ATLAS DE PATOLOGÍA DE LA INCUBACIÓN DEL POLLO
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ATLAS DE PATOLOGÍA DE LA INCUBACIÓN DEL POLLO Carlos Mario Plano - Ana María Di Matteo© SIGUIENTE AUTORES Carlos Mario Plano: Médico veterinario Master en Negocios con Orientación en Agribusiness. Autor del libro “Aves comerciales y su medio ambiente”. Gerente de producción de la división Buenos Aires de la empresa: Granja Tres Arroyos S.A. Comercial y Agropecuaria. Ana María Di Matteo: Médica veterinaria. Docente Autorizada de la U.B.A. Jefe de Trabajos Prácticos de la Cátedra de Histología y Embriología de la Facultad de Ciencias Veterinarias de la U.B.A. Investigadora de apoyo de la Secretaría de Ciencia y Técnica. 2 ANTERIOR SIGUIENTE PROLOGO Conscientes de la importancia de mejorar cada día más la productividad avícola, y con el ánimo de compartir la experiencia de los autores en el terreno del desarrollo embrionario y del diagnóstico de la patología de la incubación, es que se publica esta obra. Se ha buscado mostrar en fotografías toda la información recogida en las prácticas de embriodiagnosis de los últimos diez años. Los autores quieren agradecer a la empresa Granja Tres Arroyos S.A., de Argentina y especialmente a su presidente el Dr. Joaquín De Grazia por el apoyo y colaboración brindados para la publicación de esta obra. Además los autores dedican esta obra a sus padres e hijas. Buenos Aires, abril de 2001. 3 ANTERIOR SIGUIENTE ÍNDICE Página 8 Introducción Capítulo 1: Embriodiagnosis Embriodiagnosis Tabla N°1: Planilla 9 10 12 Capítulo 2: Clasificación por categorías Clasificación por categorías Claves para la embriodiagnosis 13 14 17 Capítulo 3: Fórmulas de cálculo Método simple Método ponderado Tabla N° 2: Comparación de ambos índices 18 19 20 22 Capítulo 4: Valores normales Valores normales 23 24 Capítulo 5: Causas de desvío de los valores normales Huevos infértiles Huevos cascados Gravedad específica Huevos contaminados Mortalidad embrionaria en Fase I Mortalidad embrionaria en Fase II Mortalidad embrionaria en Fase III Picados no nacidos (PNN) Malformaciones 26 27 29 30 31 32 35 36 38 39 Capítulo 6: Patología perinatal Patología perinatal, pollitos de descarte Pollitos con el ombligo congestivo Pollitos con el ombligo mal cicatrizado Pollitos con botones negros en el ombligo 42 43 43 43 43 4 ANTERIOR SIGUIENTE Pollitos con el ombligo sin cerrar Pollitos con onfalitis Pollitos pegajosos Pollitos secos, con cascarones de huevo pegado Pollitos muertos en las bandejas de las nacedoras, deshidratados y de tamaño menor al normal Pollitos que jadean y hay heces frescas en las bandejas de la nacedora Pollitos que nacen con defectos Pollitos despatarrados Pollitos con signos nerviosos Pollitos con hernia cerebral Pollitos que no se pueden parar Pollitos deshidratados Pollitos muy pequeños Pollitos muy grandes con el abdomen abultado y blando (fofos) Pollitos débiles Pollitos con plumón corto seco y ojos pegados Pollitos con la parte superior del pico sangrando y tarsos rojos Nacimientos prematuros Nacimientos atrasados Cascarones de huevo manchados con sangre en su interior Aspergilosis Pollitos con pericarditis, coagulación del vitelo y congestión hepática Capítulo 7: Desarrollo embrionario y nacimiento Foto N° 1: Huevo infértil Foto N° 2: Huevo fértil Foto N° 3: Primeras horas de incubación Foto N° 4: Primer día de incubación Foto N° 5: Segundo día de incubación Foto N° 6: Tercer día de incubación Foto N° 7: Cuarto día de incubación Foto N° 8: Quinto día de incubación Foto N° 9: Quinto día de incubación 43 43 44 44 44 44 44 45 45 45 45 45 46 46 46 46 46 46 46 46 46 47 48 49 50 51 52 53 54 55 56 57 5 ANTERIOR SIGUIENTE Foto N° 10:Sexto día de incubación Foto N° 11:Séptimo día de incubación Foto N° 12:Séptimo día de incubación Foto N° 13-1:Octavo día de incubación Foto N° 13-2:Octavo día de incubación Foto N° 14-1:Noveno día de incubación Foto N° 14-2:Noveno día de incubación Foto N° 15:Décimo día de incubación Foto N° 16:Undécimo día de incubación Foto N° 17-1:Duodécimo día de incubación Foto N° 17-2:Duodécimo día de incubación Foto N° 18-1:Decimotercer día de incubación Foto N° 18-2:Decimotercer día de incubación Foto N° 19:Decimocuarto día de incubación Foto N° 20-1:Decimocuarto día de incubación Foto N° 20-2:Decimocuarto día de incubación Foto N° 21-1:Decimoquinto día de incubación Foto N° 21-2:Decimoquinto día de incubación Foto N° 22:Decimosexto día de incubación Foto N° 23:Decimoséptimo día de incubación Foto N° 24-1:Decimoctavo día de incubación Foto N° 24-2:Decimoctavo día de incubación Foto N° 25-1:Decimonoveno día de incubación Foto N° 25-2:Decimonoveno día de incubación Foto N° 25-3:Decimonoveno día de incubación Foto N° 26-1:Vigésimo día de incubación Foto N° 26-2:Vigésimo día de incubación Foto N° 27-1:Vigésimoprimer día de incubación Foto N° 27-2:Vigésimoprimer día de incubación Capítulo 8: Alteraciones de las estructuras del huevo y Patología Embrionaria Foto N° 28: Coagulo de sangre en el vitelo Foto N° 29: Vitelo moteado o revuelto Foto N° 30: Mancha blanca en el vitelo Foto N° 31-1: Contaminación con hongos Foto N° 31-2: Contaminación bacteriana Foto N° 32: Colonia de Aspergillus spp. Foto N° 33: Albúmina coagulada 58 59 60 61 62 63 64 65 66 67 68 69 70 71 72 73 74 75 76 77 78 79 80 81 82 83 84 85 86 87 88 89 90 91 92 93 94 6 ANTERIOR SIGUIENTE Foto N° 34: Traumatismo del embrión Foto N° 35-1:Baja temperatura y/o alta humedad Foto N° 35-2:Baja temperatura y/o alta humedad Foto N° 36:Pollito PNN con edema en el cuello Foto N° 37-1: Malformaciones. Triplopodia Foto N° 37-2:Malformaciones. Duplicación Foto N° 38: Malformaciones. Miembro inferior Foto N° 39: Malformaciones. Encefalocele Foto N° 40: Malformaciones. Embrión cíclope Foto N° 41: Malformaciones. Anoftalmía Foto N° 42: Malformaciones. Duplicidad Foto N° 43: Malformaciones. Duplicidad Foto N° 44: Malformaciones: Gemelos unidos Capítulo 9: Patología perinatal Foto N° 45: Problemas de patas al nacimiento Foto N° 46: Signos nerviosos Foto N° 47: Pollitos con el pico sangrando Foto N° 48: Ombligo mal cicatrizado Foto N° 49: Botones negros en el ombligo Foto N° 50: Onfalitis Foto N° 51: Aspergilosis Foto N° 52: Deshidratación y gota Foto N° 53: Pollitos pegajosos Foto N° 54: Pollitos con plumón corto, seco y ojos pegados Foto N° 55: Pollitos con infección bacteriana 95 96 97 98 99 100 101 102 103 104 105 106 107 108 109 110 111 112 113 114 115 116 117 118 119 7 ANTERIOR SIGUIENTE INTRODUCCIÓN La práctica de revisar los huevos, de veintiún días de incubación, que quedan sin eclosionar en las bandejas de las nacedoras se denomina embriodiagnosis. Es una herramienta muy útil, tanto para médicos veterinarios, y gerentes de distintas áreas de producción avícola, ya que permite diagnosticar la posible causa de la falta de productividad en las plantas de incubación. Consiste en abrir los huevos que han quedado como remanentes en las bandejas de las nacedoras con pollitos sin nacer, para determinar si éstos eran fértiles, o si bien se produjo una interrupción durante el proceso de la incubación. Como se trata de una población, hay ciertos individuos que normalmente no completan su desarrollo embrionario, muriendo en alguna etapa del proceso, por ese motivo se definen estándares, que son comparados con los valores hallados. Una vez conocido el momento en que se produce la muerte de los embriones por encima de los valores normales, se pueden tomar las medidas correctivas en las áreas que correspondan. Tanto en las granjas de los reproductores, en el transporte de los huevos a la planta, en la planta de incubación, en la fábrica de raciones, o bien medidas sanitarias, o nutricionales. Luego de veintiún días, en que los huevos han estado expuestos al proceso de la incubación, se producen alteraciones, que hace muy difícil determinar la edad exacta a la que se murió el embrión, motivo por el cual se dan claves para ubicarlos por períodos, que se corresponden a las posibles causas de muerte o falta de productividad. El examen de los pollitos nacidos, también es una práctica que permite tomar acciones correctivas en las distintas áreas, pronosticar la productividad del futuro lote de pollitos en la granja de producción. De allí, la importancia del diagnóstico de las patologías perinatales. 