T3-uptake (T3U) - Annar Diagnóstica Import

construcción de una curva dosis respuesta de absorbancia y
concentración. A partir de la comparación a la curva dosis
respuesta, La absorbancia de una muestra desconocida puede
estar correlacionada con la capacidad de unión a la hormona
tiroidea.
D. Microplaca cubierta de Anticuerpo T4 - 96 pozo s- Icono
Una microplaca de 96 pocillos cubiertas con suero anti tiroxina
de oveja y empaquetada en una bolsa de aluminio con un
agente de secado. Almacenar a 2-8ºC.
E. Concentrado de Solución de Lavado- 20 ml – Icono
Un vial que contiene un surfactante en suero salino tamponado.
Un preservante ha sido adicionado. Almacenar a 2-30ºC.
PRINCIPIO
Ensayo Inmunoenzimométrico Competitivo (Tipo 5)
Los componentes requeridos para la evaluación de la capacidad
de unión del suero humano son el conjugado enzimático T3,
tiroxina, proteína de unión (P) y anticuerpo de tiroxina
inmovilizado (Ab).
Luego de la mezcla del conjugado enzimático y la tiroxina con la
muestra, una reacción de unión resulta entre las proteínas de
unión del paciente y la tiroxina agregada pero no con el
conjugado enzimático. Esta interacción es representada como:
F. Substrato A – 7 ml/vial- Icono SA
Una (1) botella que contiene tetrametilbenzidina (TMB) en
buffer. Almacenaje a 2-8ºC.
G. Substrato B – 7 ml/vial – Icono SB
Una (1) botella que contiene peróxido de hidrógeno (H2O2) en
buffer. Almacenaje a 2-8ºC.
STOP
T4 + P
T3-uptake (T3U)
Código 525-300
Uso programado: La Determinación de la cantidad Total de
Sitios de Unión disponibles para las Hormonas Tiroides en
Suero o plasma Humano por ensayo inmunoenzimométrico
con microplacas.
RESUMEN Y EXPLICACION DE LA PRUEBA
La glándula tiroides bajo el control regulador de la hormona
tirotropina secreta tiroxina (T4) y triyodotironina (T3) dentro de
la circulación general. Las hormonas liberadas no circulan como
moléculas libres pero casi en su totalidad (99.9%) se unen a las
proteínas séricas específicas.
3 fracciones de proteínas con afinidades variantes y
capacidades para la interacción con T3 y T4 han sido
identificadas por la electroforesis con papel de flujo reverso. La
tiroxina unida a la globulina (TBG) transporta 65-75% de la
concentración circulante total. La tiroxina unida a la prealbúmina (TBPA) tiene una actividad intermedia para la tiroxina
(transporta aproximadamente 15-25%) pero poca avidez para
triyodotironina. La albúmina con una baja afinidad pero mayor
capacidad transporta 10% de la tiroxina y 30% de la
triyodotironina disponible.
Incluso los procesos metabólicos son regulados enteramente
por la concentración de las hormonas tiroideas libres, los cuales
son inversamente relacionados a los niveles de las proteínas de
unión, una evaluación de la capacidad de unión del suero
humano fue desarrollado en 1957 por Halmolsky. En este
método temprano, el T3 radioactivo fue adicionado a una
muestra de la sangre total. Después de un período de
incubación, la mezcla fue centrifugada y los glóbulos rojos
lavados. La radioactividad de uptake de los glóbulos rojos fue
inversamente relacionado a la capacidad de unión del suero.
Aunque este método tiene varias limitaciones, probó ser una
herramienta de valor diagnóstico.
Otras mejorías técnicas en la metodología del ensayo de la
prueba de T3 uptake resultaron como varios agentes de
separación tales como la cubierta de carbón, resinas de
intercambio iónico, albúmina desnaturalizada, silicatos,
anticuerpos y polímeros orgánicos fueron empleados en lugar
de los glóbulos rojos.
Esta metodología de inmunoensayo enzimático de microplaca
proporciona al técnico una sensibilidad óptima donde requiere
algunas manipulaciones técnicas. En este método, los sueros
de referencia, la muestra del paciente o controles son primero
adicionados al pocillo de microplaca. El conjugado enzima-T3 y
tiroxina (T4) son adicionados y luego los reactivos son
mezclados. Las proteínas de unión endógenas de la muestra
reaccionan con la tiroxina, pero no con el conjugado de enzima.
