IMAGEN Herpes Simplex Virus (HSV)

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IMAGEN Herpes
Simplex Virus (HSV)
K610611-2
ES
Prueba de inmunofluorescencia directa para la detección del HSV
1 y el HSV 2.
1. INDICACIONES DE USO
La prueba de tipaje IMAGEN™ Herpes Simplex Virus es una prueba
cualitativa de inmunofluorescencia directa para la detección y
tipaje del virus del herpes simple 1 (HSV 1) y el virus del herpes
simple 2 (HSV 2) en cultivos celulares.
2. RESUMEN
El virus del herpes simple es un virus ADN que contiene una
nucleocápside icosaédrica rodeada por una envoltura que
contiene lípidos. El HSV humano se clasifica dentro de la familia
de los Herpesviridae y es uno de los miembros de la subfamilia
Alphaherpesviridae. El género Simplexvirus incluye dos tipos de
especies de virus del herpes simple humano, el HSV 1 y el HSV 21.
La infección por el HSV es una infección común y universal en
los seres humanos, que se asocia con una amplia variedad de
enfermedades clínicas tanto en los pacientes inmunocompetentes
como en los inmunocomprometidos. Ambos virus HSV 1 y 2
se encuentran frecuentemente involucrados en infecciones
vesiculares localizadas en la piel, la conjuntiva y las membranas
mucosas de la cavidad bucal y los genitales2,3,4. Una vez que
la infección primaria se ha resuelto el virus puede existir en
forma latente en los tejidos nerviosos y volver a aparecer en
ciertas condiciones, provocando una recidiva de los síntomas.
Las infecciones primarias del sistema nervioso central pueden
conducir a la encefalitis herpética, que puede tener un mal
pronóstico si no se trata rápidamente4,5. La infección primaria
que se desarrolla en los estadios finales del embarazo puede
provocar una infección neonatal grave. Estas infecciones tienen
tasas elevadas de morbilidad y mortalidad4,5.
En los pacientes inmunocomprometidos pueden desarrollarse
infecciones sistémicas graves potencialmente mortales, que en
ocasiones afectan a múltiples órganos5.
Está ampliamente difundido el uso de tratamientos antivíricos
seguros y eficaces para el manejo de las infecciones primarias y
recurrentes por HSV3,6 y, por lo tanto, es importante realizar el
diagnóstico rápido de laboratorio de la infección por HSV como
aval para el manejo y tratamiento de los pacientes infectados.
La identificación del tipo de HSV desempeña un papel importante
en la investigación y monitorización de los pacientes infectados4.
Los métodos diagnósticos más importantes que se utilizan incluyen
el aislamiento del virus viable en monocapas de cultivos celulares
inoculados con las muestras clínicas o la detección directa del
virus o de las proteínas víricas en las muestras clínicas4,7.
Se puede lograr el aislamiento del HSV a partir de muestras
clínicas en diversas líneas celulares que incluyen fibroblastos
diploides, células de riñón de conejo, células Vero y células
amnióticas humanas, en las que el HSV se replica rápidamente y
muestra un efecto citopático7.
Se han utilizado varias técnicas para detectar y confirmar la
identificación de los gérmenes aislados y para diferenciar entre el
HSV 1 y el HSV 2, que incluyen la hibridización del ADN, el análisis
con enzimas de restricción, las pruebas de neutralización y los
cultivos en huevos embrionados4,7. Estas técnicas pueden ser
complejas, laboriosas y, con frecuencia, inapropiadas para su uso
sistemático.
Se han descrito pruebas de inmunofluorescencia que utilizan
anticuerpos monoclonales específicos para el HSV 1 o el HSV
2, que se emplean para la identificación y el tipaje de los HSV
aislados y para la detección del HSV en cultivos celulares antes
de que se pongan de manifiesto los efectos citopáticos (ECP)7,8,9.
