universidad nacional autónoma de méxico - Biblioteca, FES-C

UNIVERSIDAD NACIONAL AUTÓNOMA DE MÉXICO
FACULTAD DE ESTUDIOS SUPERIORES CUAUTITLÁN
“MASTOCITOMA GRADO I EN PACIENTE CANINO”
SERVICIO SOCIAL
ATENCIÓN MÉDICO-QUIRÚRGICA DE PACIENTES DENTRO DEL
HOSPITAL DE PEQUEÑAS ESPECIES DE LA FES CUAUTITLÁN
QUE PARA OBTENER EL TÍTULO DE:
MÉDICA VETERINARIA ZOOTECNISTA
P R E S E N T A:
ANA LIDIA BARBA AGUILAR
ASESOR: M.V.Z. JOSÉ FELIPE MORALES CABRAL
Cuautitlán Izcalli, Estado de México
2014
AGRADECIMIENTOS
A Dios por darme la oportunidad de estudiar y terminar esta hermosa carrera, por
darme una familia maravillosa y por la oportunidad de conocer a gente
extraordinaria en mi camino
A mi mamá por ser mi pilar, mi fuerza, mi impulso, porque siempre ha estado
conmigo apoyándome, cuidándome, porque a pesar de las dificultades siempre
veló y se preocupó por nosotras y que gracias a ella he podido salir adelante, mi
amor y admiración son infinitos.
A mi hermana, por estar toda la vida conmigo, por tu amor, por siempre cuidarme,
por ser mi amiga, por ser la mejor hermana, e incluso hoy me sigues procurando e
impulsando a superarme y terminar mis metas.
A mi papá por inculcarme valores importantes, por ser un ejemplo a seguir, por
enseñarme que con dedicación, esfuerzo y disciplina se puede lograr lo que uno
desea, gracias por el apoyo que me has brindado, por escucharme y preocuparte
por mí.
Al amor de mi vida Ricardo, gracias amor por tantos años de estar a mi lado,
gracias por tu amor, tu paciencia, tu confianza, por siempre inspirarme a ser mejor
persona, estudiante, profesionista, mejor médico, por enseñarme con tu ejemplo el
amor por la medicina y por estar conmigo en las buenas y en las malas, no podría
expresar todo mi amor y agradecimiento hacia ti, te amo muchísimo hoy y
siempre.
También le quiero agradecer a toda mi familia, mis abuelos y abuelas, mis tíos y
primos por creer en mí y apoyarme cuando lo he necesitado, a Montse y Vale, las
amo mucho pequeñas, a la señora Gloria y al señor Alfredo, por abrirme las
puertas de su casa y recibirme como parte de su familia.
A “Chato”† alguna vez te prometí dedicarte éste logro, gracias por enseñarme
tantas cosas, gracias por tu compañía, siempre te recordaré, a mi hija Foogy por
su incondicional compañía, por estar conmigo a lo largo de mi carrera y por
mostrarme el amor sincero, a todas mis mascotas y a todos los amigos peludos
que formaron parte de mi aprendizaje.
A mis amigos: Belén, Carlos, Maresa, Yolotzin, Rosselli, Elisa, Laurita, Pablito,
Pau Pau, Mario, Gaby, cada uno sabe cuánto lo quiero, y lo especial que han sido
en mi vida, gracias por esos años de amistad y de apoyo, no lo hubiera podido
lograr sin ustedes.
A mis amigos del Hospital: Josefina, Rubí, Alan, Israel, Fernando, Alberto, por
esos grandiosos momentos de alegrías, risas, estrés, desveladas, etc., gracias por
su apoyo, por compartir esa experiencia conmigo.
A amigo Ángel Lozada por todas las veces que quise tirar la toalla y estuviste ahí,
tus consejos me ayudaron a seguir.
Al Hospital de Pequeñas Especies de la FESC, por permitirme realizar mi servicio
social, al Dr. Marco Antonio de Paz por la paciencia y conocimientos compartidos,
a los doctores: Gerardo Alberto Hernández, David Ramírez, Juan Miguel Ibarra,
Alfonso Zabre, Emilio López, por su ayuda en el Hospital y fuera de él, por su
comprensión y ejemplo, al Dr. Ignacio Rangel por mostrarme el amor por el
conocimiento, y por la disposición de enseñar y apoyar a los alumnos, por la
paciencia y el tiempo que dedicó a este trabajo.
A mi jefe, maestro y amigo José Felipe Morales, por darme la oportunidad de
trabajar con usted, por todos los conocimientos que me ha compartido, por creer
en mí, por sus consejos y su apoyo, y por ayudarme a la realización de esta meta.
A mis profesores de la FESC por la paciencia y por todos los conocimientos que
me transmitieron a lo largo de mi formación, y por enseñarme el amor por la
facultad.
A mis sinodales Dr. Rigoberto Hernández, Dra. Miriam Ramírez, Dr. Emilio López
por el tiempo y paciencia que le dedicaron a mi trabajo.
A mi querida facultad, por recibirme y dejarme ser parte de su comunidad.
A la máxima casa de estudios, orgullosamente UNAM.
ÍNDICE DE CONTENIDO
INTRODUCCIÓN…………………………………………………………………………1
OBJETIVOS ……………………………………………………………………………..28
METODOLOGÍA…………………………………………………………………………30
DESCRIPCIÓN DE ACTIVIDADES……………………………………………………31
RESULTADOS………………………………………………………………………......92
DISCUSIÓN…………………………………………………………………………….124
CONCLUSIONES…………………………………………………………………..….132
RECOMENDACIONES……………………………………………………………..…133
BIBLIOGRAFÍA…………………………………………………………………………135
ANEXOS……………………………………………………………………………..….138
ÍNDICE DE IMÁGENES
PÁGINA
Imagen 1. Vista exterior del Hospital de Enseñanza en Medicina y Cirugía de la Facultad
de Estudios Superiores Cuautitlán…………………………………………….………………..12
Imagen 2. Vista lateral del Área de Recepción del HEMyCPE………………………………14
Imagen 3. Consultorio general…………………………………………………………………..15
Imagen 4. Consultorio de Especialidades y Medicina Preventiva………………………..…15
Imagen 5. Vista lateral del Área de atención primaria ambulatoria……………………...…16
Imagen 6. Consultorio de Infecciosos…………………………………………………………..17
Imagen 7. Gabinete con ropa para ingresar al Hospital de Infecciosos…………………….17
Imagen 8. Hospital de Infecciosos………………………………………………………………18
Imagen 9. Área de Laboratorio Clínico…………………………………………………………18
Imagen 10. Equipo para hematología del área de Laboratorio Clínico……………………..19
Imagen11. Equipo para Citologías……………………………………………………………..19
Imagen 12. Equipo de Ultrasonido y Endoscopía……………………………………………..20
Imagen 13. Aparato de Rayos X………………………………………………………………..20
Imagen 14. Quirófano…………………………………………………………………………….21
Imagen 15. Sala de Preparación………………………………………………………………..21
Imagen 16. Sala de Recuperación…………………………………………………………...…22
Imagen 17. Área de CEYE………………………………………………………………………22
Imagen 18. Terapia Intensiva……………………………………………………………………23
Imagen 19. Área de Hospitalización……………………………………………………………23
Imagen 20. Jaulas del área de hospital general………………………………………………24
Imagen 21. Hospital de Gatos……………………………………………………………….….24
Imagen 22. Área de Fisioterapia………………………………………………………………..25
Imagen 23. Tina de hidromasaje………………………………………………………….…….25
Imagen 24. Sala de estudiantes………………………………………………………………...25
Imagen 25. Aula…………………………………………………………………………………..25
Imagen 26. Comedor……………………………………………………………………………..26
Imagen 27. Sanitarios y Vestidores…………………………………………………………….26
Imagen 28. Dormitorios……………………………………………………………………….….26
Imagen 29. Lavandería…………………………………………………………………………..26
Imagen 30. Preparación del paciente…………………………………………………………..39
Imagen 31. Procedimiento quirúrgico…………………………………………………………..39
Imagen 32. Paciente hospitalizado en el área de infecciosos……………………………….43
Imagen 33. Realización de fisioterapia a un paciente………………………………………..44
Imagen 34. Paciente hospitalizado……………………………………………………………..44
Imagen 35. Manejo de paciente en el área de medicina……………………………………..57
Imagen 36. Paciente hospitalizado en el área de terapia intensiva…………………………59
Imagen 37. Captura
de datos demuestras de hematología en el analizador
hematológico……………………………………………………………………………………... 76
Imagen 38.Revisión al microscopio de muestras de citología………………………….……76
Imagen 39. Realización de estudio radiográfico………………………………………………88
Imagen 40. Realización de endoscopía en el HEMyCPE……………………………………91
ÍNDICE DE TABLAS
PÁGINA
Tabla 1. División de las áreas del Hospital de Pequeñas Especies de la FESC……………………………….…30
Tabla 2. Cronograma de actividades realizadas en el Hospital de Pequeñas Especies de la FES Cuautitlán del
periodo comprendido del 15 de marzo de 2012 al 15 de marzo de 2013………………………………….…..….31
Tabla 3. Determinación del riesgo quirúrgico dependiente del estado físico de los pacientes quirúrgicos….....34
Tabla 4. Descripción de actividades realizadas de las rotaciones en los procedimientos quirúrgicos………...37
Tabla 5. Constantes fisiológicas de caninos y felinos………………………………………………………………..52
Tabla 6. Calendario de Inmunización en caninos en el Hospital de Pequeñas Especies de la FESC………….60
Tabla 7. Calendario de vacunación en felinos en el Hospital de Pequeñas Especies de la FESC……………..61
Tabla 8. Resumen de antígenos vacunales caninos y guía de vacunación…………………………………….…63
Tabla 9. Resumen de antígenos vacunales felinos y guía de vacunación…………………………………………65
Tabla 10. Registro de cirugías durante el periodo comprendido del 15 de marzo al 11 de mayo de 2012 dentro
de las instalaciones del Hospital de Pequeñas Especies de la FESC……………………………………………...93
Tabla 11. Pacientes sometidos a cirugía divididos por especie…………………………………………………..…94
Tabla 12. Motivo de cirugía…………………………………………………………………………………………..….94
Tabla 13. Cirugías de Medicina Preventiva del periodo del 15 de marzo al 11 de mayo de 2012………………95
Tabla 14. Cirugías de tejidos blandos divididas en aparatos o sistemas en el periodo del 15 de marzo al 11 de
mayo de 2012……………………………………………………………………………………………………………..96
Tabla 15. Cirugías de tejidos blandos………………………………………………………………………………….97
Tabla 16. Cirugías ortopédicas realizadas en el periodo del 15 de marzo al 11 de mayo de 2012……………..98
Tabla 17. Pacientes sometidos a cirugía clasificados por sexo……………………………………………………..99
Tabla 18. Principales razas de pacientes caninos sometidos a cirugía…………………………………………..100
Tabla 19. Pacientes hospitalizados en el periodo del 14 de mayo al 13 de julio de 2012 divididos por
especies………………………………………………………………………………………………………………….101
Tabla 20. Sexo de los pacientes hospitalizados……………………………………………………………………..101
Tabla 21. Principales razas de perros hospitalizados durante el periodo comprendido del 14 de mayo al 13 de
julio de 2012…………………………………………………………………………………………………….……….102
Tabla 22. Razas de felinos hospitalizados durante el periodo comprendido del 14 de mayo al 13 de julio de
2012……………………………………………………………………………………………………………..………..103
Tabla 23. Registro de pacientes y área de hospitalización al que fueron internados…………………………...103
Tabla 24. Registro de pacientes hospitalizados durante el periodo del 14 de mayo al 13 de julio de 2012…104
Tabla 25. Registro de pacientes de consulta a mi cargo durante el periodo comprendido del 16 de julio al 14
de septiembre de 2012 dentro de las instalaciones del Hospital de Pequeñas Especies de la FESC.............107
Tabla 26. Relación de pacientes atendidos en el área de medicina divididos por especie…………………….108
Tabla 27. Razas de perros atendidos en el área de medicina durante el periodo del 16 de julio al 14 de
septiembre de 2012…………………………………………………………………………………………………….108
Tabla 28. Pacientes atendidos en el área de medicina durante el periodo del 16 de julio al 14 de septiembre
de 2012 divididos por sexo…………………………………………………………………………………………….109
Tabla 29. Aparatos o sistemas más afectados en pacientes atendidos del periodo del 14 de mayo al 13 de
julio de 2012……………………………………………………………………………………………………………..110
Tabla 30. Registro de edades de pacientes atendidos en el área de medicina del periodo del 14 de mayo al
13 de julio de 2012……………………………………………………………………………………………………...111
Tabla 31. Enfermedades dermatológicas en pacientes durante mi rotación en el área de medicina, del periodo
del16 de julio al 14 septiembre de 2012………………………………………………………………………...……112
Tabla 32. Registro de medidas preventivas realizadas a los pacientes durante mi rotación en el área de
medicina, del periodo del16 de julio al 14 septiembre de 2012…………………………………………………....113
Tabla 33. Enfermedades digestivas diagnosticadas en pacientes durante mi rotación en el área de
medicina…………………………………………………………………………………………………………….……114
Tabla 34. Pruebas diagnósticas más solicitadas durante mi rotación en el área de medicina…………………115
Tabla 35. Registros de laboratorio por especie durante el periodo del 17 de septiembre al 15 de noviembre de
2012……………………………………………………………………………………………………………...……….116
Tabla 36. Registros de laboratorio por sexo del paciente durante el periodo del 17 de septiembre al 15 de
noviembre de 2012……………………………………………………………………………………………….…….117
Tabla 37. Registros de laboratorio por edad del paciente durante el periodo del 17 de septiembre al 15 de
noviembre de 2012………………………………………………………………………………………………..……117
Tabla 38. Estudios de laboratorio realizados en el periodo del 17 de septiembre al 15 de noviembre de
2012………………………………………………………………………………………………………………………119
Tabla 39. Estudios de ELISA realizados en el periodo del 17 de septiembre al 15 de noviembre de 2012….120
Tabla 40. Registros de estudios radiográficos realizados durante el periodo del 16 de noviembre de 2012 al 15
de enero de 2013………………………………………………………………………………………………………..121
Tabla 41. Registros de regiones anatómicas proyectadas solicitadas durante el periodo del 16 de noviembre
de 2012 al 15 de enero de 2013……………………………………………………………………………………....122
Tabla 42. Estudios ultrasonográficos realizados durante el periodo del 16 de noviembre de 2012 al 15 de
enero de 2013…………………………………………………………………………………………………………...123
ÍNDICE DE GRÁFICAS
PÁGINA
Gráfica 1. Relación de pacientes sometidos a cirugía por especies………………………..…………94
Gráfica 2. Clasificación de los motivos de cirugía………………………………………………..……...95
Gráfica 3. Cirugías de Medicina Preventiva del periodo del 15 de marzo al 11 de mayo de 2012...96
Gráfica 4. Cirugías de tejidos blandos divididas en aparatos o sistemas afectados………………..97
Gráfica 5. Descripción de cirugías de tejidos blandos………………………………………………..…98
Gráfica 6. Cirugías ortopédicas……………………………………………………………………………99
Gráfica 7. Principales razas caninas de pacientes sometidos a cirugía……………………………..100
Gráfica 8. Principales razas de perros hospitalizados durante el periodo comprendido del 14 de
mayo al 13 de julio de 2012……………………………………………………………………………….102
Gráfica 9. Pacientes hospitalizados por área de hospitalización durante el periodo del 14 de mayo
al 13 de julio de 2012………………………………………………………………………………………104
Gráfica 10. Razas de perros atendidos en el área de medicina………………………………………109
Gráfica 11. Aparatos o sistemas más afectados en pacientes atendidos del periodo del 14 de
mayo al 13 de julio de 2012…………………………………………………………………………….…110
Gráfica 12. Edades de los pacientes atendidos en consulta (años)………………………………….111
Gráfica 13. Edades de los pacientes atendidos en consulta (meses)…………………………….….112
Gráfica 14. Enfermedades dermatológicas en pacientes durante mi rotación en el área de
medicina, del periodo del16 de julio al 14 septiembre de 2012……………………………………….113
Gráfica 15. Medidas preventivas realizadas a los pacientes durante mi rotación en el área de
medicina, del periodo del16 de julio al 14 septiembre de 2012……………………………………….114
Gráfica 16. Enfermedades digestivas diagnosticadas en pacientes durante mi rotación en el área
de medicina…………………………………………………………………………………………………115
Gráfica 17. Pruebas diagnósticas más solicitadas durante mi rotación en el área de medicina….116
Gráfica 18. Registros de edades (años) en estudios de laboratorio durante el periodo del 17 de
septiembre al 15 de noviembre de 2012………………………………………………………………...117
Grafica 19. Registros de edades (meses) en estudios de laboratorio durante el periodo del 17 de
septiembre al 15 de noviembre de 2012………………………………………………………………...118
Gráfica 20. Estudios de laboratorio realizados en el periodo del 17 de septiembre al 15 de
noviembre de 2012……………………………………………………………………………………...…119
Gráfica 21. Estudios de ELISA realizados en el periodo del 17 de septiembre al 15 de noviembre
de 2012……………………………………………………………………………………………………..120
Gráfica 22. Registros de estudios radiográficos realizados durante el periodo del 16 de noviembre
de 2012 al 15 de enero de 2013………………………………………………………………………….121
Gráfica 23. Regiones anatómicas proyectadas solicitadas durante el periodo del 16 de noviembre
de 2012 al 15 de enero de 2013………………………………………………………………………....122
Gráfica 24. Estudios ultrasonográficos realizados durante el periodo del 16 de noviembre de 2012
al 15 de enero de 2013……………………………………………………………………………………123
ÍNDICE DE ANEXOS
PÁGINA
Formato 1. Expediente clínico……………………………………………………………...… 138
Formato 2. Orden Clínica……………………………………………………………………....142
Formato 3. Orden Terapéutica…………………………………………………………………143
Formato 4. Hoja de Progreso…………………………………………………………………..144
Formato 5. Autorización de Hospitalización……………………………………………….…145
Formato 6. Autorización para procedimientos quirúrgicos………………………………….146
Formato 7. Calendario de Vacunación………………………………………………………..147
Formato 8. Solicitud de Estudio de Radiográfico………………………………………….…148
Formato 9. Carta Técnica de Estudios Radiográficos……………………………………....149
Formato 10. Solicitud de Estudio Ultrasonográfico………………………………………….150
Formato 11. Hoja de Dermatología……………………………………………………………151
Formato 12. Autorización de Servicio de Endoscopía……………………………………...152
Formato 13. Solicitud de Estudio de Laboratorio…………………………………………….153
Formato 14. Resultados Estudios de Hemograma………………………………………….155
Formato 15. Resultados Estudios de Urianálisis…………………………………………….156
Formato 16. Resultado de Bioquímica Sanguínea Perfil Básico emitido por Laboratorios
QUIMILABCO.VET………………………………………………………………………………157
Formato 17. Solicitud de Estudio Histopatológico……………………………..…………….158
Formato 18. Reporte Electrocardiográfico……………………………………………………159
INTRODUCCIÓN
En la actualidad el papel que desempeña el Médico Veterinario en la sociedad es
muy importante ya que debe cumplir con el compromiso de salvaguardar la salud
del hombre a través del cuidado de la salud y bienestar de los animales.
Así mismo dentro del amplio campo de la Medicina Veterinaria las pequeñas
especies conforman una necesaria y cada día más importante área del saber
veterinario, siendo la especie más significativa, el perro.
Desde tiempos inmemoriales el perro siempre ha prestado gran utilidad al hombre
y por este motivo ha adquirido un valor sobre todo sentimental.
Entre nuestros antepasados (30,000 y 15,000 años a.C.) se le dio importancia al
grado que se piensa que el perro fue representado en las prehistóricas y famosas
Grutas, como las de Altamira y Lascaux. Se ha señalado que un bronce de
Cerdeña presuntamente del periodo paleolítico tiene forma de perro, que sería la
representación más antigua que existe sobre la tierra. La pintura donde el perro
parece haber hecho su aparición, ya con sus inconfundibles características,
corresponde a un vasto fresco rupestre encontrado en una cueva cerca de Alpera
(España), que data del periodo de la época glacial, 10,000 años a.C.,
aproximadamente.21
Con el paso de los años y a medida que la cultura de los países aumenta , la
afición por los perros ha cobrado mayor importancia
CLASIFICACIÓN ZOOLÓGICA DEL PERRO DOMÉSTICO
El perro doméstico pertenece a la clasificación zoológica de Linneo llamada
CANIS FAMILIARIS, la podemos encontrar en distintas razas, tamaños y pelajes.