Esto conduce a una mayor unión del conjugado de enzima a los
sitios de combinación con el anticuerpo, reactivos para
triyodotironina y tiroxina, inmovilizados en los pozos mientras la
capacidad de unión se incrementa.
Después de completar el período de incubación requerida, el
conjugado tiroxina-enzima unido al anticuerpo es separado del
conjugado enzima-tiroxina no unido mediante aspiración o
decantación. La actividad de la enzima presente en la superficie
de los pozos es cuantitativa por reacción con sustratos
adecuados para producir color.
El empleo de varios sueros de referencia de la hormona tiroidea
no saturada conocida con capacidad de unión permite la
H. Solución de parada – 8ml/vial – Icono
Una (1) botella que contiene un ácido fuerte (HCl 1N).
Almacenaje a 2-30ºC.
T4-P (1)
T4 = Tiroxina adicionada (cantidad constante)
P = proteínas de Unión específicas (Cantidad variante)
I. Instrucciones del Producto
La tiroxina adicionada (T4) no se consumió en la reacción 1
incluso se completa con el conjugado T3-enzima para un
número limitado de sitios de unión insolubles. La interacción es
ilustrada por la siguiente ecuación:
Ka
Enz
Enz
T3 + T4r + Ac c.w.
T4Acc.w. + T3 Accw (2)
K-a
Acc.w = Anticuerpo Inmovilizado (Cantidad constante)
Requeridos pero no proporcionados:
1. Pipeta(s) de 25 µl con una precisión superior al 1.5%
T4r = T4 no reactivo adicionado en la reacción (1) (Cantidad
variable)
4.
Lavador de microplaca o una botella de lavado (opcional).
5.
Lector de microplaca con capacidad de absorbancia de
450nm y 620nm.
6.
Tubo de prueba para mezclar los substratos A y B.
7.
Papel absorbente para secar los pocillos de la microplaca.
8.
Cubierta plástica o de microplaca para los pasos de
incubación.
9.
Aspirador al vacío (opcional) para los pasos del lavado.
Enz
T3 = Conjugado Enzima-Antígeno (Cantidad constante)
T4Acc.w.= Complejo Tiroxina- Anticuerpo
Enz
T3 Accw = Complejo Anticuerpo- conjugado Enzima- T3
Ka = Tasa Constante de Asociación
2.
Dispensador(es) para las distribuciones repetidas de 0.100
ml y 0.350ml volúmenes con una precisión superior al
1.5%.
3.
Volumen ajustable (20 - 200 µl) y (200 – 1000 µl) con
dispensador para conjugado y diluciones de substratos.
k-a = Tasa Constante de Disociación
K = Ka / K –a = Constante de Equilibrio
10. Cronómetro
Después que el equilibrio se mantiene, la fracción unida al
anticuerpo es separada del antígeno no unido por decantación o
aspiración. La actividad de la enzima en la fracción unida al
anticuerpo es directamente proporcional a la capacidad de
unión de la muestra. Así, en el hipotiroidismo, las proteínas de
unión son relativamente insaturadas (debido al bajo nivel de las
hormonas tiroideas) resultando en mayor consumo de la tiroxina
adicionada que en un muestra eutiroideo. Esto conduce a
mayor unión del conjugado enzima-triyodotironina causado por
la concentración reducida de la tiroxina disponible. En el
hipertiroidismo, lo inverso es correcto. Las proteínas que se
unen son relativamente saturadas con tiroxina (debido al mayor
nivel de hormona tiroidea) resultando en el bajo consumo de la
tiroxina adicionada. La tiroxina restante es relativamente mucho
mayor que en una muestra eutiroidea resultante en la unión
menor del anticuerpo enzima-antígeno debido a la competición
incrementada de la tiroxina para los sitios limitados de
anticuerpos.
Nota 1: No usar reactivos después de la fecha de expiración
Nota 2: Los reactivos abiertos son estables por 60 días cuando
son almacenados a 2-30ºC.
Nota 3: Los reactivos anteriormente nombrados son para una
microplaca sencilla de 96 pocillos.
B
C. Buffer de Conjugado T3 Uptake – 13 ml – Icono
Un (1) botella de reactivo que contiene buffer, tinción naranja y
preservante. Almacenaje a 2-8 ºC.