Las pruebas de inmunofluorescencia directa, como el IMAGEN
Herpes Simplex Virus, que utilizan anticuerpos monoclonales
específicos, ofrecen un método rápido, sensible y específico para
la detección y la diferenciación de los HSV 1 y los HSV 2 aislados
en monocapas de cultivos celulares. IMAGEN Herpes Simplex
Virus utiliza anticuerpos monoclonales específicos para detectar
epítopos de glicoproteínas del HSV específicas del HSV 1 o el HSV 2.
3. PRINCIPIO DE LA PRUEBA
Los reactivos del IMAGEN HSV contienen anticuerpos monoclonales
conjugados con isotiocianato de fluoresceína (FITC). Los anticuerpos
conjugados se unen en forma específica a los epítopos conservados
del HSV 1 o del HSV 2. Los reactivos se utilizan en una técnica de
inmunofluorescencia directa de un solo paso. Los especímenes
se incuban con los reactivos de anticuerpo conjugado con FITC
durante 30 minutos y luego el reactivo excedente se lava con
solución salina tamponada con fosfatos (PBS). Se montan las áreas
teñidas y se observan con el microscopio mediante iluminación por
epifluorescencia. Si los virus del herpes simple 1 o 2 se encuentran
presentes, se observa una fluorescencia de color verde manzana
brillante característica en las células cultivadas, que contrasta con
la tinción roja de fondo de las células no infectadas. El reactivo con
el cual se observa la fluorescencia específica indicará si se trata de
un HSV 1 o un HSV 2.
Reconocimiento
Los anticuerpos monoclonales utilizados en esta prueba se han
preparado en el Departamento de Patología de la Universidad de
Cambridge, Cambridge, Reino Unido.
4. DEFINICIONES
En la información del producto se han utilizado los siguientes
símbolos.
Número de catálogo
Consulte las instrucciones de uso
N
Contenido suficiente para <N> ensayos
Fabricante
Producto sanitario para diagnóstico in vitro
Fecha de caducidad
Código de lote
Límite de temperatura
5. REACTIVOS SUMINISTRADOS
50 - Cada kit contiene material suficiente para analizar 50
preparados de cultivo celular.
- La vida útil del kit es la indicada en la etiqueta del embalaje
exterior.
5.1.
CONTENIDO DEL KIT DE LA PRUEBA IMAGEN HSV
Un folleto de instrucciones de uso.
Portaobjetos de control positivo con pocillos
en 2 x 2 que contienen fibroblastos humanos
infectados con el HSV 1 o el HSV 2 y fijados en
acetona.
Un frasco de cada uno de los siguientes:
3mL de medio de montaje. El medio
de montaje contiene un inhibidor de la
fotodecoloración en una solución de glicerol
(pH 10,0).
1,4mL de reactivo tipo 1 de IMAGEN HSV. El
reactivo contiene anticuerpos monoclonales
murinos purificados específicos para el HSV
1, conjugados con FITC. Los conjugados se
preparan en una solución tampón estabilizada
con proteínas (pH 7,5) que contiene azul de
Evans como contratinción y 15 mmol/L de
azida sódica como conservante.
1,4mL de reactivo tipo 2 de IMAGEN HSV. El
reactivo contiene anticuerpos monoclonales
murinos purificados específicos para el HSV
2, conjugados con FITC. Los conjugados se
preparan en una solución tampón estabilizada
con proteínas (pH 7,5) que contiene azul de
Evans como contratinción y 15 mmol/L de azida
sódica como conservante.
5.2. PREPARACIÓN, ALMACENAMIENTO Y REUTILIZACIÓN DE
LOS COMPONENTES DEL KIT
Para asegurar la eficacia optima del kit, es importante que todos
los componentes no utilizados del mismo se almacenen de
acuerdo con las siguientes instrucciones.
5.3.
PORTAOBJETOS
DE
CONTROL
POSITIVO
-
Los portaobjetos de control positivo se proporcionan por
separado en bolsas metálicas selladas que contienen nitrógeno.
