UNIVERSIDADNACIONAL ABIERTAYADISTANCIA HOJA DE RUTA QUÍMICA INORGÁNICA-CÓDIGO 358005 1. NOMBRE DE LA ACTIVIDAD: Laboratorio de química inorgánica 2. ENTORNO DEL CONOCIMIENTO: Entorno de aprendizaje práctico 3. OBJETIVOS DE APRENDIZAJE • • Contextualizar al Estudiante en la aplicación de los conocimientos adquiridos en la teoría Instruir al Estudiante en el manejo de las diferentes técnicas de análisis químico • Permitir que el Estudiante comprenda la importancia de la química inorgánica en la ingeniería ambiental y tecnología en saneamiento básico. 4. TIPO DE ACTIVIDAD: Colaborativa 5. TIEMPO DE DURACIÓN DE LA ACTIVIDAD: 8 horas 6. LUGAR PARA EL DESARROLLO DE LA ACTIVIDAD: Laboratorio de química del CEAD en el cual se encuentra inscrito el Estudiante. 7. DESCRIPCIÓN DE LAS ACTIVIDADES: Análisis gravimétrico para la determinación de sólidos en agua potable y agua residual. Aplicación de los conceptos de equilibrio químico para determinar la capacidad amortiguadora en suelos. Técnicas de análisis químico por precipitación para la determinación de cloruros en aguas. Aplicación de técnicas de análisis químico moderno para la cuantificación de metales pesados en aguas y en suelos. 8. PESO EVALUATIVO DE LA ACTIVIDAD: 150 puntos. UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica 9. INFORMACIÓN DEL DIRECTOR DE CURSO Correo electrónico: ana.ardila@unad.edu.co Skype: inganaardila 10. ACTIVIDADES A DESARROLLAR EN EL LABORATORIO 10.1. Determinación de sólidos suspendidos totales en agua potable y en agua residual La determinación de los sólidos suspendidos totales (SST) se basa en el incremento de peso que experimenta un filtro de fibra de vidrio (previamente tarado) tras la filtración al vacío, de una muestra que posteriormente es secada a peso constante a 103-105°C. El aumento de peso del filtro representa los sólidos totales en suspensión. La diferencia entre los sólidos totales y los disueltos totales, puede emplearse como estimación de los sólidos suspendidos totales. Materiales Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Cápsulas de porcelana Horno Placa calefactora Balanza analítica Desecador Potenciometro Equipo de filtración Papel Whatman N° 2 Reactivos Ø Muestras de agua Procedimiento para la cuantificación de SST • • • • • • • Pesar previamente el sistema vidrio de reloj y papel filtro secos W1 Pesar un beaker de 200 mL vacío W2 Pesar beaker y 100 mL de agua W3 Filtrar 100 mL de agua potable o agua residual Descartar el filtrado e ingresar el sistema papel filtro húmedo y vidrio de reloj al horno de secado hasta alcanzar una temperatura de 103 -105°C Esperar durante 1 hora Llevar al desecador aproximadamente durante 1 hora 2 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica • Pesar el vidrio de reloj hasta obtener peso constante W4. Tabla 1. Registro de pesos para la cuantificación de SST en agua. Símbolo Peso del vidrio de reloj y papel filtro seco. Peso de un beaker de 200 mL vacío Peso beaker de 200 mL y 100 mL de agua Peso constante del vidrio de reloj y papel filtro después de sequedad a 103°C. Muestra 1 (g) Muestra 2 (g) Muestra 3 (g) W1 W2 W3 W4 Porcentaje de SST en una muestra de agua % 𝑆𝑆𝑇 = !! !!! !! !!! ∗ 100 (1) Concentración de SST en una muestra de agua 𝑆𝑆𝑇 < 𝑝𝑝𝑚 >= 10.2. !! !!! !"#$%&' !" !"#$%&' (!") ∗ 1𝑥10! (2) Determinación de sólidos suspendidos volátiles en agua potable y en agua residual El procedimiento estándar para el análisis de los sólidos volátiles consiste en realizar la incineración a 550 °C. Ésta es aproximadamente la temperatura más baja a la que se puede oxidar a una velocidad razonable la materia orgánica, especialmente los residuos de carbono que resultan de la pirolisis de los carbohidratos y otra materia orgánica como se muestra en la ecuación. 