programa vigilancia conejo - Ministerio de Agricultura, Alimentación

SECRETARIA GENERAL DE
AGRICULTURA Y ALIMENTACIÓN
MINISTERIO DE
AGRICULTURA, ALIMENTACIÓN
Y MEDIO AMBIENTE
DIRECCION GENERAL DE SANIDAD E
HIGIENE ANIMAL Y TRAZABILIDAD
PLAN DE VIGILANCIA DE LA MIXOMATOSIS Y DE LA
ENFERMEDAD HEMORRÁGICA DEL CONEJO
2014
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1.- INTRODUCCIÓN
La Enfermedad hemorrágica del Conejo y la Mixomatosis son las enfermedades virales de
mayor importancia que afectan al conejo europeo, debido a su alta patogenicidad y gran poder
de difusión, forman parte de la Lista de Enfermedades de Declaración Obligatoria de la OIE.
La Enfermedad Hemorrágica del Conejo (RHD) fue descrita por primera vez en 1984 como
una enfermedad aguda, fatal y muy contagiosa del conejo europeo (Oryctolagus cuniculus)
causada por un virus (RHDV) ARN Calicivirus, género Lagovirus. Actualmente tiene una
distribución mundial, diferenciada en varias cepas, todas ellas virulentas.
La enfermedad fue detectada por primera vez en España en conejos domésticos en la
primavera y verano de 1988. En conejos silvestres, la enfermedad apareció durante la primavera
de 1990 en el Parque Nacional de Doñana. En sólo dos años el virus se extendió a lo largo de
todo el país.
Durante el año 2010 en Francia se detectaron una serie de brotes de RHD que cursaron
de forma atípica, caracterizada por brotes agudos de enfermedad hemorrágica tanto en adultos
como en gazapos y en los cuales se identificó, como agente etiológico, una nueva variante del
virus relativamente diferente de las aisladas hasta entonces en ese país. Fue identificada como
una nueva variante del virus de la Enfermedad Vírica Hemorrágica del Conejo (RHDVb). Dicha
variante fue detectada por primera vez en España en el año 2011 en explotaciones industriales
del tercio norte peninsular. Entre los animales infectados en estos primeros casos, existían
algunos que habían sido previamente vacunados.
La evolución clínica de la RHD puede ser hiperaguda, aguda, subaguda o crónica. La
forma hiperaguda generalmente no presenta síntomatología y mueren repentinamente. Las
manifestaciones clínicas se han descrito sobre todo en la infección aguda (Ver Tabla 1). La
forma subaguda se caracteriza por síntomas similares a la forma aguda de la enfermedad pero
más leves. Durante un brote de enfermedad, un número limitado de conejos (5–10%) puede
mostrar una evolución crónica o subclínica. En muchos casos estos animales mueren 1 o 2
semanas más tarde, generalmente debido a una disfunción hepática.
La RHDVb presenta los mismos síntomas que la variante clásica (RHDV-1) siendo
característica de esta variante la afectación de los gazapos menores de 30 días, ya que en la
variante clásica la infección suele cursar de forma subclínica, presentando éstos una severa
ictericia y epistaxis.
Las lesiones primarias consisten en necrosis del hígado y esplenomegalia. Sin embargo,
la causa de muerte es normalmente una coagulopatía masiva y hemorragias en diversos
órganos. En la enfermedad subaguda y crónica, se produce ictericia, siendo muy evidente la
despigmentación de las orejas, la conjuntiva y la capa subcutánea.
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La mixomatosis es una enfermedad de distribución mundial causada por un virus ADN de
la familia Poxviridae, denominado virus Myxoma.
En los conejos europeos se han identificado dos formas de presentación de la
enfermedad: la forma nodular (clásica) y la forma amixomatosa (respiratoria), menos frecuente.
Las lesiones patognomónicas principales son los mixomas o pseudotumores cutáneos.
La transmisión de la enfermedad se realiza de manera directa, a través del contacto con
conejos enfermos o susceptibles, y por vía indirecta por medio de artrópodos hematófagos que
actúan como vectores.
2.- NORMATIVA BÁSICA
La normativa básica en la que se establecen estas medidas es la siguiente:
o
Real Decreto 617/2007, de 16 de mayo, por el que se incluye la EHC
dentro del grupo de enfermedades objeto de declaración semestral.
o
Real Decreto 1547/2004, del 25 de junio, por el que se establece las
normas de ordenación de las explotaciones cunícolas.
o
Ley 8/2003 de Sanidad Animal
3.- OBJETIVOS Y DESARROLLO DEL PLAN DE VIGILANCIA EN ESPAÑA
El objetivo es establecer un sistema de vigilancia de detección de enfermedades víricas de
declaración obligatoria que pueden afectar a las explotaciones cunícolas en España.