8 ANTERIOR SIGUIENTE 1 Capítulo EMBRIODIAGNOSIS 9 ANTERIOR SIGUIENTE Embriodiagnosis Una vez finalizado el nacimiento, en la planta de incubación, se eligen cuatro bandejas, una de la parte superior de la nacedora, dos de la parte media y una de la inferior. De ellas se toman todos los huevos que han quedado sin eclosionar, y se los pone en una bandeja, para un posterior análisis, en un lugar apropiado (alejado y aislado de las salas de incubación, nacedoras y otros pollitos), y con buena iluminación. Como se trata de un diagnóstico de la mortalidad embrionaria, se puede denominar: embriodiagnosis. Este procedimiento permite efectuar al mismo tiempo un diagnóstico de fertilidad. Se puede establecer como rutina de la planta de incubación, por ejemplo una vez por semana o por cada nacimiento, o bien cada vez que se presente un problema. Es conveniente contar con una mesa, para apoyar los maples con los huevos no eclosionados. Un recipiente de veinte litros de capacidad, para arrojar los residuos, que ya fueron analizados. Debe haber una persona, que asista a quien está haciendo la embriodiagnosis. Su función será la de ir anotando lo que el operador observa en una planilla. Puede ser como la que se muestra en la Tabla Nº 1. Los datos para dicha tabla deben ser lo más completos posibles, deben figurar: • Fecha del nacimiento del lote de pollitos analizados. • Datos del plantel: Número que lo identifica. Línea genética. Edad que tenía en el momento de postura de los huevos analizados • Fecha de puesta de los huevos. • Fecha de carga de los huevos a la incubadora. Y además, todos los datos que creamos convenientes. Por ejemplo en observaciones, los tratamientos efectuados al lote, temperatura ambiente, eventuales problemas en el transporte de huevos etc. 10 ANTERIOR SIGUIENTE • Cantidad total de pollitos nacidos del lote, y cantidad total de huevos no eclosionados, que quedaron como remanentes en las bandejas de ese nacimiento. • Porcentaje de nacimiento real del lote. Índice de nacimiento estándar para este lote. Como resultado de ir abriendo los huevos no eclosionados, el asistente anota en la planilla, lo observado por categoría. Recordando la ubicación de las bandejas: una de la parte de arriba de la nacedora, dos de la parte media y una de la parte inferior. Del total de huevos analizados por categoría, se los divide por el total de huevos puestos a incubar en las bandejas, y se lo multiplica por cien y se obtiene el índice por categoría, que luego se discutirá más adelante, cuando se lo compare con el índice ponderado. La práctica de embriodiagnosis se puede hacer, abriendo los huevos en su parte media, con los dedos pulgares de ambas manos, o bien abriéndolos por el polo superior, donde está la cámara de aire. Éste último procedimiento es el mejor, se retira con tijeras la periferia de la misma, esto permitirá observar el interior del huevo minuciosamente (Foto N° 3). 11 ANTERIOR SIGUIENTE Tabla N° 1: Planilla para anotar los datos obtenidos en la embriodiagnosis. Fecha de Postura:.../..../.... Plantel N°:................. Fecha de carga:..../..../.... Línea:.............. Edad:......... Índice de nacimiento: Índice estándar: Total de pollitos nacidos: Huevos remanentes: Cantidad de huevos cargados por bandeja de nacedora: Bandejas Infértiles Fase I Fase II Fase III PNN Contaminados Malformación Cascados Arriba Medio Medio Abajo Total Índice Observaciones:......................................................................... .................................................................................................. ................................................................................................... Fecha de la embriodiagnosis: ..../..../.... Confeccionado por: Revisado por: 12 ANTERIOR SIGUIENTE 2 Capítulo CLASIFICACIÓN POR CATEGORÍAS 13 ANTERIOR SIGUIENTE Clasificación por categorías A medida que el operador observa los huevos, que va abriendo, hace el diagnóstico del momento en que se interrumpió el proceso de incubación, o bien si se trata de un huevo infértil, contaminado o cascado. El ayudante irá anotando, estos datos en una planilla (Tabla N° 1), para luego hacer los cálculos y así conocer los desvíos de los valores normales. Se definen las siguientes categorías en la falla de la eclosión: • Huevos infértiles: Son los que no han sido fertilizados, y que por lo tanto no tienen desarrollo embrionario, se observa el blastodisco, que es una formación blanquecina con un diámetro entre 3 y 4 mm. En la Foto N° 1 se observan más detalles. • Huevos fértiles: Foto N° 2. El óvulo ha sido fecundado, en el momento de la postura es un embrión con alrededor de 50.000 células. Se forma el blastodermo, con un área interna o pelúcida (embrión ppte. dicho), y un área externa u opaca. Este diagnóstico diferencial entre huevo fértil e infértil es relativamente fácil en huevos frescos. En el momento de efectuar la embriodiagnosis a los 21 días de incubación, se producen cambios, y por este motivo, se tienen en cuenta otras características (además del la observación del blastodermo), que ayudan a su identificación, por ejemplo la yema es menos brillante y no se encuentra ubicada en posición central como en el huevo fértil. La mortalidad del embrión en este período se encuadra en la Fase I, que a continuación se detalla. • Fase I, Mortalidad embrionaria temprana: Desde la Foto N° 3 hasta la Foto N° 7. Este período comprende la primera fase de la incubación, desde el primer día hasta el cuarto día inclusive. Tal como se explica en la diferenciación entre huevo fér14 ANTERIOR SIGUIENTE til e infértil, es difícil, por lo que hay que guiarse por lo explicado en el ítem anterior*. Un signo muy notable en este período, es la formación de las estructuras anexas del embrión, tal como se observa en la Foto N° 4. Durante la embriodiagnosis pueden observarse formaciones que pueden confundir el diagnóstico de mortalidad embrionaria en este período: - Coágulos de sangre o restos de tejidos ovulatorios en el vitelo, Foto N°28, que se diferencia de la formación temprana de un embrión - Vitelo moteado o revuelto, Foto N° 29. - Manchas blancas en el vitelo: Foto N° 30. Se debe diferenciar de la formación temprana de las estructuras anexas del embrión. Foto N° 4. • Fase II, o mortalidad embrionaria media: Desde la Foto N° 8 hasta la foto N° 23. Este período comprende a los embriones muertos desde el quinto día, hasta el decimoséptimo día de incubación. Lo más importante en esta fase, comienza con la formación del ojo (Foto N° 8) y finaliza cuando el pollito se prepara para la eclosión. En esta etapa, la mortalidad embrionaria va acompañada de procesos naturales de degradación de la sangre, que produce un color que puede confundirse con huevos contaminados por bacterias. Estos últimos además presentan un olor fétido que los caracteriza. Foto N° 31-2. • Fase III o mortalidad embrionaria tardía: Fotos N° 24, 25 y 26. Abarca desde el decimoctavo día hasta la preparación para la eclosión picando la cámara de aire. Esta etapa se caracteriza por la absorción del saco vitelino y el pasaje a una respiración pulmonar. • Picados no nacidos o PNN: Foto N° 35. Se trata de pollitos que picaron el cascarón pero que no eclosionaron totalmente. 15 ANTERIOR SIGUIENTE • Pollitos con Malformaciones: Desde la Foto N° 37 hasta la Foto N° 55. Responden a etiologías muy variadas, y las anomalías son muy diversas, se discuten las más comunes en el desarrollo del capítulo “Causas del desvío de los valores normales”. • Huevos Cascados: Son huevos que al abrirlos se los encuentra deshidratados, o vacíos de contenido, por fisuras de la cáscara durante la manipulación con la consiguiente pérdida excesiva de humedad. • Huevos contaminados: Fotos N° 31-1 y 31-2. La aparición de estos huevos y su incidencia varía en función del manejo de las granjas de reproductores. La contaminación puede ser debida a hongos o bacterias. La contaminación fúngica se caracteriza por el color verde azulino del interior del huevo, Foto N° 31-1, en algunos casos se puede observar una colonia (Foto N° 32) La contaminación por bacterias produce un olor fétido característico, y cambios de coloración (Foto N° 31-2). • Pollitos de descarte: Fotos N° 39,45,46, 49 y 50. Se los trata en el capítulo Patología Perinatal. * Nota de los autores: El Dr. Alejandro Mc Cormack, mediante una comunicación personal, recomienda para situaciones de dificultades de diagnóstico hacer una ovoscopía a los 8 días de incubación, para abrir los huevos sin desarrollo embrionario, y de esa manera hacer un diagnóstico diferencial entre mortalidad embrionaria muy temprana y huevo infértil. 16 ANTERIOR SIGUIENTE Claves para la embriodiagnosis Infértil: El vitelo es más consistente, la albúmina es más fluida. Si se puede observar el blastodisco es la principal característica, Foto N° 1. Fase I: Comprende la mortalidad en el desarrollo inicial del embrión. Es un huevo, que al abrirlo, se observan desde las primeras fases del desarrollo embrionario y sus estructuras anexas, hasta el desarrollo de los vasos sanguíneos o los restos que quedan de ellos luego de la incubación de 21 días. Fotos N° 3 a 7. Fase II: En esta fase se encuentran embriones a los que se les nota bien la formación del ojo y todas las etapas intermedias de crecimiento, hasta los que están completamente desarrollados, con la cabeza bajo el ala (sin haber picado, aún, la cámara de aire). Fotos N° 8 a 23. Fase III: La clave de esta fase es la de encontrar un pollito completamente desarrollado. La cabeza se dirige hacia el polo superior del huevo. El saco vitelino está en proceso de ser reabsorbido hacia la cavidad abdominal. Fotos N° 24 a 26. PNN: El pollito ha picado la cáscara del huevo, se nota claramente la perforación. Fotos N° 26 y 35. Contaminados: Se los identifica por el color y olor que los caracteriza, al momento de abrir el huevo. Fotos N° 31 y 32. Cascados: Por la quebradora de la cáscara, que no siempre es fácil de observar. El interior del huevo tiene un contenido deshidratado. Malformaciones: Se los identifica por las anomalías de los embriones formados. Fotos N° 37 a 55. 