plántulas de melón, pimiento y tomate con síntomas de podredumbre de raíces y cuello. Como potenciales biocontroladores, fueron evaluados nueve aislamientos monospóricos regionales de Trichoderma spp., aislados de la rizosfera de plantas de tomate y pimiento. Se utilizaron 30 tratamientos. Las combinaciones de Trichoderma spp. y R. solani, figuran en la Tabla 1. Los discos de los aislamientos utilizados para la ejecución del ensayo, fueron obtenidos de cultivos sembrados en agar papa glucosado (APG) 1,5 % pH 6,5, mantenidos bajo estufa en oscuridad a 24-25°C, durante 10 días. De la periferia de las colonias, se cortaron discos con sacabocados de 0,5 cm de diámetro que fueron transferidos a cajas de Petri con el mismo medio, en posiciones opuestas y equidistantes, de tal modo que quedaran enfrentados uno del fitopatógeno y otro del antagonista a probar en cada tratamiento. Los testigos consistieron en el crecimiento de los distintos aislamientos de R. solani, sin la presencia de los posibles antagonistas. Las cajas fueron mantenidas en estufa en las condiciones ya señaladas. Se aplicó un diseño en bloques al azar con cuatro repeticiones; cada unidad experimental constituída por una caja de Petri. Se midió el diámetro de las colonias a las 24, 48 y 72 horas, efectuándose análisis de varianza y prueba de Tukey de los valores obtenidos. Tabla 1. Combinación de nueve aislamientos de Trichoderma spp. y tres aislamientos de Rhizoctonia solani, correspondiente a cada uno de los tratamientos probados. Tratamiento Trichoderma spp. Aislamiento Nº Nº 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 13 14 15 1 1 1 2 2 2 3 3 3 4 4 4 5 5 5 Rhizoctonia solani Aislamiento Nº 98 102 103 98 102 103 98 102 103 98 102 103 98 102 103 Tratamiento Trichoderma spp. Aislamiento Nº Nº 16 17 18 19 20 21 22 23 24 25 26 27 28 29 30 6 6 6 7 7 7 8 8 8 9 9 9 ------------- Rhizoctonia solani Aislamiento Nº 98 102 103 98 102 103 98 102 103 98 102 103 98 102 103 Ensayo en invernáculo. Se midió la actividad antagónica de los aislamientos 1, 3 6 y 7 de Trichoderma spp., seleccionados in vitro, en el control de muerte de plántulas de melón, causado por R. solani. El antagonista se aplicó de la siguiente forma: a) en las semillas, y b) al suelo. Los aislamientos de R. solani y Trichoderma spp., se prepararon en cajas de Petri, y en tubos pico de flauta, conteniendo APG, 1,5 %, pH 6,5 mantenidos bajo estufa en oscuridad a 24-25°C, durante 10 días. Para todos los tratamientos se utilizó suelo no esterilizado, en macetas, que fueron infectados artificialmente con 5 discos de 1,5 cm de diámetro de R. solani, 7 días antes de la siembra. Aplicación a las semillas. Semillas de melón var. Rocío de Miel, se inocularon por inmersión durante 30 min en una suspensión individual de los aislamientos de Trichoderma spp.; la concentración se ajustó a 10 6 conidios por ml utilizando una cámara de Neubauer. Seguidamente se sembraron 15 semillas por maceta. El testigo consistió en semillas sin inocular con Trichoderma spp., sumergidas durante 30 min en agua destilada estéril. Aplicación al suelo. Cinco discos de Trichoderma spp., de 1,5 cm de diámetro, correspondiente a cada aislamiento, se depositaron en el suelo 7 días antes de la siembra. Se sembraron 15 semillas por maceta. El testigo consistió en macetas con suelo infectado con R. solani, sin inocular con Trichoderma spp. Para ambas formas de aplicación se utilizó un diseño en bloques completo al azar y tres repeticiones. Las macetas se mantuvieron en invernáculo. Las temperaturas variaron entre 13 y 35°C. Se registró en número de plantas vivas a los 6, 16 y 25 días. La incidencia de la enfermedad se determinó a través del % de plántulas vivas. RESULTADOS Y DISCUSION Ensayo in vitro. Los nueve aislamientos de Trichoderma spp., manifestaron diferencias en el crecimiento micelial en cultivos duales con los tres aislamientos R. solani,. Los aislamientos 1, 3, 6 y 7 fueron los de mayor crecimiento, diferenciándose significativamente con el aislamiento 5; los otros aislamientos tuvieron comportamiento intermedio (Fig. 1). Cook and Baker (2) afirman que la velocidad de crecimiento presentadas por las especies de Trichoderma son motivos de utilización de este microorganismo como antagonista, para el control de fitopatógenos. Las diferencias detectadas, se asemejan a las obtenidas por otros autores, demostrando la variabilidad de la actividad antagónica de los diferentes aislamientos de Trichoderma (2, 10). Con respecto al crecimiento micelial de R. solani, frente a los diferentes aislamientos de Trichoderma spp, no manifestaron diferencias significativas entre sí, excepto con el aislamiento 5, que es el que