Almacene los portaobjetos no utilizados a 2-8°C. El portaobjetos
debe permanecer 5 minutos a temperatura ambiente (15-30°C)
antes de ser abierto.
Realice la tinción del portaobjetos inmediatamente después de
ser abierto.
5.4. MEDIO DE MONTAJE Listo para usar. Almacene el medio de montaje no utilizado
a 2-8°C. El medio de montaje debe permanecer 5 minutos a
temperatura ambiente (15-30°C) antes de su uso.
/
5.5. REACTIVOS 1 Y 2 Listos para usar. Almacene los reactivos 1 y 2 no usados a 2-8°C.
Los reactivos 1 y 2 deben almacenarse en la oscuridad a 2-8°C
y deben permanecer a temperatura ambiente (15-30°C) durante
5 minutos antes de su uso.
6. REACTIVOS ADICIONALES
6.1. REACTIVOS
Acetona (para fijación).
Solución salina tamponada con fosfatos (PBS) de pH 7,5 para lavar
los especímenes teñidos y para la preparación de los mismos.
6.2. ACCESORIOS
Generales
Portaobjetos de vidrio para microscopio recubiertos de Teflón,
con pocillos de 6mm de diámetro (100 portaobjetos por caja)
disponibles en su distribuidor local
IMAGEN Positive Control Slide (No de código S611030-2).
Para confirmación de cultivos
Hisopos estériles, medio de transporte vírico y un recipiente
adecuado para la recogida, transporte y cultivo del HSV.
Líneas celulares para cultivo recomendadas para el cultivo
y aislamiento del HSV.
7. Equipo necesario no suministrado
Pipeta de precisión y puntas desechables que permitan la
medición de hasta 25µL
Recipiente para lavado
Cubreobjetos adecuados para cubrir pocillos de 6 mm de diámetro
Aceite de inmersión no fluorescente
Microscopio de epifluorescencia con sistema de filtro para FITC
(longitud de onda de excitación máxima de 490nm, longitud
de onda de emisión media de 520nm) y lentes de aumento de
200X–500X
Incubador a 37°C
8. PRECAUCIONES
- Producto sanitario para diagnóstico in vitro. Cualquier
persona que realice un ensayo con este producto debe
estar entrenada para su uso y debe tener experiencia en los
procedimientos de laboratorio.
8.1. PRECAUCIONES DE SEGURIDAD
8.1.1
Los reactivos IMAGEN HSV contienen 15mmol/L de
azida sódica; que es tóxica. La azida sódica puede
reaccionar con las cañerías de plomo y cobre, formando
azidas metálicas altamente explosivas. Deseche siempre
el material que contenga azida aclarando con agua
abundante.
8.1.2
Se ha demostrado que el HSV presente en el portaobjetos
de control positivo no es infeccioso en los cultivos
celulares; sin embargo, se debería manejar y desechar el
portaobjetos como material potencialmente infeccioso.
8.1.3
El reactivo contiene azul de Evans, que puede ser
carcinogénico, por lo que debe evitarse el contacto con
la piel.
8.1.4
Proceda con cuidado al utilizar el medio de montaje,
ya que éste puede causar irritaciones cutáneas. Si el
contacto se produce, aclare la piel con agua abundante.
8.1.5
No se aplique cosméticos, beba, coma, ni almacene o
prepare alimentos dentro del área de trabajo designada.
8.1.6
No pipetee los materiales con la boca.
8.1.7
Lleve guantes desechables cuando manipule
especímenes clínicos y lávese siempre las manos
después de trabajar con materiales infecciosos.
8.1.8
Deseche todos los especímenes clínicos con arreglo a la
legislación local.
8.1.9
La hoja de datos sobre seguridad se encuentra
disponible a petición del usuario profesional.
8.2. PRECAUCIONES TÉCNICAS
8.2.1
Los componentes no deben utilizarse después de la
fecha de caducidad impresa en las etiquetas. No mezcle
lotes diferentes de reactivos.