17 ANTERIOR SIGUIENTE 3 Capítulo FÓRMULAS DE CÁLCULO 18 ANTERIOR SIGUIENTE Fórmulas para el cálculo del índice de falla por atributo. Los datos obtenidos se pueden calcular sobre el universo de las cuatro bandejas de la nacedora y así proyectar esa información a todo el nacimiento de ese día y de ese plantel, o bien ponderar la información obtenida de estas cuatro bandejas sobre el universo del nacimiento de ese plantel analizado. Con el primer método se cometen muchos errores, motivo por el cual es mejor trabajar con el método de cálculo ponderado. Se discuten ambos métodos a continuación. !"Universo de cuatro bandejas. Método simple. Un plantel de reproductoras pesadas venía con un índice de eclosión de 85%, un día determinado baja a 82,07%. Se analizan los huevos remanentes (de los que no hubo eclosión) de cuatro bandejas de las nacedoras, la capacidad total de todos los huevos puestos en estas bandejas es de 162 huevos, cada una de ellas, por lo tanto las cuatro suman un universo total de 648 huevos puestos a incubar. Se eligen según la técnica, una bandeja de la parte superior de la nacedora, dos del medio, y una de la parte inferior. Se realiza la embriodiagnosis, y se obtienen los siguientes datos: Fase I: 63 embriones muertos, sobre un universo de 648 huevos el índice es 9,72%. Fase II: 7 embriones muertos, el índice es 1,08%. Fase III: 20 embriones muertos, el índice es 3,09% PNN: 6 embriones, también sobre el universo de las cuatro bandejas el índice es 0,92%. Infértiles: 44 huevos, el índice es 6,79%. Contaminados: 3 huevos, el índice es 0,46% Cascados: 9 huevos, el índice sobre este universo es 1,39%. 19 ANTERIOR SIGUIENTE Malformaciones: 4 embriones, el índice es 0,62%. Si se suman todos los valores, la cifra total es de 156 huevos que han quedado como remanentes, en estas cuatro bandejas, que comparado con el universo de 648 huevos, el índice de huevos no eclosionados es de 24,07% (156 huevos sin nacimiento sobre un total de 648 huevos puestos a incubar en esas cuatro bandejas). Si del 100%, no eclosionó el 24,07% el nacimiento de estas bandejas por lo tanto del 75,93% (100%-24,07%), y no del 82,07% como realmente fue el del plantel. Solo se obtiene una realidad de las cuatro bandejas, pero no la del plantel. !"Fórmula ponderada: Se toman exactamente las mismas cuatro bandejas, y los mismos valores, pero se los pondera sobre el universo total del plantel del nacimiento analizado ese día. Un dato adicional a tener en cuenta es el número total de los huevos no eclosionados ese día y de ese plantel, para multiplicarlo por cada valor hallado de cada fase durante la embriodiagnosis de las cuatro bandejas. Al resultado se lo divide por el otro dato adicional, que es el universo total de huevos puestos a incubar pertenecientes al plantel analizado. Posteriormente se divide este resultado por los huevos remanentes analizados (sin eclosión), que se encuentran en las cuatro bandejas, en este ejemplo es 156. La fórmula es la siguiente: (A x B) / C = N (N / H) x 100 = índice por ítem o fase analizada. Donde: 20 ANTERIOR SIGUIENTE A : Es el número de huevos de un ítem o fase analizada. Por ejemplo, como se muestra el caso que se está explicando se encontraron 63 huevos con embriones muertos en la Fase I. B : Es el número total de huevos, de todo el plantel analizado, de los que no hubo eclosión de pollitos. Por ejemplo, en este plantel que se está analizando, se cargaron en las incubadoras 67.554 huevos, de los que nacieron 55.444 pollitos (nacimiento del 82,07%), esto significa, que en las bandejas de todas las nacedoras en las que estaba cargado este plantel, quedaron sin eclosionar 12.110 huevos. C : Es el universo total de huevos puestos a incubar del plantel analizado, para este ejemplo 67.554 huevos. N : Media ponderada, resultante de la operación anterior. En este ejemplo (63 X 12.110) / 67.554 = 11,29. H : Es la cantidad real de huevos remanentes (sin eclosionar), analizados de las cuatro bandejas de la nacedora. Para este ejemplo son los 156 huevos que han quedado sin eclosionar en las cuatro bandejas elegidas, Índice : Para este ejemplo ( N=11,29 / H= 156) x 100 = 7,24%, que es el índice ponderado para la Fase I, para el nacimiento de 82,07%. Valor muy distinto, de 9,72% que se encontró en la misma fase, con la fórmula que toma el universo de las cuatro bandejas explicada al inicio de este capítulo. A continuación se calculan todos los (índices ponderados): Fase I: (63x12.110)/67.554= 11,29. (11,29/156)x100= 7,24%. Fase II:(7x12.110)/67.554=1,25. (1,25/156)x100= 0,80% Fase III:(20x12.110)/67.554)=3,58. (3,58/156)x100=2,30% PNN: (6x12.110)/67.554=1.07. (1,07/156)x100=0,69% Infértil (44x12.110)/67.554=7,88. (7.88/156)x100=5,05% Contaminado:(3x12.110)/67.554=0,54.(0,54/156)x100=0,35% Cascado: (9x12.110)/67.554=1,61. (1,61x156)x100=1,03% Malformaciones:(4x12.110)/67.554=0,72. (0,72x156)x100=0.46% 21 ANTERIOR SIGUIENTE La sumatoria total de todas las categorías es de 19,72% de huevos no eclosionasdos, lo que proyecta una nacimiento de 82,08% (100%-19,72%). Valor mas cercano al 82,07% del índice de nacimiento real del plantel que el 75,93% que se proyecta cuando no se ponderan los valores y se utiliza como universo las cuatro bandejas analizadas. Tabla N° 2: Comparación de los distintos métodos de cálculo de los valores encontrados en la embriodiagnosis. Según el ejemplo mostrado. Atributos Cantidad Método simple Método ponderado 63 7 20 6 44 3 9 4 156 9,72% 1,08% 3,09% 0,92% 6,79% 0,46% 1,39% 0,62% 24,07% 7,24% 0,80% 2,30% 0,69% 5,05% 0,35% 1,03% 0,46% 17,92% Nacimiento proyectado 75,93% Nacimiento real del plantel: 82,07%. 82,08% Fase I Fase II Fase III PNN Infértiles Contaminados Cascados Malformaciones Totales 22 ANTERIOR SIGUIENTE 4 Capítulo VALORES NORMALES 23 ANTERIOR SIGUIENTE Valores normales Los datos obtenidos durante la embriodiagnosis, que han sido volcados en la planilla correspondiente, como la que se muestra en la Tabla N° 1, sirven para fines diagnósticos si se los compara con valores normales o estándares. Los estándares son distintos para cada empresa, debido a que pueden variar según el equipamiento de incubadoras, la línea genética, la edad del plantel, el aprovechamiento de huevos incubables, el tiempo de permanencia de los huevos en el depósito, etc. Es conveniente que cada empresa cuente con sus propios estándares, mediante la acumulación de datos de la rutina de la embriodiagnosis, realizada en la planta de incubación. Las empresas proveedoras de la línea genética, le pueden proveer los valores normales, para cada edad de los lotes que se están considerando. Solamente como guía se dan los siguientes valores estándares: Infertilidad: 3,0 a 10,0 % Mortalidad: Fase I: Fase II: Fase III: PNN: Contaminados: Cascados: Malformaciones: Pollitos de descarte: 2,0 a 0,5 a 2,0 a 0,7 a 4,0% 0,7% 4,0% 0,9% 0,5% 0,3% 0,3% 0,3% Los valores estándares, sirven tanto para diagnóstico de situación de una operación determinada, o bien para fijar objetivos de 24 ANTERIOR SIGUIENTE mejoramiento del personal involucrado. Una vez que se conoce en qué período del proceso de incubación hay desvíos, se pueden buscar las posibles causas. Para ello en el capítulo “Causas del desvío de los valores normales” se dan algunos ejemplos. 25 ANTERIOR SIGUIENTE 5 Capítulo CAUSAS DE DESVÍO DE LOS VALORES NORMALES 26 ANTERIOR SIGUIENTE Huevos infértiles: Si como resultado de la embriodiagnosis se determina que hay un problema de fertilidad, se debe analizar el lote de reproductores en la granja de producción. Posibles causas: • Contaminación de la ración con nicarbazina: Se caracteriza por producir huevos de cáscara blanca, yema manchada, o yema y albúmina mezclados (huevo batido) tal como se puede observar en la Foto N° 29. La nicarbazina es una droga usada en la ración de los pollos de engorde para el control de la coccidiosis. En aquellas fábricas de raciones, que producen alimento tanto para pollos como para reproductores, se pueden producir contaminaciones, que incorporaran accidentalmente esta droga a la ración de los reproductores, ya que se adhiere fácilmente a las paredes por donde circula. La intensidad del cuadro tóxico depende de la dosis recibida y del tiempo que los animales estuvieron consumiendo, puede afectar tanto la fertilidad como la producción diaria de huevos. Lo primero en afectarse es la fertilidad, puesto que a 10 ppm y durante siete días de ingestión, ésta baja drásticamente. Si se retira la ración contaminada, el índice de fertilidad se recupera luego de consumir un alimento libre de esta droga, en una a tres semanas. La yema moteada, (Foto N° 29), se produce con una concentración de nicarbazina de 15 ppm y con un tiempo de consumo de una a tres semanas. El cuadro se revierte luego de un retiro de siete a diez días. El color marrón de la cáscara se vuelve blanco con la ingesta de una ración con una concentración de nicarbazina de 20 ppm, y un tiempo de exposición de tres días. El cuadro revierte en un poco más de tres días luego de consumir un alimento libre de la droga. 