𝐶! 𝐻! 𝑂 ∆ ! 𝐶 + 𝑂! 𝑥𝐶 + 𝑦𝐻! 𝑂 ∆ 𝑥𝐶𝑂! Además, la descomposición de las sales inorgánicas se minimiza a 550°C. Cualquier compuesto de amonio que no se haya liberado durante el secado se volatiliza. Pero la mayor parte de otras sales 3 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica inorgánicas son relativamente estables, a excepción del carbonato de magnesio como se muestra en la ecuación 𝑀𝑔𝐶𝑂! !"#°! 𝑀𝑔𝑂 + 𝐶𝑂! ↑ En la determinación del contenido volátil de los sólidos en suspensión las sales inorgánicas disueltas no se tienen en cuenta porque son removidas durante el proceso de filtración. En el análisis de lodos, los compuestos de amonio que existen principalmente como bicarbonato de amonio, se volatilizan por completo durante los procedimientos de evaporación y secado y no están presentes para interferir en la determinación de sólidos volátiles. 𝑁𝐻! 𝐻𝐶𝑂! !"#°! 𝑁𝐻! ↑ +𝐻! 𝑂 ↑ +𝐶𝑂! ↑ Otras sales inorgánicas inestables presentes en los lodos se encuentran en cantidades tan pequeñas en relación con los sólidos totales, que usualmente se omite su efecto. Materiales Ø Ø Ø Ø Ø Ø Cápsulas de porcelana Mufla Desecador Balanza analítica Equipo de filtración Papel Whatman N° 2 Reactivos Ø Muestras de agua Procedimiento para la cuantificación de SSV • • • • • Tomar el papel filtro de la prueba de sólidos suspendidos totales y colocarlo en una cápsula de porcelana Pesar el sistema cápsula de porcelana y papel filtro de SST W5 Ingresar la muestra a la mufla para que sea calcinada a 550°C Esperar 20 minutos, retirar de la mufla y llevar al desecador para el enfriamiento Registrar el peso, cuando se obtenga peso constante W6. 4 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica Tabla 2. Registro de pesos para la cuantificación de SSV en agua. Símbolo Peso del sistema cápsula de porcelana y papel filtro de SST Peso de cápsula de porcelana después de calcinación Muestra 1 (g) Muestra 2 (g) Muestra 3 (g) W5 W6 Porcentaje de SSV en una muestra de agua % 𝑆𝑆𝑇 = !! !!! !! !!! ∗ 100 (3) Concentración de SSV en una muestra de agua 𝑆𝑆𝑇 < 𝑝𝑝𝑚 >= 10.3. !! !!! !"#$%&' !" !"#$%&' (!") ∗ 1𝑥10! (4) Determinación de sólidos disueltos totales en agua potable y en agua residual La determinación de sólidos disueltos totales mide específicamente el total de residuos sólidos filtrables (sales y residuos orgánicos) a través de una membrana con poros de 2.0 µm (o más pequeños). Los sólidos disueltos pueden afectar adversamente la calidad de un cuerpo de agua o un efluente de varias formas. Aguas para el consumo humano, con un alto contenido de sólidos disueltos, son por lo general de mal agrado para el paladar y pueden inducir una reacción fisiológica adversa en el consumidor. El total de sólidos disueltos comprende las sales inorgánicas (principalmente de calcio, magnesio, potasio y sodio, bicarbonatos, cloruros y sulfatos) y pequeñas cantidades de materia orgánica que están disueltas en el agua. Un método alterno y más sencillo consiste en estimar los sólidos disueltos totales utilizando la medida de conductividad del agua. Se ha encontrado que existe una correlación directa entre conductividad y concentración de sólidos disueltos totales para cuerpos de agua dulce y salobre. Materiales Ø Ø Ø Ø Cápsulas de porcelana Estufa Placa calefactora Balanza analítica 5 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica Ø Ø Ø Ø Desecador Conductimetro Equipo de filtración Papel Whatman N° 2 Reactivos Ø Muestras de agua