Al género “canis”, también pertenecen los lobos, coyotes, chacales, zorros, etc.,
comprendido a su vez, en el orden de los carnívoros colocados en la subclase de
los placentarios al igual que el hombre dentro de la clase de mamíferos, los cuales
1
forman parte del tipo de los vertebrados, en general, pertenecen al subreino de los
Metazoarios, es decir al grupo de animales pluricelulares.
La escala clasificatoria del perro es la siguiente:

ESPECIE: Perro doméstico

GÉNERO: Canis familiaris

FAMILIA: Canideos

ORDEN: Carnívoros

CLASE: Mamíferos

SUBCLASE: Placentarios

TIPO: Vertebrados

REINO: Animal

SUBREINO: Metazoarios
El perro es descendiente de diversas especies hoy domesticadas, el primer animal
llamado perro fue el CANIS FAMILIARIS PALUSTRIS,
“Perro de Peat”, que
existió sobre la Tierra durante el periodo del Pleistoceno.
Las razas caninas que hoy conocemos presentan diferentes rasgos, cuya
diversidad no sólo está en la tendencia natural del Canis familiaris y su variación,
sino también por la intervención de la mano del hombre.
La palabra “CAN” que significa PERRO, salió de las lenguas indoeuropeas, que
originalmente es “Kuon”. En las lenguas neolíticas derivadas del latín, le llamaron
CANIS.37
Al perro lo podemos encontrar en cualquier parte donde el hombre viva, y desde
los albores de la civilización, el perro ha sido fiel e inseparable amigo del hombre.
El hombre ha utilizado a las numerosas razas caninas en diferentes servicios, que
le han facilitado el trabajo.
Existen más de 350 razas en el mundo, de las cuales muchas de ellas aún no han
sido reconocidas por algunas asociaciones cinológicas.
2
EVOLUCIÓN Y DOMESTICACIÓN
Los fósiles sugieren que hace 40 millones de años, floreció un pequeño carnívoro
mamífero llamado Miacis. El Miacis favoreció la aparición del Cynodesmus
y
Tomarctus, precursores de los canideos de nuestros días; lobos, zorros, chacales
y coyotes.
El proceso de domesticación es difícil de trazar debido a que no es posible
distinguir al lobo “manso” de los primeros lobos domesticados.
Evidencias razonables de perros totalmente domesticados han sido encontradas
en sitios muy distantes entre sí, como en Israel (12,000 a.C), Idaho (10,400 a.C.),
Inglaterra (9,000a.C.), Rusia (9,000a.C.), Australia (8,000a.C.), China (6,800 a.C.),
Missouri (5,500a.C.).
Los cementerios de perros han sido aceptados, como una indicación de que éstos
tenían un estatus especial, en culturas de países como en Israel, México, Egipto,
etc. Varias hipótesis han sido formuladas para explicar el propósito original de la
demostración, entre las que se encuentran las de origen religioso, según ésta, los
perros
fueron
mantenidos
con
propósitos
ceremoniales
o
religiosos
y
gradualmente los fueron domesticando, ya que fueron criándose en cautividad.
Desde Egipto se diseminó el culto al perro hacia otros lugares; en la mitología
griega, Hades en su morada de la muerte, era resguardada por un perro gigante
con tres cabezas, similar a los actuales mastines. Los romanos también realizaron
cultos a Anubis (Señor de la ciudad de los muertos), y Procyon, la estrella menor
de la constelación Canis minor (perro pequeño).
En el primer siglo d.C. se tiene un escrito de una autoridad romana en agricultura
que contiene consejos para la cruza de perros. En la Roma antigua los perros
fueron totalmente domesticados, si bien las razas no eran tan diversas como hasta
nuestros tiempos, sí tienen la primera clasificación zootécnica de que se tiene
conocimiento, dividiéndolo en seis grupos, identificándolos más como perros de
trabajo que como perros de compañía:
3
 Perros guardianes de la casa (Villaticci)
 Perros de pastoreo (Pastorales Pecuari)
 Perros para el deporte (Venatici)
 Perros belicosos o de guerra (Pugnaces o Belicosi)
 Perros que van tras la pista (Nares Sagaces)
 Perros que corren tras la presa (Pedibus Céleres).
Los perros mexicanos eran diferentes a los perros europeos; hubo varios
historiadores, entre ellos el cronista real Felipe II, Antonio de Herrera, quienes
afirmaron que el perro no existió en México antes de la conquista. Este magno
error no fue exclusivo de los antiguos historiadores y cronistas, ya que persistió la
idea hasta mediados de este siglo.
La presencia del perro en muchas religiones y ceremonias místicas ponen de
manifiesto el apego que se estableció entre el hombre y el perro. En muchas de
las teorías se establece que esto se debe a cuestiones religiosas y otras tantas a
las raíces neolíticas de nuestros antepasados, en donde el hombre y el perro
convivieron estrechamente.
Cómo pudo ocurrir este vínculo o domesticación, posiblemente por razones
utilitarias, en donde el perro se encontraba siempre tras el hombre en sus cacerías
esperando un poco de carroña, a cambio de ello el perro comenzó a indicarle el
lugar en donde se encontraban las presas y a ayudarle en la cacería con el
ataque, más tarde estos perros se encontraban en las cercanías de las cuevas y
servían para dar aviso de la entrada de la presencia de extraños de tribus
contrarias o de algún animal peligroso. Después, estos perros comenzaron a
procrear cachorros siendo adoptados por el hombre. Es muy probable que por
esta relación simbiótica se domesticó el primer animal en la historia del hombre.
4
EL PERRO DOMÉSTICO Y SU RELACIÓN CON EL HOMBRE
El papel que desempeña el perro en la sociedad moderna es básicamente de
animales de compañía. Los perros son por naturaleza animales sociales que
forman lazos cercanos con los seres humanos. En la sociedad moderna las
actitudes hacia los perros son muy variadas. En los países occidentales, por
ejemplo, donde se han llevado a cabo la mayoría de las investigaciones, la actitud
hacia los perros es de total humanización, hasta el punto de brindarles mayores
cuidados que a los seres humanos, muchas personas que poseen perros
establecen una relación de compañía hacia su animal. En una sociedad tan
competitiva e individualista como la actual, el motivo más común para
tener perros es la compañía ya que para muchas personas estos animales brindan
un afecto incondicional. Las personas que no tienen animales consideran que se
utilizan como reemplazos inferiores de la interacción social humana. Más aún,
muchas de estas personas suelen creer que este tipo de dueños presenta un
comportamiento social y emocional anormal. Si bien en casos aislados esta
posición puede ser cierta, innumerable cantidad de estudios han demostrado que
la mayoría de los dueños de perros son personas normales, cuyos compañeros
animales mejoran su calidad de vida.
Otro de los motivos por los cuales la gente tiene perros es su utilización como
colaboradores en diferentes tareas, entre las que podemos mencionar las de
ayuda a discapacitados tanto físicos como mentales, rescate de personas,
detectores de drogas y explosivos, entre otras. En algunos casos, la crianza de
perros de razas puras es un pasatiempo; en muchos otros, un símbolo del nivel
socioeconómico de su propietario.
Lo cierto es que las actitudes que las personas tienen para con sus perros suelen
ser diferentes y muchas veces reflejan su personalidad.
En un estudio realizado en Europa se evaluó el sentimiento público hacia la
especie canina donde la mayoría de las personas encuestadas eran mujeres, el
resultado obtenido acerca del motivo de tener un perro fue:
5
El mayor número tienen perro por necesidades psicológicas, por necesidad de
seguridad, les confiere una situación de “estatus” o necesidad de poseer algo
valioso, por falta de afecto o necesidad de compañía, así como sustitución de la
relación humana y en ocasiones por problemas físicos.
EL PERRO Y LA MEDICINA VETERINARIA
Dado que desde el momento que el hombre domesticó a los animales, su relación
con ellos dejó de ser algo más que la simple subsistencia alimenticia, y se
comenzó a contemplar el cuidado mutuo, fue cuando el hombre comenzó a
aportar a través de su raciocinio el dominio de un arte y ciencia, que es la
veterinaria.
En América el primer antecedente de un centro dedicado a la enseñanza y
ejercicio de la medicina veterinaria se encuentra en México. Se inició formalmente
cuando el presidente Santa Anna en 1853 fundó la Escuela Nacional de
Agricultura y Veterinaria en San Jacinto, que más tarde pasó a llamarse Escuela
Nacional de Medicina Veterinaria y Zootecnia (Hoy FMVZ-UNAM).3
La evolución industrial que se inició en el país después de la revolución mexicana,
demando más productos de origen animal con el consiguiente riesgo e incremento
de los mismos; son éstos los motores del desarrollo científico de la Medicina
Veterinaria y Zootecnia.
En 1929, luego del movimiento que otorgó la autonomía a la UNAM, la escuela de
Medicina Veterinaria quedó incorporada a la Máxima Casa de Estudios. Con el
paso de los años se generó la necesidad de un desarrollo profesional más
especializado, dando lugar a la creación de asociaciones tales como el Colegio
Nacional de Médicos Veterinarios Zootecnistas. Es importante resaltar que la
zootecnia se encuentra incorporada al programa académico desde 1879. Debido
a la importancia que fue adquiriendo la carrera, se abrieron otras escuelas y
facultades en el país; así, en 1957 se crearon tres y en la década de los sesenta,
seis escuelas más. Entre los años de 1970 y 1975 se sumaron nueve escuelas. 25
6
Es así como en 1974 surge la carrera de Medicina Veterinaria en la entonces
Escuela Nacional de Estudios Profesionales Cuautitlán, ahora Facultad de
Estudios Superiores. Su creación obedeció principalmente la necesidad de ofrecer
esta carrera a los estudiantes que vivían en la zona norte de la Ciudad de México,
así como en las delegaciones Gustavo A. Madero, Azcapotzalco y en el Estado de
México. 2,3
Para finales de la década de los setenta se registró un incremento en la matrícula
escolar que llegó a 580 estudiantes en el primer ingreso. Para los años ochenta
proliferaron una gran cantidad de escuelas que impartían la carrera de Médico
Veterinario Zootecnista; esto provocó que en la década de los noventa el
porcentaje de la matrícula escolar se viera claramente reducida.
Considerando la gran diversidad de especies que se estudian en la carrera de
Medicina Veterinaria, es necesario crear áreas específicas para el desarrollo de
prácticas de las mismas, y debido a la necesidad y gusto de las personas por
tener una mascota, el campo de la Medicina Veterinaria nos exige una atención de
mayor calidad hacia las especies de compañía.
Por tal motivo, la Universidad Nacional Autónoma de México abrió las puertas del
HOSPITAL DE ENSEÑANZA EN MEDICINA Y CIRUGÍA DE PEQUEÑAS
ESPECIES (HEMyCPE), en la Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán para
complementar la educación de los alumnos y debido a la necesidad de formar
profesionales capaces de realizar diagnósticos y tratamientos adecuados en las
pequeñas especies, así mismo para que puedan servir a la comunidad aledaña
mediante la prestación de un servicio de alta calidad y a un costo accesible.
En este sentido el Hospital de Pequeñas Especies tiene como objetivo crear un
espacio que permita la profesionalización en el área de pequeñas especies,
brindando al estudiante la oportunidad de desarrollar habilidades en el área de
medicina y cirugía y así favorecer la vinculación con la realidad laboral, con lo cual
7
la UNAM se coloca a la vanguardia de la investigación, la especialización
académica y la atención médica de mascotas en América Latina.
El objetivo es proporcionar al alumno una formación integral de alto nivel
competitivo, orientado al diagnóstico de situación y a la aplicación del
conocimiento para la solución de problemas concretos que afectan al campo de su
actividad profesional. De igual manera que el alumno aporte sus conocimientos,
habilidades y destrezas, equilibrado para realizar el examen clínico y el
diagnóstico oportuno y certero de las enfermedades, para así estar en condiciones
de aplicar un tratamiento médico-quirúrgico encaminado a restaurar la salud y
evitar el sufrimiento de los animales y en su caso, establecer o recomendar las
medidas pertinentes de control y prevención.
Con base en lo anterior, el egresado será capaz de orientar a los propietarios o
responsables acerca de los cuidados y el compromiso que implica la convivencia
con los animales, así mismo sobre la conservación, selección y aplicación de los
programas preventivos de las enfermedades, ya que la preparación idónea y
pertinente del Médico Veterinario es fundamental en el logro de su aceptación
como profesional útil y necesario para la solución de los problemas que le
conciernen en la sociedad.
El 27 de mayo de 2009 fue colocada la primera piedra del hospital de Pequeñas
Especies en el Campo Cuatro de la Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán.
Ubicado en Carretera Cuautitlán-Teoloyucan Km 2.5 Colonia San Sebastián
Xhala, C. P. 54714, Cuautitlán Izcalli, Estado de México.
Se tenía planeado que el hospital que atendería a perros y gatos, empezara a
funcionar en el mes de enero del 2010, lamentablemente no fue posible por
diversos motivos en esta fecha, siendo hasta el mes de junio del 2011 cuando
empezó a recibir pacientes y abriendo sus puertas hasta el mes de septiembre del
2011.
8
En sus instalaciones se capacita a estudiantes y egresados de Medicina
Veterinaria y Zootecnia y se ofrece consulta para las mascotas de los vecinos
aledaños a la FESC.
Este hospital de enseñanza tiene cuatro objetivos fundamentales:
1.- Formar profesionales especializados en el área por medio de programas de
servicio social, servicio social titulación y prácticas profesionales supervisadas.
2.- Brindar servicio médico quirúrgico a las mascotas, salvaguardando la vida.
3.- Educar a la comunidad por medio de material didáctico sobre temas referentes
al adecuado manejo y cuidado de las mascotas, así como de aquellas
enfermedades que se contagian al hombre (zoonosis) apoyando así la salud
pública.
4.- Apoyar al MVZ de la zona, al ofrecer servicios que le ayuden a dar una
consulta integral.
MISIÓN
Dignificación del gremio veterinario a través de la formación de profesionistas
altamente calificados capaces de satisfacer las exigencias de la sociedad,
convirtiendo al hospital en un centro de referencia en el área de pequeñas
especies.
VISIÓN
Ser un centro reconocido nacionalmente y de referencia internacional por su
calidad en la atención a la comunidad, formación de Médicos Veterinarios y
generador de proyectos de investigación en el área de pequeñas especies.
VALORES
Calidad, Lealtad, Compromiso, Honestidad
9
El Hospital de Pequeñas Especies cuenta con una superficie construida de mil 863
metros cuadrados de áreas construidas y mil 893 metros cuadrados de áreas
exteriores.
El Hospital cuenta con diez consultorios, dos destinados exclusivamente a
enfermedades infecciosas para evitar el contagio intrahospitalario; dos más
especiales para gatos, otros dos para medicina preventiva, los cuales serán
utilizados solamente para cachorros, esto con el fin de evitar que adquieran
enfermedades de otros pacientes, y otros cuatro consultorios para consulta
general.
Además cuenta con un área de atención médica primaria donde se les da atención
inmediata a los pacientes que requieran cuidados ambulatorios.
En el área de cirugía se encuentran tres quirófanos, los cuales, cuentan con
máquinas de anestesia inhalada, uno de los quirófanos es utilizado para las
cirugías ortopédicas y dos quirófanos son destinados para cirugías de tejidos
blandos, así mismo con respectiva área de preparación y la sala de recuperación
la cual cuenta con seis jaulas para el manejo de cuidados postoperatorios, así
como área de esterilizado donde se realiza la esterilización y se almacena el
instrumental, material y ropa quirúrgica, y se dispone de un área de fisioterapia
para la rehabilitación de los pacientes que lo requieran.
Cuenta también con un área de laboratorio de análisis clínicos con todo el
equipamiento para realizar los estudios necesarios de diagnóstico más
comúnmente utilizados, el cual es aprovechado también por el hospital de equinos
y por médicos externos de la zona los cuales requieran del servicio; una sala de
Rayos X, donde se cuenta con dos máquinas de rayos X y un cuarto oscuro de
revelado equipado con una reveladora automática y una tina para revelado
manual; una sala de ultrasonido en la cual se cuenta con equipo para realizar
estudios de imagen; se cuenta con equipo de primer nivel, para endoscopías y
electrocardiogramas; todo esto con el fin de poder apoyar al clínico para realizar
con mayor precisión y confianza un diagnóstico definitivo.
10
En cuanto a instalaciones para uso del personal se cuenta con dormitorios para el
alumnado que cubra guardias nocturnas y de fin de semana, con dos habitaciones
una para mujeres y otra para hombres, además de un comedor, baños con
regaderas y vestidores, lavandería y área de estudio para los alumnos y médicos
de guardia.
Un salón de usos múltiples que es utilizado para diversas actividades académicas
como congresos, jornadas médicas, cursos y clases con académicos y
especialistas.
En el aspecto académico en el Hospital de Pequeñas Especies se cuenta con la
participación de académicos especialistas, los cuales brindan a los estudiantes
clases en diferentes áreas. Durante mi servicio social dos médicos especialistas
estuvieron a cargo de impartir clases dentro de las instalaciones del Hospital.
Clases de Neurología impartidas por el MVZ Esp. Humberto Morales; clases de
dermatología a cargo del M. en C. José Martín Acevedo Arcique.
En la planta alta del Hospital se cuenta con 18 cubículos destinados a los
académicos para asesorar a los alumnos de servicio social, prácticas
profesionales y estancia, sala de juntas y un área de comedor para los
académicos.
En las áreas exteriores del hospital se encuentra un estacionamiento con
espacios para el personal del hospital y para el público en general y una rampa de
acceso.
11
Imagen 1. Vista exterior del Hospital de Enseñanza en Medicina y Cirugía de la
Facultad de Estudios Superiores Cuautitlán.
12
MAPA DE HOSPITAL PEQUEÑAS ESPECIES PLANTA BAJA
Figura 1. Mapa de distribución de las áreas del HEMyCPE de la FESC.
13
El trabajo dentro del hospital se divide en cinco grandes áreas:
 Medicina
 Cirugía
 Hospitalización
 Imagenología
 Laboratorio de Análisis Clínicos.
DESCRIPCIÓN DE LAS DIFERENTES ÁREAS:
Recepción: En esta área los propietarios y sus mascotas esperan la atención
médica. Cuenta además con el servicio de caja, donde se realizan los pagos de
los procedimientos a realizarse, y un espacio para el registro de pacientes en
donde se comienza la entrevista para obtener los datos de este paciente. Se
encuentran dos gabinetes donde se almacenan los expedientes de los pacientes,
sanitarios para los propietarios que esperan consulta y un área de venta de
productos veterinarios tales como alimento y medicamentos que no se encuentra
aún en funcionamiento.
Imagen 2. Vista lateral del Área de Recepción del HEMyCPE
14
Consultorios: Es el espacio donde se realiza la exploración general del paciente, a
este nivel se levanta el Examen Cínico Orientado a Problemas (ECOP),
comenzando por la anamnesis y se lleva a cabo la interacción médico-pacientepropietario, cuenta con mobiliario básico para la exploración física de los
pacientes, mesa de exploración, negatoscopio, báscula para animales pequeños,
oftalmoscopio; y es aquí donde se realiza el primer filtro de tratamiento
hospitalario. Existen dos consultorios para gatos, y consultorios de especialidades,
donde se realizan las consultas dermatológicas, y también
aquí es donde se
llevan a cabo las consultas de medicina preventiva.
Imagen 3. Consultorio general
Imagen 4. Consultorio de Especialidades y Medicina Preventiva
15
Área de atención primaria ambulatoria: Aquí es donde se discuten de primera
mano los casos clínicos derivados de la consulta general, se sitúa en la parte
media del hospital, además es donde se toman muestras para laboratorio, se
preparan los pacientes para realizar su ingreso a hospitalización o que se le
realice algún estudio en Imagenología. Es aquí donde se les realiza algún
procedimiento médico ambulatorio y también cuenta con jaulas donde se les
coloca mientras esperan a su propietario.
Imagen 5. Vista lateral del Área de atención primaria ambulatoria.