27 ANTERIOR SIGUIENTE • Iatrogenia: Hay muchos fármacos que afectan la fertilidad de los lotes, debido a ello, todos los tratamientos hay que hacerlos con la supervisión de un Médico Veterinario. Se deben anotar en las planillas diarias de la granja, todo tipo de tratamiento efectuado, para poder luego tener información precisa al momento de presentarse un cuadro de infertilidad en la planta de incubación. • Manejo de los machos: La infertilidad atribuida al manejo de los machos puede deberse a: # Exceso o falta de la cantidad en proporción a la hembra. # Manejos individuales, por ejemplo tratamientos contra el piojillo. # Estado general: Poco o excesivo peso. Malformaciones de los miembros inferiores o columna (por ejemplo lordosis). Pérdida de peso. Traumatismos, pododermatitis, artritis etc. Enfermedades, tales como cólera, parasitosis, etc. Los machos pueden ser demasiado jóvenes o viejos para un determinado plantel. # La falta de agua, o la temperatura de la misma, que nunca debe estar a menos de siete grados, ni a más de treinta grados centígrados. # Temperatura ambiente: Los extremos de temperatura afectan los animales, puesto que con frío intenso las aves se amontonan, para conservar el calor y los machos no trabajan, y el calor produce una postración por descompensación. # El cambio de machos: Cuando se hace la práctica del cambio de machos hay que tener en cuenta un tiempo determinado para la formación del harén dentro del lote. # Alimentación inadecuada: en calidad y cantidad. # Desbalance nutricional y/o deficiencias: la deficiencia de Niacina puede ocasionar un falta total de nacimiento. La deficiencia de Vitamina E, afecta la fertilidad significativamente. #Alta densidad animal. #Gallinas excedidas de peso por gordura. 28 ANTERIOR SIGUIENTE Huevos cascados: Son aquellos huevos que han sufrido una pequeña fisura o fractura en la cáscara, no siempre fáciles de observar. Durante el proceso de incubación perderán humedad, y al momento de la embriodiagnosis se los observa prácticamente vacíos de contenido, o con la albúmina más concentrada. La causa de un alto índice de huevos cascados puede deberse a: ⇒ Manejo brusco de los huevos en la granja, inadecuado transporte, o mal manejo en la sala de huevos de la planta de incubación, o bien durante la carga en las incubadoras. ⇒ Hay huevos que se cascan al momento de la transferencia, en los que se encuentra un embrión desarrollado, a veces injuriado y con las membranas secas (Foto N°34). Mala calidad de la cáscara, que predispone a roturas y va acompañado de un alto índice de huevos contaminados (por la permeabilidad de la cáscara a la penetración bacteriana). La mala calidad de la cáscara puede deberse a varias etiologías, a saber: • Nutrición: Deficiencia de vitaminas o minerales, por ejemplo Vitamina D, Calcio etc. • Enfermedades: Bronquitis infecciosa, Síndrome de baja de postura. • Temperatura ambiente: los días de excesivo calor afectan la calidad de la cáscara, • Tamaño del huevo: a mayor tamaño menor es la calidad de la cáscara. • Edad de las gallinas: a mayor edad mayor tamaño del huevo. 29 ANTERIOR SIGUIENTE Gravedad específica: Es una manera de medir la calidad de la cáscara del huevo. Consiste en medir la densidad de los huevos a distintos gradientes de concentración de sal en agua. Procedimiento: En recipientes de veinte litros de capacidad, cada uno, se coloca agua, a la misma temperatura de los huevos que se analizarán. Se va agregando sal y midiendo con un densímetro (calibrado entre 1065 y 1100), de tal manera que quede un recipiente con una solución de una densidad de 1065, otro de 1070, otro de 1075, y así sucesivamente de cinco en cinco hasta llegar a una solución salina de 1100. Se colocan cincuenta huevos en cada recipiente, y se anotan la cantidad de huevos que flotan para cada densidad gravimétrica. Las cantidades de huevos que flotan se multiplican por su densidad, a la sumatoria de estos resultados se los divide por la cantidad total de huevos analizados, se obtiene así la densidad específica como promedio ponderado. Para un lote joven debe estar entre 1080 a 1090. A medida que baja la gravedad específica aumenta el índice de huevos cascados y contaminados. 30 ANTERIOR SIGUIENTE Huevos contaminados: En el momento de la postura el huevo está a temperatura corporal, la exposición ambiental lo enfría. Debido a esto la masa interna disminuye de tamaño, y forma la cámara de aire, produciéndose un vacío, que hace penetrar aire desde el exterior hacia el interior del huevo (por diferencia de presión), esto favorece la entrada de bacterias a través de los poros de la cáscara. Las bacterias involucradas en la contaminación de los huevos son muy variadas, las más comunes son: Pseudomona spp., E. Coli, Salmonella spp. etc.. Al momento de la embriodiagnosis muchos de los huevos ya han explotado en el proceso de la incubación, pero los que quedan en las bandejas de las nacedoras, tiene un olor fétido y un color que los caracteriza, Foto N° 31-2. La contaminación debida a hongos da un color verde azulino en el interior del huevo, Foto N° 31-1. La primer barrera para evitar la contaminación es la cutícula, pero como es muy variado su espesor, no llega a ser una buena barrera. Las causas de una contaminación de huevos pueden ser por: $ Densidad específica de los huevos: esto se trató en la calidad de la cáscara de los Huevos Cascados en este mismo capítulo. Para evitar una mayor penetración bacteriana la densidad debe ser de 1090. $ Tiempo de permanencia del huevo en el nido, si este es el problema recolectar con mas frecuencia. $ Higiene, limpieza y desinfección de los nidos y de la cama en su interior. $ Desinfección de los huevos. $ No incubar a los huevos de piso. $ Limpieza, higiene y desinfección de los depósitos de huevos incubables, del transporte. Y de la manipulación de los huevos. 31 ANTERIOR SIGUIENTE Mortalidad embrionaria temprana en Fase I: Si se encuentran valores por encima del estándar, si bien hay muchas causas, tal como se verá en el desarrollo de este tema, lo más inmediato es revisar el manejo del huevo incubable. Etiología: Esta fase está relacionada con el manejo del huevo incubable, (embrión de cincuenta mil células, en plena división), foto N° 2. Para detener el proceso de división celular, desde la postura hasta que se coloca en la incubadora - para que ese proceso continúe su evolución -, se lo debe enfriar a una temperatura que no afecte la vitalidad celular y que a su vez no la estimule, a esta marca térmica se la denomina “cero fisiológico” y es de 23,9°C en el interior del huevo, a mayor tiempo de almacenaje menor deberá ser esa temperatura. Las principales razones para una mala productividad debido a fallas en esta fase pueden deberse a: $ Tiempo de almacenamiento del huevo: si al huevo se lo almacena por más de cinco días, la incubabilidad disminuye entre 0,5% a 1,0% por día adicional. $ Condiciones de la sala de almacenamiento: se deben respetar la temperatura y humedad de la sala de almacenamiento de huevos. La temperatura debe estar en 18° C, la humedad relativa que debe estar entre 70 y 75%. Ambos parámetros varían según el tiempo de almacenamiento de los huevos. $ Tiempo de almacenaje demasiado corto: se produce una mortalidad embrionaria temprana, por una deficiente posición del embrión al momento de la incubación. En los primeros momentos de puesto el huevo, el blastodermo se encuentra en el centro del mismo, durante el almacenamiento la yema gira hacia el polo superior, quedando así el blastodermo correctamente ubicado. 32 ANTERIOR SIGUIENTE Edad de la gallina: los huevos provenientes de gallinas viejas, es conveniente incubarlos con menor tiempo de almacenamiento. Si éste debe ser mayor a los siete días, es mejor que sea de gallinas jóvenes, puesto que se mantiene la calidad del albumen. $ Permanencia del huevo en el nido por tiempo prolongado: Si la temperatura es alta, comienza allí el proceso de incubación, hasta pueden formarse las estructuras embrionarias anexas, si luego se lo enfría en la sala de almacenamiento de huevos, el embrión detiene el crecimiento y muere indefectiblemente. En la embriodiagnosis se observan las estructuras anexas (Foto N° 4). Si el huevo se expone a temperatura muy alta o a radiaciones solares, la albúmina puede coagularse, al examinarlos se observan fácilmente los coágulos Foto N°33. $ Intenso frío: es otro factor a tener en cuenta en el manejo de huevo incubable, ya que conduce a una mortalidad embrionaria precoz. $ Cambios bruscos de temperatura y/o humedad: se deben evitar, puesto que provocan condensación de gotitas de agua en la superficie de la cáscara del huevo, que favorece la contaminación bacteriana. $ Desinfección de los huevos: Si se emplean productos contraindicados o altas dosis, como por ejemplo el uso de amoniocuaternario a dosis superiores a 1000 ppm, aumenta la mortalidad embrionaria precoz. Cuando se emplean soluciones sobre la superficie del huevo, hay que tener en cuenta la temperatura de la misma, para no provocar cambios bruscos de las condiciones físicas del embrión. $ Precalentamiento: se deben seguir las instrucciones precisas para el precalentamiento, puesto que se deben ofrecer las correctas condiciones físicas del ambiente y uniformidad a toda la masa de huevos. $ Condiciones de la incubadora: afectan a los embriones la inadecuada temperatura, de ventilación y volteo. $ 33 ANTERIOR SIGUIENTE Calidad de la cáscara de los huevos. $ Deficiencia nutricional de la ración de reproductoras. $ Micotoxinas. $ Enfermedades del plantel de reproductores: Como es el caso de la Enfermedad de New Castle, Enfermedad Respiratoria Crónica, Difteroviruela. $ 34 ANTERIOR SIGUIENTE Mortalidad embrionaria media o en Fase II: Pude deberse a: $ Cambios bruscos de la temperatura o de la ventilación en la incubadora. $ Volteo inadecuado o ausente. $ Baja temperatura o alta humedad en la incubadora. $ Falta de oxígeno o el exceso de dióxido de carbono, en la sala de incubación. $ Cáscara del huevo muy delgada. $ Contaminación del huevo. $ Mala nutrición o estado sanitario de los reproductores. $ Deficiencia de Riboflavina, Vitamina B12 y D3. 