Procedimiento para la cuantificación de SDT método gravimétrico • • • • • Medir 50 ml de la muestra de agua en probeta y filtrar sobre papel filtro Pesar un beaker de 50 mL limpio y seco W7 Adicionar 20 mL del volumen de agua filtrado al beaker y volver a pesar el conjunto (antes de realizar la evaporación, medir la conductividad del filtrado) W8 Evaporar en una estufa el volumen de agua Llevar el beaker al desecador hasta enfriamiento y pesar nuevamente hasta obtener peso constante W9. Tabla 3. Registro de pesos para la cuantificación de SDT en agua. Símbolo Beaker vacío de 50 mL Sistema beaker, agua a filtrar Beaker después de la evaporación y enfriamiento Muestra 1 (g) Muestra 2 (g) Muestra 3 (g) W7 W8 W9 Porcentaje de SSV en una muestra de agua % 𝑆𝐷𝑇 = !! !!! !! !!! ∗ 100 (5) Concentración de SSV en una muestra de agua 𝑆𝐷𝑇 < 𝑝𝑝𝑚 >= !! !!! !"#$%&' !" !"#$%&' (!") ∗ 1𝑥10! (6) 6 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica 10.4. Capacidad amortiguadora de aguas y suelos Un sistema amortiguador o “buffer” es un sistema que puede mantener constante el valor de pH. La ecuación de Henderson-Hasselbach, derivada de la definición de la constante de acidez, permite entender el mecanismo por el cual esto es posible 𝑝𝐻 = 𝑝𝐾𝑎 + 𝑙𝑜𝑔 !! !" (7) Donde [A-] es la base conjugada de un ácido débil [AH]. Según esta ecuación, el valor del PH dependerá del pKa del ácido y del cociente de las concentraciones de la base conjugada y su ácido. Si estas dos especies se encuentran en la misma concentración, la adición de un ácido o una base fuerte producirán poco cambio en el valor del pH. Capacidad amortiguadora o reguladora La capacidad amortiguadora permite cuantificar la efectividad de la acción reguladora de un buffer, para mantener el pH constante al agregar pequeñas cantidades de ácidos o bases fuertes. Se define como el volumen (en ml) de ácido o base fuerte de una determinada concentración que debe agregarse a una solución buffer (amortiguadora, o tampón) para modificar el valor de su pH en una unidad (CIN, 2004). Hay dos técnicas comunes para medir la capacidad amortiguadora, la volumétrica y la potenciométrica Técnica potenciométrica para medir la capacidad amortiguadora La Capacidad Amortiguadora con respecto a NaOH será: 𝛽! = !!"#$ ∗!!"#$ !!! !!!! ∗!! (8) Dónde: VNaOH: Es el volumen de base agregado a la muestra (4 ml) NNaOH: Es la normalidad de la base agregada (0,1 N) Vm: Es el volumen de la muestra titulada pH1: Es el pH de la muestra antes de agregar la base fuerte pH2: Es el pH de la muestra después de agregar la base fuerte y se multiplica por 1000 para obtener la capacidad amortiguadora en miliequivalentes. Potencial Amortiguador 7 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica La capacidad amortiguadora se puede expresar como un potencial amortiguador con respecto a NaOH, de la siguiente forma: 𝑝 𝛽 = − log 𝛽 (9) Dónde: p (β): es el potencial amortiguador con respecto a NaOH. Materiales Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Pipetas graduadas de 10ml Probeta graduada de 100ml Beaker de 250ml Equipo de titulación (Soporte universal, pinza, bureta, erlenmeyer) Espátula metálica Agitador de vidrio Potenciómetro Balanza digital o analítica Reactivos Ø Ø Ø Ø Ø Ø NaOH 0,1N Fenolftaleína Agua destilada Solución buffer fosfato Muestras de Suelo Muestra de Agua industrial o de río Método de titulación volumétrica • Alistar 3 beaker o erlenmeyer pequeños y rotular así: (1), (2) y (3) • Adicionar: Al erlenmeyer (1), 10 ml de agua destilada; al (2) , 10 ml de solución buffer fosfato y al (3), 10 ml de muestra de agua experimental • Colocar en cada frasco 2 gotas de fenolftaleína y agitar por 10 segundos • Titular cada erlenmeyer con una solución NaOH 0,1 N • Colocar el frasco bajo la bureta y titular la solución acuosa, adicionando el NaOH hasta que aparezca y permanezca un color rosado pálido, registrar el volumen gastado en su tabla de datos. Tabla 4. Registro volúmenes consumidos. Muestras Vm (mL) V NaOH 0,1 N (mL) Buffer fosfato Agua destilada 8 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica Agua experimental Técnica potenciométrica • Alistar 5 beakers o erlenmeyers y rotularlos del (1) al (5) • Al primer frasco (1), adicionar 10 gramos (Wm) de suelo y 20 ml de agua destilada, agitar con varilla de vidrio ó en agitador magnético por 5 min, medir el pH y registrar como pH1. • Posteriormente , agregar 4 ml de NaOH 0,1N , agitar de nuevo por un minuto y volver a medir el pH2 • Agregar al segundo frasco (2) 20 ml de agua destilada, al tercero (3) 20 ml de buffer fosfato, y al cuarto (4) 20 ml de agua experimental. Repetir el procedimiento anterior y registrar los valores en la tabla de datos • En el quinto frasco (5), repetir el procedimiento del suelo, pero con 5 gramos de follaje, disuelto en 20 ml de agua destilada, registrar los valores en la tabla de datos. Tabla 5. Datos potenciométricos para capacidad amortiguadora de las muestras estudiadas. Muestra Wm <g> pH1 pH2 Suelo 1 Suelo 2 Suelo 3 ACIDEZ INTERCAMBIABLE Acidez del suelo Entre otros, la acidez del suelo se clasifica en: Acidez Activa: Abundancia de H+ en la solución del suelo. Se mide por el pH del suelo. Acidez Intercambiable: Corresponde a la suma de H+ y Al3+. Se denomina intercambiable dado que el Aluminio en el suelo puede hidrolizarse (reaccionar con el agua); produciendo iones H+. Usualmente mide como miliequivalentes/100 gramos de suelo. Acidez Intercambiable (Ai): El Aluminio es un elemento tóxico para la mayoría de las plantas, debido al efecto inhibitorio que ejerce sobre algunos sistemas enzimáticos de la célula vegetal. Un suelo 9 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica contaminado con aluminio tendrá plantas con raíces cortas y deformes, que absorben menos nutrientes y agua. La acidez intercambiable por lo tanto, permite predecir la posible contaminación del suelo por la presencia de este elemento, según lo muestra el cuadro: Extracción salina En esta, los iones H+ y Al+3, son extraídos con una solución de cloruro de potasio. KCl 1N, las reacciones químicas que se dan en este proceso son: 𝐾𝐶𝑙 + 𝐴𝑙 !! + 𝐻 ! !!! 𝐴𝑙 𝑂𝐻 ! + 3𝑁𝑎𝐶𝑙 𝐻𝐶𝑙 + 𝑁𝑎𝑂𝐻 → 𝑁𝑎𝐶𝑙 + 𝐻! 𝑂 En la ecuación se aprecia que los iones son extraídos y solubilizados en forma de tricloruro de aluminio y ácido clorhídrico (AlCl3+HCl). De las anteriores ecuaciones químicas, se observa que los iones extraídos de las muestras de suelo, fueron neutralizados hasta ser transformados en cloruro de sodio e hidróxido de aluminio, en este punto, los miliequivalentes de NaOH, serán iguales a los miliequivalentes de H+ y Al+3. Conociendo la concentración estandarizada del NaOH y los mililitros empleados en la titulación, se puede calcular la acidez intercambiable, mediante la ecuación 10. 𝐴! !"# !"" ! !"#$% = !!"#$ ∗!!"#$%#&' ∗!!"# !"#$ !! ∗!!"