The veterinary publishing company small ANIMALS EQUIDS Clinical Examination of the Horse Aimed at veterinarians, students, professors and professionals in this field. Technical details Author: Antonio Fernández Casasnovas, Tomás Conde Ayuda and Javier Fondevila Abenia. Format: 22 x 28 cm. Number of pages: 208. Number of pictures: 500. Binding: Hardcover. ISBN: 978-84-92569-68-7. Year: 2011. A good clinical examination and a complete exploration are essential to reach a precise diagnosis. Some details that are crucial for the resolution of a clinical case may be overlooked in the hustle of daily clinic. This work will refresh your knowledge about equine propedeutics and guide you with great quality images through all systems of the horse body, in order to help you to complete an excellent clinical examination. Centro Empresarial El Trovador, planta 8, oficina I - Plaza Antonio Beltrán Martínez, 1 • 50002 Zaragoza - España Tel.: 976 461 480 • Fax: 976 423 000 • pedidos@grupoasis.com • Grupo Asís Biomedia, S.L. The veterinary publishing company Clinical Examination of the Horse TABLE OF CONTENTS 1. Clinical history Nostrils Anamnesis Paranasal sinuses Inspection of the environment surrounding the animal Larynx and trachea examination Distant examination Complementary methods of examination of upper respiratory airways Vital signs Guttural pouches examination Age determination by. teeth Examination of the respiratory thorax Record of veterinary examination Other techniques of diagnosis 2. Handling and behaviour Handling and animal welfare 6. Examination of the cardiovascular system Handling of foals (<6 months) Inspection and palpation Identification Cardiac percussion Weaning of foals Auscultation Containment or physical immobilisation methods Electrocardiography Pharmacological immobilisation Knock down and handling of the animal in decubitus Castration 3. Clinical examination of the coat, skin and lymphatic system Resistance tests Echocardiography Assessment of the cardiovascular system 7. Examination of the digestive system Mouth examination Pharynx examination Introduction Oesophagus examination Clinical history Stomach examination Coat assessment Abdominal cavity examination Sampling Liver examination Dermatologic record Anamnesis and clinical history Examination of the lymphatic system 4. Ears and eyes examination Ears examination Eyes examination 5. Examination of the respiratory system 8. Examination of the genitourinary system Genital apparatus Urinary apparatus 9. Examination of the locomotor apparatus General examination Anamnesis Clinical examination of the muscular apparatus General condition assessment Clinical examination of the tendinous apparatus Centro Empresarial El Trovador, planta 8, oficina I - Plaza Antonio Beltrán Martínez, 1 • 50002 Zaragoza - España Tel.: 976 461 480 • Fax: 976 423 000 • pedidos@grupoasis.com • Grupo Asís Biomedia, S.L. The veterinary publishing company Clinical examination of the podotrochlear apparatus Neck and forelimbs examination Clinical examination of the osteoarticular apparatus Tail and anus examination 10. Examination of the nervous system Trunk and hindlimbs examination Examination of horses in decubitus Cerebrospinal fluid extraction Clinical history Other techniques of examination Neurological examination of the head Neurological examination record of the horse Posture and gait examination 11. Bibliography Centro Empresarial El Trovador, planta 8, oficina I - Plaza Antonio Beltrán Martínez, 1 • 50002 Zaragoza - España Tel.: 976 461 480 • Fax: 976 423 000 • pedidos@grupoasis.com • Grupo Asís Biomedia, S.L. Ficha de inspección veterinaria Datos generales Historial Nombre del propietario Apellidos Localidad Provincia Existen antecedentes o evidencia de… (en caso afirmativo indicar tipo y trascendencia actual y futura) Teléfono ¿Vicios o hábitos perjudiciales? No ¿Cirugía abdominal? No Datos y señas de identificación Nombre del caballo Raza Sexo Uso Capa Sí Sí ¿Otras intervenciones quirúrgicas? No Sí ¿Cuál? ¿Enfermedad infecto-contagiosa? No Sí ¿Cuál? ¿Episodios de cólico? No Sí Fechas y trascendencia Fecha de nacimiento (indicar al menos el año) ¿Antecedentes de laminitis? No Sí Marcas y cicatrices ¿Antecedentes de cojeras? No Sí Nº Microchip ¿Se ha leído en el momento de la inspección? Sí No Lugar de estabulación: Describir Describir ¿Está tomando algún medicamento actualmente? No Sí ¿Cuál? ¿Ha recibido algún