Dado que estas enfermedades suelen cursar con elevadas mortalidades, en el caso de la RHD,
o con un cuadro clínico muy característico en el caso de la mixomatosis, la vigilancia estará
orientada a la detección de sintomatología clínica compatible y la posterior confirmación por
técnicas laboratoriales.
3.1.- Duración del plan
El plan de vigilancia tiene dos componentes:
-Vigilancia pasiva: Se llevará a cabo de manera continua a lo largo de todo el año.
-Vigilancia activa clínica: Se enfoca a la detección de los síntomas de enfermedad
mediante visitas de inspección realizadas entre los meses septiembre a octubre, dado el
carácter estacional de ambas enfermedades, coincidiendo, además, con el final de la época de
mayor actividad de los vectores que actúan como reservorio en el caso de la mixomatosis.
Este plan se prorrogará de modo automático anualmente.
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3.2.-Animales objeto del programa
El censo total de conejos en España es aproximadamente de 6.805.332 animales,
repartidos en 3.271 explotaciones. Serán objeto del programa todas las explotaciones de
conejos de cualquier clasificación zootécnica.
3.3.- Vigilancia pasiva
Según establece el artículo 5 de la Ley 8/2003, de 24 de abril, de Sanidad Animal, toda
persona física o jurídica, pública o privada, está obligada a comunicar a la autoridad
competente, en la forma y plazo establecidos, todos los focos y sospechas de enfermedades de
las incluidas en la lista de enfermedades de declaración obligatoria y de cualquier otra que por
su carácter epizoótico, o por su especial virulencia, extrema gravedad o rápida difusión
impliquen un peligro potencial de contagio para la población animal, la salud pública o para el
medio ambiente. En lo referente a la RHD y a la mixomatosis, tanto los veterinarios como los
titulares de las explotaciones están obligados a comunicar las sospechas clínicas que hayan
podido detectar.
Se considerará sospechosa de la presencia de RHD o de mixomatosis cualquier explotación
en la que se observen cuadros clínicos compatibles con los síntomas recogidos en la Tabla 1 o 2
respectivamente.
3.4.-Vigilancia activa clínica
•
La vigilancia activa clínica deberá permitir detectar la enfermedad en una explotación con
un nivel de confianza del 95% y una prevalencia esperada del 10%, aceptando un error
máximo de un 5%. Esto supone la visita de inspección clínica en 139 explotaciones cuyo
número por CCAA se relaciona en la Tabla 3.
•
Si en el curso de una visita se detectara sintomatología compatible con las
enfermedades, se procederá a la toma de muestras para su posterior análisis
laboratorial.
•
El muestreo deberá realizarse sobre cualquier animal fallecido hasta un máximo de 5
animales por explotación y para cada enfermedad.
4.- TOMA DE MUESTRAS
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En el caso de la RHD se tomarán muestras de hígado de un máximo de 5 animales que
serán enviadas a los laboratorios autorizados de las CCAA. Se empleará un ELISA de captura
de Doble Anticuerpo (DAS) que utiliza anticuerpo policlonal específico de RHDV y un anticuerpo
monoclonal específico de la proteína vp60 de RHDV (Ingezim RHDV DAS). Los positivos serán
enviados a LCV Algete donde serán analizadas para la detección de ácidos nucleicos mediante
RT-PCR y diferenciación entre la variante clásica RHDV-1 y la nueva variante RHDVb.
Con respecto a la mixomatosis se recogerán muestras de párpados o de cualquier lesión
nodular para llevar a cabo la PCR. Los positivos se remitirán al LCV de Algete para su
confirmación.
En caso de que los laboratorios autorizados de las CCAA no dispongan de las técnicas
señaladas, se remitirán las muestras directamente al LCV Algete.
5.- LABORATORIO
•
El análisis de las muestras se realizará por parte de laboratorios autorizados por las
Comunidades Autónomas correspondientes, que trabajarán bajo el control del
Laboratorio Nacional de Referencia (LNR) LCV de Algete. El LNR proporcionará el apoyo
técnico necesario a los restantes laboratorios.
•
En caso de que se obtengan resultados virológicos positivos las muestras deberán ser
remitidas para su confirmación al Laboratorio Nacional de Referencia (Laboratorio
Central de Veterinaria Algete, Crta. Algete, km. 8, CP: 28110 Madrid, Teléfono:
913479256/7), acompañadas de una hoja de remisión de muestras que contengan, al
menos, los datos recogidos en el Anexo I y de acuerdo con las condiciones generales
establecidas en el Anexo III.