#$%&'( (10) Dónde: VNaOH: Volumen de NaOH gastado en la titulación (ml) Nreal NaOH: Normalidad estandarizada del NaOH (ml) VSln extr: Volumen de la solución de KCl que se utilizó para disolver el suelo y extraer cationes Al+3 (ml) Ws: Representa el peso de la muestra de suelo que se disolvió (g) Vtitulado: Volumen de filtrado que se tituló con NaOH y contiene cationes Al+3 y H+ (ml) Materiales Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Probeta graduada de 100 ml Espátula metálica Embudo de filtración mediano Papel filtro Equipo de titulación (Soporte universal, pinza, bureta, erlenmeyer) Beaker o erlenmeyer de 80 y 250ml Agitador magnético o varilla de vidrio Potenciómetro medidor de pH o tiras reactivas para pH 10 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica Ø Pipetas graduadas de 5 y 10ml Reactivos Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Cloruro de potasio 1N Biftalato de Potasio 0,1 N (no es obligatorio) NaOH 0,01 N Fenolftaleína (solución alcohólica al 1%) Agua destilada 2 Muestras de suelo, de lugares diferentes Colador pequeño Titulación ácido-base Los compuestos anteriores son cuantificados, mediante la técnica analítica de titulación, utilizando hidróxido de sodio (NaOH) estandarizado, como titulante, en presencia de la fenolftaleína como indicador ácido-base. Las ecuaciones químicas dadas en esta etapa son: Extracción • • • • Pesar aproximadamente 2,5 gramos de suelo, registrar éste valor como: Ws y colocarlo en un beaker o recipiente de vidrio pequeño Adicionar al Recipiente, 25ml de solución extractiva de KCl 1N Agitar en agitador magnético ó con varilla de vidrio, durante 5 min Alistar montaje de filtración como se muestra en la figura 4, filtrar hasta obtener más ó menos de 10 a 15 ml, registrar este valor como: Vtitulado 11 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica Figura 1. Extracción de la solución del suelo para realizar titulación. Titulación ácido-base • Alistar el montaje de titulación, cargar la bureta con el NaOH estandarizado previamente, enrasarla, ajustando el nivel de la solución, de tal forma que el menisco de ésta, quede sobre la línea del cero • Adicionar 2 gotas de fenolftaleína al filtrado y agitar suavemente por 15 segundos • Colocar el erlenmeyer debajo de la bureta y agregar lentamente desde ésta, el NaOH 0,01 N, hasta que en la solución del filtrado aparezca y permanezca el color rosado o violeta; lo cual indica que la reacción de neutralización ha llegado a su fin • Registrar los mililitros de NaOH empleados en la titulación. 10.5. Determinación de cloruros en agua mediante el método de Mohr En la titulación el ion cloruro se precipita como cloruro de plata. 𝐴𝑔! + 𝐶𝑙 ! ↔ 𝐴𝑔𝐶𝑙 𝐾!" = 3×10!!" El punto final no se puede detectar visualmente, a menos que haya un indicador que pueda demostrar la presencia de un exceso de Ag+2. El indicador que se usa normalmente es el cromato de potasio que aporta los iones cromato. Cuando la concentración de cloruro se va extinguiendo, la concentración del ion plata aumenta a un nivel en el cual se excede el producto de solubilidad del cromato de plata y se comienza a formar un precipitado marrón rojizo. 2𝐴𝑔! + 𝐶𝑟𝑂!!! ↔ 𝐴𝑔! 𝐶𝑟𝑂! 𝐾!" = 5×10!!" Esto se toma como evidencia de que todo el cloruro se ha precipitado. Puesto que se necesita un exceso de Ag2+ para producir una cantidad visible de Ag2CrO4, se debe determinar el error indicador o blanco para restarlo de todas las titulaciones. Con el fin de obtener resultados precisos se deben tener varias precauciones en esta determinación: Ø La cantidad de la muestra debe ser uniforme, preferiblemente 100 mI, de modo que las concentraciones iónicas que se necesitan para indicar el punto final sean constantes. Ø El pH debe estar entre 7 y 8 debido a que el Ag+ se precipita como AgOH a niveles altos de pH, y el CrO42- se convierte en Cr2O72- a niveles bajos de pH. Ø Se debe usar una cantidad definida de indicador para dar cierta concentración de CrO42- ; de otra manera el Ag2CrO4 se puede formar demasiado pronto, o no lo suficientemente pronto. 