2. Buffer para Lavado
Diluir los contenidos del Concentrado de Lavado a 1000 ml con
agua destilada o desionizada en un contenedor de almacenaje
adecuado. Almacenar a temperatura ambiente de 20-27ºC
hasta 60 días
3. Solución de Substrato de Trabajo
Vierta el contenido del vial ámbar marcado con solución “A”
dentro del vial claro marcado como solución “B”. Colocar la tapa
amarilla al vial claro para fácil identificación. Mezclar y marcar
según corresponda. Almacenar de 2-8 Cº
Nota: No usar el substrato de trabajo si se ve azul.
PROCEDIMIENTO DE PRUEBA
Antes de proceder con el ensayo, permita que todos los
reactivos, sueros de regencia y los controles alcancen
temperatura ambiente (20-27ºC).
1. Formatear los pocillos de la microplaca para cada suero de
referencia, la muestra del paciente y control para que sean
ensayada en duplicado.
Regresar cualquier tira del micropozos no usada
dentro de la bolsa de aluminio, sellarlo y almacenarlo a
2-8ºC.
2.
Pipetear 0.025 ml (25µl) del suero de referencia apropiado,
control o muestra dentro del pocillo asignado.
3.
Adicionar 0.100ml (100µl) de Reactivo de trabajo A,
solución T3U enzima a todos los pocillos.
4.
Agitar la microplaca suavemente por 20-30 segundos para
mezclar y cubrir.
5.
Incubar 60 minutos a temperatura ambiente.
6.
Descartar los contenidos de la microplaca por decantación
o aspiración, si se decanta golpee la placa y secar con
papel absorbente.
7.
Adicionar 350µl de buffer de lavado (ver Sección
Preparación de Reactivos), decantar (golpear y secar) o
aspirar. Repetir 2 veces adicionales para un total de 3
lavados. Un lavador de placa automático o manual
puede ser usado. Seguir las instrucciones del
fabricante para el uso apropiado. Si la botella de
lavado es empleado, llenar cada pocillo oprimiéndola
(evitar la formación de burbujas de aire) para
dispensar el lavado. Decantar el lavado y repetir 2
veces adicionales.
8.
Adicionar 0.100 ml (100µl) de solución de substrato de
trabajo a todos los pocillos (Ver Sección de Preparación
del Reactivo). Siempre adicione reactivos en el mismo
orden para minimizar las diferencias del tiempo de
reacción en los pocillos.
PRECAUCIONES
Para el uso Diagnóstico in Vitro
No para el Uso Interno ni Externo en Humanos o Animales
Todos los productos que contienen suero humano se
encontraron no reactivos para el Antígeno de Superficie de la
Hepatitis B, VIH 1 y 2 y anticuerpos para VHC mediante
pruebas aprobadas por la FDA. No se conoce prueba que
pueda ofrecer seguridad a pesar que los agentes infecciosos
estén ausentes, todos los productos séricos de humanos serán
manejados como potencialmente peligrosos y capaces de
transmitir enfermedades. Las buenas practicas de laboratorio
para el manejo de productos sanguíneos pueden ser
encontrados en el Centro de Control de Enfermedades/ Instituto
Nacional
de
Salud,
“Bioseguridad
en
Laboratorios
Microbiológicos y Biomédicos”, 2da Edición, 1988, HHS
Publicación Nº (CDC) 88-8395.
E
RECOLECCION DE LA MUESTRA Y PREPARACION
Se deben seguir las precauciones en la recolección de
muestras de sangre, plasma o suero por punción venosa. Se
debe obtener para la comparación exacta de los valores
normales establecidos, una muestra de suero en ayunas. La
sangre debe ser recolectada en un tubo de tapa roja sin aditivos
o anticoagulantes (para suero) o tubos que contienen EDTA o
heparina. Permitir que la sangre coagule. Centrifugar la muestra
para separar el suero de las células.
Las muestras pueden ser refrigeradas de 2-8ºC por un período
máximo de 5 días. Si la muestra no puede ser ensayada dentro
de este tiempo, la muestra puede ser almacenada a
temperatura de -20ºC por hasta 30 días. Evitar ciclos de
en
PREPARACION DE LOS REACTIVOS
1. Reactivo de Trabajo A- Solución reactivo enzima -T3U
Diluir el reactivo T3U-enzima 1:11 con el buffer del conjugado
T3 uptake en un contenedor adecuado. Por ejemplo, diluir
160µl de conjugado con 1.6 ml de buffer para 16 pocillos (un
exceso leve de solución es hecha). Este reactivo será usado
dentro de las 24 horas para el rendimiento máximo del ensayo.