tratamiento médico en los últimos 60 días? No Sí ¿Cuál? Últimas vacunaciones y desparasitaciones. (Indicar fechas, tipo de vacuna y producto antiparasitario) Influenza Fecha: Desparasitación Tétanos Fecha: Óptima Media Rimoneumonitis Fecha: Fecha y producto: Alimentación Lado derecho Lado izquierdo Condición corporal: Sobrepeso Historia clínica Reconocimiento general Delgado Temperatura: Ojos: Normales Anormales Aparato digestivo: 12 Izquierda Derecha Izquierda Derecha Boca y dientes: Normales Anormales Presencia de hernias: No Sí Ollares / Belfo Posteriores, vista posterior lat/min. No Sí ¿Se ha comprobado la identidad del caballo y su documentación? Sí Tos: No Sí Disnea: No ¿Qué documentación ha revisado el veterinario? (Tarjeta sanitaria equina, carta genealógica…) Respiración: en reposo: Indicar nº o código de la documentación consultada: A la auscultación pulmonar, ¿presenta alguna alteración? nº TSE nº pasaporte otros: lat/min ¿cuál? Sistema respiratorio: nº lic: En ejercicio: A la auscultación cardiaca, ¿presenta alguna alteración? Comprobar e indicar si el animal coincide con el descrito en la documentación acreditativa de su identidad y valor (carta genealógica, TSE…) No Evidencia de cirugía abdominal: No Sistema cardiovascular: Pulso: en reposo: Anteriores, vista posterior 13 No Sí resp/min. ¿cuál? Sistema nervioso: Normal Anormal En ejercicio: Sí resp/min Sí Exploración Para proceder a una exploración del ojo, el caballo debe estar lo más quieto posible, para ello haremos uso de medidas de contención o directamente procederemos a la sedación del animal con anestésicos locales e incluso bloqueos regionales que detallaremos a continuación. Lugares donde se inocula el anestésico local para obtener el bloqueo regional de los nervios oculares También se puede usar una jeringa de insulina e instilar el anestésico con el ojo abierto sin ser forzado. Bloqueos regionales Los nervios que se suelen bloquear para realizar una completa exploración ocular son el auriculopalpebral, el supraorbitario, el lacrimal, el cigomático y el infratroclear. Sedación Anestesia tópica En determinadas ocasiones se necesita realizar una anestesia tópica de la conjuntiva y de la córnea para realizar la exploración sin ningún problema. Para ello podemos evertir el párpado inferior de tal manera que colocamos el líquido anestésico en esa zona y que posteriormente, al volver el párpado y el ojo a su posición normal, logremos su mayor difusión. Bloqueo del nervio auriculopalpebral Este nervio motor es una rama del nervio facial que se puede bloquear por sitios diferentes. Inerva el músculo orbicular, que es muy fuerte en los caballos. En aquellas exploraciones donde el caballo presenta blefaroespasmo es necesario bloquearlo para producir la aquinesia del mismo y poder trabajar sin dificultades. Es importante conocer que no se pierde la sensibilidad del nervio trigémino. Con una aguja de 22G se introduce en el tejido subcutáneo un volumen de 2-4 ml de anestésico local, lidocaína 2%, mepivacaína o incluso bupivacaína, en función del tiempo de la exploración que vayamos a realizar, siendo la mepivacaína la que presenta mayor duración con 120 minutos de anestesia. Esquema del bloqueo anestésico de los nervios oculares 58 Bloqueo del nervio auriculopalpebral. Bloqueo del nervio supraorbitario. Bloqueo del nervio lacrimal. Bloqueo del nervio cigomático. El punto de inoculación del nervio auriculopalpebral se encuentra en la depresión caudal sobre la rama vertical de la mandíbula, aproximadamente 2,5 cm por dejado de su punto más alto. La rama palpebral del nervio se bloquea inmediatamente medial y ligeramente rostral al punto más alto del arco cigomático, aproximadamente a mitad entre el ojo y la oreja. Bloqueo del nervio supraorbitario Bloqueo del nervio supraorbitario Bloqueo del nervio auriculopalpebral Bloqueo del nervio palpebral Este nervio es una rama del nervio trigémino y su bloqueo proporciona una desensibilización del párpado superior. Se inyecta 1-2 ml de anestesia en el foramen supraorbitario, a una profundidad de 1 cm, en la cara dorsal de la órbita. Exploración con luz Examen visual La primera parte de la exploración del ojo es comprobar la simetría de ambos ojos y de sus estructuras anejas, párpados, aparato lacrimal, órbita y zonas periorbitarias. A continuación se comprueba la integridad de la función palpebral, signos de descarga anormales, posibles traumatismos e inflamaciones, palpación