12 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica Materiales Ø Ø Ø Ø Ø Ø Agitador magnético Erlenmeyers Pinzas Soporte universal Bureta Frasco lavador Reactivos Ø Ø Ø Ø Fenolftaleína Ácido sulfúrico 1 N Indicador de K2CrO4 Nitrato de plata AgNO3 0,0141 Procedimiento para la cuantificación de cloruros • • • • • • Medir 10mL de la muestra en un erlenmeyer de 250ml Corroborar que el pH de la muestra se encuentre entre 7 y 10, ajustar con ácido sulfúrico o hidróxido de sodio si no se encuentra en este rango Adicionar 3 gotas de fenolftaleína. Si la solución se torna color rosado, titular con H2SO41 N hasta que desaparezca la coloración Adicionar 15 mL de agua destilada y 1 mL de indicador K2CrO4 Titular con solución de nitrato de plata 0,0141 N hasta que aparezca color rojo ladrillo que permanezca por lo menos 30 segundos Determinar el volumen de AgNO3como el promedio de dos valoraciones que no difieran en más de 0,2mL. Tabla 6. Registro de volúmenes titulación de cloruros en agua. Muestra N° 1 N° 2 Ensayo Volumen consumido de AgNO3 (mL) 1 2 3 1 2 13 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica 3 1 2 3 N° 3 Concentración de cloruros en una muestra de agua 𝑚𝑔𝐶𝑙 ! /𝐿 = !!! ×!×!"#"$ !"#$%&' !" !" !"#$%&' (!") (11) A: Volumen consumido de nitrato de plata en la titulación de la muestra B: Volumen consumido de nitrato de plata en la titulación del blanco N: Normalidad del nitrato de plata AgNO3 10.6. Espectrofotometría Cromo hexavalente El método se basa en una reacción de óxido reducción donde el cromo hexavalente Cr6+ reacciona con la 1,5-difenilcarbazida en medio ácido para dar Cr3+ y 1,5-difenilcarbazona de color violeta que se lee espectrofotométricamente a 540 nm. La intensidad de color es directamente proporcional a la concentración de cromo hexavalente. Materiales Ø Ø Ø Ø Ø Ø Beakers Matraces Varillas de vidrio Espectrofotométro pHmetro Celdas para lectura en espectrofotométro Reactivos Ø Difenilcarbazida Ø Agua destilada Curva de calibración de cromo hexavalente • • Preparar una curva patrón con concentraciones de cromo hexavalente comprendidas entre 0 y 0.2 mg/L Transferir las soluciones patrón a vasos de precipitado de 100 mL. a cada una adicionar 0.5 mL de ácido sulfúrico 1:1 y agitar con varilla de vidrio. El pH debe ser alrededor de 2 14 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica • • • Añadir 1,0 mL de solución de difenilcarbazida, agitar y dejar reposar 5 a 10 minutos para desarrollar color Esperar de 5 a 10 minutos y leer en el espectrofotómetro a 540 nm la absorbancia de cada una de las soluciones Graficar la concentración de las soluciones patrón contra los valores de absorbancia y realizar una regresión lineal para obtener la ecuación de la recta. De la ecuación de la recta se puede despejar la concentración de la muestra problema al conocer la absorbancia. Tabla 7. Registro de datos curva de calibración cromo hexavalente. Concentración Absorbancia (mg/L) 540 nm Medición de cromo hexavalente en la muestra de agua • • • • • Transferir 50 mL de muestra (previamente filtrada si la muestra lo amerita) a un vaso de precipitados de 100 mL, adicionarle 0.5 mL de ácido sulfúrico 1:1. Agitar para mezclar bien Añadir 1 mL de solución de difenilcarbazida, agitar y dejar reposar 5 a 10 minutos para desarrollar color Preparar y analizar un blanco de reactivos con agua Esperar de 5 a 10 minutos y leer en el espectrofotómetro a 540 nm. Si la absorbancia de la muestra resultase mayor que la del mayor patrón, es necesario repetir el proceso mediante diluciones