6. COMUNICACIÓN DE RESULTADOS
Los resultados de los análisis de laboratorio realizados por el Laboratorio Central de
Veterinaria de Algete serán comunicados a la SG de Sanidad e Higiene Animal y Trazabilidad,
quien a su vez los comunicará a la autoridad competente de la Comunidad Autónoma en la que
se han recogido las muestras.
Las CCAA enviarán antes del 30 de noviembre de 2014 a la SG un resumen de las
actuaciones llevadas a cabo en la ejecución del plan en todos sus niveles, que incluya al menos
la información contenida en el Anexo II.
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TABLA 1. DEFINICIÓN DE SOSPECHA RHD
Hiperaguda
Aguda
Subaguda
Crónica
Fiebre
Anorexia,
apatía
Congestión
ocular
Adultos
Muerte
repentina
No signos
Opistótonos, Igual que
ataxia,
aguda pero
más leve
parálisis
Disnea,
cianosis
Severa
ictericia
Anorexia
Letargo
Muerte en
1-2
semanas
Descarga
nasal y
ocular
hemorrágica
Epistaxis
Epistaxis
Gazapos
Ictericia
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TABLA 2. DEFINICIÓN DE SOSPECHA MIXOMATOSIS
Aguda
Subaguda
Crónica
Amixomatósica
1 o dos mixomas de Síntomas
Mixoma primario en Localización
base
orejas
o cefálica de mixomas tamaño pequeño
respiratorios
periorbital
3-5 semanas
Edema cefálico con duración
blefaroconjuntivitis
Generalización
anogenital
mixomas
secundarios
de Áreas
alopécicas Blefaroconjuntivitis
donde estaban los
mixomas en 2-8
Congestión
semanas
auricular
de
Edema anogenital
en gazapos
Generalización
cutánea
Muerte en 12 días
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TABLA 3. Distribución de la población de estudio entre las Comunidades
Autónomas para vigilancia activa.
CCAA
Nº explotaciones
(datos REGA act.
01/06/2013)
Nº explotaciones a
muestrear
Andalucía
205
9
Aragón
271
11
Asturias
28
1
Baleares
30
1
Canarias
179
7
Cantabria
39
2
Castilla-La Mancha
233
10
Castilla y León
293
12
Cataluña
1.273
54
Extremadura
210
1
Galicia
298
13
Madrid
43
1
Murcia
51
2
Navarra
46
2
País Vasco
41
2
La Rioja
22
1
Valencia
239
10
TOTAL
3.271
139
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ANEXO I
PLAN NACIONAL DE VIGILANCIA DE ENFERMEDADES DEL CONEJO
(HOJA DE REMISIÓN DE MUESTRAS AL LABORATORIO)
Fecha: ____________ Número de registro de explotación: _______________________
Titular: ________________________________________________________________
Comarca: _______________________Provincia:_______________________________
Veterinario que toma la muestra: ____________________________________________
Censo total: Animales presentes en la explotación
Machos
reproductores
Hembras
reproductores
Gazapos
Conejos de
cebo
Animales de
reposición
Motivo del envío de muestras (señalar con una cruz)
Vigilancia pasiva
Vigilancia activa
Otras (especificar)
Tipo Muestra. Señale con una cruz el/los tipo/s de muestras remitida/s
NÚMERO
MUESTRA
IDENTIFICACIÓN
ANIMAL
VÍSCERAS/TEJIDOS
OBSERVACIONES (sintomatología,
etc.)
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ANEXO II
INFORMACIÓN DE LAS ACTUACIONES LLEVADAS A CABO EN LA EJECUCIÓN
DEL PLAN
Comunidad Autónoma: ______________________________________________
1. Actuaciones por vigilancia pasiva 2014:
Tabla 1: RHD
Nº explotaciones
Provincia
Nº explotaciones
Nº exp. positivos por PCR en RHD
positivas
muestreadas
RHDV-1
RHDVb
ELISA DAS
Tabla 2: Mixomatosis
Nº explotaciones PCR positivas
Provincia
Nº explotaciones muestreadas
mixomatosis.
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2. Actuaciones por vigilancia activa clínica 2014
Tabla 1: RHD
Provincia
Nº. Explot.
visitadas
Nº explotaciones
muestreadas*
Positivos ELISA DAS **
PCR Positivas RHDV1**
PCR Positivas
RHDVb**
*Explotaciones que en el curso de la visita clínica se ha detectado sintomatología compatible con EHC y
se ha tomado muestras para su confirmación laboratorial
**Número de explotaciones con al menos un animal con resultados positivos confirmados.
Tabla 2: Mixomatosis
Provincia
Nº. explot. visitadas
Nº explotaciones
muestreadas*
PCR Positivos
mixomatosis **
*Explotaciones que en el curso de la visita clínica se ha detectado sintomatología compatible con
mixomatosis y se ha tomado muestras para su confirmación laboratorial.