Consultorios de infecciosos y Hospital del área de infecciosos: En este lugar se
confina a los pacientes cuyas características clínicas y de posterior diagnóstico,
son corroborados como portadores de alguna enfermedad infectocontagiosa que
requiere aislamiento, atención y tratamiento por las características de su
enfermedad alejado del resto de la generalidad de pacientes, con el fin de evitar
un posible contagio. Son dos consultorios que se encuentran separados de los de
consulta general, los cuales tienen sus propias básculas. A la entrada de estos se
encuentra un gabinete con batas, gorros y botas quirúrgicas especiales para
ingresar al hospital de infecciosos (Imagen 8) , en este se encuentran las jaulas
donde se ingresan a los pacientes por enfermedades como Parvovirus canino,
16
Distemper canino, Leptospirosis, etc., y una zona de sospechosos (pacientes que
aún no se les ha diagnosticado la enfermedad), las cuales se encuentran
separadas entre sí, además se localiza una mesa de exploración con toma de
agua, refrigerador para cadáveres, y refrigerador para colocar medicamentos,
lavabo y lavaojos.
Imagen 6. Consultorio de Infecciosos
Imagen 7. Gabinete con ropa para ingresar al Hospital de Infecciosos
17
Imagen 8. Hospital de Infecciosos
Laboratorio clínico: En este lugar se realizan los análisis necesarios para el
diagnóstico y seguimiento de los pacientes hospitalizados, para los ambulatorios y
para pacientes remitidos por médicos externos, cuenta con los equipos y reactivos
para las principales pruebas a realizar en la práctica clínica cotidiana, como son
aparato
para
realizar
Hemogramas,
Bioquímica
Sanguínea,
Urianálisis,
microscopios, centrífugas, refractómetro, tubos para recolección de muestras, etc.
Imagen 9. Área de Laboratorio Clínico
18
Imagen10. Equipo para hematología
Imagen 11. Equipo para Citologías
del Área de Laboratorio Clínico.
Área de Imagenología: Se le da atención al paciente en esta área cuando es
necesario ampliar la batería de pruebas para corroborar el diagnóstico presuntivo
obtenido al examen físico, con el cual se apoya al diagnóstico mediante
ultrasonido principalmente, así mismo se encuentra el aparato para realizar
endoscopías. Junto a esta sala se localiza el área destinada a los Rayos X, donde
se encuentran la máquina de rayos X, negatoscopios, gabinetes donde se
almacenan los expedientes radiográficos, así como los suplementos de seguridad
necesarios para el personal, tales como chalecos, guantes, etc., en el área de
revelado, se encuentra una reveladora automática, y una reveladora manual,
áreas contiguas que son útiles en el tránsito del paciente por determinación del
médico responsable del caso en este nivel.
19
Imagen 12. Equipo de Ultrasonido y Endoscopía
Imagen 13. Aparato de Rayos X
Quirófanos: El paciente que requiere como terapéutica algún procedimiento
quirúrgico es derivado al área de tejidos blandos o de ortopedia según se requiera.
En cada quirófano se encuentra una mesa de cirugía, lámpara, cámara que
transmite la cirugía en tiempo real, negatoscopio, tanque de oxígeno, máquina de
anestesia inhalada, donde se utiliza como agente anestésico Isoflurano.
20
Existe además una sala de preparación y una para la recuperación del paciente.
Se encuentra un lavatorio y piletas de lavado de acero inoxidable con
jabón
quirúrgico, cepillos, etcétera.
Imagen 14. Quirófano
Sala de preparación: Es el área donde se realiza la preparación del paciente
previo a entrar a cirugía como es rasurado y lavado, en este se encuentra una
mesa de exploración con toma de agua, fármacos para realizar la inducción
anestésica, material y equipo como laringoscopios, sondas endotraqueales, carrito
de emergencias, materiales para la preparación de la piel, jabón quirúrgico,
antisépticos, alcohol, torundas de algodón.
Imagen 15. Sala de Preparación
21
Sala de recuperación: En esta se encuentran jaulas donde se colocan a los
pacientes, posterior al procedimiento quirúrgico, aquí se mantienen bajo los
cuidados del personal de cirugía hasta que se restablece el estado de salud del
paciente y el médico determine que ya es posible colocarse en el área de
hospitalización general.
Imagen 16. Sala de Recuperación
Área de CEYE (Central de Equipo y Esterilización): Es una subárea de cirugía
donde se limpia, esteriliza y prepara el material e instrumental útil en las cirugías.
Se cuenta con equipos de autoclave para la esterilización del instrumental y
equipo. Lavadoras y secadoras, gabinetes para almacenamiento de instrumental,
equipo y material quirúrgico.
Imagen 17. Área de CEYE
22
Terapia intensiva: Es donde se brinda atención especial a los pacientes que así lo
requieran como monitoreo y atención constante. Esta área es utilizada en
pacientes que requieren tratamiento especializado durante los primeros momentos
de algún proceso agudo que pone en peligro la vida, con vigilancia estricta de su
estado de salud por parte de los médicos encargados, además se cuenta con
jaulas especiales para conectarse a tanques de oxígeno en caso de ser necesario.
Imagen 18. Terapia Intensiva
Hospitalización: Es en esta área donde reside el paciente que requiere tratamiento
intrahospitalario y vigilancia contínua, posterior a un tratamiento quirúrgico o de
seguimiento ante algún manejo por parte de los médicos de medicina interna.
Cuenta con tres mesas de exploración con toma de agua, jaulas
de acero
inoxidable para la estancia de los pacientes, tres jaulas fijas para pacientes de
talla grande; existen lavabos, lavaojos, gabinetes para almacenamiento de
insumos y materiales diversos.
Imagen 19. Área de Hospitalización
23
Imagen 20. Jaulas del área de hospital
general
Hospital de Gatos: El área destinada a la hospitalización de gatos cuenta con 20
jaulas especiales, que se pueden comunicar entre sí, para que el paciente se
pueda trasladar a su arenero y sea más cómoda su estadía, además existe una
mesa de exploración de acero inoxidable con toma de agua, un gabinete para
almacenamiento de insumos y materiales, lavabo, lavaojos y horno de
microondas.
Imagen 21. Hospital de Gatos
Área de Fisioterapia: Es en esta área donde se realizan la rehabilitación física de
los pacientes que lo requieran, tales como pacientes traumatológicos en su
mayoría. Se cuenta con tina para hidromasaje y pisos de material suave para la
rehabilitación de los pacientes.
24
Imagen 22.Área de Fisioterapia
Imagen 23. Tina de hidromasaje
INSTALACIONES PARA USO DEL PERSONAL
Imagen 24. Sala de estudiantes
Imagen 25. Aula
25
Imagen 26. Comedor
Imagen 28. Dormitorios
Imagen 27. Sanitarios y Vestidores
Imagen 29. Lavandería
26
PERSONAL QUE LABORA EN EL HOSPITAL
 D. en C. Marco Antonio de Paz Campos
Director del Hospital de Enseñanza en Medicina y Cirugía de Pequeñas
Especies de la FESC
 MVZ Esp. Gerardo Alberto Hernández Alberto
Coordinador Médico
 M. en C. Ignacio C. Rangel Rodríguez
Coordinador del Área de Patología Clínica
 MVZ David Ramírez Martínez
Coordinador del Área de Cirugía
 MVZ Juan Miguel Ibarra Mendoza
Medicina general y Cirugía
 MVZ José Felipe Morales Cabral
Medicina general e Imagenología
 MVZ Solón Alfonso Zabre Santamaría
Medicina general y Cirugía
 MVZ Emilio López Rodríguez
Imagenología
27
OBJETIVOS
OBJETIVO GENERAL:
Prestaré un servicio social (modalidad titulación) apoyando las actividades
médicas y quirúrgicas que brinda el Hospital Veterinario de Pequeñas Especies
optimizando la capacidad profesional mediante la enseñanza y práctica de la
medicina y cirugía en el área de pequeñas especies.
OBJETIVO ESPECÍFICO DEL ALUMNO:
Apoyo a las diferentes actividades que se desarrollen dentro del hospital, en el
área médica, aprender a realizar
un correcto examen clínico, y llenar un
expediente a través del ECOP Examen Clínico Orientado a Problemas, así como
desarrollar procedimientos de diagnóstico, aprender el manejo de herramientas
con dicho propósito, la terapéutica y tratamiento Médico-Quirúrgico hasta el alta
definitiva del paciente.
En el ámbito quirúrgico aprender a desarrollar los procedimientos de cada cirugía,
desde la preparación, el manejo anestésico, la técnica y realización de la cirugía,
así como el proceso de evolución hasta el alta del paciente.
Familiarizarme con el manejo intrahospitalario, tener una mejor preparación para
atender las necesidades que se dan en la práctica de medicina en las pequeñas
especies, apoyándome de los conocimientos de los académicos y de las
actividades que pueda realizar dentro del Hospital de Pequeñas Especies.
Aprender a trabajar e interactuar con otros colegas, no solo de la propia facultad
de Cuautitlán sino de otras facultades, así como obtener la titulación a través del
programa.
28
OBJETIVOS ACADÉMICOS:
Aplicar los conocimientos médicos y quirúrgicos relacionados con la clínica de
pequeñas especies, para abordar los diagnósticos, tratamientos de las diversas
patologías que aquejan a las pequeñas especies.
La elaboración de una ronda médica con la cual, expondré un caso clínico ante
mis compañeros y doctores del hospital, fortaleciendo los conocimientos
adquiridos tanto en la facultad como dentro del hospital.
OBJETIVOS SOCIALES:
Contribuir al desarrollo de una conciencia ética y humanista en el médico
permitiéndole la aplicación de conocimientos con responsabilidad, consciente de
los cuidados que requiere un animal de compañía.
Desarrollar un centro de atención médica de alto nivel donde la comunidad pueda
recibir la atención que requieran sus mascotas en forma íntegra y adecuada.
Fomentar la educación y concientización de los propietarios de mascotas,
mejorando la calidad de vida de éstas y de esta forma una sana convivencia entre
mascota-dueño.
Evitar la propagación de enfermedades zoonóticas a través de medidas
preventivas y terapéuticas.
29
METODOLOGÍA
El programa de Servicio Social Titulación dentro del Hospital de Pequeñas
Especies tuvo una duración de 12 meses, comprendiendo del 15 de Marzo de
2012 al 15 de Marzo de 2013, durante este tiempo realicé actividades en forma
programada por las diferentes áreas en las que se divide el hospital: Medicina,
Cirugía, Hospitalización, Imagenología y Laboratorio de manera rotacional
participando activamente en cada una de ellas.
Dichas actividades fueron supervisadas y evaluadas por el académico
responsable en cada área.
Realicé las 5 rotaciones con una duración de dos meses en cada una, las cuales
se subdividen de la siguiente manera:
MEDICINA
AREA DE
CIRUGÍA
ÁREA DE
HOSPITALIZACIÓN
Medicina
general
Medicina
preventiva
Cirugía
Hospital de
Infecciosos
Urgencias
Anestesia
CEYE
Hospital de Gatos
Hospital de Perros
Terapia Intensiva
LABORATORIO
Área de
Hematología
Área de
Citología
Área de
Bioquímica
Clínica y
Hemostasia
Área de
Urianálisis y
Coprología
IMAGENOLOGÍA
Ultrasonografía
Rayos X
Endoscopía
Rehabilitación
Tabla 1. División de las áreas del Hospital de Pequeñas Especies de la FESC.
30
DESCRIPCIÓN DE ACTIVIDADES
El programa de Servicio Social Titulación dentro del Hospital de Pequeñas
Especies se realiza de una forma rotacional y programada por cada una de las
áreas que conforman el hospital, con una duración de dos meses en cada una de
ellas.
El periodo en el que realicé mis actividades comprende del 15 de Marzo de 2012
al 15 de Marzo de 2013, el cual me permitió desarrollar varias tareas, que se
llevaron a cabo de acuerdo a ciertas normativas que determina el encargado del
área y del Hospital.
CRONOGRAMA DE ACTIVIDADES
ÁREA
CIRUGÍA
HOSPITALIZACIÓN
MEDICINA
LABORATORIO CLÍNICO
IMAGENOLOGÍA
CAPTURA DE DATOS
FECHA
15 de marzo de 2012- 11 de mayo de 2012
14 de mayo de 2012-13 de julio de 2012
16 de julio de 2012-14 de septiembre de 2012
17 de septiembre de 2012-15 de noviembre de 2012
16 de noviembre de 2012-15 de enero de 2013
16 de enero de 2013-15 de marzo de 2013
Tabla 2. Cronograma de actividades realizadas en el Hospital de Pequeñas
Especies de la FES Cuautitlán del periodo comprendido del 15 de marzo de 2012
al15 de marzo de 2013
31
ÁREA DE CIRUGÍA
El área de cirugía juega un papel importante dentro del hospital ya que aquí se
llevan a cabo procedimientos quirúrgicos programados o de urgencia; el área de
cirugía está conformada por una sala de preparación de los pacientes, tres
quirófanos, dos de ellos son para tejidos blandos y uno es para procedimientos
ortopédicos, cuenta también con una sala de recuperación y CEYE Central de
Equipo y Esterilizado.
Debido al riesgo constante de contaminación de los pacientes quirúrgicos, el área
de cirugía se divide en sectores “limpio”, “mixto” y “contaminado” claramente
delineados. 39
a) Zona negra o áreas contaminadas: Se aplica a las instalaciones o espacios
sucios, “contaminados”, también denominados sépticos. Como son baños,
pasillos exteriores, instalaciones para lavado de ropa quirúrgica, y en
especial la sala de preparación del paciente (antisepsia).
b) Zona gris o áreas mixtas: Son sitios con un grado medio de contaminación.
Por ejemplo, zona de cambio de ropa de cirujanos y ayudantes, lavamanos
para cirujanos, pasillos de circulación para persona con la vestimenta
básica de hospital, preferentemente la “pijama quirúrgica” o filipina, bata y
zapato blancos.
c) Zona blanca o área limpia: Se le asigna principalmente al quirófano, mismo
que deberá permanecer estéril o con un grado mínimo de contaminación, a
él se ingresará vestido igual que en la zona gris, además de poner sobre los
zapatos blancos botas quirúrgicas de lona o tela estériles. También se
encontrarán aparatos y accesorios adicionales que deberán reunir
características de esterilidad. 34,39
32
Mi rotación por esta área tuvo una duración de dos meses que comprende del 15
de marzo de 2012 al 11 de mayo de 2012, periodo en el cual se realizaron un total
de 43 cirugías, en las cuales participe realizando diversas actividades.
VALORACIÓN PREOPERATORIA
La selección y preparación del paciente quirúrgico requiere la atención de una
serie de detalles. Siempre se debe proceder con un examen físico detallado,
estudios de laboratorio y una anamnesis minuciosa.
ANAMNESIS
Los interrogatorios detallados colaboran en la evaluación del proceso morboso
subyacente e identificación de otras anormalidades que podrían afectar durante el
proceso quirúrgico o el resultado de este.
EXÁMEN FÍSICO
El animal debe ser evaluado en forma sistémica durante el examen físico
incluyendo a todos los sistemas corporales. Considerar la condición general
(condición corporal, actitud/estado mental).
En algunos pacientes es necesario realizar exámenes neurológicos (pacientes
traumatizados) y ortopédicos, evaluaciones respiratorias, gastrointestinales,
cardiovasculares y de sistema urinario. Las emergencias pueden permitir sólo una
exploración breve hasta que el paciente se encuentre estabilizado.
A mayor deterioro del estado físico, más elevado es el riesgo de las
complicaciones anestésicas y operatorias.
33
DATOS DE LABORATORIO
El estado físico y el procedimiento a realizar dictaminan la extensión de la
indagación clinicopatológica.
Los datos adicionales del laboratorio dependen de los signos presentes y la
enfermedad de base. La identificación de enfermedades asociadas o subyacentes
influye en el manejo preoperatorio, procedimiento quirúrgico realizado, pronóstico
y atención postoperatoria.10, 39
DETERMINACIÓN DEL RIESGO QUIRÚRGICO
Nos permite emitir un pronóstico acerca del proceso quirúrgico dependiendo del
estado de salud del paciente.
ESTADO FÍSICO EN LOS PACIENTES QUIRÚRGICOS
CONDICIÓN
ESTADO FÍSICO
EJEMPLOS
DELPACIENTE
Sano sin enfermedad
Procedimientos
I
discernible
facultativos (castraciones)
Sano con enfermedad
Luxación patelar, tumor
II
localizada o sistémica
tegumentario
leve
Neumonía, fiebre,
Enfermedad sistémica
deshidratación, soplo
III
grave
cardiaco, anemia
Insuficiencia cardiaca,
Enfermedad sistémica
falla renal, insuficiencia
IV
grave que es riesgosa
hepática, hipovolemia
para la vida
marcada, hemorragia
profusa
Moribundo; no se
Choque endotóxico,
aguarda que el paciente
insuficiencia
V
sobreviva más de 24
multiorgánica,
horas con o sin cirugía
traumatismo grave
Tabla 3. Determinación del riesgo quirúrgico dependiente del estado físico de los
pacientes quirúrgicos. 39
34
Una vez que se ha realizado la valoración prequirúrgica se procede con la
preparación del paciente y sus cuidados preoperatorios.
PREQUIRÚRGICO
Se debe realizar la preparación preoperatoria y la premedicación de los pacientes.
Tres clases de fármacos deben ser considerados para usar como premedicación
-Sedantes-Tranquilizantes
-Agentes analgésicos Opiáceos
-Anticolinérgicos34
PREMEDICACIÓN
La anestesia general es comúnmente precedida por la premedicación con uno o
más fármacos los cuales:
 Reducen la cantidad de anestésico requerido (inyectable o inhalado) por lo
cual reducen sus efectos colaterales.
 Relajantes musculares
 Proveen analgesia y sedación
 Suprimen el reflejo de vómito
 Ayuda al manejo del paciente10
Actividades que realicé durante la rotación en el área de cirugía:
Participé activamente en la elaboración de exámenes físicos prequirúrgicos
generales y especiales a los pacientes.
Elaboración de la autorización por parte del propietario para la realización del
procedimiento quirúrgico (Formato 6), indicándole en qué consistía el acto
quirúrgico y los riesgos del mismo, así como el riesgo quirúrgico.
35
Preparación del paciente prequirúrgico (control de ayuno del paciente, revisión de
resultados de exámenes prequirúrgicos).
Tranquilización del paciente (previamente se realizan los cálculos necesarios
acerca de la correcta dosificación de los fármacos).
Canalizar al paciente principalmente en vena cefálica.
Realizar los cálculos para la terapia de fluidos que requerirá el paciente y
posteriormente colocar el equipo de suero y venoclisis de acuerdo al paciente.
Rasurado de la zona quirúrgica
Lavado de la zona quirúrgica con jabón quirúrgico.
Primera aplicación de anestésico fijo (previamente se realizaron los cálculos para
la dosificación en mg y posteriormente en ml)
Sondeo endotraqueal, utilizando como material de apoyo laringoscopio.
Preparación del quirófano:
Proveer del material (guantes, paquete de ropa estéril, paquete de campos
estériles, instrumental estéril, suturas, navaja de bisturí) y equipo necesario
(monitor, tanque de oxígeno, lámparas y mesa quirúrgica) para la realización de la
cirugía.
QUIRÚRGICO
Participar como auxiliar a la preparación personal para la intervención quirúrgica al
instrumentista, primer ayudante y cirujanos
ROTACIONES EN EL ACTO
QUIRÚRGICO
Anestesista
ACTIVIDADES REALIZADAS
Estar a cargo del protocolo de inducción y
de anestesia de acuerdo al paciente
(realizando los cálculos para la dosificación
y administración de los fármacos).
Realizar el examen físico prequirúrgico del
paciente.
Monitorizar y evaluar al paciente durante
36
todo el acto quirúrgico. Tomar constantes
fisiológicas del paciente (Frecuencia
cardiaca,
frecuencia
respiratoria,
temperatura), llenado de hoja de protocolo
anestésico durante la cirugía.
Llenado del Registro de Anestesia y
anexarlo al expediente del paciente (Anexo
20).
Revisar y evaluar al paciente hasta su
recuperación anestésica.
Apoyo al cirujano responsable tanto en
cirugías de tejidos blandos como en las
ortopédicas durante el acto quirúrgico.
Dividir el instrumental de acuerdo con la
función que cumple en: instrumental de
diéresis o corte, separadores para
exposición, instrumental de hemostasis,
pinzas de prensión e
Instrumental para síntesis.
Proporcionarle el instrumental al cirujano o
primer ayudante cuando éste lo indique.
Lavado, empaquetado y esterilización del
instrumental después de la cirugía.
Apoyo en la preparación del paciente en
actividades como lavado, rasurado.
Asistir en el lavado y preparación del
cirujano, primer ayudante e instrumentista.
Apoyo al cirujano, primer ayudante o
anestesista durante la cirugía.