35 ANTERIOR SIGUIENTE Mortalidad embrionaria tardía o en Fase III: Puede deberse a: $ Alta humedad o baja temperatura en el período de incubación: Los embriones se los encuentra muertos en un huevo con la cámara de aire muy reducida, los tarsos enrojecidos (Foto N° 35), el pico sangrando (Foto N° 35), el tejido celular subcutáneo edematoso, en la zona de la nuca del pollito puede haber un trasudado gelatinoso (Foto N° 36).El saco vitelino está muy abultado. Para completar el diagnóstico de esta situación, se puede medir la pérdida de humedad de los huevos durante el período de incubación. Para ello se pesan los huevos al momento de colocarlos en la incubadora y luego nuevamente, en el momento de la transferencia. La perdida de un 12% del peso de los huevos es una medida correcta. Esto asegura el intercambio gaseoso junto con el hídrico. El exceso de dióxido de carbono en el embrión conduce a su muerte por acidosis. Los embriones que no llegan a morir en este período, tampoco eclosionarán, puesto que la cámara de aire tan reducida los conduce a picar muy arriba, y muchos morirán en ese intento, tal como se discute en Picados No Nacidos, mas adelante. $ Alta temperatura o baja humedad durante la incubación: los embriones son más pequeños de lo habitual, puede haber pollitos muy secos y deshidratados. El saco vitelino está más reducido que lo normal. La pérdida de humedad durante los primeros dieciocho días ha sido superior al 12%. La tolerancia a la pérdida de humedad es mayor que a la poca pérdida. $ Embriones infectados por distintos agentes etiológicos. $ Alta humedad en la nacedora. $ Huevos enfriados excesivamente. $ Deficiencias: la deficiencia de Biotina, produce mortalidad 36 ANTERIOR SIGUIENTE embrionaria entre los diecinueve y veintiún días de incubación. La deficiencia de Vitamina D, como origina mala calidad de cáscara, lleva a una gran pérdida de humedad, al igual que una ración pobre en Calcio. La falta de Manganeso ocasiona extremidades cortas y plumón anormal en embriones encontrados sin eclosionar en este período. En la deficiencia de Zinc, las aves carecen de rabadilla, y de algunas partes del esqueleto. La sobredosis de Selenio produce pollitos débiles. $ Temperatura muy alta en la nacedora. $ Falta de ventilación. 37 ANTERIOR SIGUIENTE Picados No Nacidos o PNN: Son pollitos que alcanzan a picar la cáscara del huevo en forma parcial, y que no pueden eclosionar al momento del nacimiento. Posibles causas: $ Inadecuada alimentación de las reproductoras. $ Enfermedad de los reproductores, Salmonelosis, Micoplasmosis, Encefalomielitis, etc.. $ Genes letales. $ Huevos colocados al revés. $ Huevos de cáscara delgada. $ Traumatismos durante la transferencia, Foto N° 34. $ Problemas con el volteo durante las primeras semanas de incubación. $ Humedad baja durante los veinte y veintiún días de incubación. $ Mala circulación de aire o alta concentración de CO2 durante los veinte y veintiún días de incubación. $ Transferencia muy tardía. $ Fumigación con exceso de formalina durante el picado de los huevos en la nacedora. $ Alta humedad o baja temperatura en el período de incubación: ver la discusión de este mismo tema en Mortalidad en Fase III. La pérdida de humedad en el período de incubación es inferior al 12%, los pollitos pican muy arriba del polo superior del huevo, Foto N° 35, Hay sangrado en el pico a raíz del esfuerzo, tienen los tarsos enrojecidos (Foto N° 35-2). $ Registros de temperatura, o bien altos o bajos, por períodos cortos. 38 ANTERIOR SIGUIENTE Malformaciones: Fotos N°: 37, 38, 39, 40, 41, 42, 43 y 44. Son aquellos defectos morfológicos de los embriones, que afectan a un 0,3% de la población. Algunos pollitos llegan a nacer (ver Patología perinatal). Las causas que pueden producir estos defectos son muy variadas: % Factores hereditarios. % Factores ambientales durante la incubación: Como los tejidos embrionarios tienen distinto cero fisiológico, al momento en que se produzcan los cambios de temperatura marcará determinado defecto, según la etapa del desarrollo en que se encuentre el embrión. El exceso de calor produce encefalocele Foto N° 39. % Las deficiencias vitamínicas y minerales: La de Vitamina D3 produce anormalidades en el esqueleto del embrión. La deficiencia de Riboflavina produce dedos torcidos. La deficiencia de Biotina pico de loro, la de Vitamina B12, dedos torcidos y pico corto. La deficiencia de Manganeso produce anormalidades en el esqueleto y pico de loro. La Vitamina B2, su deficiencia produce pollitos con el pico superior hendido. % Almacenamiento de los huevos por más de siete días. Clasificación: Embriones unidos o fusionados: Se producen por una división incompleta del embrión en dos partes, durante el período de desarrollo de la línea primitiva (Foto N° 3). Se trata en general de gemelos monocigóticos unidos. Se utiliza el sufijo pago (que significa atado), a continuación del término que indica la región anatómica en que se produce la 39 ANTERIOR SIGUIENTE fusión, por ejemplo si están unidos por el tórax, se los denomina toracopago. Si la fusión es por el abdomen, se lo denomina abdominopago. Los unidos por la región cefálica, cefalopago. Ver la Foto N° 44. Duplicaciones: Se presentan duplicaciones de las estructuras anatómicas del embrión. Cuando la duplicidad afecta regiones anteriores o craneales del embrión, se las describe como: duplicidad anterior, tal como se puede ver en la Foto N° 42. Cuando se afecta la región posterior del embrión, se la denomina: duplicidad posterior, tal como se observa en la Foto N° 43. A este tipo de malformaciones para denominarlas se les agrega el prefijo di, tri, tetra, etc., agregado a la región anatómica involucrada. Por ejemplo, dicéfalo (Foto N° 42), que es cuando el embrión tiene dos cabezas.. La duplicidad posterior, se observa mayormente en los miembros, por ejemplo el caso de triplopodia de la Foto N° 37-1. El tipo de duplicidad anterior más frecuente es la duplicidad del pico en su valva superior, como se observa en la Foto N° 37-2. Malformaciones del encéfalo: La malformación más frecuente de observar en el embrión de pollo es el encefalocele, Foto N° 39. Consiste en una hernia del tejido cerebral con o sin meninges. Se produce por un exceso de temperatura durante la incubación afectando la formación de la bóveda craneal. Esta malformación se puede encontrar tanto en embriones, como en pollitos que han eclosionado. 40 ANTERIOR SIGUIENTE Malformaciones oculares: Ciclopía, se trata de embriones que tiene un solo ojo (Foto N° 40), hay una sola órbita ocular situada en la línea media, que puede contener un solo ojo normal, o dos fusionados. Anoftalmía: es la ausencia de los globos oculares (Foto N° 41), se produce por fallas en el crecimiento de la cúpula óptica, puede ir acompañado de malformaciones faciales, tal como se observa en la foto citada, (malformación en la valva superior del pico). Malformaciones de las extremidades: Cuando la malformación es por ausencia de una parte de las extremidades del embrión, se escribe el defecto como prefijo y a continuación la palabra melia, que significa miembro. Si el miembro está ausente: amelia. Si el miembro es menor al tamaño normal micromelia (Foto N° 38). Si los dedos son más cortos de lo normal braquidactilia (Foto N° 38), si los dedos estuvieran fusionados sindactilia. 41 ANTERIOR SIGUIENTE 6 Capítulo PATOLOGÍA PERINATAL 42 ANTERIOR SIGUIENTE Patología perinatal, Pollitos de Descarte: La falta de productividad de una planta de incubación, no solo se afecta por los pollitos que no alcanzaron a eclosionar, sino que también por aquellos que han nacido, pero que no serán viables en la granja de crianza, motivo por el cual se los considera de descarte. Este tipo de Patología Perinatal se la identifica de la siguiente manera: % % % % % Pollitos con el ombligo congestivo: Se produce por variaciones de temperatura, la mayoría de las veces por temperatura muy alta, en las etapas previas al nacimiento. Puede tratarse de onfalitis (Foto N° 50), que se trata más adelante. Pollitos con el ombligo mal cicatrizado: Foto N° 49. La temperatura entre los once y dieciocho días de incubación fue demasiado alta. O bien, la humedad alta, que no permite que las membranas se contraigan, al momento de la absorción del vitelo. Pollitos con botones negros en el ombligo: Foto N° 49. Esto se debe a que parte del saco vitelino y tejidos extraembrionarios no pudieron ser correctamente absorbidos, al momento de obturarse el orificio umbilical. Esto es por haber tenido un desarrollo embrionario más rápido que la madurez esperada, puede ocurrir por alta temperatura de incubación o por un rango metabólico más alto. Pollitos con el ombligo congestivo sin cerrar: Foto N° 48. Se debe a alta temperatura o a variaciones de la misma. También por humedad de la nacedora muy alta. Pollitos con onfalitis: Foto N° 50. Es una infección del ombligo, que presenta los signos de la inflamación. Se debe a la confluencia de dos factores:- uno es debido a problemas de la incubación, tanto de temperatura como de humedad en la incubadora, que llevan a una mala cicatrización del ombligo. - la otra causada por la presencia de bacterias patógenas que 43 ANTERIOR SIGUIENTE % % % % % producen una infección en el lugar, esto se controla al diminuir la contaminación de los huevos y con prácticas de higiene en la planta de incubación. Pollitos pegajosos: Foto N° 53. Se debe principalmente a una temperatura promedio baja, alta humedad, ventilación inadecuada, o explosión de huevos en la nacedora (por contaminación de los huevos). Pollitos