al presentar crecimiento más lento, parecería no tener mucho efecto sobre el fitopatógeno. Manifestaron diferencias significativase con el testigo (Fig. 2). En observaciones realizadas a los 7 días, de los cultivos duales bajo el microscopio estereoscópico (40 X), R. solani frente a los aislamientos 1, 3, 6 y 7, cesa su crecimiento al entrar en contacto con el antagonista, que crece de modo de cubrir todo el cultivo. Asimismo se observa notable zona de demarcación correspondiente al encuentro de los organismos apareados. Con los aislamientos 2, 4, 8 y 9, también se forma dicha zona en la que ambas colonias se frenan y ninguna invade a la otra hasta los 14 días, en que el antagonista cubre todo el cultivo. Sin embargo, frente al aislamiento 5, sucede lo contrario, pues el antagonista cesa su crecimiento y es invadido por R. solani que cubre totalmente el cultivo. Esto probablemente es debido al crecimiento lento de dicho aislamiento, y no pueda competir por espacio y nutrientes con el fitopatógeno que tiene mayor velocidad de crecimiento (2, 10). 8 6 Diámetros colonias deRhizoctonia (cm) 7 Diámetros colonia deTrichoderma (cm) 5 4 3 2 1 6 5 4 3 2 1 0 1 0 1 2 3 4 5 6 7 8 2 3 9 4 5 6 7 8 9 Testigo Aislamientos de Trichoderma Aislamientos de Trichoderma Rhizoctonia 98 Rhizoctonia 102 Rhizoctonia 98 Rhizoctonia 103 Fig.1 Diámetro de las colonias de los diferentes aislamientos de Trichoderma spp. en cultivos duales frente a R. solani. Lectura a las 72 h. Rhizoctonia 102 Rhizoctonia 103 Fig.2 1 Diámetro de las colonias de los diferentes aislamientos de Rhizoctonia solani en cultivos duales frente a Trichoderma spp.; y en cultivo puro (testigo). Lectura a las 72 h. Ensayo en invernáculo. Los 4 aislamientos de Trichoderma spp., redujeron hasta en un 30 % la muerte de plántulas de melón causado por R. solani (Fig. 3). Esto se asemeja a los resultados obtenidos por otros investigadores que utilizaron Trichoderma spp., a fin de reducir los daños causados por R. solani (4, 6, 7). No se detectan diferencias entre los distintos aislamientos. Con respecto a las dos formas de aplicación de los antagonistas, se observó un comportamiento similar. Estos resultados preliminares in vitro, y en invernáculo, demuestran la posibilidad de utilizar aislamientos regionales de Trichoderma spp., en la reducción de muerte de plántulas de melón causado por R. solani. Por consiguiente, se considera conveniente continuar los estudios in vitro y en invernáculo para determinar la capacidad antagónica de Trichoderma spp. contra R. solani, 90 90 80 80 70 60 6 dias 50 16 dias 40 25 dias 30 20 10 0 Testigo 1 2 3 4 % de plantas vivas % de plantas vivas 100 70 60 50 6 dias 40 16 dias 30 25 dias 20 10 0 Testigo Tratamiento Fig. 3. Porcentaje de plantas vivas aplicando Trichoderma spp. a las semillas (Tratamiento 1- 4); Testigo: sin aplicación del antagonista 1 2 3 4 Tratamiento Fig. 4 Porcentaje de plantas vivas aplicando Trichoderma spp. y R. solani al suelo (Tratamiento 1-4); Testigo: sin aplicación del antagonista. BIBLIOGRAFIA 1. Bell, D.K., Wells, H.D., and Markham, C.R. 1982. In vitro antagonism of Trichoderma species against six fungal plant pathogens. Phytopathology 72:379-382. 2. Cook, R.J. and Baker, K.F. 1983. The nature and practice of biological control of plant pathogens. St. Paul. Minnesota, USA. The American Phytopathological Society. 539 p. 3. Cortese, P.L., Gally, M.E., y Lopez, M.V. 1992. Eficiencia in vitro de antagonistas de Rhizoctonia solani y Sclerotium rolfsii y análisis comparativo de distintos modelos de crecimiento. Rev. Facultad de Agronomía 13:59-65. 4. Elad, Y., Chet, I. and Katan, J. 1980. Trichoderma harzianum: A biocontrol agent effective against Sclerotium rolfsii and Rhizoctonia solani. Phytopathology 7:119-121. 5. Elad, Y. Sadowsky, Z., and Chet, I. 1987. Scanning electron microscopical observations of early stages of interaction of Trichoderma harzianum and Rhizoctonia solani. Trans Br. mycol. Soc. 88:259-263. 6. Hadar, Y., Chet, I., and Henis, Y. 1979. Biological control of Rhizoctonia solani damping-off with wheat bran culture of Trichoderma harzianum. Phytopathology 69:64-68. 7. Harman. G.H., Chet, I., and Baker, R. 1981. Factors affecting Trichoderma hamatum applied to seeds as a biocontrol agent. Phytopathology 71:569-572. 8. Mazanti de Castañón, M.A., Cúndom, M.A. y Cabrera de Álvarez, M.G. 1994. Enfermedades en cultivos protegidos de tomate, pimiento y berenjena, en el nordeste argentino. Hort. Arg. 13:1-8. 9. Mitidieri, I.Z.M. de. 1988. Control biológico de hongos del suelo con Trichoderma spp. in vitro. IDIA 449-452:45-49. 10. Tronsmo, A. 1996. 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