Realizar los cuidados postoperatorios
(exámenes físicos, fisioterapia, etc.)
Primer ayudante
Instrumentista
Circulante
Tabla 4. Descripción de actividades realizadas de las rotaciones en los
procedimientos quirúrgicos.
POSTQUIRÚRGICO
Área de recuperación posoperatoria:
El sector de recuperación debe ser contiguo al área de cirugía pero separado de
otros pacientes internados. Los pacientes deben ser alojados en jaulas
individuales, calentadas y estar bajo supervisión hasta la recuperación completa.
Se debe contar con un suministro de líquidos calentados y mantas para brindar
calentamiento. 38
37
Una vez concluida la cirugía se coloca al paciente en la sala de recuperación,
donde se mantiene bajo supervisión por parte del anestesista, donde se evalúa su
respiración, temperatura, y estado de salud, hasta que el médico indique que es
posible llevarlo al área de hospitalización.
Mantuve los cuidados postoperatorios que requirieron los pacientes durante su
hospitalización y hasta el alta de los mismos, además realice cada día exámenes
físicos y anotando las observaciones en la Hoja de Progreso (Formato 4), la cual
era revisada y firmada por el Coordinador de Cirugía, lleve a cabo los cuidados
postoperatorios necesarios según lo requirieran como, cambios de vendajes,
lavados, curaciones, manejo del dolor, etcétera.
Realice el seguimiento de los pacientes que acuden después del procedimiento
quirúrgico a revisión o a retiro de puntos de sutura.
Así mismo realice la atención de fisioterapia de los pacientes que lo requerían; en
este sentido daba la orientación al propietario, indicándole la manera en la cual
se debían realizar los ejercicios físicos y cuidados en casa.
Llevé el control de las citas y prescripción de los medicamentos que los pacientes
iban a requerir para su terapia postoperatoria, así mismo su vigilancia externa vía
telefónica.
Apoye manteniendo limpios y ordenados los quirófanos, así como las demás áreas
de cirugía.
Realicé actividades en el CEYE como lavado de instrumental inmediatamente
después de cada cirugía y esterilizado del mismo, realizar gasas y torundas de
algodón para su esterilización y posteriormente su uso; lavado y doblado de la
ropa quirúrgica, la preparación de bultos de ropa, campos e instrumental para su
posterior esterilización en las autoclaves que se encontraban en sala de
recuperación.
Así mismo apoyé realizando los inventarios y control de materiales, fármacos y
equipo del CEYE.
38
Imagen 30. Preparación del paciente.
Imagen 31. Procedimiento quirúrgico
ÁREA DE HOSPITALIZACIÓN:
Esta área es de gran importancia debido a que muchos pacientes necesitan ser
hospitalizados, algunos en condiciones de monitorización estrecha y supervisión
constante. Es el caso de los pacientes que salen de una cirugía mayor y también
de los padecen una enfermedad no quirúrgica que pone en peligro su vida.
Los principales motivos de hospitalización de los pacientes son:
 Acuden a hospitalización con un desafío diagnóstico complejo, que no
puede resolverse en forma segura o efectiva en clínicas particulares, por lo
tanto son referidos a un hospital, como éste.
 Evaluación continua de los pacientes y medicación
 Recuperación de pacientes quirúrgicos
 Monitorización observación y cuidados intensivos
 Tratamiento y recuperación de diferentes patologías
 Rehabilitación
 Realización de procedimientos diagnósticos8,14
39
La hospitalización siempre debe ir acompañada de una comunicación clara con el
propietario.
La medicina hospitalaria casi siempre se enfoca en el diagnóstico y tratamiento de
problemas médicos agudos, sin embargo la mayoría de los pacientes tiene
problemas médicos múltiples que afectan distintos sistemas orgánicos y por lo
tanto se deben prevenir complicaciones intrahospitalarias.4, 8
El área de hospitalización es muy importante ya que abarca:
 Hospital de perros
 Hospital de gatos
 Hospital de Infecciosos
 Terapia Intensiva
 Fisioterapia
Mi estancia en ésta área abarcó del periodo de 14 de mayo de 2012 a 13 de julio
de 2012, con duración de dos meses, en los cuales realice diferentes actividades
que se llevan a cabo en el área como:
 Recepción del paciente hospitalizado, donde se le realiza canalización
endovenosa, y se coloca al paciente en una jaula, el estudiante a cargo
del caso debe realizar la Orden Clínica y Orden Terapéutica del paciente,
ambas firmadas por el Coordinador Médico (Formato 3 y 4), y se colocan en
la jaula del paciente, para tener mayor control acerca de las medicaciones y
cuidados que requiere el paciente.
 Me encargué de la medicación de los pacientes en tiempo y forma según
estaba establecido en la Hoja Terapéutica, en la cual, se encuentra
40
señalado el diagnóstico, las medicaciones que deben administrarse y otros
cuidados necesarios.
 Lavado de heridas o curaciones.
 Cambios de vendajes
 Realización de enemas
 Realización de transfusiones sanguíneas a los pacientes que lo necesiten.
 Llevar el registro de ingresos al área de hospitalización
 Revisión y seguimiento de las Órdenes Terapéuticas, las cuales indican las
medicaciones que requieren los pacientes, él o los fármacos, dosis en ml,
forma de administración, y el horario en que se debe administrar, así como
otros cuidados médicos especiales como su alimentación, realización de
curaciones, cambios de vendajes, lavado de heridas y otros.
 Limpieza de las jaulas
 Limpieza y ordenamiento del área de hospitalización en general, limpieza
de jaulas, mesas de exploración, anaqueles, etc.
 Realización de caminatas y paseos de los pacientes a las áreas externas
del hospital.
Dentro de las acciones que se realizan en esta área, también incluyen las
actividades que se llevan a cabo en las guardias nocturnas, de fin de semana y
días festivos, ya que en ellas se atendía la totalidad de los pacientes
hospitalizados, tanto de pacientes del área de medicina, cirugía o infecciosos,
asistiéndolos con todos los cuidados que el responsable del caso haya dejado
indicado en la orden terapéutica, en estos se incluyen cuidados como la
administración de medicamentos, lavados de heridas quirúrgicas o por
traumatismo, fisioterapias, caminatas, así como ofrecer alimento y agua, la
limpieza de la jaula y la realización de las nuevas órdenes terapéuticas, el reporte
de cómo pasó la noche el paciente y la hoja de progreso, donde se incluye
41
subjetivamente la evolución del paciente, para posteriormente entregar la guardia
al siguiente turno; todas estas actividades se realizan las diferentes áreas de
Hospitalización (Hospital de caninos, Hospital de felinos, Hospital de infecciosos).
TERAPIA INTENSIVA
Cuando existe enfermedad grave es necesaria la vigilancia estrecha y frecuente
de múltiples sistemas orgánicos.
La atención inicial del paciente en estado crítico a menudo debe hacerse con
rapidez y antes de integrar una historia clínica detallada.
La estabilización fisiológica comienza con los principios del apoyo vital ventilación
circulación, estado hidroelectrolítico, constantes fisiológicas, etcétera. 8
Las actividades que realicé en esta área fueron:
Vigilancia constante de los pacientes, realizando exámenes físicos en los tiempos
indicados, medicaciones, terapia de líquidos, indicaciones acerca de la nutrición,
de acuerdo a la Hoja de Reporte de Terapia Intensiva (Formato 19). Los pacientes
que requerían de se colocaban en jaulas especiales con oxígeno, indicando las
características de administración, horarios, etc.
Otras actividades que realice durante mi estancia fueron revisar diariamente el
stock de los consultorios, es decir que no hiciera falta algún material, ya sean
biológicos, equipo necesario para las consultas, rayos x, cirugías y hospitalización
entre otros.
RECEPCIÓN
Informar sobre los servicios que se ofrecen así como los costos de cada uno de
estos.
42
Los principales documentos que se manejan en la recepción son las hojas clínicas
de nuestros pacientes que llegan día con día, hojas de progreso o evolución de los
mismos.
Por otro lado se realizan los recibos del servicio que requieren nuestros pacientes
y se remite a pagar en la caja que se encuentra dentro de las mismas
instalaciones.
Búsqueda de expedientes de los pacientes.
Estas labores se realizan esporádicamente ya que se cuenta con secretarias que
realizan estas funciones.
Realizar recetas, órdenes de laboratorio y remisiones a especialistas.
También se cuenta en
la recepción con llamadas telefónicas para asesoría
médica a los propietarios disipando dudas y contestando preguntas frecuentes, y
dando información general de los servicios que aquí se brindan, así como el
seguimiento de pacientes que ya fueron dados de alta, para corroborar su buen
estado de salud, cabe mencionar que el estudiante es el que lleva a cabo el
seguimiento de estos casos, asesorado siempre del médico responsable.
Imagen 32. Paciente hospitalizado en área de Infecciosos.
43
Imagen 33. Realización de
fisioterapia a un paciente.
Imagen 34. Paciente hospitalizado
ÁREA DE MEDICINA
Mi rotación por esta área tuvo una duración de dos meses, abarcando del periodo
del 16 de julio al 14 de septiembre de 2012, estuve a cargo de 38 consultas.
El área de medicina es muy importante dentro del Hospital de Pequeñas Especies.
El avance de la medicina se lleva a cabo de acuerdo con dos procesos diferentes:
el primero tiene que ver con la acumulación cuantitativa y cualitativa de
conocimientos, el segundo se refiere a la metodología de la aplicación de dichos
conocimientos médicos. Durante los últimos 50 años la enseñanza de la medicina
bajo el sistema tradicional se ha caracterizado por la recolección mecánica de
información, donde rara vez se hace discriminación de datos que orienten al
descubrimiento de la enfermedad del paciente.24
Objetivos claros en el registro y análisis de los datos, que considera que lo
coherente es partir de los problemas identificados en el enfermo, no a partir de la
enfermedad, a través de un método de razonamiento, síntesis para llegar al
diagnóstico. Con esta perspectiva, la dinámica del proceso de enseñanzaaprendizaje en medicina adquiere otra dimensión. Por otra parte, el complemento
de la información teórica surge como una necesidad real en determinados pasos
del método analítico: es
necesario recopilar datos acerca de la patología de
distintas afecciones, del cuadro clínico o de laboratorio, del pronóstico, de la
44
evolución. Entonces la búsqueda de esta información se hará con una motivación
concreta: la solución integral de los problemas de ese paciente.5, 24
El acto médico aparece así como un proceso integrado por una serie de pasos
sucesivos que corresponden a la secuencia seguida por el método científico. La
identificación de problemas de salud le permite al médico seguir un camino de
razonamiento y buscar de manera ordenada la información teórica necesaria para
resolver el diagnóstico y actuar en consecuencia.
La atención médica que se realiza en Hospital de Pequeñas Especies, se lleva a
cabo mediante la realización del ECOP Examen Clínico Orientado a Problemas
con lo cual se garantiza la integración y el razonamiento en cada uno de los casos.
Esta metodología fue expuesta a finales de la década de los sesenta por el médico
norteamericano Dr. Lawrence Weed, quien describe un método que conserva lo
mejor del sistema tradicional y añade conceptos nuevos así surge el EXAMEN
CLÍNICO ORIENTADO A PROBLEMAS (ECOP); ésta herramienta ha sido
utilizada en todo el mundo, ya que tiene la virtud de simplicidad lógica y constituye
un excelente instrumento para ayudar a mejorar la calidad de la atención médica,
a la vez contribuye a la educación y a la investigación clínica en medicina.
Sus principales elementos son:
I.
Base de datos
II.
Lista de Problemas
III.
Plan de acción
IV.
Notas y comentarios de evolución
45
I.
Base de datos
Es la historia clínica obtenida por la anamnesis y el examen físico
II.
Lista de problemas
Se define como problema a todo trastorno o proceso orgánico que afecta la salud
del paciente y que implica una evaluación diagnóstica o una decisión terapéutica
por parte del médico.
“Problema es todo aquello que requiera diagnóstico, manejo posterior, o interfiera
con la calidad de vida” (Weed, 1966)
Los problemas son identificados por el médico a partir de:
 Padecimientos concretos referidos por el propietario
 Alteraciones objetivadas durante la exploración física
 Pruebas complementarias anormales.
Para la elaboración de la lista de problemas se debe de llevar cada problema al
nivel más alto de resolución diagnóstica con la evidencia disponible en un
momento dado, agrupada en síndromes si es posible, aunque se selecciona un
núcleo de problemas guía para luego ir sustituyéndolos por un diagnóstico
etiológico cuando éste haya sido confirmado.
Esta se elabora a partir de la base de datos y de las notas de evolución; es el
índice de los problemas del paciente, un resumen muy útil de la información
contenida en la historia clínica. Los problemas se deben enumerar por orden de
aparición, lo que permite identificarlos en la historia sin necesidad de leer cada
evolución.
III.
Plan de acción
Cada problema genera un plan de acción. Se debe disponer de una Hoja de Plan
de Trabajo, éstas deben ser claras y bien organizadas, donde se señale el
enunciado y la fecha de solicitud.
Se debe de actuar de acuerdo al tipo de plan, que puede ser
46
Tipos de Planes:
-
Planes Diagnósticos: encaminados a llevar el problema al nivel óptimo de
resolución diagnóstica.
-
Exámenes auxiliares: Pruebas de gabinete complementarias.
-
Procedimientos: Hospitalización, Procedimiento quirúrgico.
IV.
Notas y comentarios de evolución
Registro del curso que sigue el paciente con su enfermedad. Debe ser en función
de cada problema.
Estas constan de cuatro partes:
1) Subjetivo
2) Objetivo
3) Evaluación
4) Plan
1) Subjetivo
Aquí se consignan los datos recogidos por parte del médico al propietario durante
el interrogatorio. Por lo tanto son todas las impresiones subjetivas, tanto del
médico como del propietario.
2) Objetivo
En este apartado se anotan los datos positivos y negativos del examen físico y/o
exámenes complementarios.
3) Evaluación
Una vez que se han recogido los datos a través del interrogatorio, el examen físico
y los estudios complementarios, se evalúan y se expresan por medio del
47
enunciado de un problema, buscando un concepto y una “denominación” del
problema.
Además de la evaluación se pretende dar prioridad a los datos obtenidos y al
problema principal que aqueja al paciente, sobre cuya base el médico tomará
alguna acción para resolver o evaluar el problema.
4) Plan
Es aquí donde se realiza la planificación acerca de las conductas que se tomarán
-Plan diagnóstico Se consignan las pruebas solicitadas o que se solicitarán, con el
fin de aclarar dudas en el diagnóstico.
-Plan terapéutico: Se registran las indicaciones terapéuticas programadas para la
resolución de los problemas que presenta el paciente: medicamentos, dieta,
modificación en los hábitos.
-Plan de seguimiento: Protocolo de acción que se utilizará para el control de la
evolución de los problemas.
-Plan de educación: Información que se le da al propietario acerca del problema
que aqueja a su mascota, resolución de dudas, etc.
Otros elementos son:
 Hoja de plan de trabajo
 Hoja de concentración de laboratorio
 Notas de interconsulta
Son apartados de la historia clínica donde se registran los resultados de
exámenes complementarios, medicaciones, etc.
Estos registros nos permiten identificar rápidamente la evolución de un dato de
interés sin tener que revisar toda la historia.
48
Actividades realizadas en el área de medicina
Esta área está conformada por diez consultorios distribuidos de la siguiente
manera:
 4 consultorios de medicina general
 2 consultorios de gatos
 2 consultorios de medicina preventiva y especialidades
 2 consultorios de infecciosos
Consulta general:
Cuando un propietario se presenta en el Hospital de Pequeñas Especies para que
a su mascota se le de consulta, dependiendo del motivo de ésta, será la forma de
abordarla. En caso de presentarse por primera vez a consulta, será recibido en
recepción por la secretaria, la cual
comenzará con el llenado del expediente
(Formato 1), iniciando con la captura de los datos básicos y reseña, tanto del
propietario como del paciente.
Estos datos son:
 Número de Expediente y Fecha (dentro del hospital se lleva una
numeración continua para control interno de los pacientes).
 Datos del propietario: Nombre, Dirección, Teléfono, correo electrónico.
 Reseña (Datos de la mascota): Nombre, Especie, Raza, Edad, Peso, Sexo,
si se le realizado la castración, etc.
 Medidas de protección específica: Desparasitación y vacunación.
 Alimentación y frecuencia.
 Hábitat.
49
 Antecedentes Médicos.
 Motivo de consulta
 Tratamientos (Previos, Dosis y Frecuencia)
Estos datos son de suma importancia, ya que brinda al médico de primera
instancia, identificar o reconocer enfermedades propias de una especie, identificar
grupos de población con predisposición a ciertas enfermedades, afecciones
raciales hereditarias, etcétera.
Al iniciar la consulta es importante realizar una inspección general al paciente; la
observación o inspección es una herramienta que si se realiza de forma detallada
y ordenada orienta a identificar la posible patología que aqueja al paciente, y se
considera el estado de conciencia, comportamiento, postura, marcha, condición
corporal, posibles deformaciones óseas, alteraciones musculares, presencia de
tos o secreciones.
La anamnesis es importante ya que si se realiza de forma correcta nos ayuda a
obtener cerca del 80% de nuestro diagnóstico presuntivo.16, 29
Es un interrogatorio que se basa en preguntas directas, sencillas, prácticas, bien
formuladas con base en datos obtenidos directamente del propietario, donde se
debe incluir tiempo de evolución de la enfermedad, orden cronológico en el que
aparecieron los síntomas, manifestaciones patológicas observadas por el
propietario, posibles causas de la enfermedad, tratamientos previos, antecedentes
patológicos, patrones observados en cuanto a alimentación, consumo de líquidos,
defecaciones, micciones, patrones respiratorios, actividad física, cambios de
comportamiento, cualquier dato que pueda dirigir hacia el diagnóstico.29
Todos estos datos proporcionados por el propietario nos orientan un poco hacia
donde se encuentra el problema físico del paciente y nos ayudan a integrar los
signos clínicos de una manera más rápida y concreta. La capacidad de reunir
información es un arte y debe hacerse de manera cuidadosa y sistemática.
Con mucho la herramienta diagnóstica más importante que posee el veterinario es
su capacidad para obtener una historia clínica completa y realizar un examen
50
físico detallado. Cuando ésta información se interpreta de manera correcta, es la
base de un plan diagnóstico y terapéutico lógicos. Sin embargo, si la historia
clínica o el examen físico se efectúan de manera descuidada, el clínico puede
desviarse del problema pertinente del paciente y del diagnóstico apropiado. 5, 12
Exploración física general del paciente: Este es un aspecto muy importante dentro
de la consulta ya que es aquí donde se llegan a detectar los principales signos de
enfermedad que aqueja al paciente.3, 24
La exploración física es el punto clave para nuestra consulta, ya que en ella es
dónde ponemos en práctica nuestras habilidades como MVZ, interactuando con el
paciente, y sabiendo reconocer lo anormal de lo normal, es donde más enseñanza
y práctica se pude obtener ya que sin duda es una de las partes más importantes
de la medicina veterinaria.
Se realiza mediante las herramientas de observación del paciente, la auscultación,
palmopercusión, olfación y palpación, lo que se examina principalmente son:
Constantes fisiológicas:
Temperatura rectal del paciente. Se obtiene de manera rectal en las
primeras etapas del examen para evitar elevación de la misma como
resultado de ansiedad o excitación. Se debe registrar la presencia de
melena o sangre sobre el termómetro. La temperatura normal de un perro
de raza grande es de entre 37.5-38.6; perro de raza pequeña entre 38.639.2 y en el gato es de entre 37.8-39.2°C.16,24,38
Frecuencia Cardiaca. Ésta se mide mediante la auscultación y varía
dependiendo de la conformación física, edad, raza, etc.,
además se
escuchan los ruidos cardiacos normales: Ruido 1: Cierre de válvulas
atrioventriculares (Mitral y Tricúspide), al inicio de la Sístole. Sonido 2:
Cierre de válvulas semilunares (Pulmonar y Aórtica), al final de la Sístole.
