Muestras Sistema Nervioso Central Sistema Nervioso

Sistema Nervioso Central
Muestras Sistema Nervioso Central
Contenido
1. Introducción ..............................................1 a) Líquido cefalorraquídeo (LCR) ................1 b) Sangre obtenida a través de punción
periférica ......................................................1 2. Bibliografía ................................................2 1. Introducción
La mayoría de las infecciones del sistema nervioso
afectan al sistema nervioso central (cerebro,
medula espinal o meninges). Debido a sus
especiales características anatómicas y
fisiológicas es muy vulnerable a los efectos de una
inflamación o edema, pudiendo provocar daños
irreversibles. La más común es la meningitis,
inflamación de las meninges que rodean al
cerebro, causada principalmente por bacterias
como Streptococcus pneumoniae y Neisseria
meningitidis, entre otros. Por su lado la encefalitis,
inflamación del tejido cerebral, es provocada
generalmente por virus como los enterovirus o
arbovirus.
a) Líquido cefalorraquídeo (LCR)
CUIDADOS Y RECOMENDACIONES
• Enviar con resumen de historia clínica.
• Procedimiento realizado por personal
médico.
TÉCNICA DE RECOLECCIÓN
• Preparación aséptica de la piel: el
paciente debe estar recostado sobre un
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costado con el torso doblado hacia
delante.
• Bajo anestesia local se introduce una
aguja larga en el conducto espinal; no
necesita ser aspirado, fluye por presión en
individuos sanos.
• Obtener mínimo 3 ml de LCR en tubo
estéril tapa rosca.
EQUIPO
• Equipo de asepsia: mascarilla, guantes y
campo estériles.
• Equipo de punción lumbar.
TRANSPORTE
La muestra puede ser almacenada a temperatura
ambiente durante 8 horas. Posteriormente debe
mantenerse refrigerada a 4ºC hasta por una
semana.
b) Sangre obtenida a través de
punción periférica
CUIDADOS Y RECOMENDACIONES
• Realizar lavado de manos quirúrgico.
• Mantener técnica aséptica durante todo el
procedimiento.
• Utilizar campo estéril para evitar tener
contacto con áreas circundantes que
ofrezca el riesgo de contaminación.
• Colocar mascarilla al paciente.
• Realizar antisepsia de la zona a
puncionar; no palpe la vena sin guantes
estériles una vez preparada la piel.
• Utilizar otros guantes estériles para cada
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punción.
• POR ÉSTE MÉTODO NO PUEDEN SER
PROCESADAS MUESTRAS CON
HEPARINA.
• En pacientes heparinizados, la toma de
muestra debe realizarse en el momento
más alejado de la administración del
medicamento.
TÉCNICA DE RECOLECCIÓN
• La toma deberá hacerse en un lugar
perfectamente iluminado y con el paciente
cómodamente sentado.
• Localizar una vena adecuada en la cara
anterior del codo y colocar el torniquete en
la parte media del brazo.
• Desinfectar el área con un algodón
humedecido con alcohol al 70% e
introducir la aguja con el bisel hacia arriba.
Si la sangre no fluye espontáneamente y
se está utilizando una jeringa, jalar el
émbolo y aspirar con suavidad; si se está
empleando equipo al vacío presionar el
tubo de ensaye hacia arriba.
• Al empezar a fluir la sangre retirar el
torniquete.
• Una vez que se haya obtenido entre 5-8
ml de sangre, retirar la aguja y colocar una
tórula con alcohol sobre el sitio de punción
ejerciendo presión para detener la
hemorragia.
• En recién nacidos y lactantes, donde no
es fácil obtener tanta cantidad de muestra,
debe enviarse como mínimo 1 ml de
sangre completa.
• Si la toma se hizo con jeringa, retirar la
aguja y verter la sangre a un tubo estéril,
dejándola resbalar lentamente por la
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pared para evitar hemólisis.
• Tapar el tubo cuidadosamente. Si la
muestra necesaria es sangre total utilizar
un tubo de hematología con EDTA
(venoject ó vacutainer TAPA MORADA).
EQUIPO
Bata y campos estériles.
Gorro y mascarilla con protección ocular.
Guantes estériles.
Equipo de asepsia (antiséptico, gasas y
guantes estériles).
• Tubo de hematología con EDTA.
• Jeringas estériles.
•
•
•
•
TRANSPORTE
La muestra debe ser analizada dentro de las 24
hrs. siguientes, en caso contrario puede
mantenerse refrigerada a 4ºC hasta una semana.
Se recomienda no congelar.
2. Bibliografía
• Carlberg, D. Cleanroom microbiology for
the non microbiologist. Interpharm Press.
INC. Buffalo Grove, Illinois. 1995.
• CercenadoE, Cantón R. Procedimientos
en microbiología clínica. SEIMC. España,
2007.
• Collins CH, Lyne PM, Grange JM.
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8th ed. Washington: ASM Press; 2003.
• Guerrero Gómez C; Sánchez Carrillo C.
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• Organización Mundial de la Salud. Guía
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