secos, con los cascarones de los huevos pegados: Se debe a baja humedad en el almacenamiento de huevos. Volteo inadecuado durante la incubación. Baja humedad en la nacedora. Pollitos muertos en las bandejas de las nacedoras, deshidratados, y de un tamaño menor a lo normal: Su causa es la pérdida de humedad más allá de lo esperado (pérdida de peso superior al 12% en el período de incubación) en los primeros dieciocho días de incubación. Pollitos que jadean y heces frescas en las bandejas de la nacedora: Permanencia de los pollitos por tiempo prolongado en las nacedoras. Pollitos que nacen con defectos: Fotos N° 38, 39, 45 y 46. Las causas de las malformaciones son muy variadas y ya se han tratado en el capítulo anterior, aquí solo se tratan los defectos de los pollitos nacidos. Tanto el volteo como la ventilación inadecuada tienen un papel importante en estas patologías. La temperatura en el proceso de incubación debe ser tenida en cuenta, puesto que más allá del cero fisiológico de los distintos tejidos, hay una secuencia en relación con el momento en que se produjo la falla térmica de la incubadora, con respecto a la aparición de malformaciones. La nutrición inadecuada puede causar ciertos defectos en los pollitos, tales como, pico de loro (por deficiencia de manganeso o biotina), anormalidades en el esqueleto (por deficiencia de Vitamina D3, biotina o calcio), dedos torcidos (por deficiencia de Riboflavina, Vitamina B12). Hay, además, factores hereditarios que son causa de malformaciones. 44 ANTERIOR SIGUIENTE % % % % % Pollitos despatarrados: Foto N° 45. Se debe principalmente al piso resbaladizo de las bandejas de las nacedoras, además puede ser causado por baja humedad, o por deficiencias nutricionales. Pollitos con signos nerviosos: Foto N° 46. De etiología muy variada, puede ser originado tanto por causa genéticas, nutricionales y ambientales (temperatura alta o humedad baja en la incubación). Si el porcentaje de pollitos con signos nerviosos es muy alto, se puede corregir aumentando la humedad en la incubación, pero esto siempre es bueno comprobando la merma de peso de los huevos en ese período tal como se explica en el Capítulo 5. Ciertas enfermedades pueden causar signos nerviosos en los pollitos, como la Aspergilosis cerebral (Foto 51-2), la Encefalomielitis, que son más problemas de la primer semana de vida del pollito en la granja de engorde. Pollitos con hernia cerebral: Foto N° 39. Se denomina también encefalocele, puede haber distintas causas, pero mayormente se lo relaciona con temperatura alta durante el período de incubación, y en algunos casos por volteo incorrecto. Pollitos que no se pueden parar: Ventilación inadecuada, sobrecalentamiento, en algún momento de los veintiún días de incubación. Alta humedad durante los primeros diecinueve días. Pollitos deshidratados: Huevos cargados muy temprano. Baja humedad entre los veinte y veintiún días de incubación. Pollitos que han permanecido en la nacedora por mucho tiempo. Un signo característico de un pollito deshidratado es la sequedad de la piel de la pata y la visualización de la vena, Foto N° 52-2. También la gota o síndrome úrico (Foto N° 52), que más bien es una patología de la primer semana del pollito, está relacionado con la deshidratación severa, causada por baja humedad o alta temperatura en la nacedora o en la sala de pollitos, por una permanencia excesiva en las nacedoras, 45 ANTERIOR SIGUIENTE % % % % % % % % % o en la planta. El ácido úrico precipita en forma de uratos, tanto en las articulaciones (Foto N° 52-1), causando la denominada gota articular, o en los órganos internos, gota visceral. Pollitos muy pequeños: Huevos cargados de poco peso y tamaño. Baja humedad de almacenamiento e incubación. Alta temperatura de incubación. Pollitos grandes con el abdomen abultado y blando (fofos): Bajo promedio de temperatura. Mala ventilación de la nacedora o incubadora. Alta humedad, sobre todo en el período de la incubadora. Pollitos débiles: Alta temperatura en la nacedora. Mala ventilación. Fumigación excesiva con formalina en la incubadora. Mal estado nutricional o sanitario de los reproductores. Pollitos con plumón corto, seco y ojos pegados: Foto N° 54. Temperatura alta, humedad baja, exceso de ventilación en la nacedora. Pollitos con la parte superior del pico sangrando y tarsos rojos: Foto N° 35. La pérdida de humedad del huevo durante la incubación ha sido baja y el pollito tiene que picar más arriba (la cámara de aire es más pequeña de lo normal) y la falta de absorción del saco vitelino aumenta el esfuerzo realizado. Este tema se trata en el Capítulo 5. Nacimientos prematuros: Debido a alta temperatura durante el almacenamiento de los huevos. Precalentamiento incorrecto. Alta temperatura de incubación o baja humedad en el nacimiento. Nacimientos atrasados: Baja temperatura durante la incubación.. Falta de precalentamiento. Almacenamiento de los huevos por tiempo prolongado y a bajas temperaturas. Huevos demasiado grandes. Cascarones de los huevos manchados con sangre en su interior: los pollitos salieron del huevo antes que sus ombligos cicatricen, es debido a que las nacedoras están trabajando a alta temperatura. Aspergilosis: Foto N° 51.Es una enfermedad del pollito recién nacido causada por un hongo, que se lo encuentra amplia46 ANTERIOR SIGUIENTE % mente distribuido en la naturaleza: Aspergillus fumigatus. La contaminación puede provenir del huevo, de todos los lugares con los que tuvo contacto y de la planta de incubación. La aspergilosis puede presentarse de diferentes formas:Aspergilosis bronquial: se caracteriza por boqueo, cianosis de mucosas, uñas y pico. A la necropsia se encuentra un tapón caseoso-amarillento que obtura la luz de los bronquios. Aspergilosis pulmonar: se encuentran nódulos amarillos en el parénquima pulmonar (Foto 51-3), o bien en la serosa (Foto 51-1). En los casos más graves de esta enfermedad se pueden presentar en la masa encefálica (Foto 51-2) Pollitos con pericarditis, coagulación del contenido del saco vitelino y congestión hepática: Se trata de un proceso infeccioso bacteriano por lo que es conveniente hacer un diagnóstico de laboratorio en busca de enterobacterias (Salmonella spp, E. coli, etc.) 47 ANTERIOR SIGUIENTE 7 Capítulo DESARROLLO EMBRIONARIO Y NACIMIENTO 48 ANTERIOR SIGUIENTE HUEVO INFÉRTIL 1 El blastodisco se encuentra sobre la yema y lo cubre la membrana vitelina (A), tomando esta posición por la menor densidad con respecto al contenido vitelino de la yema. El blastodisco se observa como una formación blanquecina con un diámetro que oscila entre 3 a 4 mm. Hallándose constituido por una vesícula germinal rodeada por un círculo polar. El círculo interno del periblasto presenta mayor densidad óptica, mientras que el periblasto es de menor densidad. Rodeando a toda esta formación se encuentra el círculo externo del periblasto. En el área del periblasto se encuentran las lagunas. FOTO 1 A 6 49 ANTERIOR SIGUIENTE HUEVO FÉRTIL 2 A simple vista se observa la formación del blastodermo (1). Al momento de la postura es un embrión de varias células. No se encuentran las lagunas del periblasto, aparece en cambio un área interna o pelúcida, que es una formación embrionaria oval en el centro del blastodermo. En la periferia se ubica el área opaca. FOTO 1 50 ANTERIOR SIGUIENTE PRIMERAS HORAS DE INCUBACIÓN Se diferencian claramente el área opaca (1) del área pelúcida (2) y la línea primitiva (3). En las cuatro primeras horas el área pelúcida (que en el futuro será la zona craneal del embrión) comienza a tener un engrosamiento y adquiere una apariencia triangular. 3 FOTO 2 3 1 51 ANTERIOR SIGUIENTE PRIMER DÍA DE INCUBACIÓN Luego de las veinte horas de incubación comienza a desaparecer la línea primitiva. El mesodermo aparece a cada lado del área pelúcida, se forman los cuernos del mesodermo, constituyéndose el falso proamnios. Se forman las estructuras anexas del embrión, que serán responsables de la nutrición del futuro embrión. 4 FOTO 52 ANTERIOR SIGUIENTE SEGUNDO DÍA DE INCUBACIÓN En este momento se forman la mayoría de los futuros órganos del embrión. Se aprecia muy bien la formación de los vasos sanguíneos sobre el saco vitelino. El embrión comienza a girar hacia el lado izquierdo. En la porción proximal se observan los vasos sanguíneos intraembrionarios (1) que se originan en la aorta. Los vasos sanguíneos extraembrionarios (2) unirán el embrión con el saco vitelino. Se notan los latidos y se ve como un anillo vascular (1). 5 FOTO 2 1 53 ANTERIOR SIGUIENTE TERCER DÍA DE INCUBACIÓN Comienza la formación del amnios que rodea al embrión. La flexión cráneo caudal es ahora más profunda. A las cincuenta y cuatro horas de incubación se forman los arcos aórticos y la torsión del corazón sobre sí mismo. Comienza la formación de alas, patas, nariz y alantoides. Los vasos sanguíneos (1) y el órgano pulsátil (2), se observan fácilmente, se observan los latidos. 6 FOTO 2 1 54 ANTERIOR SIGUIENTE CUARTO DÍA DE INCUBACIÓN En este momento el embrión está bien separado del saco vitelino, debido a ello ha quedado doblado hacia su lado izquierdo, quedando fijado por el pedículo vitelino. En este momento se forma la bolsa amniótica. Se inicia la formación del estomodeo (futura boca) y lengua del embrión. Se comienza a notar la formación del ojo (1). 