También se pueden identificar soplos cardiacos, los cuales se definen como
el sonido producido por el flujo turbulento de la sangre durante el ciclo
51
cardiaco, una vez auscultado el soplo, debemos determinar el foco de
origen, la fase del ciclo cardiaco que ocupa, la configuración del soplo y la
intensidad del mismo.16,24,29.38
La intensidad del soplo se mide en una escala de I a VI
-
GRADO I: Soplo muy suave, de audición difícil
-
GRADO II: Soplo suave, audible tras auscultación cuidadosa
-
GRADO III: Soplo de intensidad leve a moderada
-
GRADO IV: De intensidad moderada a severa
-
GRADO V Soplo claramente auscultable, con frémito palpable
(precordial)
-
GRADO VI: Soplo severo, con frémito detectable aun sin estetoscopio. 12
Frecuencia Respiratoria: Se mide auscultando la tráquea o los campos
pulmonares, por inspección directa contando los movimientos de la cavidad
torácica o abdominal, durante un minuto. Se evalúa el patrón respiratorio a
medida que se toma la frecuencia. El aumento de esta frecuencia
(taquipnea o polipnea), o disminución (bradipnea), a la dificultad respiratoria
se le denomina disnea.3,7,29
ESPECIE
FRECUENCIA
CARDIACA
FRECUENCIA
RESPIRATORIA
TEMPERATURA
LLENADO
CAPILAR
CANINO
60-80 ppm
14-30 rpm
37.5-39 °C
1-2 seg
CACHORRO
CANINO
110-120 ppm
22-36 rpm
110-120/
min
38-40 °C
1-2 seg
FELINO
100-120 ppm
20-30 rpm
100-120/
min
38-39.5°C
1-2 seg
CACHORRO
FELINO
130-140 ppm
24-34 rpm
130-140/
min
38.5-40.5 °C
1-2 seg
PULSO
60-80/ min
Tabla 5. Constantes fisiológicas de caninos y felinos.16, 38
52
Pulso y sus características: En perros y gatos, el pulso se explora por
palpación directa a nivel de la arteria femoral, en la región inguinal sobre la
cara media del muslo, en la arteria braquial por encima de la articulación del
codo o en la arteria auricular a nivel del borde anterior de la oreja. La
frecuencia cardiaca y el pulso se debe tomar al mismo tiempo y deben de
coincidir en un ritmo de 1:1, esto es una pulsación por un latido cardiaco,
además que éste deber ser fuerte, lleno y correspondiente a la frecuencia
cardiaca.3,7,14,38
Se realiza también la exploración de las mucosas:
 Oral
 Conjuntival
 Palpebral
 Peneana/vaginal,
 Rectal
Se examinan detectando palidez (que indicaría existencia de anemia o
choque), hiperemia, petequias, cianosis, ictericia (debida a falla hepática y
hemólisis), erosiones o ulceraciones; sequedad aparecen en estados
febriles o deshidratación, y secreciones (purulenta, sanguinolenta), etc.3
Actitud: Normal, Deprimido, Comatoso, Estuporoso
Reflejo Tusígeno: La tráquea se explora mediante palpación y auscultación.
Si la tráquea está estrecha, colapsada o inflamada, la palpación
desencadena el reflejo tusígeno, el cual es positivo si el paciente manifiesta
tos.3,14
Reflejo Deglutorio: Al ejercer un poco de presión con la mano en la zona
ventral del cuello, se estimula el reflejo de deglución, la deglución es
dolorosa en procesos que cursan con inflamación de la faringe o esófago.
Obstrucciones físicas, cuerpos extraños, estenosis del esófago, parálisis de
la faringe se manifiestan por intentos de tragar.
14
53
Condición corporal. Un animal puede presentar un estado corporal normal o
estar obeso o emaciado. La pérdida de peso superior al 10% del peso
normal, no asociada con pérdidas de líquidos orgánicos, se considera
significativas en perros y gatos. En la clínica de pequeñas especies, el
estado corporal se valora por un sistema de puntuación (1-5).5
La auscultación de los campos pulmonares puede a veces indicar la
naturaleza y localización de las lesiones, los cambios que se producen a lo
largo del tiempo en el pulmón afectado.3,16,38
Tiempo de Llenado Capilar. Es un indicador útil de la perfusión de los
tejidos periféricos y del sistema cardiovascular, debe ser inferior a los 2
segundos en animales sanos.3,5
Palpación de los linfonodos externos (Submandibulares, Preescapulares,
Inguinales, Poplíteos). La linfadenopatía generalizada indica enfermedad
sistémica
(Infecciones
micóticas
sistémicas,
enfermedades
inmunomediadas, neoplasias), en tanto que el aumento de volumen local
del linfonodo por lo general indica infección regional (absceso).
Hidratación: Se debe observar si los ojos están hundidos o si los terceros
párpados hacen protrusión bilateral.
Debe observarse si las mucosas están secas o pegajosas. Se evalúa la
turgencia de la piel, pellizcando suavemente la del tórax dorsal.
Se mide el grado de deshidratación que puede ser menor al 5% cuando no
es identificable, se puede diagnosticar con la medición del hematocrito.
La escala varia, y se considera 5% a la pérdida ligera de elasticidad de piel;
6-8%, cuando existe un retraso definitivo para que la piel regrese a su
posición normal, mucosas ligeramente secas; 10-12%, cuando la piel
pellizcada no regresa a su posición normal, tiempo de llenado capilar
prolongado, ojos hundidos, mucosas secas, signos de choque, pulso débil;
mayor al 12%, si presenta signos de choque, colapso, depresión intensa,
muerte inminente.3,5,7,38
Palpación abdominal
54
Se palpa procediendo sistemáticamente de craneal a caudal, en pacientes
pequeños se realiza con una sola mano, mientras que en pacientes más
grandes se necesitan ambas manos. El abdomen craneal se palpa en
busca de distensión gástrica, el hígado puede ser difícil de palpar en el
paciente normal. En el abdomen medio se localiza el bazo y no siempre es
palpable a menos que haya una esplenomegalia, los nódulos linfáticos
mesentéricos o se palpan, sólo que estén aumentados en gran medida
como en casos de linfosarcoma. También se palpan asas intestinales, en
felinos pueden palparse los riñones en la región dorsal, el riñón derecho
tiende a estar más craneal que el izquierdo, en perros no se palpa con tanta
facilidad. Se palpa el colon en el abdomen dorsocaudal. En el abdomen
caudal central se palpa la vejiga urinaria, se evalúa tamaño, turgencia y
grosor de la pared de ésta. El útero normal no se puede palpar, a menos
que esté marcadamente aumentado a causa de piómetra o gestación
tardía. La próstata en ocasiones puede palparse en el abdomen caudal,
central al colon y caudal a la vejiga urinaria, si se encuentra se evalúa
tamaño, forma e irregularidades de la superficie.3, 14, 12, 16,38
Una vez concluido el examen físico se procede a elaborar la Lista de Problemas,
en donde se ubican todos los problemas identificados en la historia clínica o en el
examen físico. Una vez terminada se integra la Lista Maestra, donde se identifican
y agrupan los problemas en orden de importancia o trascendencia y su correlación
con los demás problemas.
Ya que se tiene la Lista Maestra es más sencillo establecer diagnósticos
diferenciales y se debe registrar las pruebas de gabinete y laboratorio necesarias
para confirmar o descartar los diagnósticos diferenciales. Realizando de manera
sistematizada lo anterior es posible emitir un Diagnóstico Presuntivo. Es en este
punto donde el médico en turno encargado del área de medicina evalúa al
paciente y revisa las anotaciones realizadas, el caso se discute en el área de
atención médica primaria y ayuda a identificar el diagnóstico, se realiza un Plan
Terapéutico, una vez que ambas partes se encuentren de acuerdo se regresa al
55
consultorio para informarle al propietario acerca del problema detectado en el
paciente y se le comenta el Plan de Acción a realizar para poder emitir un
diagnóstico, esto es, las pruebas diagnósticas necesarias. Si el propietario accede
a la realización de éstas, se remite al paciente al área correspondiente (Área de
Imagenología, Área de Atención Medica Ambulatoria, Área de hospitalización); en
caso contrario se establece un Plan Terapéutico, se realiza la receta, se dan las
recomendaciones pertinentes y se agenda su próxima cita para revisión.
Dependiendo el caso, una vez que se tienen los resultados de las pruebas de
laboratorio, se le dan a conocer al propietario los resultados de éstas, así como el
pronóstico, Plan Terapéutico de ser necesario y se agenda cita para revisión.
Si el estado del paciente o el proceso patológico que presente indica que es
necesario hospitalizarlo, se le informa al propietario, si éste accede a la
hospitalización se le entrega una hoja de Autorización de Hospitalización (Formato
5), y se remite al paciente al área de hospitalización correspondiente.
En el caso de revisiones donde al paciente en su primera visita se le abrió un
expediente, en sus subsecuentes visitas se busca el expediente, y se le toma una
Hoja de Progreso o Nota de Evolución, la cual se realiza de acuerdo al ECOP
siguiendo la estructura de estas en orden del S. O. E. P. (Subjetivo, Objetivo,
Evaluación, Plan), obteniendo datos subjetivos por parte del propietario acerca de
la evolución de la enfermedad y estado de salud de la mascota (estado de ánimo,
alimentación, etc.), realizando el examen físico, realizar la evaluación de éste y
determinar si el tratamiento es el adecuado.(Formato 4)
Esta área incluye el área de atención primaria ambulatoria o también conocida
como área de transferencia, la cual está conformada por 4 mesas de exploración,
que cuentan con sistema eléctrico e instalación hidráulica, lo que permite realizar
los procedimientos con mayor facilidad.
56
Además en esta área se cuenta con jaulas para colocar a los pacientes de manera
temporal para que su estancia ambulatoria sea más cómoda.
Los procedimientos que se realizan en esta área son:
 Toma de muestras para diagnóstico (tomas de sangre para Biometría
Hemática, Química Sanguínea, muestra de orina para la realización de
Examen General de Orina, Raspados cutáneos, Citologías como Punción
con Aguja Fina (Aspiración Citológica con Aguja Fina), Improntas)
 Curaciones
 Lavados
 Cambio de vendajes
 Aplicación de tratamientos
Imagen 35. Manejo de paciente en el área de medicina.
En esta sección las actividades que principalmente abordé se basaron de acuerdo
a las características que conllevara la consulta. La principal función de los
consultorios es la exploración general de nuestros pacientes y esta se divide en
diferentes etapas dependiendo de la atención que requiera el paciente.
57
Pruebas de laboratorio: en caso de ser necesario se toman Biometría Hemática
Completa, Química Sanguínea, Urianálisis, Punciones con Aguja Fina, Biopsias,
Rayos x y Ultrasonido entre otros. Estudio Coproparasitoscópico en caso de
requerirlo, este se realizaba directo de las heces del paciente.
Otro motivo de las consultas generales es la llegada de pacientes en estados
comatosos o en estado casi incompatible con la vida, es decir; urgencias.
URGENCIAS
En caso de urgencias se procede de la misma forma que en consulta general.
 Se busca el expediente del paciente y/o la elaboración de la reseña e
historia clínica breve del paciente
 Exploración física general rápida del paciente
 Realizar anamnesis lo más clara posible
 Realización de un examen específico por aparato o sistema.
 Preparar al paciente para ser canalizado, sondeado, tranquilizado, etc.
 Administración de fármacos.
 Evaluar al paciente y determinar un pronóstico.
 En caso de ser necesario hospitalizar al paciente, se le informa al
propietario, si este acepta el manejo médico se intenta estabilizar,
estableciendo la terapia de fluidos, administración de los fármacos
necesarios, preferentemente de manera intravenosa para su rápido efecto,
además de la continua vigilancia y evaluación del paciente, por lo tanto se
mantiene en hospitalización, en el área de terapia intensiva de ser
necesario.33
58
Imagen36. Paciente hospitalizado en el área de terapia intensiva
Todos los pacientes que acuden al hospital para que se les administre algún
tratamiento algún tipo de terapia médica como Quimioterapia (Formato 21), o la
realización de Fisioterapia ya cuentan con su hoja clínica archivada, por lo tanto
se realiza de forma rutinaria la toma de constantes fisiológicas para verificar
alguna posible alteración tanto fisiológica como metabólica, también se realiza una
anamnesis por parte del clínico hacia el propietario y en este caso estará
relacionada básicamente con la evolución de la enfermedad de nuestro paciente.
Si el estado de salud de nuestro paciente es favorable entonces puede darse de
alta, bajo observación y continuando su tratamiento hasta el término del mismo o
hasta nueva indicación.
MEDICINA PREVENTIVA
Esta comprende la aplicación de biológicos a perros y gatos, desparasitaciones y
orientación al propietario del correcto cuidado de las mascotas.
Cuando llega un paciente para consulta de medicina preventiva se le da atención
en los consultorios especiales para este fin, en caso de ser primovacunación se
abre un expediente del paciente, y después de tomar los datos del paciente se
59
lleva a cabo un examen físico general para corroborar el estado de salud del
paciente y determinar si puede aplicar la vacunación, se llenan dos formatos de
Registro de Vacunación, uno se anexa a su expediente para revisar el registro
médico del paciente, registrar las vacunas recibidas con anterioridad y las fechas
de cada una de ellas, y otro se le da al propietario como carnet de vacunación
(Formato 7) y se le hace la cita para su próxima vacunación.
También en caso de requerirse se realiza la aplicación de desparasitantes por vía
enteral, de acuerdo al peso del paciente.
Así mismo se da orientación a los propietarios de las mascotas acerca de los
cuidados que se
deben tener, tales como la limpieza dental, y las
recomendaciones pertinentes para mejorar la calidad de vida de éstas y las
obligaciones y responsabilidades que debe cumplir al adquirir una mascota.
El calendario de vacunación que se emplea en el Hospital de Pequeñas Especies
de la FESC para cachorros caninos es el siguiente:
PACIENTE
Canino
8°semana de
edad
10° semana de
edad
12° semana de
edad
14° semana de
edad
Vacuna Puppy
Vacuna Puppy
Vacuna
P.V.C.
P.V.C.
Vacuna
Quíntuple
Distemper
canino
Distemper
canino
MHA2PPi
Leptospira
Séxtuple
MHA2PPi
Rabia
Leptospira
P.V.C. Parvovirus canino
MHA2PPi Distemper canino, Hepatitis Infecciosa Canina, Adenovirus Tipo 2, Parvovirus
canino, Parainfluenza
Tabla 6. Calendario de Inmunización en caninos utilizado en el Hospital de
Pequeñas Especies de la FESC.
60
Y se les informa la importancia de la revacunación anual, para poder mantener a
la mascota correctamente protegida. En el caso de felinos el calendario de
vacunación que se utiliza en el siguiente:
PACIENTE
FELINO
8ª semana de
10ª semana de
12ª semana de
14ª semana de
edad
edad
edad
edad
Triple Felina
Calicivirus,
Rinotraqueitis
Infecciosa
Panleucopenia
Felina
Triple Felina
Calicivirus,
Rinotraqueitis
Infecciosa
Panleucopenia
Felina
Leucemia
Leucemia Viral
Felina
Rabia
Tabla 7. Calendario de vacunación utilizado en felinos en el Hospital de Pequeñas
Especies de la FESC.
61
En la siguiente tabla se menciona los antígenos vacunales para perros y una guía
de vacunación, así como recomendaciones
CANINOS
VACUNA
PRIMOVACUNACIÓN
(cachorro)
<16 SEMANAS
PRIMOVACUNACIÓN
(ADULTO) >16
SEMANAS
REVACUNACIÓN
COMENTARIOS
Altamente
recomendada.
VIRUS DEL
DISTEMPER
CANINO
ADENOVIRUS
CANINO-2 (MLV*
O MUERTO)
Administrar una dosis
a los 2, 3 y 4 meses
de edad
Administrar una dosis
a los 2,3 y 4meses de
edad.
Una dosis
Una dosis si se
utiliza MLV; dos
dosis separadas por
3- 4 semanas si se
usa vacuna muerta
PARVOVIRUS
CANINO (MLV)
Administrar una dosis
a los 2, 3 y 4 meses
de edad
Resulta adecuada
una dosis (aunque
se recomiendan dos
dosis separadas por
3-4 semanas)
PARVOVIRUS
CANINO
PVC**(MUERTO)
Administrar una dosis
a los 2, 3 y 4 meses
de edad
Dos dosis separadas
por 3-4 semanas
Anual
A pesar de la
recomendación de
revacunación anual, los
perros adultos están
protegidos 7 años
después de la vacuna.
Un intervalo de
revacunación de 3 años
en perro adultos es
razonable.
Anual
Recomendada.
Inmunidad cruzada
demostrada contra la
hepatitis infecciosa
canina (CAV-1) y (CAV2). Actualmente este
producto no está
disponible como vacuna
monovalente. Los perros
adultos quedan
protegidos durante 7
años después de la
vacunación CAV-2 MLV.
Anual
Altamente
recomendada. Aunque
las revacunaciones
anuales están
recomendadas por los
fabricantes, los estudios
han demostrado
protección durante 7
años postvacunación
con la MLV.
Anual
Recomendada. Una
alternativa a la vacuna
MLV de PVC. Los
productos de PVC
muertos son
62
susceptibles de
interferencia de
anticuerpos de origen
materno en cachorros
de hasta 16 semanas.
Aunque los fabricantes
recomiendan las
revacunaciones
anuales, los estudios
han demostrado
protección durante 16
meses posvacunación
con la vacuna muerta.
CORONAVIRUS
CANINO
(MUERTO Y
MLV)
Cada 2-4 semanas de
edad hasta las 12
semanas de edad
(MLV). Empezar a las
6 semanas de edad;
cada 2-3 semanas con
la última dosis a las 12
semanas de edad
(muerta)
Una dosis (MLV);
dos dosis separadas
por 2-3 semanas
(muerta)
Leptospira
interrogans (L.
canicola
combinada con
L.
icterohaemorrag
iae) bacterina
muerta. Cepas
disponibles
grippotyphosa y
pomona
12 y 16 semanas de
edad. No administrar a
perros menores de 12
semanas.
Dos dosis separadas
por 2-4 semanas
RABIA
(MUERTA)
Una dosis a los 3
meses de edad
Administrar una
única dosis
Anual
Anual
Perros con
riesgo
significativo
de exposición
cada 6 meses.
Anual
No recomendada. La
prevalencia de los casos
clínicos confirmados de
infección por
coronavirus canino no
justifica la inoculación
rutinaria a todos los
perros. Las infecciones
clínicas tienden a ocurrir
en cachorros menores
de 6 semanas. Los
síntomas son
moderados y suelen
resolverse
espontáneamente.
Opcional. Incidencia de
reacciones
posvacunales (anafilaxia
aguda) es elevada en
cachorros (menores de
12 semanas) y razas
pequeñas de perros. El
uso sistemático de la
vacuna debe
posponerse hasta que
los perros son >9
semanas de edad.
Obligatoria. Las vacunas
MLV no están
disponibles.
*(MLV) Virus Vivo Modificado
**(PVC) Parvovirus Canino
Tabla 8. Resumen de antígenos vacunales caninos y guía de vacunación
29
63
En la siguiente tabla se mencionan antígenos vacunales para gatos y guía de
vacunación.
FELINOS
VACUNA
PANLEUCOPENIA
(MLV* O MUERTO)
HERPESVIRUS
FELINO- (FHV-1)**
Y CALICIVIRUS
FELINO (FCV)***
PRIMOVACUNACIÓN
<16 SEMANAS
9 y 12 semanas de
edad
9 y 12 semanas de
edad
PRIMOVACUNACIÓN
> 16 SEMANAS
Una dosis (MLV) o
dos dosis
separadas por 3-4
semanas (muerta)
Una dosis (MLV) o
dos dosis,
separadas por 3-4
semanas (muerta)
REVACUNACIÓN
COMENTARIOS
Revacunar al
año,
posteriormen
te a
intervalos no
más
frecuentes
que cada 3
años
Altamente
recomendada.
En la mayoría de
los gatos la
protección
derivada de la
administración
de la vacuna se
mantiene como
mínimo 3 años y
probablemente
5-6 años o más.
Revacunar al
año,
después de
la serie
inicial y
posteriormen
te a
intervalos de
3 años
Altamente
recomendada
No se debe
administrar en
gatas preñadas.
Recomendada
VIRUS DE
LEUCEMIA FELINA
(MUERTO)
Dos dosis
separadas por 3-4
semanas,
empezando a las 9
semanas de edad
Dos dosis
separadas por 3-4
semanas
Anual
Especialmente para
gatitos, no limitados
a un ambiente
cerrado. Los gatos
mayores a 6 meses
muestran una
significativa
resistencia a la
infección. Opcional
para gatos adultos
que sólo salen a la
calle
esporádicamente
64
RABIA
Administrar una
dosis a los 3
meses de edad.