del arco cigomático, hueso orbital y fosa supraorbitaria, puesto que cualquier tipo de inflamación a este nivel podría suponer una lesión de la zona retrobulbar o retroorbital. Debemos comprobar cualquier signo de dolor ocular (fotofobia o blefaroespasmo), conjuntivitis (edema y exudados), exoftalmos y enoftalmos del globo ocular. Exploración de orejas y ojos Los protocolos más frecuentes de sedación incluyen los siguientes fármacos: hidrocloruro de detomidina, xilacina y romifidina por vía endovenosa lenta. Adicionalmente, si el caballo o la exploración del ojo requiere de alguna técnica un poco más agresiva se pueden combinar estos fármacos con un analgésico como el butorfanol también por vía endovenosa. 59 Exploración del tórax respiratorio Inspección surco del huélfago, una línea a lo largo de las uniones costocondrales, originado por la hipertrofia de los músculos abdominales encargados de expulsar el aire. En esta situación también es posible ver el contragolpe del ijar. Palpación Este caballo presenta los ollares dilatados a consecuencia de la disnea que padece. Este caballo, con ORVR, recibe una sesión de sauna como tratamiento para mejorar su función pulmonar. Espacios intercostales en los que cortan las líneas del pulmón la hemiplejia laríngea o empiema de bolsas guturales. Al contrario, la disnea espiratoria aparece cuando hay dificultades para expulsar el aire de los pulmones. Es el caso de la obstrucción recurrente de vías respiratorias (ORVR), que en los casos crónicos produce el Línea Representación esquemática de las vías respiratorias bajas 86 Si los caballos presentan problemas respiratorios es conveniente realizar las tareas de limpieza sin los animales dentro del box. Tráquea Capilares Alveolos Bronquio derecho e izquierdo Bronquio principal Bronquiolo En primer lugar se hace una palpación superficial del tórax para buscar puntos dolorosos, o calientes debido a abscesos. La palpación profunda se hace para comprobar el estado de las costillas. Para ello se pasan los nudillos de una mano por la superficie de las costillas para comprobar la presencia de fracturas o fisuras que provocarán dolor que dificulta la respiración. Con la punta de los dedos se recorren los espacios intercostales para localizar puntos de dolor pleural en los principios de pleuritis. Espacio intercostal Paravertebral, paralela al suelo, a 4 dedos de las apófisis espinosas 17 Ilíaca, paralela a la anterior 16 Isquiática, parte del ángulo externo del isquion 14 Del encuentro, pasa por la articulación escápulo-humoral 10 Del codo 6 Unos boxes individuales y bien ventilados reducen considerablemente la presentación de ORVR. Exploración del aparato respiratorio La inspección busca descubrir cambios de forma o de volumen. Se puede captar un aumento de tamaño del tórax a consecuencia de enfisema alveolar crónico, un abultamiento ventral debido a edemas o hidrotórax, abultamientos por traumatismos de costillas o bien que estén deformadas. Es posible encontrarse con modificaciones de la columna vertebral como cifosis, lordosis o escoliosis. En inspiración, el caballo desplaza hacia fuera la caja torácica y la cavidad abdominal, mientras que en la espiración ocurre todo lo contrario. La inspiración es ligeramente más corta que la espiración. Los équidos presentan una respiración costo-abdominal en la que intervienen a partes iguales la caja torácica y la prensa abdominal. La respiración exclusivamente costal aparece en los procesos dolorosos del abdomen, como es el caso de los cólicos o peritonitis. Durante la inspección nos fijaremos si se presenta disnea, que se define como una respiración dificultosa o laboriosa. La disnea inspiratoria se produce cuando existen obstáculos a la entrada de aire de los pulmones. El animal tiene los ollares dilatados y depresión del hueco del ijar. Aparece en casos como 87 Punción venosa y análisis de sangre Cresta facial Arteria facial transversa Distintos tipos de tubos con o sin aditivos para la obtención de sangre. Vena facial transversa Dilatación de la vena bucal Arteria carótida Extracción de sangre mediante aguja y jeringa. 