8.2.2
Los reactivos se proporcionan a concentraciones de
trabajo fijas. La eficacia de la prueba se verá afectada
negativamente con cualquier tipo de modificación de los
reactivos o si éstos se almacenan con arreglo a condiciones
diferentes a las que se detallan en la Sección 5.
8.2.3
Prepare la solución salina tamponada con fosfatos (PBS)
fresca, según lo requiera el día que vaya a utilizarla.
8.2.4
Evite la contaminación microbiana de los reactivos.
8.2.5
No se deben congelar los reactivos.
9. RECOGIDA Y PREPARACIÓN DE LOS ESPECÍMENES
La recogida y preparación de los especímenes es de suma
importancia para el diagnóstico por cultivo celular de la infección
por HSV. Los especímenes deben ser recogidos del sitio de
infección de manera tal que contengan tanto material infectado
como sea posible.
9.1. ESPECÍMENES CLÍNICOS
Recogida
Recoger los especímenes clínicos del sitio de infección. Las úlceras
o lesiones deben frotarse a fondo con un hisopo con punta de
algodón, para poder obtener células infectadas y exudado
de la base de la úlcera o lesión. Las vesículas deben abrirse
cuidadosamente, para recoger el líquido con el hisopo y frotar la
base de la lesión con el hisopo. Los hisopos deben colocarse en el
medio de transporte de virus utilizado habitualmente y enviarse al
laboratorio tan pronto como sea posible, para su procesamiento.
Inoculación de cultivos celulares
Los especímenes recogidos para el diagnóstico de la infección
por el HSV deben inocularse en las líneas celulares que se utilizan
habitualmente en el laboratorio, de acuerdo con los métodos
establecidos del laboratorio y deben examinarse de forma regular
para detectar la aparición de un efecto citopático (ECP).
Preparación de los portaobjetos
Si se observa un ECP indicativo de una infección por HSV,
debe extraerse la monocapa de cultivo celular cuando
aproximadamente el 70% de las células esté infectado.
Introduzca las células en el medio de cultivo líquido raspando
la lámina de células con una pipeta estéril. Deposite las células
mediante una centrifugación suave a 200 x g durante 10 minutos a
temperatura ambiente (15-30°C) y retire el sobrenadante. Lave las
células mediante la resuspensión del depósito celular en PBS (véase
la Sección 6.1) y repita la centrifugación. Retire el sobrenadante y
resuspenda el depósito celular en un volumen pequeño de PBS
fresco para mantener una densidad celular elevada.
Coloque alícuotas de 25µL de la suspensión en los pocillos de los
portaobjetos de microscopio revestidos de teflón. Se requieren
dos pocillos por cada espécimen del paciente. Deje que se sequen
a temperatura ambiente (15-30°C) y colóquelos en acetona fresca
durante 10 minutos a temperatura ambiente (15-30°C). Si el
espécimen no se tiñe de forma inmediata, debe almacenarse a
4°C durante toda la noche o congelarse a –20°C durante períodos
más prolongados.
10. PROCEDIMIENTO DE ENSAYO
ANTES DE REALIZAR EL PROCEDIMIENTO DE ENSAYO, POR
FAVOR CONSULTE LA SECCIÓN 8.2 PRECAUCIONES TÉCNICAS.
10.1. ADICIÓN DE LOS REACTIVOS 1 Y 2
Agregue 25µL de reactivo para HSV 1 a la preparación de células
fijas de uno de los pocillos de 6mm de diámetro y 25µL de
reactivo para HSV 2 a la preparación del otro pocillo de 6 mm
de diámetro (véase la Sección 9) o agréguelo al portaobjetos de
control positivo. Asegúrese de que los reactivos cubran toda el
área del pocillo.
10.2. PRIMERA INCUBACIÓN
Incube los portaobjetos con los reactivos en una cámara húmeda
durante 30 minutos a 37°C. No permita que el reactivo se seque
en el espécimen, dado que eso provocará la aparición de tinción
inespecífica.