sucesivas de la muestra y posterior lectura en el equipo. Tabla 8. Registro de absorbancias para la determinación de cromo en agua. Muestra N° 1 N° 2 Ensayo Absorbancia 540 nm 1 2 3 1 2 15 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica N° 3 3 1 2 3 Hierro total El hierro se disuelve y se reduce a estado ferroso por ebullición, con ácido e hidroxilamina y, posteriormente, se hace reaccionar con 1-10 fenantrolina a pH 3,2-3,3, para dar un complejo de color rojo-anaranjado. La solución coloreada, obedece a la ley de Beer y la concentración es determinada espectrofotométricamente o por comparación visual. Materiales Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Balanza Vasos de precipitado Matraces Varillas de vidrio Estufa Placa calefactora Espectrofotométro pHmetro Celdas para lectura en espectrofotométro Reactivos Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ø Ácido sulfúrico 6 N Ácido sulfúrico concentrado Alambre de hierro Sulfato de amonio Hierro hexahidratado Permanganato de potasio 0,1 N Ácido clorhídrico concentrado Solución de hidroxilamina Solución de fenantrolina Curva de calibración del hierro total • • • Se prepara la solución madre de hierro Se toman alícuotas partiendo de la solución madre y se preparan soluciones en diferentes concentraciones Se mide la absorbancia de cada una de las soluciones por espectrofotometría a una longitud de onda de 510 nm. 16 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica Preparación de la solución madre de hierro: Se puede preparar cualquiera de las siguientes soluciones para realizar la curva de calibración: Solución 1: Se pesan 0,200 g de alambre de hierro electrolítico limpio de cualquier película de óxido y se pone en un matraz aforado de 1 litro. Se disuelve en 20 mL de ácido sulfúrico 6N y se diluye hasta el aforo con agua destilada exenta de hierro 1 mL de esta solución contiene 0,20 mg de hierro. Solución 2: Se disuelven 1,404 g de sulfato de amonio y hierro hexahidratado en una solución de 20 mL de H2SO4 concentrado en 50 mL de agua destilada. Se agrega gota a gota KMnO4 0,1 N hasta que se presente un débil color rosa. Se diluye hasta 1 000 mL con agua destilada exenta de hierro y se mezcla. Esta solución contiene 0,20 mg de hierro por mL. Tabla 9. Registro de datos curva de calibración cromo hexavalente. Concentración Absorbancia (mg/L) 510 nm Medición de hierro total en la muestra de agua • • • • • • Mezclar la muestra perfectamente y pipetear 50 mL en un frasco erlenmeyer de 200 mL (Si la muestra tiene más de 2 mg/I de hierro, diluir una alícuota medida exactamente, que no contenga más de 0,10 mg en 50 mL). Añadir 2 mL de HCI concentrado y 1 mL de solución de hidroxilamina Para asegurarse de que todo el hierro se disuelve, continuar la ebullición hasta que el volumen se reduzca a 15-20 mL Enfriar a temperatura ambiente y transferir a un matraz volumétrico de 50 ó 100 mL Añadir 10 mL de solución tampón de acetato de amonio y 2 mL de solución de fenantrolina y diluir hasta la marca con agua destilada Mezclar perfectamente con agitación y dejar en reposo por 10-15 min para que el color máximo se desarrolle 17 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica • Leer en el espectrofotómetro a 510 nm y registrar el valor de absorbancia. Tabla 10. Registro de absorbancias para la determinación de hierro total en agua. Muestra N° 1 N° 2 N° 3 Ensayo Absorbancia 510 nm 1 2 3 1 2 3 1 2 3 Cálculo de la concentración de metales pesados por espectrofotometría El cálculo de metales pesados se realiza después de tener la curva de calibración propia de cada elemento. Depende del modelo, precisión y calibración que tengan los equipos donde se vayan a desarrollar las mediciones. 