Almacenaje a 2-8ºC.
Fórmula General:
Cantidad de Buffer requerido = Número de pocillos * 0.1
Cantidad de T3- Enzima necesaria = # de pocillos *0.01
Por ejemplo = 16 x 0.1 = 1.6 ml para Buffer Conjugado T3/T4
total
16 x 0.01 = 0.16 ml (160µl) para conjugado T3 enzima
11. Materiales de control de calidad.
REACTIVOS
Materiales proporcionados
A. Sueros de referencia Humano – 1ml/vial- Iconos A-D
4 viales de suero humano de la capacidad de unión de la
hormona tiroidea insaturada a niveles aproximados* de 18 (A),
25 (B), 35 (C) y 47 (D) %U. Almacenar a 2-8ºC. Un preservante
ha sido adicionado.
* Los niveles exactos están dados sobre la etiqueta basados en
especificidad del lote.
B. Reactivo de Enzima – T3 Uptake- 1.5 ml/vial – icono
Un (1) vial que contiene conjugado de triyodotironina peroxidasa de rábano picante (HRP) y tiroxina en una matriz
estabilizada con albúmina. Un preservante ha sido adicionado.
Almacenaje a 2-8ºC.
congelación y descongelación. Cuando ensayamos
duplicado, se requiere 0.05ml de las muestras
NO AGITAR LA MICROPLACA DESPUES DE ADICIONAR DE
SUBSTRAT0
9.
Incubar a temperatura ambiente por 15 minutos.
10. Adicionar 0.050 ml (50µl) de solución de parada para cada
pocillo y mezclar ligeramente (por 15-20 segundos).
Siempre adicione reactivos en el mismo orden para
minimizar las diferencias del tiempo de reacción en los
pocillos.
11. Leer la absorbancia en cada pozo a 450 nm (usando una
longitud de onda de referencia de 620-630 nm para
minimizar las imperfecciones del pocillo) en un lector de
microplaca. Los resultados serán leídos dentro de los
30 minutos de adicionar la solución de parada.
RESULTADOS
Una curva dosis respuesta es usada para hallar la capacidad de
unión de las hormonas tiroideas no saturadas en muestras
desconocidas
1. Registrar la absorbancia obtenida del listado del lector de
microplacas como se delineó en el Ejemplo 1.
2.
Graficar la absorbancia para cada suero de referencia por
duplicado versus el %T3-uptake (%U) correspondiente en
el papel de gráfica lineal (no promediar los duplicados del
suero de referencia antes de la grafica).
3.
Sacar la mejor curva fija a través de los puntos de la
grafica.
Determinar el %T3 uptake para un desconocido, localizar la
absorbancia promedio de los duplicados para cada desconocido
en el eje vertical del gráfico, encontrar el punto de intersección
de la curva y leer el %T- uptake (%U) del eje horizontal de la
gráfica
(los duplicados de lo desconocido pueden ser
promediados como se indicó). En el siguiente ejemplo, la
absorbancia promedio 1.690 (intercepta la curva de referencia a
26.6%U) (Ver Figura 1).
EJEMPLO 1
Muestra
Pozo
I.D.
Nombre
Abs (A)
A1
2.644
B1
2.600
C1
1.888
Cal A
Cal B
D1
1.872
E1
0.710
F1
0.726
G1
0.265
Cal C
Cal D
H1
0..247
A2
1.701
Ctrl 1
B2
Media
Valore
Abs (B)
(%U)
2.622
18
C2
0.330
D2
0.298
ANALISIS DE RIESGOS
A. Desempeño de la prueba
2.
El pipeteo de las muestras no se extenderá más de 10
minutos para evitar derivaciones.
3.
No se deben emplear muestras altamente lipémicas,
hemolizadas o contaminadas
4.
Si más de 1 placa es usada, se recomienda repetir la curva
dosis respuesta.
5.
La adición de la solución sustrato inicia una reacción
cinética, la cual es terminada por la adición de la solución
de paralización. Por tanto, la adición de los substratos y la
solución de detención serán adicionadas en la misma
secuencia para eliminar cualquier desviación durante la
reacción.
RANGOS DE VALORES ESPERADOS
Un estudio de una población eutiroidea adulta (85 muestras) fue
tomado para determinar los valores esperados para el T uptake
y son presentados en la Tabla 1.