10.3. LAVADO DEL PORTAOBJETOS
Lave el exceso de reactivo con solución salina tamponada con
fosfatos (PBS) (véase la Sección 6.1) y luego lave suavemente el
portaobjetos durante 5 minutos en un recipiente con agitación
que contenga PBS. Escurra la PBS y deje que el portaobjetos se
seque al aire a temperatura ambiente (15-30°C).
10.4. ADICIÓN DEL MEDIO DE MONTAJE
Agregue una gota de medio de montaje IMAGEN en el centro de
cada pocillo y coloque un cubreobjetos sobre el medio de montaje
y el espécimen, asegurándose de que no queden burbujas de aire
atrapadas.
10.5. LECTURA DEL PORTAOBJETOS
Examine todas las áreas del pocillo de 6mm que contienen
la preparación de células teñidas con un microscopio de
epifluorescencia. Como se describe en la Sección 11, la
fluorescencia debería ser visible con un aumento de 200X–500X.
(Para obtener mejores resultados, los portaobjetos deberían ser
examinados inmediatamente después de realizada la tinción, pero
se pueden almacenar a 2-8°C en la oscuridad durante 24 horas).
11. INTERPRETACIÓN DE LOS RESULTADOS DE LA PRUEBA
11.1. CONTROLES
11.1.1 Portaobjetos de control positivo
Cuando se tiñe y se visualiza de acuerdo con lo descrito en la
Sección 10 el portaobjetos de control positivo debería mostrar
células fluorescentes con una fluorescencia intracelular de color
verde manzana que contrasta con el fondo de material teñido
con la contratinción. Deben utilizarse los portaobjetos de control
positivo para asegurarse de que el procedimiento de tinción se ha
realizado de forma satisfactoria.
11.1.2 Control negativo
Si se require un portaobjetos de control negativo, se recomienda
el uso de células intactas no infectadas, del tipo utilizado para el
cultivo y el aislamiento del HSV. Las células deben prepararse y
fijarse como se describe en la Sección 9.1 y deben teñirse como
se describe en la Sección 10.
11.2. ESPECÍMENES CLÍNICOS
11.2.1 Aspecto de las células infectadas por el HSV
Las células infectadas mostrarán gránulos citoplasmáticos
intracelulares con una fluorescencia de color verde manzana.
En algunas células infectadas, esta fluorescencia citoplasmática
característica se puede acompañar de un efecto de “reborde”
provocado por la tinción de la membrana celular.
Las células no infectadas se tiñen de rojo con la contratinción de
azul de Evans.
11.2.2 Interpretación
Se realiza un diagnóstico positivo cuando al menos una célula
teñida fijada muestra el patrón de fluorescencia descrito en
la Sección 11.2.1 con el reactivo tipo 1 o tipo 2 para HSV. Se
recomienda que se visualicen al menos 50 células del cultivo
celular analizado en el área de cada pocillo del portaobjetos antes
de informar un resultado negativo. En el caso de que las células
presentes sean insuficientes, véase la Sección 11.2.3.
11.2.3 Células insuficientes
Si el número de células de la preparación en el portaobjetos
fuera insuficiente, debe centrifugarse el resto de la muestra
del cultivo celular a 200 x g durante 10 minutos a temperatura
ambiente (15-30°C). Resuspenda en un volumen menor de PBS
antes de redistribuir (25µL) en las áreas de los pocillos de 6mm
de diámetro en un portaobjetos para microscopio revestido de
teflón, según lo descrito en la Sección 9.1. De forma alternativa,
debe solicitarse la repetición de la toma del espécimen clínico.
12. Limitaciones del procedimiento
12.1. Utilice sólo el medio de montaje suministrado con el kit de
la prueba IMAGEN HSV.
12.2. El aspecto visual de la imagen fluorescente obtenida
puede variar en función del tipo de microscopio y de la
fuente luminosa que se utilice.
12.3. Los reactivos se proporcionan a concentraciones de
trabajo fijas. La eficacia de la prueba puede verse afectada
con cualquier modificación de los reactivos o si éstos no se
almacenan con acuerdo a las condiciones recomendadas,
de acuerdo a lo expuesto en la Sección 5.