108 Otras venas que se utilizan es la vena facial transversa situada en la cabeza, pero sólo para recoger muestras de sangre muy pequeñas. También se puede recurrir a la vena torácica superficial, vena cefálica y vena safena medial. Las complicaciones que se obtienen a menudo son hematomas cuando se utiliza una aguja muy gruesa o se traumatiza mucho el vaso. Esto se puede minimizar levantando la cabeza y aplicando una presión directa sobre el lugar de la venopunción. Tipos de muestras sanguíneas Sangre Se recoge con anticoagulantes y se destinan al estudio hematológico, la investigación de parásitos hemáticos o la realización de hemocultivos. Las muestras recogidas con heparina se utilizan para determinaciones de gases sanguíneos. Vena yugular Vena torácica superficial Vena cefálica Vena safena medial Arteria metatarsal dorsal Suero El suero es la muestra de elección para la determinación de pruebas bioquímicas y hormonales, y para la determinación de anticuerpos. Se obtiene tras la coagulación de la sangre y retracción del coágulo. Para obtenerlo, dejar el tubo durante 1-2 horas a temperatura ambiente para que se forme el coágulo. A continuación, se despega el coágulo de las paredes y se centrifuga a 3.000 rpm durante 10 minutos. La utilización de tubos de vacío favorece y ayuda la toma de sangre cuando se requieren varios tipos de muestras. El suero se trasvasa a otro tubo limpio. Si no se va a analizar inmediatamente, lo mejor es congelar la muestra a -20 ºC hasta su análisis. Hay que tener en cuenta que los sueros muy hemolizados o lipémicos interfieren en muchas determinaciones, especialmente en la actividad de diferentes enzimas. Plasma Se obtiene después de centrifugar la sangre recogida con un anticoagulante. Se recomienda separarlo de los eritrocitos lo antes posible para evitar la hemólisis, detener el consumo de glucosa y evitar la producción de lactato. Tiene los mismos componentes que Lo mejor es trasvasar el suero a otro tubo o vial de plástico para enviarlo al laboratorio. La abundancia de fibrinógeno en la sangre de los caballos hace que en ocasiones el suero se coagule con temperaturas frías. Exploración del sistema cardiovascular La utilización de los análisis de sangre en los équidos es un apoyo importante y, en muchas ocasiones, esencial para llegar al diagnóstico de las enfermedades. Muchas de estas pruebas requieren de sangre entera o bien sin anticoagulantes para la obtención de suero. La vena de elección para obtener sangre es la yugular, situada en la gotera de la yugular. El lugar para la punción se localiza entre el primer y segundo tercio medio del cuello. Para ello se presiona la base del cuello para ingurgitar la yugular y se introduce la aguja con un ángulo de 45º respecto a la vena. De este modo se obtiene fácilmente la sangre utilizando aguja de 2025G o bien mediante tubos de vacío. Extracción de sangre Vasos para la extracción de sangre venosa y arterial en el caballo 109 Bloqueo nervioso diagnóstico Consiste en insensibilizar, mediante anestesia local (lidocaína o mepivacaína) comenzando desde la parte distal de las manos, los nervios cuyo trayecto pasa por esas localizaciones para valorar la remisión de la cojera tras la insensibilización. Se realizará siguiendo los siguientes pasos: • Valorar el caballo al trote sobre terreno duro y determinar las características de la cojera. • Inocular el anestésico en la zona sospechosa de ser el origen de la patología. • Hacerlo andar durante 5 minutos para difundir el anestésico y posteriormente ponerlo al trote sobre suelo duro para valorar la cojera. • Valorar el grado de remisión de la cojera. • En caso de no remitir la cojera o tener una mejoría casi inapreciable, repetir la anestesia de conducción en el siguiente punto de inoculación (se realiza de distal a proximal). 166 Ejemplo de estructuras desensibilizadas en el bloqueo del nervio digital palmar bajo: • El hueso navicular. • La bolsa navicular. • Los ligamentos sesamoideos distales. • La porción distal de los tendones flexores. • El corion de la ranilla y la suela. • El tercio palmar y la cara solear de la falange distal. Bloqueo anestésico palmar Radiografías Hueso IV metacarpiano (metatarsiano) Nervio lateral palmar (plantar) metacarpial (metatarsal) Radiografía de una infosura. Exploración del aparato locomotor Pruebas diagnósticas complementarias Radiografía de traumatismo con periostitis de la articulación interfalangiana proximal. Proyección radiológica oblicua del menudillo 167 La anestesia de bloqueo intra-articular complementa la anterior y es de muchísima ayuda en el diagnóstico por bloqueo de la articulación afectada. Radiología Permite evaluar el sistema osteoarticular, las superficies internas de las articulaciones y los