6.
Los lectores de placa miden verticalmente. No tocar el
fondo de los pozos.
TABLA 1
Valores Esperados para el Sistema de Prueba T Uptake EIA
7.
La falla en remover la solución adherente adecuadamente
en los pasos de aspiración o lavado por decantación
puede resultar en una pobre replicación y resultados
falsos.
8.
Usar componentes del mismo lote. No mezclar los
reactivos de diferentes lotes.
Estado Eutiroideo
Eutiroideo
(Hipotiroideo o
Unión excesiva de TBG)
(Hipertiroideo o
Saturación de TBG)
9. Es esencial un pipeteo preciso y exacto así como seguir el
tiempo exacto y la temperatura requerida. Cualquier
desviación de las instrucciones de uso puede arrojar
resultados inexactos.
0.718
35
10. Se deben seguir las buenas prácticas de laboratorio todos
los estándares nacionales aplicables, regulaciones y leyes
de manera estricta para asegurar el cumplimiento y uso
adecuado del dispositivo.
0.256
47
11. Es importante calibrar todos los equipos, por ejemplo:
pipetas,
lectores,
lavadores
y/o
instrumentos
automatizados con este reactivo y realizar un
mantenimiento preventivo rutinario
1.690
26.6
0.314
45.5
12. El análisis de riesgo – como lo requiere la directiva IVD
98/79/EC de la marca CE- para estos y otros dispositivos
elaborados por Monobind, pueden ser solicitados vía
Email: Monobind@monobind.com
B. Interpretación
1. Los resultados de laboratorio por si solos son únicamente un
aspecto para determinar el cuidado del paciente y no deben ser
la única base para una terapia, particularmente si los resultados
están en conflicto con otros determinantes.
2. Para resultados de pruebas válidas, los controles adecuados
y otros parámetros deben estar dentro de los rangos listados y
requerimientos del ensayo.
3. Si los kits de prueba están alterados, ya sea por mezcla de
partes de diferente kits, lo cual puede producir resultados de
prueba falsos o si los resultados son interpretados
incorrectamente, Monobind no tendrá responsabilidad.
4. Si se utiliza el sistema de reducción de datos controlados por
Computador para interpretar los resultados del ensayo, es
necesario que los valores de predicción para los calibradores se
ubiquen dentro del 10% de las concentraciones asignadas.
La T uptake puede también ser expresada como un radio T
uptake. Divida el %U por 30% para convertirlo a T uptake radio
ver ejemplo 2
EJEMPLO 2
5. La prueba T3 uptake es dependiente de una multiplicidad de
factores: La glándula tiroides y su regulación, la
concentración de la globulina unida a la tiroxina (TBG) y la
unión de las hormonas tiroideas a la TBG. Por lo tanto la
prueba T3uptake por si sola no es suficiente para evaluar
el estado clínico.
27.3%U / 30%
6.
=
0.910
CONTROL DE CALIDAD
Cada laboratorio ensayará los controles a niveles en el rango
del hipotiroideo, eutiroideo e hipertiroideo para el monitoreo del
rendimiento del ensayo. Estos controles serán tratados como
desconocidos y los valores determinados en cada
procedimiento de prueba realizado. Las tarjetas de control de
calidad serán mantenidas en seguir el rendimiento de los
reactivos suministrados. Los métodos estadísticos pertinentes
serán empleados para acertar en las tendencias. La desviación
significante de rendimiento establecido puede indicar cambio no
notificado en condiciones experimentales o degradación de los
reactivos del kit. Los reactivos frescos serán usados para
determinar la razón para las variaciones
Es importante que el tiempo de reacción en cada pozo sea
sostenido en forma constante para resultados
reproducibles.
25
* Los datos presentados en el Ejemplo 1 y Figura 1 son
únicamente para ilustración y no deben ser usados en lugar de
la curva de dosis-respuesta preparada con cada análisis.
evaluación mas exacta del estado tiroide. El valor FTI
compensa con cualquier condición o medicamento tales
como embarazo o estrógenos los cuales alteran los niveles
de TBG y T4 pero no cambian el estado tiro metabólico.
Una tabla de medicamentos interferentes y condiciones,
han sido compiladas en el Journal de la asociación
americana de química clínica.
1.