12.4. Se recomienda utilizar 25µL del reactivo para cubrir un
área de pocillo de 6mm de diámetro. Una disminución de
este volumen puede provocar dificultades para cubrir el
área de la muestra y puede disminuir la sensibilidad.
12.5. La imposibilidad de detectar el HSV puede ser el resultado
de ciertos factores como la recogida del espécimen en un
momento inapropiado de la enfermedad, la toma y/o la
manipulación incorrecta del espécimen, problemas con
el cultivo celular, etc. Un resultado negativo no excluye la
posibilidad de una infección por el HSV.
12.6. Los resultados de la prueba deben interpretarse
junto con la información procedente de los estudios
epidemiológicos y clínicos, la evaluación del paciente y
otros procedimientos diagnósticos.
13. VALORES ESPERADOS
La infección por el virus del herpes simple en el hombre se
observa en todas las regiones del mundo y más del 80% de la
población adulta en los países occidentales habrá experimentado
una infección primaria, de la cual la mayoría habrá sido
asintomática10. Tras la infección primaria, aproximadamente el
45% de los individuos con infección oral y el 60% de los pacientes
con infección genital experimentarán infecciones recurrentes por
el herpes3. El HSV ha sido aislado del tracto genital en el 0,3 a
5,4% de los hombres y el 1,0 a 8,0% de las mujeres que concurren
a los centros asistenciales debido a enfermedades de transmisión
sexual11,12. Las infecciones oculares por herpes simple son una de
las causas más importantes de remisión de pacientes a las clínicas
oftalmológicas.
En la infección primaria o recurrente sintomática, las lesiones del
HSV se pueden encontrar en la piel, las membranas mucosas de
la boca, la faringe y los genitales o en los ojos. En la enfermedad
en neonatos o en individuos inmunocomprometidos la infección
puede diseminarse ampliamente y afectar a órganos como el
pulmón, el cerebro, el hígado, el bazo, etc.
El HSV se puede cultivar a partir del líquido de las lesiones
vesiculares o de las secreciones de otros sitios infectados (p. ej.,
ojos, faringe o genitales). Además, en el herpes diseminado, el
HSV se puede cultivar a partir de tejidos infectados, p. ej., biopsia
de cerebro en los pacientes con encefalitis por herpes simple.
14. características específicas
14.1. REACTIVIDAD DEL ANTICUERPO MONOCLONAL CON EL
HSV TIPO 1 Y TIPO 2
Se ha demostrado que los anticuerpos monoclonales utilizados
en esta prueba reaccionan con epítopos conservados específicos
para cada tipo de antígeno del HSV 1 o del HSV 2.
14.2. Características específicas
La prueba de tipaje IMAGEN HSV se evaluó en un centro de
ensayos clínicos y los resultados fueron comparados con el mapeo
con endonucleasas de restricción. Las muestras en este centro
hospitalario fueron tomadas de varios sitios que incluyeron
la nariz, la garganta, la lengua, la boca, la piel, la conjuntiva,
el periné, la uretra, el pene, la vulva, los labios vaginales, la
vagina y el cuello uterino de 187 pacientes que concurrieron
al hospital. Los especímenes (hisopados) se colocaron en un
medio de transporte y se trasladaron hasta el laboratorio para el
aislamiento del HSV en el cultivo celular. Los 187 cultivos celulares
fueron analizados por microscopía en el centro en el que se
realizó el estudio, para buscar el efecto citopático típico del HSV
y se evaluaron con reactivos IMAGEN HSV para determinar si el
HSV1 o el HSV 2 estaban presentes. Se consideró que el HSV 1
estaba presente si una o más células mostraban la fluorescencia
típica con el reactivo para el HSV 1. Se consideró que el HSV 2
estaba presente si una o más células mostraban la fluorescencia
típica con el reactivo para el HSV 2 (véase la Sección 11).