Administrar una
dosis
Anual
Altamente
recomendada
para todos los
gatos
(MLV) VIRUS VIVO MODIFICADO
(FHV-1) HERPES VIRUS FELINO
(FCV) CALICIVIRUS FELINO
Tabla 9. Resumen de antígenos vacunales felinos y guía de vacunación. 29
ÁREA DE LABORATORIO
El laboratorio clínico o de Patología clínica, a menudo complementa el examen
clínico del paciente veterinario. Los parámetros clinicopatológicos normales y
anormales rinden información objetiva en el proceso del diagnóstico diferencial,
supervisión del tratamiento y formulación de un pronóstico.13
En los últimos años el aumento en el uso y el mayor conocimiento de la
biopatología clínica nos ha llevado a una detección más precisa de la enfermedad
y al uso de enfoques terapéuticos racionales.13, 36
La biopatología clínica es el principio básico de la medicina interna. La selección
cuidadosa, el procesamiento y el análisis de las muestras clínicas, y la correcta
interpretación y aplicación de los resultados son esenciales para permitir la
realización del diagnóstico y la prescripción del tratamiento apropiado.19
Mi rotación en el Área de Laboratorio Clínico comprendió del periodo del 17 de
septiembre a 15 de noviembre de 2012, donde realicé diversas actividades en
cada una de las diferentes áreas, que son:
 Área de hematología
 Área de citología
 Área de urianálisis y coprología
65
Para la realización de cualquier estudio, el estudiante a cargo del caso debía llenar
una Solicitud de Estudio de Laboratorio (Formato 13) donde contiene los datos del
paciente, historia clínica, diagnóstico presuntivo y marcaje de la prueba o estudio
solicitado, este debe estar firmado por un médico del área de medicina y ser
entregado junto con la muestra; ya con ésta, en el área laboratorio clínico se
registra en una bitácora interna exclusiva del área, con una numeración
consecutiva independiente del número de expediente
 Área de Hematología
La Hematología estudia los elementos celulares de la sangre (eritrocitos,
leucocitos y plaquetas) y la relación que guardan estos con los sistemas
hematopoyético y vascular.36
Estudios de Sangre
-
Determinación del volumen de hematocrito
Por este procedimiento se mide el paquete de glóbulos rojos aglomerados
comparándolos con restantes constituyentes sanguíneos, leucocitos, plaquetas y
plasma. Normalmente el volumen de eritrocitos está en proporción directa con el
número de los mismos y con la cantidad de hemoglobina.
Refleja de forma precisa el recuento de eritrocitos y si el volumen medio de los
eritrocitos está dentro de los límites de referencia.
-
19
Proteínas plasmáticas
Se pueden medir utilizando el refractómetro, una vez que se ha anotado el
valor
del hematocrito, el tubo de microhematocrito se rompe por encima de la capa
flogística, se deja caer una gota de plasma sobre el prisma y se lee el valor de
proteínas totales en la escala del refractómetro de Goldberg, el cual tiene una
escala interna para las proteínas plasmáticas y otra para medir la densidad de la
orina.6, 19
66
-
HEMOGRAMAS
Para la realización de hemogramas se recibe la muestra y se marca el tubo con el
número de diagnóstico (uso exclusivo del área de laboratorio) y el nombre del
paciente.
Se realizan dos frotis sanguíneos, a los cuales, se les realiza la tinción con DiffQuick; después se realiza el montaje de las laminillas con resina.
A continuación se toma una muestra de sangre con tubos capilares y se coloca en
la microcentrífuga, esto para realizar la medición de hematocrito y proteínas
plasmáticas; ya que la muestra se centrifuga y se encuentra separado el plasma
del paquete celular, se coloca el capilar al microscopio para observar la capa
flogística y determinar la presencia de microfilarias de Dilofilaria immitis.
En caso de muestras de equinos se coloca un tubo capilar en baño maría para
determinación de fibrinógeno.
Se realiza el conteo total de Glóbulos Rojos y Blancos, para determinarlos se
utiliza la técnica del hemocitómetro o Cámara de Neubauer.
Mediante diluciones de una muestra sanguínea, con líquidos que permitan el
conteo de un tipo de células (leucocitos o eritrocitos), observándose al microscopio
en cámaras especialmente graduadas y contando una cantidad de la muestra
conocida en los lugares indicados para cada uno de ellos.6, 13,19
Recuento de formula roja (Glóbulos Rojos)
El recuento se realiza aspirando sangre de la muestra en la pipeta de Thoma
hasta la marca de 0.5 y aspirando de inmediato el líquido de dilución (solución de
Hayem), una vez hecha la dilución se coloca la pipeta en un agitador automático
por unos minutos, se llena uno de los espacios de la cámara de Neubauer, se deja
reposar y se realiza el recuento de eritrocitos observando al microscopio con
objetivo seco fuerte 40X. Se cuenta el número total de células en cinco cuadros
de los 25 del centro de la cámara y la cifra obtenida se multiplica por 10 000. Este
valor representa el número total de eritrocitos por mililitro.6
67
Recuento de fórmula blanca (Glóbulos Blancos)
Para determinar este conteo durante mi estancia en el área se podían emplear dos
maneras, de forma manual (Cámara de Neubauer) o mediante el analizador
hematológico IDEXX VetAutoread.
En el Hospital de Pequeñas Especies de la FESC se cuenta con el analizador
hematológico IDEXX VetAutoread y la Estación de Información de Laboratorio
IDEXX Vetlab Station, y otros equipos que facilitan y agilizan las pruebas de
laboratorio. Se capturan los datos del paciente en el IDEXX Vetlab Station (Imagen
37), después se introduce la muestra en tubos especiales previamente
centrifugada y se espera unos minutos los resultados impresos en los cuales
proporciona un informe completo, con valores numéricos y gráficos del perfil de la
capa leucocitaria verificando de esta manera los resultados numéricos, provee
para cada muestra un análisis hematológico completo con 12 parámetros de
recuentos
celulares
sanguíneos,
como
son:
Hematocrito,
hemoglobina,
Concentración de hemoglobina, Recuento de leucocitos totales, Neutrófilos,
Granulocitos, Eosinófilos, Linfocitos/Monocitos, Recuento de plaquetas, Eritrocitos
nucleados, Fibrina, Reticulocitos. Al final se corroboran los resultados del
analizador hematológico con los frotis sanguíneos.
Para realizar el conteo de forma manual:
Se utiliza la pipeta de Thoma para glóbulos blancos, se aspira la sangre hasta la
marca, se succiona el líquido de dilución (diluyente de Türk) y se coloca en el
agitador mecánico durante 2 o 3 minutos.
La sangre se mezcla por completo y con la punta de la pipeta se toca un lado de la
cámara y se deja escurrir una gota de líquido debajo de la cubierta de cristal, se
deja reposar 1 o 2 minutos y se inicia el recuento de leucocitos en el microscopio.
Después de contar todas las células de los cuatro cuadros mayores, el total se
multiplica por 50, para así obtener leucocitos totales por microlitro. 6
68
-
QUÍMICAS SANGUÍNEAS
Durante el periodo por el cual estuve en el área de laboratorio clínico, no se
contaba con el aparato para realizar este estudio, por lo tanto las muestras se
remitían a un laboratorio externo QUIMILABCO.VET, el estudiante a cargo debía
realizar la solicitud de estudio especial para el laboratorio externo y entregarla
junto con la muestra de sangre, la muestra se centrifugaba para obtener el suero y
se entregaba al laboratorio externo, los cuales entregaban los resultados en 48
horas (Formato 16).
 Área de Urianálisis y Coprología
URIANÁLISIS
Es una prueba de laboratorio simple, no invasiva y económica que proporciona
información valiosa sobre el tracto urinario y otros sistemas corporales. 6, 19,36
Recepción de la muestra en frascos limpios y esterilizados de vidrio o plástico,
protegidas de la luz, en caso de ser necesario se coloca en refrigeración. Se hace
el marcaje de la muestra colocando el número de diagnóstico y nombre del
paciente.
Se procede a realizar el examen físico de la muestra que consiste en determinar la
apariencia macroscópica el olor, color, aspecto o turbidez, coagulación, volumen y
anotar las observaciones.
Densidad específica. La densidad de la orina es un indicador útil de la capacidad
de concentración del riñón.13 Se puede medir de forma fácil usando el índice de
refracción, empleando el Refractómetro de Goldberg.
La orina siempre tiene una densidad mayor a la del agua destilada. La densidad
de la orina está incrementada por la presencia de grandes cantidades de glucosa,
proteínas, lípidos y material de contraste.19, 36
Después se realiza el examen químico, el cual se realiza con tiras reactivas, éstas
son tiras de plástico con porciones de fieltro impregnadas con reactivos, con las
cuales se puede hacer la medición de pH, proteínas, glucosa, cuerpos cetónicos,
bilirrubina, sangre y urobilinógeno: se capturan los datos del paciente en IDEXX
69
Vetlab Station, se colocan gotas de la muestra en una tira reactiva y esta se
introduce en el Analizador de orina IDEXX VetLab UA, este analizador de orina
garantiza resultados precisos y constantes, a través de una lectura automatizada
de resultados.
Examen microscópico del Sedimento Urinario
Este tiene gran importancia clínica, siendo una herramienta diagnóstica valiosa
para la detección y evaluación de trastornos renales y del tracto urinario; así como
de otras enfermedades sistémicas.16, 33,36
Se colocaban la muestra en tubos cónicos y se centrifuga durante 10 minutos a
1500 rpm, se decanta el sobrenadante, utilizando únicamente la cantidad de orina
que queda en la paredes del tubo, de esta forma se obtiene el sedimento y se
colocan dos gotas de este con una pipeta Pasteur en un portaobjetos, una de las
gotas se tiñe con Lugol, se le colocan a ambas encima un cubreobjetos y se
observa al microscopio utilizando el objetivo seco débil (10x).
El sedimento urinario se clasifica en sedimento organizado: células epiteliales,
leucocitos, eritrocitos, microorganismos, cilindros; y en sedimentos no organizado
como son cristales.6
ESTUDIOS COPROPARASITOSCÓPICOS
Flotación 1 muestra y serie de 3 muestras:
Se recibe la muestra, se hace el marcaje de la misma y se coloca en refrigeración
de ser necesario.
Se coloca una cucharada de muestra y mezcla perfectamente en un vaso de
precipitados con agua, se deja pasar a través de un colador, se coloca en un tubo
de ensaye a dos terceras partes con la muestra colada y se llena con agua, el tubo
se centrifuga durante 10 minutos a 1 500 rpm, una vez centrifugado se decanta el
sobrenadante, el tubo se llena con sulfato de zinc y se vuelve a centrifugar, una
70
vez realizado esto se coloca sulfato de zinc al tubo hasta el borde en la parte
superior del tubo, se coloca un cubreobjetos y se deja reposar durante 20 minutos,
se deja caer una gota de Lugol en un portaobjetos y se coloca el cubreobjetos del
tubo y se observa al microscopio. Se realiza el mismo procedimiento de flotación
en la serie de tres muestras, pero se coloca una cucharada de cada muestra de
heces en el vaso de precipitados.6
ESTUDIOS COPROLÓGICOS
Para la evaluación de la actividad enzimática del páncreas a nivel intestinal. 19
Consiste en realizar en las heces pruebas físicas (aspecto, color, detritus no
digeridos, parásitos etc.), pruebas químicas y pruebas microscópicas (células
epiteliales, eritrocitos, leucocitos, grasa, mucina).
Prueba de la película radiográfica en heces
Se adicionan a 4.5 ml de una solución de bicarbonato de sodio al 5%; la cantidad
de heces necesaria para llegar a un volumen final de 5 ml, esta mezcla se agita y
se le coloca una tira de película radiográfica dentro del tubo, se deja reposar por
dos horas y media a temperatura ambiente, después se retira la película
radiográfica y se lava a chorro fino de agua, la presencia de una zona clara indica
la existencia de tripsina.6
Pruebas microscópicas
 Tinción con Sudán
A una muestra de heces previamente homogeneizada se agregan dos gotas de
agua, dos gotas de alcohol al 95% y dos gotas de solución saturada de Sudan IV,
se le coloca un cubreobjetos y la preparación es observada con el objetivo seco
fuerte, las grasas se tiñen de color rojo o naranja.
 Tinción con Lugol
Se coloca una muestra de heces en un portaobjetos y se añade una gota de
colorante de Lugol, se le coloca un cubreobjetos y se observa en el objetivo seco
71
fuerte y seco débil. En ésta prueba se pueden observar parásitos, células y fibras
vegetales.
 ESTUDIOS CITOLÓGICOS
Es el estudio microscópico de extendidos celulares, procedentes de pacientes
vivos o muertos, con fines diagnósticos, pronósticos y de seguimiento. La principal
ventaja de la Citología, es que es un método sencillo de realizar y menos invasivo
que la Biopsia; pero su principal limitación es que es un método de presunción
diagnóstica (diagnóstico orientativo), por lo que debe ser confirmado mediante
Biopsia.5, 12,19
El principal objetivo de la Citología es reconocer los cambios que la enfermedad
imprime a la célula e interpretarlos correctamente. La Citología o Citopatología no
es otra cosa que la evaluación morfológica de los caracteres microscópicos de la
célula (citoplasma, núcleo) y de sus componentes extracelulares.13 Las células se
obtienen por descamación espontánea de un tejido mediante raspado, por lavado,
por decantación, por métodos de enriquecimiento o por otros métodos menos
invasivos que la biopsia.36
ACAF (Aspiración Citológica con Aguja Fina) ó PAF (Punción con Aguja Fina)
Tipos de Citologías:
 Citología por Impronta
 Citología de Líquidos
 Citología Exfoliativa
Como el nombre lo sugiere, este estudio se realiza con agujas de pequeño calibre
(agujas de 20 a 25) montada en una jeringa de 10cc o jeringa pistola. No se utiliza
anestesia local para realizarla. El corte producido por el filo de la aguja y
la presión negativa ejercida por la aspiración permite la obtención de células o
de un líquido sanguinolento que contiene grupos celulares. La principal ventaja de
la PAF permite un diagnóstico con mínima invasión.7, 13,19
72
Indicaciones de una PAF:
-
Cuando hay lesiones inflamatorias o no inflamatorias palpables, incluyendo
nódulos linfáticos.
-
Cuando hay lesiones neoplásicas no palpables pero imagenológicamente
sospechosas de malignidad
Técnica
 Paso 1: Identificación de la lesión y del mejor sitio de acceso para realizar la
PAF
 Paso 2: Se mantiene la zona en tensión. Se inserta la aguja (punza la piel
de la zona donde se halla la lesión). Simultáneamente ejerce presión
negativa una vez que la aguja penetra la piel, se mantiene por un par de
segundos, redireccionando la aguja varias veces para obtener muestras de
múltiples áreas del tejido. Se libera la presión inmediatamente antes de
remover la aguja. Se repite la maniobra (2 veces) usando diferentes agujas
y jeringas.
 Paso 3: Se aplica presión en la zona para minimizar el hematoma postoperatorio
 Paso 4: Se recoge la muestra y se prepara los extendidos.
a.- Identificar el portaobjeto: Marcar todos los portaobjetos recibidos o
los líquidos con el número de caso de laboratorio o nombre del paciente.
b. -Preparar los extendidos: Colocar el material en el portaobjeto:
Preparar los frotis usando pequeñas cantidades de material con la
menor cantidad de sangre posible.12
Realizar si es posible realizar 6 frotis, fijar inmediatamente:
Fijación en húmedo: Sumergir en alcohol 95% durante 10 minutos, procurando
que el alcohol cubra completamente el frotis.
Fijación en seco: El frotis se deja secar al aire y se puede utilizar spray fijador de
células (Citospray), rociándolo sobre el frotis a 20cm de distancia, una vez que el
frotis esté seco.
73
Se realizan dos tipos de tinciones como la:
Tinción de Diff-Quick: Para tinciones de laminillas fijadas en seco.
Tinción de Papanicolaou: Para tinciones de laminillas fijadas en húmedo.
Después se observan las laminillas al microscopio (Imagen 38).
IMPRONTA
Consiste en apoyar con cierta presión un portaobjetos sobre la superficie de
corte de un material de Biopsia; tras lo cual se evalúan las células que adhieren al
portaobjetos. Esta técnica se usa mayormente en patología linfoganglionar.
ANÁLISIS DE LÍQUIDOS
Son esencialmente un filtrado de sangre con poca proteína y que en condiciones
patológicas, ya sea en trastornos metabólicos o en respuesta a agentes
infecciones o neoplasias, tienden a cambiar tanto su composición como volumen,
denominándose como efusión. 13,36
Una vez obtenida la muestra de líquido, es posible someterlo a diversos análisis:
 Examen Físico: se lleva a cabo mediante la observación.
Color, turbidez, Coagulación, Olor y Densidad, éste último utilizándose el
refractómetro de Goldberg.6
 Examen Químico: se lleva a cabo por medio de tiras reactivas.
 Examen Citológico: el cual se coloca un poco de muestra en una laminilla y
se observa al microscopio. Conteo celular total, donde se utiliza la pipeta de
Thoma para glóbulos blancos y se añade diluyente de Türk y se hace el
conteo en la cámara de Neubauer
Conteo diferencial. Centrifugando el líquido, colocando una gota en un
portaobjetos, se realiza el frotis, se realiza la tinción y se observa al microscopio.
74
ESTUDIOS HISTOPATOLÓGICOS
Las muestras obtenidas se colocan en frascos de vidrio con formol al 10% y se
envían al departamento de Histopatología de la FESC, junto con la hoja de
examen solicitado (Formato 17), los resultados se obtienen en un periodo de
aproximadamente dos semanas después de haber sido entregada la muestra en el
laboratorio de Histopatología.
Existe una variedad de métodos diferentes para la detección de anticuerpos
séricos contra agentes infecciosos, como el análisis enzimoinmunoabsorbente o
conocido como prueba de ELISA.25
Este tipo de pruebas pueden adaptarse para detectar respuestas de IgM, Ig G ó Ig
A específicas.
En el análisis de ELISA indirecto, el agente o antígenos infecciosos se adhieren a
cubetas de una placa o membranas y los anticuerpos secundarios están unidos a
una enzima. Un sustrato cambia de color cuando es expuesto a esta enzima; se
incorpora para determinar si se unen los anticuerpos. Esta técnica tiene la ventaja
de determinar qué antígenos están induciendo una respuesta humoral específica.
La comparación de las respuestas IgM, Ig A e Ig G contra un agente infeccioso
pueden aprovecharse para intentar probar una infección reciente o activa.25, 36
Pruebas de ELISA más comúnmente utilizadas en el Hospital de Pequeñas
Especies de la FESC.
 PARVOVIRUS CANINO
 DISTEMPER CANINO
 GIARDIA
 SIDA FELINO
 LEUCEMIA VIRAL FELINA
75
Al concluir el procesamiento de cada muestra el Coordinador del Área de
Laboratorio Clínico, el M. en C. Ignacio C. Rangel Rodríguez se encargaba de
emitir el diagnóstico de laboratorio, capturaba los datos, hacia las interpretaciones
e imprimía los resultados, éstos se emitían como en los siguientes formatos
(Formato 14 y 15).
Imagen 38. Revisión al microscopio de
muestras de Citología.
Imagen 37. Captura de datos de
muestras de hematología en el
analizador hematológico.
ÁREA DE IMAGENOLOGÍA
ÁREA DE RAYOS X
Los factores de exposición, son el Miliamperaje, Kilovoltaje, Tiempo y Distancia,
éstos van a controlar la densidad radiográfica; la variación de alguno de estos
factores, requiere del ajuste de otro para conservar una adecuada densidad
radiográfica.17
76
Las selecciones en el panel de control se basan en una evaluación del paciente, el
grosor de la parte anatómica, el estudio a realizar y el tipo de accesorios
utilizados.
El miliamperaje mA determina el número de rayos x producido y por lo tanto la
cantidad de radiación recibida, controla la temperatura del filamento.
Con el tiempo de exposición se va a determinar todo el proceso de producción de
rayos x; es decir la fase de calentamiento del filamento determinado por el mA., el
flujo de electrones a través del tubo de rayos x y la salida de rayos x hacia el
paciente.32
El tiempo se debe mantener tan corto como sea posible, con la finalidad de
disminuir la pérdida de definición que resulta por el movimiento del paciente., el
cual, se expresa en segundos, décimas de segundo, hasta milésimas de segundo.
La cantidad de rayos x necesaria para una exposición se expresa mejor como el
producto del mA y el tiempo de exposición resultando en Miliamperaje por
segundo (mAs), por lo tanto a mayor mAs mayor obscurecimiento de la
radiografía.