7 FOTO 1 55 ANTERIOR SIGUIENTE QUINTO DÍA DE INCUBACIÓN Se pueden observar a simple vista los ojos (1). No se observan patas, pico ni las alas. Aquí comienza la diferenciación sexual, se forman la molleja y el proventrículo. Los cartílagos comienzan a osificarse (formación ósea). Continúa en la Foto N° 9. 8 FOTO 1 56 ANTERIOR SIGUIENTE QUINTO DÍA DE INCUBACIÓN Continuación de la Foto N° 8. Se observa muy bien el saco amniótico (1). La alantoides se hace funcional. Hay una gran curvatura en la zona cefálica. 9 FOTO 1 57 ANTERIOR SIGUIENTE SEXTO DÍA DE INCUBACIÓN Comienzan los movimientos voluntarios del embrión. Inicio de la formación del pico, se observa la estructura denominada diamante del pico (1). 10 FOTO 1 58 ANTERIOR SIGUIENTE SÉPTIMO DÍA DE INCUBACIÓN Rotación del embrión. Se observa muy bien la vascularización del vitelo (1). Los movimientos voluntarios son muy notables. Se visualizan las patas, alas y pico. El embrión se encuentra todavía sobre la superficie del saco vitelino. 11 FOTO 1 59 ANTERIOR SIGUIENTE SÉPTIMO DÍA DE INCUBACIÓN El amnios (1) se visualiza como una estructura serosa transparente, que envuelve al embrión. El saco vitelino (2) es un área ópticamente más densa y vascularizada. La alantoides (3) es menos vascularizada y menos densa. El abdomen es más prominente por el desarrollo de las vísceras en su interior. El pico tiene forma de pico de loro. 1 12 FOTO 2 3 60 ANTERIOR SIGUIENTE OCTAVO DÍA DE INCUBACIÓN El embrión se ubica lateralmente al vitelo (1), se notan los dedos y las patas. 13-1 FOTO 1 61 ANTERIOR SIGUIENTE OCTAVO DÍA DE INCUBACIÓN Se inicia la formación de los folículos de las plumas. El pico tiene forma de diamante (1). 13-2 FOTO 1 62 ANTERIOR SIGUIENTE NOVENO DÍA DE INCUBACIÓN Las patas se orientan hacia la cámara de aire (1). 14-1 FOTO 1 63 ANTERIOR SIGUIENTE NOVENO DÍA DE INCUBACIÓN El embrión tiene forma de ave y se observa la abertura bucal (1). 14-2 FOTO 1 64 ANTERIOR SIGUIENTE DÉCIMO DÍA DE INCUBACIÓN El pico comienza a endurecerse (1). En este momento el embrión está separado del saco vitelino, y flota libremente en el líquido amniótico, se pueden observar los poros de la piel. Se consume la albúmina. 15 FOTO 1 65 ANTERIOR SIGUIENTE UNDÉCIMO DÍA DE INCUBACIÓN El cuerpo del embrión crece rápidamente, el párpado (1) comienza a cubrir el ojo. Se comienzan a notar las proporciones anatómicas. 16 FOTO 1 66 ANTERIOR SIGUIENTE DUODÉCIMO DÍA DE INCUBACIÓN 17-1 FOTO Se percibe el plumón (1) en alas, muslos y cuello. 1 67 ANTERIOR SIGUIENTE DUODÉCIMO DÍA DE INCUBACIÓN Los dedos están completamente formados. Se produce la mineralización ósea y comienza el desarrollo de las escamas en la piel de las patas. 17-2 FOTO 68 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOTERCER DÍA DE INCUBACIÓN En este momento comienza la absorción de la proteína que contiene el líquido amniótico. Aparecen la cresta, barbillas y escamas de las patas (1). 18-1 FOTO 1 69 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOTERCER DÍA DE INCUBACIÓN En este momento el plumón (1) cubre a todo el embrión. 18-2 FOTO 1 70 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOCUARTO DÍA DE INCUBACIÓN En este momento las proporciones corporales son las características de un pollo, el embrión efectúa una rotación y altera su posición con relación al eje longitudinal del huevo. La cabeza gira en dirección de la cámara de aire. Nótese como el pico (1) aparece con la punta córnea hacia el polo superior del huevo. 19 FOTO 1 71 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOCUARTO 20-1 DÍA DE INCUBACIÓN FOTO El plumaje es evidente (1), se observa muy bien el pico córneo (2). 2 1 72 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOCUARTO DÍA DE INCUBACIÓN Se evidencian las escamas en la piel de las patas y dedos (3), las uñas (4) están presentes. Obsérvese el color de la piel, que comienza a ser más amarillo, ya que el embrión comenzó a utilizar el contenido lipídico del vitelo. 20-2 FOTO 3 4 73 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOQUINTO DÍA DE INCUBACIÓN La albúmina ha desaparecido en su totalidad. Si se encuentran vestigios de ésta, es por humedad alta, o temperatura baja, o ambas situaciones, en la incubadora. El intestino comienza (1) a penetrar al interior de la cavidad abdominal. 21-1 FOTO 1 74 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOQUINTO DÍA DE INCUBACIÓN Proceso de penetración del intestino en la cavidad abdominal. 21-2 FOTO 75 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOSEXTO DÍA DE INCUBACIÓN Se observa muy bien la presencia de plumas en todo el embrión. El vitelo (1), tiene un rol muy importante en este momento, si la temperatura de la incubadora sube a valores muy altos, se desnaturalizan las proteínas afectando así su valor nutritivo. Las uñas y pico se endurecen más aún. En el saco alantoideo aparece un acúmulo de material oscuro, producto de las excreciones del metabolismo del embrión. 22 FOTO 1 76 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOSÉPTIMO DÍA DE INCUBACIÓN El embrión ha absorbido todo el líquido amniótico y alantoideo. Se ubica en posición normal para nacer, con el pico debajo del ala derecha. Se prepara para el nacimiento. 23 FOTO 77 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOCTAVO DÍA DE INCUBACIÓN El embrión ha completado totalmente su crecimiento, el pico se orienta hacia la derecha. Comienza la absorción de la yema, junto con la entrada del saco vitelino (1) en la cavidad abdominal. 24-1 FOTO 1 78 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMOCTAVO DÍA DE INCUBACIÓN Si se retira la cáscara del polo superior del huevo, se observará que la cámara de aire no ha sido picada aún (1). Algunos embriones adelantados comienzan la ruptura del amnios. 24-2 FOTO 1 79 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMONOVENO DÍA DE INCUBACIÓN El embrión ocupa todo el espacio del huevo, excepto la cámara de aire. En este momento comienza la respiración pulmonar. La absorción del vitelo, tal como se observa en las siguientes tres fotos, se va produciendo paulatinamente, hasta que penetra totalmente en la cavidad abdominal. Durante este proceso de absorción, el embrión comienza a sufrir contracciones espasmódicas, haciendo que la cabeza se impulse hacia fuera, el pico se dirige hacia arriba y a la derecha, se rompe el alantoides, como consecuencia aumenta la concentración de dióxido de carbono, siendo el estímulo para el comienzo de la respiración pulmonar. 25-1 FOTO 80 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMONOVENO DÍA DE INCUBACIÓN Continuación del proceso de penetración del saco vitelino en la cavidad abdominal. 25-2 FOTO 81 ANTERIOR SIGUIENTE DECIMONOVENO DÍA DE INCUBACIÓN Finalización del proceso de penetración del saco vitelino en la cavidad abdominal. 25-3 FOTO 82 ANTERIOR SIGUIENTE VIGÉSIMO DÍA DE INCUBACIÓN El embrión, luego de romper la cámara de aire, ocupa todo el espacio disponible y comienza a picar (1). 26-1 FOTO 1 83 ANTERIOR SIGUIENTE VIGÉSIMO DÍA DE INCUBACIÓN En este momento el saco vitelino ya fue totalmente incorporado a la cavidad abdominal y comienza la cicatrización del ombligo. 26-2 FOTO 84 ANTERIOR SIGUIENTE VIGESIMOPRIMER DÍA DE INCUBACIÓN El embrión, luego de permanecer veinticuatro horas con respiración pulmonar, comienza con los esfuerzos para eclosionar. Pica la cáscara del huevo (1), en forma rotativa y en sentido inverso a las agujas del reloj. Los pollitos nacen mojados y agotados por el esfuerzo realizado (2). 27-1 FOTO 2 1 85 ANTERIOR SIGUIENTE VIGESIMOPRIMER DÍA DE INCUBACIÓN Una manera de determinar que el nacimiento de los huevos viables, se ha completado, es calculando el porcentaje de pollitos con el plumón del cuello mojado. Como índice se calcula que con un 5% finalizó el nacimiento, retirándose los carros de las nacedoras. 27-2 FOTO 86 ANTERIOR SIGUIENTE 8 Capítulo ALTERACIONES DE LAS ESTRUCTURAS DEL HUEVO Y PATOLOGÍA EMBRIONARIA 87 ANTERIOR SIGUIENTE COAGULO DE SANGRE EN EL VITELO. Es frecuente encontrarlo, no debe confundirse con el desarrollo embrionario. Es un desprendimiento de tejidos o sangre de la gallina, en el momento de la ovulación. 28 FOTO 88 ANTERIOR SIGUIENTE VITELO MOTEADO O REVUELTO Asociado a cuadros tóxicos de la gallina. Por ejemplo intoxicación por nicarbazina, que afecta también el color de la cáscara del huevo y produce infertilidad. La albúmina y la yema pueden aparecer mezclados (huevo revuelto). 29 FOTO 89 ANTERIOR SIGUIENTE MANCHA BLANCA EN EL VITELO Hay manchas blanquecinas (1), relacionadas con estados sanitarios de la gallina. No debe confundirse con el desarrollo prematuro del embrión, que se observa en la Foto N° 4. 30 FOTO 1 90 ANTERIOR SIGUIENTE CONTAMINACIÓN CON HONGOS 31-1 FOTO La contaminación por hongos produce huevos con un contenido verdoso azulino. Mayormente producido por Aspergillus fumigatus. 91 ANTERIOR SIGUIENTE CONTAMINACIÓN BACTERIANA La contaminación bacteriana puede producir explosión de huevos. Pero si ésta no tiene lugar se identifica por huevos de olor característico y líquidos turbios. 31-2 FOTO 92 ANTERIOR SIGUIENTE COLONIA DE ASPERGILLUS SPP. 32 FOTO Colonia de Aspergillus spp., en un huevo. El más frecuente es A. fumigatus. 93 ANTERIOR SIGUIENTE ALBÚMINA COAGULADA En los huevos remanentes que no eclosionaron y que no tienen desarrollo embrionario, la albúmina está coagulada (1). Esto se debe a que los huevos estuvieron expuestos a muy alta temperatura, tanto en la granja o durante el transporte a la planta de incubación. 