reflejos de lesiones que dejan estructuras como los tendones sobre el hueso, como por ejemplo en caso de esguince del tendón extensor digital del dedo. 30º Radiografía del tejuelo y navicular, proyección dorsopalmar con cuña 60º. Vista del corvejón, proyección lateromedial. Examen clínico del aparato tendinoso Palpación En el examen clínico de los tendones en un animal sano, tanto los tendones flexores como el ligamento suspensorio deben ser perfectamente identificables y sus bordes han de estar perfectamente definidos. A la palpación presentan cierta sensibilidad al tacto, por lo que a veces conviene comparar con el miembro opuesto. La presencia de dolor sólo es representativa cuando es constante, en la zona que se palpan y en intensidad. Deben recorrerse desde la zona articular proximal a la distal intentando delimitar engrosamientos, tumefacciones, edematizaciones, crepitaciones y dolor asociado. Si el caballo o yegua presentan dolor muy acentuado, el animal adopta una posición antiálgica característica, aliviando el peso en los talones. Durante la palpación se aprecia dolor, calor y edema, por lo que en el examen conviene realizar esta maniobra en apoyo, y luego en elevación, donde los tendones se relajan y es posible palpar mejor todas las estructuras. Ecografía La ecografía es una técnica diagnóstica no invasiva que permite determinar la localización, extensión y naturaleza del traumatismo del tendón en los equinos. Es necesario el conocimiento exacto de las estructuras anatómicas para realizar una buena interpretación del estado de las vainas sinoviales, las cápsulas y los tendones. Para realizar la técnica, el caballo debe aplomarse. Hay que rasurar la zona que se va a examinar y desinfectarla posteriormente con alcohol. Tras ello se impregna la piel de la zona con 0,5 cm de gel de ecografía. El ecógrafo debe tener una sonda lineal o Ecografía de tendones. Zonas de colocación de la sonda en la ecografía de tendones III metacarpiano 170 IV metacarpiano SL II metacarpiano ICL Ligamento accesorio inferior (ICL) Tendón digital flexor profundo (DDF) Ligamento suspensor (SL) Tendón digital flexor superficial (SDF) DDF SDF sectorial de 7,5 MHz y el contacto con el gel de ecografía debe ser el máximo posible. En algunos casos los propietarios se niegan a rasurar la zona para que su caballo no denote una lesión tendinosa, pero hay que advertir que realizar así una exploración ecográfica provocará muy baja o nula calidad de la imagen obtenida. Los tendones tienen propiedades (impedancia acústica, reflexión, refracción y atenuación) que dependen de su estructura y que determinan la ecogenicidad de estos permitiendo la división de las estructuras a estudiar en ecogénicas, hiperecoicas, y anecoicas. Por ejemplo: una rotura fibrilar aguda de los tendones aparece como un espacio anecoico o con una ecogenicidad difusa en el tendón o ligamento afectado (estas lesiones son frecuentes en el tendón flexor digital superficial y en el ligamento suspensorio del menudillo). La ecografía de los tendones flexores en el miembro anterior Debido a su capacidad de extensión y contracción máxima cuando se realiza una actividad deportiva, los tendones flexores soportan unas presiones mayores que el resto de los tendones del cuerpo del caballo, por lo que su examen clínico es muy habitual a la vez que imprescindible. El examen de los tendones flexores debe referirse a las zonas anatómicas del hueso metacarpiano III o metatarsiano III (hueso de la caña), de tal forma que los hallazgos ecográficos y en la palpación los denominaremos: 1. Lesiones altas (tercio superior de la caña). 2. Lesiones medias (tercio medio de la caña). 3. Lesiones bajas (tercio inferior de la caña). 4. Vientre de trucha (se denomina así cuando afecta a los tres tercios de la caña y el tendón lesionado es el flexor superficial). En el caso de tendinitis crónicas, pueden provocar formación de fibrina que llegará a producir deformaciones (muchas veces sin tumefacción en la zona y con aparición o no de dolor). En el caso de lesión tendinosa de flexores, la cojera provocada es de tipo mecánico a causa de la restricción del movimiento. Exploración del aparato locomotor Los tendones son el elemento de sostén del sistema óseo. En el caballo, debido a las múltiples disciplinas que puede realizar con un jinete encima, se produce un incremento en el peso natural del caballo que hace descender sus articulaciones hasta el suelo. 171