Detección del HSV
De los 187 especímenes evaluados, 60 (32,1%) fueron positivos
en el cultivo celular de referencia y en la prueba de tipaje IMAGEN
HSV (Tabla 14.2.1). De los resultados positivos obtenidos, el
55,0% correspondieron a mujeres y el 45,0% correspondieron a
hombres. La distribución de los resultados positivos según el sitio
de aislamiento del HSV fue: 83,3% genital, 13,3% oral y 3,4% de
otros sitios anatómicos.
De los especímenes genitales positivos, el 40,0% correspondieron
a HSV 1 y el 60,0% a HSV 2. Todos los especímenes orales positivos
correspondieron a HSV 1.
En todos los casos se obtuvieron resultados positivos por ambos
métodos, lo que da un valor de correlación, especificidad,
sensibilidad y valores predictivos positivo y negativo del 100%.
Tabla 14.2.1
Comparación de los resultados de las pruebas
con IMAGEN HSV y los métodos estándar de cultivo celular
PRUEBA
Cultivo Celular
IMAGEN HSV
Número de especímenes
RESULTADOS
Pos
Neg
Neg
Pos
Pos
Neg
Pos
Neg
60
127
0
0
(32,1) (67,9) (0)
(0)
( ) Se expresan como porcentaje del número total de especímenes
analizados.
Tipaje del HSV 1 y el HSV 2
Se analizó un total de 43 cepas de HSV aisladas en cultivo con la
prueba IMAGEN HSV y el mapeo con endonucleasas de restricción
(Tabla 14.2.2). En todos los casos se obtuvieron resultados
positivos por ambos métodos, lo que da un valor de correlación,
especificidad y sensibilidad del 100%.
Tabla 14.2.2
Comparación del tipaje del HSV 1 y el
HSV 2 mediante IMAGEN HSV y mapeo con endonucleasas de
restricción (MER)
PRUEBA
MER
IMAGEN HSV
Número de especímenes
RESULTADOS
HSV 1 HSV 2 HSV 1 HSV 2
HSV 1 HSV 2 HSV 2 HSV 1
23
20
0
0
(53,5) (46,5) (0)
(0)
( ) Se expresan como porcentaje del número total de especímenes
analizados.
9.
Pereira L., Dondero D.W., Gallo D., Devlin D. and Woodie J.D. (1982)
Serological analysis of herpes simplex virus types 1 and 2 with
monoclonal antibodies.
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Genital herpes simplex virus infection: clinical manifestations course
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Annals lnternal Medicine 98: 918 72.
12. Corey L. and Holmes K.K. (1983)
Genital herpes simplex virus infections: current concepts in diagnosis,
therapy and presentation.
Annal Internal Medicine 98: 973 83.
14.3. REACTIVIDAD CRUZADA
Se realizó la prueba de tipaje IMAGEN HSV frente a otros virus con
posibilidad de ser aislados en cultivos celulares de especímenes
humanos. Todos los organismos evaluados (Tabla 14.3) fueron
negativos con ambos reactivos IMAGEN HSV 1 e IMAGEN HSV 2.
Tabla 14.3
Virus que fueron evaluados con la prueba
IMAGEN HSV y que se encontró que no eran reactivos
Adenovirus 2,3,4
Citomegalovirus
Echovirus 11
Virus de Epstein Barr
Herpes zóster
Parainfluenza 1
Virus respiratorio sincitial
15. REFERENCIAS
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Francki R.I.B., Fauquet C.M., Knudson D.L. and Brown F
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Gleaves C.A., Wilson D.J., Wold A.D. and Smith T.E. (1985)
Detection and serotyping of Herpes Simplex virus in MRC-5 cells using
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J. Clin. Microbiol. 21: pp 29.
IFU X7851 revisado octubre 2012
OXOID Limited, Wade Road, Basingstoke,
Hampshire, RG24 8PW, Reino Unido
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Para cualquier pregunta, por favor, contacte con la delegación o el
distribuidor local de Oxoid.
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