1.880
1.680
Ctrl 2
PARAMETROS DE CC
Con el fin de que los resultados del análisis sean considerados
válidos se deben cumplir los siguientes criterios:
1. La absorbancia (OD) del calibrador A será ≥ 1.3
2. 4 de 6 grupos de control de calidad estarán dentro de los
rangos establecidos
El índice de tiroxina libre (FTI), el cual es producto del
radio T up take y la concentración de tiroxina total, a
ganado una amplia aceptación química como una
% T- uptake
25 – 35
< 25
Ratio T
0.83 – 1.17
< 0.83
> 35
> 1.17
CARACTERISTICAS DEL RENDIMIENTO
A.
Precisión
La precisión dentro y entre los ensayos del Sistema de Prueba
de microplaca T uptake EIA fue determinada por análisis en 3
diferentes niveles de suero de control. El número, valor
promedio, la desviación estándar y el coeficiente de variación
para cada uno de estos sueros controles son presentados en la
Tabla 2 y Tabla 3.
TABLA 2
Precisión dentro del Ensayo (Valores en %U))
N
24
24
24
TABLA 4
Análisis de
Regresión
Coeficiente de
Método
Promedio (x) Última
Correlación
Este Método
29.3
y = 1.56 + 0.956(x)
0.972
Referencia
29.0
Solamente pequeñas cantidades de desviaciones entre el este
método y el método de referencia son indicadas por la
proximidad de los valores promedios. La ecuación de regresión
cuadrada última y el coeficiente de correlación indican excelente
ordenamiento del método.
REFERENCIAS
1. Inada, M., and Sterling, K., J. Clin. Invest, 46, 1442. (1967)
2. Murphy, B., 1968, Radioisotopes in Medicine, U.S. Atomic
Energy Commission, Technical Information Center,
Tennessee.
3. Hollander, C.S. and Shenkman, L., Methods of Hormone
Radioimmunoassay, Academic Press, New York. (1974)
4. Hamolsky, M.W., Stein, M. and Freedberg, S.A., J. Clin.
Endocrinol 17, 33. (1957)
5. Hebert, V., U.S. Patent Office #3,442, 819. (1971)
6. Mitchell, M.L., Harden, A.B. and O’Rourke, M.E.. J. Clin.
Endocrinol. 20, 1474. (1960)
7. Rolleri, E., Buzzigoli, G., and Plassio, C., J Nucl. Med. 13,
892. (1972)
8. Nusynowitz, M.L., and Waliszewski, Am. J. Clin. Pathol 56,
523. (1971)
9. Clark, F. and Horn, D.B., J. Clin. Endocrinol. Metab. 25, 39
(1965)
Es importante guardar en mente que el establecimiento de un
rango de valores el cual puede ser esperado sea encontrado
por un método dado para una población de personas “normales”
es dependiente bajo una multiplicidad de factores. La
especificidad del método, la población probada y la precisión del
método en las manos del analista. Por estas razones cada
laboratorio dependerá bajo el rango de valores esperados
establecidos por el fabricante solamente hasta un rango local
pueden ser determinados por los analistas usando el método
con una población local en la cual el laboratorio está ubicado.
Muestra
Bajo
Normal
Alto
para el T uptake EIA en comparación con el método de
referencia. Los datos obtenidos son descritos en la Tabla 4
X
28.7
37.8
45.4
σ
0.39
0.51
0.33
C.V.
1.37%
1.36%
0.73%
TABLA 3
Precisión Entre Ensayo (valores en %U)
Muestra
N
X
σ
C.V.
Bajo
10
28.4
0.45
1.6%
Normal
10
37.1
0.65
1.8%
Alto
10
45.7
0.52
1.1%
* Medido en 10 experimentos en duplicado por un
periodo de 10 dias.
B.
Exactitud (Método de comparación)
El Sistema de prueba de Microplaca T-uptake
EIA fue
comparado con un método de radioinmunoensayo de T3. Las
muestras biológicas de las poblaciones eutiroideas,
hipotiroideas, hipertiroideas y embarazadas fueron usados (Los
valores van del rango de 14%– 48 %U). El número total de
tales muestras fue de 120. La última ecuación de regresión
cuadrada y el coeficiente de correlación fueron computados
10. Young. D.S., Pestaner, L.C. and Giberman, U., Clinical
Chemistry 21, 3660. (1975)
Revisión: 2
Date: 11-22-10
Cat #: 525-300