**Número de explotaciones con al menos un animal con resultados positivos confirmados
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3. Detalle de las explotaciones afectadas:
3.1 Hasta 31-12-2013: Datos de existencia de sintomatología en el pasado
recogido durante la visita clínica
Tabla 1: RHD
REGA
Existencia de
sintomatología
compatible
Positivos
ELISA DAS
*
SÍ
NO
SÍ
NO
SÍ
NO
SÍ
NO
SÍ
NO
PCR Positivas
RHDV-1
PCR
Positivas
Vacuna RHD** y
% cobertura***
RHDVb**
Tabla 2: Mixomatosis
REGA
Existencia de
sintomatología
compatible
SÍ
NO
SÍ
NO
SÍ
NO
SÍ
NO
SÍ
NO
PCR Positivos
mixomatosis*
Vacuna mixomatosis** y
% cobertura***
*Especificar número de animales positivos.
** Marca comercial, lote y caducidad
***Estimación del % de animales vacunados respecto al número total de animales por explotación. En
caso de que este porcentaje sea distinto en función de los grupos de edad indicar los diferentes
porcentajes.
3.2 Año 2014
Tabla 1: RHD
REGA
Positivos ELISA
DAS*
Positivos
RHDV-1*
Positivos RHDVb*
Vacuna RHD** y
% cobertura***
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*Especificar número de animales positivos.
** Marca comercial, lote y caducidad.
***Estimación del % de animales vacunados respecto al número total de animales por explotación. En
caso de que este porcentaje sea distinto en función de los grupos de edad, indicar los diferentes
porcentajes.
Tabla 2: Mixomatosis
REGA
PCR positivos *
Vacuna mixomatosis** y
% cobertura***
*Especificar número de animales positivos.
** Marca comercial, lote y caducidad.
***Estimación del % de animales vacunados respecto al número total de animales por explotación. En
caso de que este porcentaje sea distinto en función de los grupos de edad, indicar los diferentes
porcentajes.
4.Observaciones:_______________________________________________________
______________________________________________________________________
______________________________________________________________________
_____________________________________________________________________
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ANEXO III
CONDICIONES GENERALES DE EMBALAJE, IDENTIFICACIÓN, CONSERVACIÓN Y
TRANSPORTE DE LAS MUESTRAS PARA EL DIAGNÓSTICO
1) Los órganos o tejidos se envasarán en contenedores estancos dobles, a fin de evitar
posibles filtraciones de su contenido.
2) Cada envase irá sujeto a la caja que los contiene de manera que al ser manejada por el
transportista no sufran innecesariamente.
3) Cada envase irá identificado claramente según se especifique en el impreso adjunto.
4) En el caso que nos ocupa, las muestras deberán ser remitidas a 4 ºC de temperatura,
lo que únicamente se consigue si se emplean suficientes congelantes y si el embalaje
interno es termoaislante y de un mínimo grosor. Este embalaje irá perfectamente
sellado.
5) El interior de la caja aislante debe contener además material absorbente (por ejemplo
algodón hidrófilo) en cantidad comparable al contenido de los envases que transporta.
6) Por fuera de este embalaje termoaislante debe ir otro de cartón, suficientemente
resistente y con la identificación clara de la dirección del Laboratorio y la del remitente.
Este segundo embalaje irá perfectamente sellado.
7) Tanto en el interior del paquete (dentro de una bolsa de plástico que lo aísle) como
adherido al exterior del mismo, obligatoriamente se incluirá el documento que
identifique detalladamente las muestras que van en su interior.
8) También en el exterior del paquete se consignará la necesidad de que éste sea
almacenado a 4 ºC.
CONDICIONES ESPECIALES DE TOMA DE MUESTRAS Y ENVÍO
- Vísceras: Obtener hígado mediante necropsia de los animales muertos para el
diagnóstico de RHD. Introducir una porción de 5-10 g. en contenedores estériles
individuales, identificados con el tipo de muestra y cerrados herméticamente.
Conservar a 4 ºC.
- Tejidos: Obtener párpados o lesiones nodulosas cutáneas de los animales afectados
para el diagnóstico de mixomatosis. Introducirlo en contenedores estériles individuales,
identificados con el tipo de muestra y cerrados herméticamente. Conservar a 4ºC.
Las muestras se enviarán al laboratorio en menos de 24 horas. En caso contrario deberán
remitirse congeladas a -20°C.
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