El Kilovoltaje: Es el control primario de la calidad del haz de rayos x, es medido en
kilovoltios. Al incrementar el kilovoltaje, provoca que los electrones crucen con
mayor rapidez; ampliando la fuerza de colisión con el blanco, dando como
resultado rayos x de longitud de onda más corta y con un mayor poder de
penetración por lo tanto el kilovoltaje (kV) va a determinar el grado de penetración
de los rayos x.
El kV es el único factor de exposición que puede controlar las escalas de
contraste:
El KV se puede determinar con la regla de Sante que dice que el grosor del área
de interés se multiplica por dos y se suma a (k), la cual es una constante que va a
representar la distancia entre el tubo de rayos x y la película, pero expresado en
77
pulgadas; debido a que la distancia entre el tubo de rayos x y la película es
generalmente de un metro la (k) más empleada es de 40 pulgadas. Por lo tanto:
Grosor del tejido x 2 + 40 = kVp.
El espesómetro es un aparato de medición del grosor de las partes anatómicas,
que es necesario para determinar el valor de kVp necesario para realizar la
exposición.
La relación entre el mAs y el kV es inversamente proporcional ya que si se
aumenta el valor del mAs se debe disminuir la cantidad de kV.17
Los análisis radiográficos rutinarios consisten como mínimo de dos proyecciones
radiográficas, en algunas
ocasiones puede necesitarse adicionar otras
proyecciones en ángulos diferentes, esto se debe a que la radiografía es una
imagen bidimensional de una estructura tridimensional.
TERMINOLOGÍA DE POSICIONAMIENTO
DORSAL (D): Área situada en el dorso o parte superior de los cuadrúpedos,
también describe a los miembros a partir de las articulaciones de los tarsos y
carpos.
VENTRAL (V): Se refiere al aspecto inferior de la cabeza, cuello, tronco y cola,
opuesto a dorsal.
MEDIAL (M): Superficies internas de las extremidades.
LATERAL (L): Superficies externas de la cabeza, tronco y extremidades. El rayo
entra través del lado izquierdo o derecho del cuerpo y sale por el lado opuesto.
CRANEAL (Cr): Estructuras o planos situados hacia la cabeza.
CAUDAL (Cd): Estructuras o planos situados hacia la cola, antes se conocía como
posterior pero al igual que “anterior” este término ya no se emplea.
78
ROSTRAL (R): Áreas de la cabeza situadas hacia la nariz.
PROXIMAL (Pr): Cercano al punto de origen de alguna estructura. En el caso de
las extremidades, proximal indica superior
DISTAL (Di): Más alejado del punto de inserción u origen de alguna estructura. En
el caso de las extremidades, distal indica inferior
PALMAR (Pa): Superficie de apoyo de las extremidades torácicas. Se usa en lugar
de caudal del carpo hacia distal.
PLANTAR (Pl): Superficie de apoyo de las extremidades pelvianas. Se usa en
lugar de caudal del tarso hacia distal.18
NOMENCLATURA RADIOGRÁFICA
Se refiere a los términos usados para describir la proyección radiográfica
indicando
la dirección del rayo. Las primeras palabras provienen de aquellas
partes del cuerpo por donde entra el rayo y después por donde sale. Por ejemplo
la abreviatura VD se refiere a Ventro Dorsal, lo que se refiere a que el rayo entra
a través del plano ventral del animal y sale por el plano dorsal.
Los términos de dirección pueden combinarse para proyecciones oblicuas,
DMPaLO del carpo indica que el carpo se rota a un ángulo seleccionado y que el
rayo está centrado entre la superficie dorsal/medial y que sale por la parte
palmar/lateral oblicua.17, 18
En esta sección durante mi periodo que abarco del 16 de noviembre del 2012 al
15 de enero de 2013, realice varias actividades, como fue:
 Recibir al paciente al que se le va a realizar el o los estudios radiográficos.
El estudiante a cargo del caso deberá llenar la solicitud de Estudio
79
Radiográfico (Formato 8), donde indica el tipo de estudio radiográfico que
requiere el paciente y datos del gabinete como: Fecha de toma del estudio,
Nombre del Paciente, Especie, Nombre, Raza, Sexo, Número de
Expediente, si es un caso remitido, se registra como EXTERNO, Datos del
Propietario, etc.
 Encender el aparato de rayos X
 Cargar el casette o chasis para la toma de placa, se utilizan placas
sensibles al verde Kodak y Fujifilm, existen de diferentes tamaños, como
son placas de 8 x 10, 10 x 12, 11 x 14, 14 x 17 pulgadas
 Calibrar el aparato de rayos X de acuerdo a las características del paciente.
 Colocar en el aparato de rayos x, la técnica necesaria para el paciente, de
acuerdo a su peso, raza, y medida de la zona a radiar, esto en base al
Miliamperaje y Kilovoltaje, apoyándonos del uso de la regla de Sante, y
colocar en la Ficha Técnica (Formato 9), las medidas empleadas en el
estudio radiográfico .
 Revisar los planos radiográficos para cada radiografía solicitada
 Ayudar a la toma de la placa radiográfica colocando al paciente en la
posición correcta dependiendo del estudio solicitado. Para asistir en el
posicionamiento de un paciente pueden usarse dispositivos como bolsas
de arena, bloques y cuñas de hule espuma. La cinta, gasas, cuerdas y
bandas de compresión también son útiles.
 Colimación. Tener en cuenta cual es el área de interés para limitar la luz del
colimador y así no tomar una radiografía de otra área o de cuerpo completo.
 Una vez que se haya tomado la placa, llevar el chasis al cuarto oscuro para
revelarla de forma manual.
 Secado de la placa radiográfica.
80
 Si la toma fue adecuada en cuanto a proyección requerida y que la técnica
haya sido la ideal, se rotula la placa y se procede a su revisión para así
obtener información y emitir un diagnóstico radiográfico.
IDENTIFICACIÓN DE LA RADIOGRAFÍA
Cada radiografía debe estar identificada de una manera que permita su
localización posterior, debido a que en muchos casos se necesitan radiografías
adicionales para hacer evaluaciones de una enfermedad, tratamiento.
DATOS EN LA IDENTIFICACIÓN RADIOGRÁFICA
Los datos que idealmente se deben encontrar en la identificación de una
radiografía son: Fecha en que se realizó el estudio, nombre del paciente, número
de expediente, región y estudio solicitado.
 Contribuir a la interpretación radiográfica de la placa del paciente con el
médico responsable de turno, y se anexa la interpretación radiográfica al
expediente clínico.
 Llevar un inventario semanal del número de placas que se utilizaron por
paciente.
 Cambiar el agua del tanque de revelado, una vez por semana.
Para la obtención de radiografías de calidad se deben seguir los siguientes pasos:
1. Asegurar la comodidad del paciente.
2. Obtener una completa inmovilización del animal, sobre todo del área de interés.
3. Evitar generar un mayor traumatismo en el área lesionada o en los tejidos
adyacentes a ésta.
4. Asegurarse que la zona de interés esté lo más cercano al chasis.
5. El menor riesgo de exposición al personal que asiste al posicionamiento del
paciente.18
81
Se debe contar con un sistema organizado de archivo; es obligatorio en cualquier
clínica u hospital veterinario, el cual debe ser adecuado para evitar gastar tiempo
en la búsqueda de estudios, esto se debe realizar en un solo lugar y no
indiscriminadamente en una torre de radiografías tomadas anteriormente.
Un método de archivo recomendado es colocar las radiografías en sobres los
cuales deben llevar la identificación del paciente, tipo de estudio e ir colocando
todas las radiografías que posteriormente se le tomen a ese paciente en ese sobre
y colocarlo en un archivero o librero por número de expediente o por un código de
colores para que sea fácil su ubicación.17, 18, 32
No es prudente entregar los estudios a los propietarios debido a que ellos pueden
perderlos o no guardarlos para su posterior análisis. 17
La interpretación radiográfica es un estudio detallado de todas las anormalidades y
alteraciones que se pueden presentar en un estudio radiográfico, esto es posible
analizándolas y comparándolas con la anatomía normal, llegando a conclusiones
para formar un diagnóstico radiográfico. 11
Al interpretar una imagen radiográfica se extrae de ella toda la información útil
para el diagnóstico del paciente.
La valoración de las radiografías de pobre calidad es no concluyente y puede ser
engañosa, por lo que debe evitarse analizar este tipo de estudios. 17, 21
El médico debe basarse en los resultados de la exploración física, la signología y
la historia clínica, para realizar una lista de diagnósticos diferenciales y así
emplear los medios de diagnóstico más acertados para cada paciente. Se debe
evitar la idea de que un examen radiográfico sirve para obtener un diagnóstico, ya
que el fin de realizar este tipo de estudios es la confirmación de un diagnóstico
clínico previo. Otro factor importante a tener en cuenta para hacer una
interpretación exitosa es la calidad de las radiografías a interpretar.
82
El análisis del estudio radiográfico debe ser completo y no limitarse a una
radiografía ni a una sola área.
En la formación de imágenes influyen 4 factores:
a) Detalle
b) Densidad
c) Contraste
d) Distorsión
a) DETALLE
Se refiere al grado de definición de los bordes y de las estructuras anatómicas en
las radiografías. Se pueden clasificar las causas que originan la pérdida de detalle
en:
1. Tamaño del punto focal: A mayor tamaño, mayor pérdida de definición.
2. Distancia entre el punto focal y la película radiográfica: A mayor distancia, mayor
definición. La distancia estándar en radiología de perros y gatos es de un metro.
3. Distancia entre el objeto y la película radiográfica. A mayor distancia, menor
definición y se origina el fenómeno de amplificación que se refiere al aumento del
tamaño de la imagen en relación a su tamaño real, por lo que la zona de interés
debe estar lo más cerca posible a la película radiográfica, para evitar la ampliación
y la pérdida de definición.
4. Contacto entre la película y la pantalla intensificadora. En las zonas dónde hay
pérdida de contacto, hay pérdida de definición. Por este motivo se recomienda no
apilar los chasises ya que el que queda abajo puede deformar y disminuir el
contacto entre la pantalla y la película.
5. Movimiento: del tubo de rayos x, del paciente o del chasis
83
Lo ideal es que el grado de definición de las estructuras anatómicas sea óptimo.
b) DENSIDAD
La densidad radiográfica es el grado de ennegrecimiento de la radiografía, esta
puede aumentarse, incrementando el mA, el tiempo de exposición o ambos.
La densidad del paciente es la capacidad de los diferentes tejidos para absorber
los rayos x. 32
Debido a las diferencias en la absorción de los rayos x se tienen objetos que
absorben gran cantidad de rayos x llamados radiopacos, por lo que los fotones no
pueden atravesarlos, produciendo un área clara que al ver la radiografía aparece
blanca o gris clara; así mismo los objetos que permiten el paso de gran cantidad
de radiación se denominan radiolúcidos y producen imágenes negras o gris
oscuro.
Por lo tanto en radiología diagnóstica, la absorción de los rayos x y la densidad
física ayudan a clasificar la radiopacidad de los tejidos.
La radiopacidad de los tejidos presenta cinco grados perceptibles:
 Aire: Absorbe una pequeña cantidad de radiación y produce una imagen
negra intensa.
 Grasa: Su absorción de radiación es pequeña y ofrece imágenes gris
oscuro.
 Tejido blando: Músculo, sangre y órganos parenquimatosos que están
compuestos de agua, absorben igual cantidad de radiación por lo que da
lugar a sombras radiográficas con variados tonos de grises.
 Hueso: Debido a su gran contenido de calcio, fósforo y otros minerales,
tiene una densidad elevada, produciendo una imagen blanca.
 Metal: Tiene la más alta densidad radiográfica, por su elevado número
atómico, absorbe la totalidad de los fotones de rayos x generando una
imagen totalmente blanca.
84
El espesor y la radiopacidad están estrechamente relacionados, si el espesor
aumenta, la densidad también.
c) CONTRASTE RADIOGRÁFICO: Es el grado de diferencia perceptible entre 2
tonos, influenciado principalmente por el kilovoltaje; a mayor kilovoltaje, menor
contraste y a menor kilovoltaje, mayor contraste.
d) DISTORSIÓN: Se define como la deformación de las imágenes en las
radiografías. Se debe a la forma en que inciden los rayos x en las estructuras
anatómicas incluidas en las radiografías.
17,18
El informe radiográfico debe contener la siguiente información:
1. Fecha de realización del estudio.
2. Reseña e identificación del paciente.
3. Información relevante de la historia clínica, el examen físico, resultados de las
pruebas de laboratorio, si es que se tienen.
4. Diagnóstico clínico presuntivo y nombre del médico que solicita el estudio.
5. Estudio y proyecciones radiográficas solicitadas.
6. Proyecciones radiográficas utilizadas.
7. Resultados del estudio radiográfico:
a) Interpretación.
b) Diagnóstico radiográfico.
c) Recomendaciones:
Se puede sugerir realizar otro tipo de estudios por imagen para llegar al
diagnóstico definitivo cuando la imagen radiográfica no es muy clara, los
estudios
que
se
pueden
proponer
son:
ultrasonografía,
tomografía
computarizada o resonancia magnética.

Número y tamaño de las radiografías utilizadas en el estudio.
85

kVp y mAs utilizados, si se utilizó la rejilla, anotar el grado de exposición
obtenido, la información es de gran utilidad para los casos que requieren
estudios radiográficos de seguimiento.

Nombre y firma del médico que realiza la interpretación

Nombre de la clínica u hospital.
Diagnóstico por imagen
Las radiografías simples se emplean de forma rutinaria para explorar el aparato
digestivo de pequeños animales.
Las
radiografías de tórax están indicadas si se sospecha de Megaesófago,
Neumonía por aspiración, Metástasis.
Las radiografías de abdomen pueden ser útiles en el diagnóstico de masas,
cuerpos
extraños
radioopacos,
dilatación-torsión
gástrica,
Hepatomegalia,
Peritonitis. Por lo general las radiografías de colon aportan escasa información
Las radiografías de contraste son importantes a la hora de detectar cuerpos
extraños radiolúcidos, masas, estenosis, infiltración de la pared gastrointestinal,
úlceras en la mucosa, problemas de motilidad y defectos de llenado que sugieren
la presencia de enfermedad neoplásica o ulcerativa.11
El objetivo de la radiología es obtener radiografías con una mínima exposición, es
por esto que la protección contra la radiación debe ser también un punto relevante
dentro de la radiología, tomando en cuenta que durante la exposición se debe
proteger al público en general, al paciente y al personal del hospital.20
En medicina veterinaria se debe implementar la cultura de seguridad que se
refiere al conjunto de valores y actitudes que rigen la conducta de los individuos,
para la protección y seguridad radiológica, para esto conviene instaurar y
mantener un programa de protección radiográfica.
17
86
La importancia de la protección frente a la radiación ionizante radica en que la
radiación ioniza el agua presente en el organismo liberando radicales OH que
pueden dañar componentes imprescindibles de la célula como el ADN.
La indumentaria de plomo ayuda a reducir la exposición del haz primario en un
25%.
El mandil debe tener un espesor de al menos 0.5 mm de plomo cuando cubra
solamente el frente del cuerpo o de al menos 0.25 mm cuando cubra
completamente el frente, los costados del tórax y pelvis. Los guantes y el collarín
para proteger la tiroides deben contar con el espesor de al menos 0.5 mm de
plomo.
Colgar los delantales y los protectores tiroideos, para evitar que se agrieten.
Cuando se use un equipo móvil el operador mantendrá una distancia mayor a
1.8m del paciente y hacer uso del mandil plomado.
REGLAS DE SEGURIDAD RADIOGRÁFICA
1) Mantener el mínimo de personal necesario durante la exposición, de ser
posible rotar al personal que asiste en la toma de estudios radiográficos
para disminuir el nivel de exposición.
2) Evitar que menores de 18 años y personas embarazadas permanezcan en
el recinto cuando se esté tomando un estudio.
3) Siempre usar ropa protectora diseñada para absorber la radiación
secundaria con un grosor de 0.5mm de plomo, para la protección de los
ojos se debe llevar lentes con cristales plomados. Asegurar la vida máxima
de la indumentaria protectora a través de un uso y cuidado apropiado.
4) Usar restrictores mecánicos cuando sea posible, como sacos de arena,
vendas, cuñas o utilizar restrictores químicos tal como tranquilizantes y
anestésicos.
87
5) Usar el colimador para disminuir el tamaño del campo y la radiación
dispersa, ninguna parte del cuerpo debe estar en contacto con el haz
primario ya que lo ropa de plomo no protege del haz primario. )
6) Mantener los químicos del cuarto obscuro en buenas condiciones de
operación.
7) Cuidar el tiempo y los valores de exposición.20
Imagen 39. Realización de estudio radiográfico
ULTRASONIDO
Se está volviendo rápidamente una modalidad de imagen aceptada en pequeñas
especies. Es una técnica diagnóstica segura, no invasiva, que proporciona
información acerca de la estructura interna de los órganos dentro del abdomen y
tórax.
El ultrasonido no tiene el objetivo de reemplazar a la radiografía diagnóstica, si no
de complementarla. La calidad de la imagen y la información obtenida están
directamente relacionadas con la habilidad de la persona que hace el estudio.
Se trata de un procedimiento diagnóstico que emplea los ecos de una emisión de
sonido, dirigida sobre el organismo del animal para formar una imagen de los
órganos y masas internas a través de un sistema electrónico.
88
La ecografía médica utiliza ecos de ondas sonoras para crear imágenes y esta es
la única modalidad de adquisición de imágenes de diagnóstico que no utiliza
radiación electromagnética.
Los principales componentes de un sistema de imagen de ultrasonido son:
pulsador, transductor, recibidor, memoria y pantalla. Los pulsos eléctricos son
producidos por el pulsador e impulsados hacia el trasductor. El transductor
produce pulsos de ultrasonidos para cada pulso eléctrico que recibe. También
produce pulsos eléctricos para cada pulso de ultrasonido reflejo que recibe de los
tejidos. Los pulsos eléctricos van al recibidor, donde son convertidos a información
que puede utilizar la memoria. La información de la memoria se muestra o impulsa
en la pantalla, lo que produce una imagen
Durante mi rotación por esta área las actividades en las que participe activamente
fueron:
Recibir y preparar a los pacientes que requieren que se les realice ultrasonido
(rasurado y lavado), se recibe al paciente junto con su hoja de Solicitud de estudio
Ultrasonográfico (Formato 10). El problema más común para obtener imágenes de
buena calidad es el mal contacto entre la piel y el transductor. Se rasura el área a
la que se le va a hacer el ultrasonido con una navaja núm. 40. El pelo tiende a
atrapar aire, que actúa como barrera al ultrasonido. Se limpia la piel expuesta para
quitar suciedad, aceite, detritus antes de aplicar el gen para obtener la mejor
imagen.
Apoye en el manejo del paciente durante la realización del ultrasonido, teniendo la
oportunidad de aprender más sobre la interpretación de dicho estudio
Realizar la hoja de interpretación del ultrasonido para con esto llenar expediente
del paciente, y en caso de que lo solicite el propietario se le hace entrega del
estudio ultrasonográfico en video formato DVD y la interpretación del mismo.
89
En general no se requiere tranquilización, pero el paciente siempre debe estar
sujetado de manera adecuada.
Es ultrasonido es una representación bidimensional de un objeto tridimensional.
Refleja la anatomía tomográfica (en cortes transversales). Permite identificar la
estructura de los órganos internos.
USOS
 Biopsias con aguja guiada por ultrasonido para histopatología y cultivo.
 Aspirado con aguja fina guiada por ultrasonido para citología y cultivo.
 Cistocentesis (vejigas pequeñas, animales difíciles)
 Aspirados de vesícula biliar para cultivo.
 Diagnóstico y drenaje de abscesos
 Diagnóstico de quistes y drenaje.
 Toracocentesis.3
La ecografía abdominal es útil para valorar la presencia de derivaciones
portosistémicas, ya que se puede establecer el tamaño, consistencia y vasculatura
del hígado. También puede ayudar a diagnosticar el engrosamiento de la pared
intestinal, ser útil para estudiar los contenidos presentes en la luz, el peristaltismo
y para diagnosticar neoplasias e invaginaciones.
90
ENDOSCOPÍAS
La endoscopia es uno de los mejores métodos para examinar cavidades orgánicas
en un cuerpo vivo. Esta técnica empezó a utilizarse en los años setentas y permite
de una forma mínimamente invasiva la visualización y extracción de cuerpos
extraños, obtención de biopsias e incluso la elaboración de técnicas quirúrgicas.