10.7. Determinación de cobre mediante espectroscopia de absorción atómica (opcional) La técnica hace uso de la espectrometría de absorción para evaluar la concentración de un analito en una muestra. Se basa en gran medida en la ley de Beer-Lambert. En resumen, los electrones de los átomos en el atomizador pueden ser promovidos a orbitales más altos por un instante mediante la absorción de una cantidad de energía (es decir, luz de una determinada longitud de onda). Esta cantidad de energía (o longitud de onda) se refiere específicamente a una transición de electrones en un elemento particular, y en general, cada longitud de onda corresponde a un solo elemento. Como la cantidad de energía que se pone en la llama es conocida, y la cantidad restante en el otro lado (el detector) se puede medir, es posible, a partir de la ley de Beer-Lambert, calcular cuántas de estas transiciones tiene lugar, y así obtener una señal que es proporcional a la concentración del elemento que se mide. Curva de calibración para determinación de cobre por absorción atómica • • • • Se pesa aproximadamente 0,0181 g de Cu en un vaso de precipitado de 100 ml Seguidamente se adiciona 20 ml de HNO3 Se calienta a ebullición durante 10 minutos Se filtra y se diluye a 100 ml con agua destilada 18 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica • • • Se toma una alícuota de 10 ml y se diluye a 100 ml con HNO3 1% Se toman alícuotas que respecten al cálculo correspondientes para tener concentraciones de 0,0.5,1.0,2.0,3.0,4.0 y 5.0 se afora a 50 ml con HCl 0,5 N Finalmente se hace la lectura en el equipo de absorción atómica Medición de cobre en una muestra de suelo • • • • • • • • Se pesa 1 gramo de muestra en este caso (suelo), se carboniza a 500°C Se adiciona 1 ml de HCl al 37% y 3 ml de HNO3 se coloca en una plancha de calentamiento hasta evaporar Adicionar 10 ml de HCl al 37% y evaporar hasta sequedad Lavar con agua destilada y filtrar Aforar en un balón de 100 ml Tomar una alícuota de 1 ml y diluir a 50 ml con HCl 0,5 N Finalmente se hace lectura en el equipo de absorción atómica. 11. PREINFORME • Consultar la hoja de seguridad de los reactivos de la práctica, identificar el riesgo (símbolo de peligrosidad), las precauciones con las que se deben manipular estas sustancias; y el protocolo que debe llevarse a cabo en caso de derrame (elaborar este trabajo en un cuadro). • Realizar breves diagramas de flujo donde se describan los procedimientos que deben trabajarse en el laboratorio (llevar a la práctica o enviar por correo electrónico, según sean las indicaciones del docente de práctica). 12. BIBLIOGRAFÍA [1] Granados., J.E., Puerto, M.J. (2013). Química inorgánica ambiental, Protocolo de prácticas para la Escuela ECAPMA. Colombia: Universidad Nacional Abierta y a Distancia. [2] Sawyer, N.C., Perry, L.M., & Parkin, G.F. (2001). Química para ingeniería ambiental. Editorial Mc Graw Hill. [3] Eaton A., Clescew L., &. Standard Methods for the examination of wáter and wastewater. Versión 19. Washington: 2005. Publicación oficial por American Public Health Association. [4] Pérez Moreno, F., Prieto García, F., Barrado Esteban, E., Rojas Hernández, A. & Méndez Marzo, M. A. (2002). Optimización del método de determinación de arsénico en aguas potables por 19 UNIVERSIDADNACIONALABIERTAYADISTANCIA–UNAD EscueladeCienciasAgrícolas,PecuariasydelAmbiente 358005-Químicainorgánica espectrofotometría UV-Vis con dietil ditiocarbamato de plata.Journal of the Mexican Chemical Society. 20