33 FOTO 1 94 ANTERIOR SIGUIENTE TRAUMATISMO DEL EMBRIÓN Traumatismo, causado durante la transferencia. En huevos cascados durante la transferencia se encuentran las membranas resecas. 34 FOTO 95 ANTERIOR SIGUIENTE BAJA TEMPERATURA Y/O ALTA HUMEDAD DURANTE EL PERÍODO DE INCUBACIÓN 35-1 FOTO La pérdida de peso durante el período de la incubación ha sido menor al 12%. Los embriones pican muy arriba (1), y en una franja ancha, o no nacen. 1 96 ANTERIOR SIGUIENTE BAJA TEMPERATURA Y/O ALTA HUMEDAD DURANTE EL PERÍODO DE INCUBACIÓN 35-2 FOTO Los pollitos, cuando nacen bajo estas condiciones, presentan los tarsos muy enrojecidos (1), hiperémicos por el esfuerzo realizado para eclosionar. 1 97 ANTERIOR SIGUIENTE POLLITO (PNN), CUELLO. PICADO NO NACIDO CON EDEMA EN 36 FOTO En el tejido subcutáneo se encuentra este trasudado gelatinoso, por el esfuerzo para eclosionar. 98 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES 37-1 Los complejos procesos, que llevan a las malformaciones de las estructuras anatómicas, en este caso condujeron a la presentación de tres patas en un mismo miembro del embrión, se lo denomina triplopodia. FOTO 99 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES 37-2 Duplicación del maxilar superior (1). FOTO 1 100 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES 38 FOTO Malformación del miembro inferior, puesto que no se ha desarrollado el hueso largo de la pata, siendo el resto del embrión de características normales. 101 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES 39 FOTO Encefalocele, también descripta como hernia del cerebro, entre las malformaciones es la más frecuente. Puede ser un hallazgo en la embriodiagnosis, o también se lo puede encontrar entre los pollitos que se descartan en la planta de incubación, puesto que cierto porcentaje alcanza a eclosionar. Puede tener etiologías muy diversas, pero la más comúnmente descripta, es el exceso de temperatura durante la incubación. 102 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES 40 Embrión cíclope. Ambos ojos se fusionan en uno en la línea media. Es un hallazgo poco frecuente. FOTO 103 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES 41 Anoftalmía. Es la ausencia total de ojos. FOTO 104 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES. DUPLICIDAD ANTERIOR Se pueden presentar duplicaciones de las estructuras anatómicas. En este caso se trata de un embrión dicéfalo. La duplicación es anterior o craneal, por afectar esta parte del cuerpo. 42 FOTO 105 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES. DUPLICIDAD POSTERIOR La duplicidad es posterior, cuando las partes anteriores del cuerpo están normales, mientras que la parte posterior o caudal es doble. 43 FOTO 106 ANTERIOR SIGUIENTE MALFORMACIONES. EMBRIONES 44 UNIDOS O FUSIONADOS. FOTO Para describirlos se utiliza el sufijo pago (atado), a continuación el término que se refiere a la región anatómica por donde se encuentra fusionado el 1 embrión. El caso mostrado en esta foto se denomina cefalotoracópago (1). Cuando los embriones provienen de un mismo huevo o cigoto comparten el mismo vitelo, a diferencia de aquellos que se originan de un huevo de doble yema con distintos cigotos y que no poseen vitelo en vitelo común (2). 2 vitelos 107 ANTERIOR SIGUIENTE 9 Capítulo PATOLOGÍA PERINATAL 108 ANTERIOR SIGUIENTE PROBLEMAS DE PATAS AL NACIMIENTO 45 FOTO De etiologías muy variadas. Se lo relaciona mayormente por traumatismos ocasionados por bandejas de las nacedoras, cinta transportadora, o cajas de pollitos, con los pisos muy lisos y resbaladizos. 109 ANTERIOR SIGUIENTE SIGNOS 46 NERVIOSOS FOTO Los signos nerviosos al momento del nacimiento de etiologías muy variadas, tal como se trata en el Capítulo 6. 110 ANTERIOR SIGUIENTE POLLITOS CON LA PARTE SUPERIOR DEL PICO SANGRANDO 47 FOTO Es por el esfuerzo que ha tenido que realizar para la eclosión. Relacionado con la poca pérdida de humedad durante el período de incubación. 111 ANTERIOR SIGUIENTE OMBLIGO MAL CICATRIZADO 48 FOTO El orificio umbilical no se ha cerrado totalmente. 112 ANTERIOR SIGUIENTE BOTONES NEGROS EN EL OMBLIGO 49 FOTO El ombligo está mal cicatrizado, partes del saco vitelino, o tejidos extraembrionarios, no han sido absorbidos completamente al momento de cerrarse el orificio umbilical. 113 ANTERIOR SIGUIENTE ONFALITIS 50 FOTO Es una infección de origen bacteriano. Se caracteriza porque están presentes los signos cardinales de la inflamación. 114 ANTERIOR SIGUIENTE ASPERGILOSIS 51 FOTO Se produce por Aspergillus fumigatus. A veces se presentan cuadros muy severos, en pollitos recién nacidos, en las primeras semanas de vida. La foto muestra un caso que presenta: nódulos en las serosas (1), en la masa encefálica(2), y en los pulmones (3), también pueden encontrarse tapones caseosos en los bronquios. 2 3 1 115 ANTERIOR SIGUIENTE DESHIDRATACIÓN Y GOTA 52 FOTO El pollito que sufre deshidratación suele presentar un cuadro de gota, que puede ser articular (1), cuando los cristales de ácido úrico se depositan en las articulaciones, o visceral cuando afecta los órganos internos. Un signo característico de deshidratación de los pollitos es la observación de la vena metatarsiana (2). 2 1 116 ANTERIOR SIGUIENTE POLLITOS PEGAJOSOS 53 FOTO Puede deberse a baja temperatura o alta humedad, ventilación inadecuada o a explosión de huevos en la nacedora. 117 ANTERIOR SIGUIENTE POLLITOS CON EL PLUMÓN CORTO, SECO Y LOS OJOS PEGADOS. 54 FOTO Puede ser por temperatura alta, humedad baja, excesiva ventilación en la nacedora. 118 ANTERIOR SIGUIENTE POLLITOS CON INFECCIÓN BACTERIANA 55 FOTO Las más frecuentes son las causadas por Escherichia coli, y por Salmonella spp. Los pollitos presentan generalmente pericarditis (1). El saco vitelino se lo encuentra indurado o coagulado (2), siendo ésta una lesión más fácil de observar en pollitos que transcurren la primer semana de vida. 1 2 119 ANTERIOR ATLAS DE PATOLOGÍA DE LA INCUBACIÓN DEL POLLO Primera edición digital Agosto, 2014 Lima - Perú © Carlos Mario Plano & Ana María Di Matteo PLD 1179 Editor: Víctor López Guzmán http://www.guzlop-editoras.com/ guzlopster@gmail.com facebook.com/guzlop twitter.com/guzlopster 731 2457 / 959 552 765 Lima - Perú PROYECTO LIBRO DIGITAL (PLD) El proyecto libro digital propone que los apuntes de clases, las tesis y los avances en investigación (papers) de las profesoras y profesores de las universidades peruanas sean convertidos en libro digital y difundidos por internet en forma gratuita a través de nuestra página web. Los recursos económicos disponibles para este proyecto provienen de las utilidades nuestras por los trabajos de edición y publicación a terceros, por lo tanto, son limitados. Un libro digital, también conocido como e-book, eBook, ecolibro o libro electrónico, es una versión electrónica de la digitalización y diagramación de un libro que originariamente es editado para ser impreso en papel y que puede encontrarse en internet o en CD-ROM. Por, lo tanto, no reemplaza al libro impreso. Entre las ventajas del libro digital se tienen: • su accesibilidad (se puede leer en cualquier parte que tenga electricidad), • su difusión globalizada (mediante internet nos da una gran independencia geográfica), • su incorporación a la carrera tecnológica y la posibilidad de disminuir la brecha digital (inseparable de la competición por la influencia cultural), • su aprovechamiento a los cambios de hábitos de los estudiantes asociados al internet y a las redes sociales (siendo la oportunidad de difundir, de una forma diferente, el conocimiento), • su realización permitirá disminuir o anular la percepción de nuestras élites políticas frente a la supuesta incompetencia de nuestras profesoras y profesores de producir libros, ponencias y trabajos de investigación de alta calidad en los contenidos, y, que su existencia no está circunscrita solo a las letras. Algunos objetivos que esperamos alcanzar: • Que el estudiante, como usuario final, tenga el curso que está llevando desarrollado como un libro (con todas las características de un libro impreso) en formato digital. • Que las profesoras y profesores actualicen la información dada a los estudiantes, mejorando sus contenidos, aplicaciones y ejemplos; pudiendo evaluar sus aportes y coherencia en los cursos que dicta. • Que las profesoras y profesores, y estudiantes logren una familiaridad con el uso de estas nuevas tecnologías. • El libro digital bien elaborado, permitirá dar un buen nivel de conocimientos a las alumnas y alumnos de las universidades nacionales y, especialmente, a los del interior del país donde la calidad de la educación actualmente es muy deficiente tanto por la infraestructura física como por el personal docente. • E l p e r s o n a l d o c e n t e j u g a r á u n r o l d e t u t o r, f a c i l i t a d o r y c o n d u c t o r d e p r o y e c t o s de investigación de las alumnas y alumnos tomando como base el libro digital y las direcciones electrónicas recomendadas. • Que este proyecto ayude a las universidades nacionales en las acreditaciones internacionales y mejorar la sustentación de sus presupuestos anuales en el Congreso. En el aspecto legal: • Las autoras o autores ceden sus derechos para esta edición digital, sin perder su autoría, permitiendo que su obra sea puesta en internet como descarga gratuita. • Las autoras o autores pueden hacer nuevas ediciones basadas o no en esta versión digital. Lima - Perú, enero del 2011 “El conocimiento es útil solo si se difunde y aplica” Víctor López Guzmán Editor