Actualmente la endoscopia es una técnica ampliamente difundida y se encuentra
en constante evolución. El gran avance tecnológico en el tratamiento de imágenes,
las innovaciones en los diferentes instrumentos y las mejoras introducidas en las
diferentes técnicas hacen de la endoscopia una valiosa herramienta de
diagnóstico y tratamiento.3
Para la realización de técnicas endoscópicas se requiere de tranquilización o
sedación previa, generalmente se utiliza Acepromacina 0.02mg/kg.
Imagen 40. Realización de endoscopía en el HEMyCPE
91
RESULTADOS
Los resultados obtenidos son en base al número de servicios clínicos que se
bridaron durante mi servicio social titulación desde el 15 de marzo del 2012 al 15
de marzo del 2013, tomando los datos de los expedientes de los pacientes.
Área de Cirugía
No
Procedimiento
Expediente
Quirúrgico
Osteosíntesis de fémur con
AA0723
AA0734
AA0638
AA0757
AA0101
AA0770
AA0778
EXTERNO
AA0707
AA0758
placa y tornillos
Profilaxis dental
Traquestomía y colocación de
cánula
Resección Intestinal
Profilaxis dental
OSH
OSH
Osteosíntesis de miembro
pelviano derecho
Mastectomía y OSH
Retiro de lipomas de MPD y
abdomen
AA0783
AA0789
Desbridación de absceso
AA0778
Desbridación de absceso de
MPI
OSH (Piómetra)
AA0802
AA0484
AA0787
EXTERNO
AA850
OSH con útero gestante
Orquiectomía
Sustitución extracapsular del
ligamento cruzado del MPD
Cánula
Especie
Raza
Sexo
Edad
Canino
Bóxer
Macho
2 años
Canino
Canino
Schnauzer
Mestizo
Hembra
Hembra
9 años
9 años
Canino
Canino
Canino
Golden Retriever
Poodle
Mestizo
Macho
Macho
Hembra
Canino
Conejo
Bóxer
California
Hembra
Macho
7 años
9 años
10
años
3 años
1 año
Canino
Canino
Cocker
Cocker
Hembra
Hembra
Canino
Felino
Macho
Hembra
Canino
Golden Retriever
Europeo
Domestico
Bóxer
8 años
12
años
8 años
6 años
Hembra
3 años
Canino
Canino
Canino
Labrador
Pastor Alemán
Maltés
Macho
Macho
Hembra
7 años
8 años
7 años
Canino
Canino
Mestizo
Mestizo
Macho
Macho
AA0749
Nodulectomía (MTD e
intercostales)
Canino
Beagle
Hembra
AA0778
AA0834
OSH
Canino
Canino
Bóxer
Poodle
Hembra
Hembra
8 años
10
años
14
años
3 años
2 años
Canino
Labrador
Macho
7 años
AA0788
Hernia inguinal
Resección de Glándula salival
mandibular izquierda
Nodulectomía
92
AA830
Profilaxis dental
Felino
AA0853
EXTERNO
Desbridación de absceso
AA0869
Ruptura de ligamento cruzado
anterior de la rodilla
Persistencia del 4to arco
aórtico derecho
Hembra
7 años
Canino
Canino
Europeo
Domestico
Cocker
Bulldog
Macho
Hembra
2 años
Canino
Labrador
Macho
2
meses
11
meses
3
meses
11
años
10
meses
5 años
AA0884
Gastrotomía
Canino
Bull Terrier
Macho
AA0890
Corrección quirúrgica de
fractura de fémur
Canino
Golden Retriever
Macho
AA0887
Osteosíntesis (fractura del
maxilar)
Canino
Chihuahueño
Macho
AA0908
Retiro de clavo de tibia de
MPD
Canino
Doberman
Hembra
EXTERNO
EXTERNO
Profilaxis dental
OSH
Canino
Felino
Hembra
Hembra
AA0930
Laparatomía exploratoria
Canino
Schnauzer
Europeo
Doméstico
Mestizo
AA0858
Biopsia de hueso
Canino
Labrador
Hembra
AA0903
Nodulectomía del párpado
superior del ojo izquierdo
Corrección quirúrgica de
fractura de tibia y fíbula
Canino
Setter Irlandés
Macho
Canino
Bull Terrier
Hembra
OSH Útero con piómetra
Felino
Canino
Persa
Schnauzer
Hembra
Hembra
AA0937
Hembra
AA0936
Colocación de placa iliaca en
pelvis
AA0941
Amputación de pene y
castración
Canino
Mestizo
Macho
AA0932
Amputación de dedo IV, V
Canino
Airdale Terrier
Hembra
AA0940
Enucleación
Canino
Chihuahueño
Hembra
12
años
2.5
años
4 años
9
meses
7
meses
11
años
10
años
6 años
Tabla 10. Registro de cirugías durante el periodo comprendido del 15 de marzo al
11 de mayo de 2012 dentro de las instalaciones del Hospital de Pequeñas
Especies de la FESC.
93
ESPECIES SOMETIDAS A CIRUGÍA
ESPECIE
CANINOS
FELINOS
CONEJOS
TOTAL
CANTIDAD DE
PACIENTES
36
4
1
41
Tabla 11. Pacientes sometidos a cirugía divididos por especie.
Gráfica 1. Relación de pacientes sometidos a cirugía por especies.
CLASIFICACIÓN DE CIRUGÍAS
CIUGÍAS ORTOPÉDICAS
CIRUGÍAS DE MEDICINA PREVENTIVA
CIRUGÍAS DE TEJIDOS BLANDOS
TOTAL DE CIRUGÍAS REALIZADAS
CANTIDAD DE
CIRUGÍAS
11
9
21
41
Tabla 12. Motivo de cirugía.
94
Gráfica 2. Clasificación de los motivos de cirugía.
En la siguiente tabla se muestran las cirugías de medicina preventiva que en el
periodo del 15 de marzo al 11 de mayo de 2012 fueron 9 cirugías entre profilaxis
dental y castraciones.
MEDICINA PREVENTIVA
OOFOROSALPINGOHISTERECTOMÍA
ORQUIECTOMÍA
PROFILAXIS DENTAL
TOTAL
CANTIDAD DE
CIRUGÍAS
4
1
4
9
Tabla 13. Cirugías de Medicina Preventiva del periodo del 15 de marzo al 11 de
mayo de 2012.
95
Gráfica 3. Cirugías de Medicina Preventiva del periodo del 15 de marzo al 11 de
mayo de 2012.
La Tabla 14 nos muestra las cirugías de tejidos blandos que se realizaron en el
HEMyCPE en el periodo del 15 de marzo al 11 de mayo de 2012 y su división por
aparatos o sistemas afectados.
APARATO O SISTEMA
RESPIRATORIO
DIGESTIVO
GENITOURINARIO
CARDIACO
OJO
OTROS (HERNIORRAFÍAS, NODULECTOMÍAS, ETC.)
TOTAL
CANTIDAD DE
CIRUGÍAS
2
3
5
1
2
8
21
Tabla 14. Cirugías de tejidos blandos divididas en aparatos o sistemas en el
periodo del 15 de marzo al 11 de mayo de 2012.
96
Gráfica 4. Cirugías de tejidos blandos divididas en aparatos o sistemas afectados.
CIRUGÍAS DE TEJIDOS BLANDOS
TEJIDOS BLANDOS
COLOCACIÓN CÁNULA TRAQUEAL
RESECCIÓN INTESTINAL
MASTECTOMÍA
DESBRIDACIÓN ABSCESO CUTÁNEO
OSH CON ÚTERO GESTANTE
OSH CON PIOMETRA CERRADA
HERNIORRAFÍA
NODULECTOMÍAS
RESECCIÓN GLANDULA SALIVAL MANDIBULAR
RETIRO DE LIPOMAS
PERSISTENCIA DE 4°ARCO AÓRTICO
GASTROTOMÍA
LAPAROTOMÍA EXPLORATORIA
AMPUTACIÓN DE PENE
ENUCLEACIÓN
TOTAL
CANTIDAD
2
1
1
3
1
2
1
3
1
1
1
1
1
1
1
21
Tabla 15. Cirugías de tejidos blandos.
97
Gráfica 5. Descripción de cirugías de tejidos blandos.
CIRUGÍAS DE ORTOPEDIA
ORTOPEDIAS
OSTEOSÍNTESIS DE FRACTURA DE FEMUR
SUSTITUCIÓN EXTRACAPSULAR LIGAMENTO CRUZADO ANTERIOR DE RODILLA
OSTEOSÍNTESIS DE FRACTURA DE MAXILAR
RETIRO DE CLAVO DE MIEMBRO PELVIANO DERECHO
BIOPSIA DE HUESO
OSTEOSÍNTESIS DE FRACTURA DE TIBIA Y FÍBULA
COLOCACIÓN PLACA ILIACA EN PELVIS
AMPUTACIÓN DEDOS IV Y V
TOTAL DE CIRUGÍAS ORTOPÉDICAS
CANTIDAD
3
2
1
1
1
1
1
1
11
Tabla 16. Cirugías ortopédicas realizadas en el periodo del 15 de marzo al 11 de
mayo de 2012.
98
Gráfica 6.Cirugías ortopédicas.
SEXO DEL PACIENTE
En la tabla 17 nos muestra que durante el periodo del 15 de marzo al 11 de mayo
de 2012, se sometieron a cirugía en mayor medida a pacientes hembras que
machos.
SEXO
CANTIDAD
MACHOS
17
HEMBRAS
24
TOTAL
41
Tabla 17. Pacientes sometidos a cirugía clasificados por sexo
99
PRINCIPALES RAZAS DE PACIENTES CANINOS
RAZA
Bóxer
Schnauzer
Mestizo
Golden Retriever
Poodle
Cocker Spaniel
Pastor Alemán
Maltés
Beagle
Labrador
Bulldog Ingles
Bull Terrier Ingles
Chihuahueño
Doberman
Setter Irlandés
Airdale Terrier
TOTAL
CANTIDAD
4
3
6
3
2
3
1
1
1
4
1
2
2
1
1
1
36
Tabla 18. Principales razas de pacientes caninos sometidos a cirugía.
Gráfica 7. Principales razas caninas de pacientes sometidos a cirugía.
100
ÁREA DE HOSPITALIZACIÓN
ESPECIE
CANINO
FELINO
HURÓN
TOTAL
CANTIDAD
82
6
1
89
Tabla 19. Pacientes hospitalizados en el periodo del 14 de mayo al 13 de julio de
2012 divididos por especies.
SEXO
PACIENTES
HEMBRAS
37
MACHOS
51
TOTAL
88
Tabla 20. Sexo de los pacientes hospitalizados
RAZA
Mestizo
Bull Terrier Inglés
Chihuahueño
Bóxer
San Bernardo
Teckel
Golden Retriever
Yorkshire Terrier
Cocker Spaniel
Pit Bull Terrier
Schnauzer
Beagle
Poodle
Labrador
Rottweiler
Maltés
Doberman
Pastor Alemán
Pastor Belga Mallinois
Chow Chow
CANTIDAD
15
5
5
4
1
3
6
1
3
3
6
3
5
7
2
1
1
2
3
1
101
Bull Dog Inglés
Gran Danés
Antiguo Pastor Inglés
Basset Hound
TOTAL
1
2
1
1
82
Tabla 21. Principales razas de perros hospitalizados durante el periodo
comprendido del 14 de mayo al 13 de julio de 2012.
Gráfica 8. Principales razas de perros hospitalizados durante el periodo
comprendido del 14 de mayo al 13 de julio de 2012.
102
EUROPEO DOMÉSTICO
MEXICANO DOMESTICO
CANTIDAD DE
PACIENTES
2
4
TOTAL
6
RAZAS DE GATOS
Tabla 22. Razas de felinos hospitalizados durante el periodo comprendido del 14
de mayo al 13 de julio de 2012
Se puede observar en la Gráfica 8 la gran variedad de razas caninas, siendo estas
solo una pequeña porción de la gran diversidad de razas que existen, siendo los
perros criollos los que más acuden a consulta, contrariamente a lo que la mayoría
de la gente pudiera pensar, ya que se cree que los perros de raza son más
aceptados por la sociedad, es importante saber la frecuencia de las razas ya que
ésta también es un factor predisponente a ciertas enfermedades, lo cual es una
herramienta útil para un diagnóstico eficaz.
También se muestra la cantidad de cada raza que se hospitalizaron por algún
motivo, como lo muestra la tabla 23.
ÁREA DE HOSPITALIZACIÓN
HOSPITAL DE CANINOS
HOSPITAL DE INFECCIOSOS
HOSPITAL DE FELINOS
TOTAL DE PACIENTES HOSPITALIZADOS
Tabla 23. Registro de pacientes y
internados.
NUMERO DE PACIENTES
63
19
7
89
área de hospitalización a la que fueron
103
Gráfica 9. Pacientes hospitalizados por área de hospitalización durante el periodo
del 14 de mayo al 13 de julio de 2012.
MOTIVO DE HOSPITALIZACIÓN
PROCEDIMIENTO MÉDICO
PROCEDIMIENTO QUIRÚRGICO
TOTAL
NUMERO DE PACIENTES
51
38
89
Tabla 24. Registro de pacientes hospitalizados durante el periodo del 14 de mayo
al 13 de julio de 2012.
104
ÁREA DE MEDICINA
EXP
NOMBRE
ESPEC
IE
SEXO
EDAD
RAZA
APARATO
AA1107
ENANO
Canino
Macho
11
años
Criollo
Piel
AA1204
DAISY
Canino
Hembra
2
meses
Bull terrier
Medicina
preventiva
Vacuna Puppy
---
AA1205
SAMANT
Canino
Hembra
1 año 3
meses
Chihuahueño
Reproductor
PARTO DISTÓCICO
AA1207
BOLT
Canino
Macho
2.5
mese
Chihuahueño
Nervioso
ENFERMEDAD
NEUROMUSCULAR
NEOPLASIA EN
ESCÁPULA
IZQUIERDA
ENF NEUROMUSC
DIAGNÓSTICO
QUISTE SEROSO,
HIPOTIROIDISMO
AA1280
MOGIN
Canino
Hembra
5 años
Mestizo
Reproductor,
piel,
musculoesque
lético
AA1208
COFFEE
Canino
Macho
9 años
Bóxer
Nervioso
AA1212
BETHOVEEN
Canino
Macho
2
meses
San Bernardo
Medicina
preventiva
Vacuna Puppy
AA1215
COFFEE
Canino
Macho
9 años
Teckel
Tejidos
Blandos
HERNIA INGUINAL
AA1217
TIBO
Canino
Macho
4
meses
Golden
Retriever
Digestivo
GIARDIASIS
AA1228
POPPY
Canino
Hembra
1 año
Mestizo
Medicina
Preventiva
OSH
AA1230
PARIS
Canino
Hembra
6 años
Chihuahueño
Reproductor
Medicina
Preventiva
Desparasitacion
Digestivo
AA1235
JUNIOR
Canino
Macho
3 años
Cocker
Spaniel
AA1239
CAMILA
Canino
Hembra
6 años
Cocker
Spaniel
DIAGNÓSTICO DE
GESTACIÓN
PROCTITIS
POLIPOIDE ACTIVA
CRÓNICA
105
AA1253
WILLY
Canino
Macho
8
meses
Golden
Retriever
Piel
MORDEDURAS POR
CONGENERE
AA1300
ESTRELLA
Canino
Hembra
7
meses
Pastor
Australiano
Nervioso
DISTEMPER
CANINO
AA1305
BRUNO
Canino
Macho
1 año 1
mes
Yorkshire
Terrier
Digestivo
PARVOVIROSIS
AA1308
LAKESH
Canino
Macho
11
meses
Cocker
Spaniel
Ojo
PROLAPSO
GLÁNDULA
HARDER
Labrador
Digestivo, Ojo,
Piel
ENF.
PERIODONTAL,
CATARATA,
DERMATITIS ACRAL
AA1316
ZUCCA
Canino
Hembra
11
años
AA1323
PALOMA
Canino
Hembra
3
meses
Pit Bull Terrier
Digestivo
GASTROENTERITIS
AA0893
MAX
Canino
Macho
2 años
Mestizo
Dermatológico
DERMATITIS
ATÓPICA
AA1030
CHOCOLATITO
Felino
Macho
1 mes
Europeo
Doméstico
Digestivo
GASTROENTERITIS
INFECCIOSA
PARASITARIA
AA1163
CHAPET
Canino
Hembra
10
años
Beagle
Digestivo
COLITIS
AA0218
GUAPO
Canino
Macho
4 años
Mestizo
Dermatológico
PIODERMA,
DERMATOFITOSIS
AA1201
WOLF
Canino
Macho
6
meses
Doberman
Pinscher
Dermatológico
DERMATOMICOSIS
Piel,
Endócrino,
LIPOMAS/
ENFERMEDAD
PERIODONTAL E2/
AA1109
FIGA
Canino
Hembra
8 años
Basset Hound
Digestivo
AA0667
AA1221
CHATO
XHALA
Canino
Canino
Macho
Hembra
5 años
2
meses
Schnauzer
Urológico
Pastor Belga
Mallinois
Medicina
Preventiva,
Vacuna
Puppy,
Desparasitación
HIPOTIROIDISMO
UROLITIASIS
106
AA1054
KIPPER
Canino
Macho
10
años
Labrador
Digestivo
INTOXICACIÓN POR
AINEs
AA1040
KABO
Canino
Macho
3 años
Poodle
Dermatológico
SARNA
DEMODÉCICA
AA1282
BULET
Canino
Macho
6 años
Bull Terrier
Inglés
Dermatológico
CARCINOMA DE
CÉLULAS
ESCAMOSAS
AA1261
BONIFACIO
Canino
Macho
2 años
Schnauzer
Digestivo
COLITIS
BACTERIANA
AA1004
TERRI
Canino
Macho
13
años
Golden
Retriever
Neurológico
DISTEMPER
CANINO
AA1043
APOLO
Canino
Macho
7
meses
Gran Danés
Músculo/
HIGROMA EN MTD
Esquelético
Pastor Alemán
Digestivo
ENTERITIS
INFECCIOSA
PARASITARIAGIARDIOSIS
AA1122
LUNA
Canino
Hembra
3
meses
AA1116
WILSON
Canino
Macho
2
meses
Beagle
Digestivo
PARVOVIROSIS
AA0984
JACKE
Canino
Macho
1 año
Labrador
Digestivo
CUERPO EXTRAÑO
EN INTESTINO
DELGADO
AA1007
SALPI
Canino
Hembra
11
años
Schnauzer
Oncología
MASTOCITOMA
GRADO I, FALANGE
MPI
Nervioso
SINDROME
VESTIBULAR
CENTRAL,
CONJUNTIVITIS
BACTERIANA
BILATERAL
AA1342
LANCE
Canino
Macho
13
años
Golden
Retriever
Tabla 25. Registro de pacientes de consulta a mi cargo durante el periodo
comprendido del 16 de julio al 14 de septiembre de 2012 dentro de las
instalaciones del Hospital de Pequeñas Especies de la FESC.
107
La mayoría de los pacientes que recibí a consulta durante mi rotación en el área
de medicina fueron 37caninos y tan sólo un paciente felino.
ESPECIE CANTIDAD
CANINOS
37
FELINOS
1
TOTAL
38
Tabla 26. Relación de pacientes atendidos en el área de medicina divididos por
especie.
RAZA
Mestizo
Bull Terrier Inglés
Chihuahueño
Bóxer
San Bernardo
Teckel
Golden Retriever
Cocker Spaniel
Pastor Australiano
Yorkshire Terrier
Labrador
Pit Bull Terrier
Beagle
Doberman Pinscher
Basset Hound
Schnauzer
Pastor Belga Mallinois
Poodle
Gran Danés
Pastor Alemán
TOTAL
CANTIDAD
5
2
3
1
1
1
4
3
1
1
3
1
2
1
1
3
1
1
1
1
37
Tabla 27. Razas de perros atendidos en el área de medicina durante el periodo del
16 de julio al 14 de septiembre de 2012.
108
Como se puede apreciar en la Gráfica 10, una vez más los perros mestizos o sin
raza definida son los más comunes en cuanto a preferencia de la gente, en
comparación con los perros de raza.
Gráfica 10. Razas de perros atendidos en el área de medicina.
SEXO
SEXO
MACHOS
HEMBRAS
TOTAL
CANTIDAD
25
13
38
Tabla 28. Pacientes atendidos en el área de medicina durante el periodo del 16
de julio al 14 de septiembre de 2012 divididos por sexo.
109
APARATO O SISTEMA CANTIDAD
DERMATOLÓGICO
10
ENDÓCRINO
2
MEDICINA PREVENTIVA
10
REPRODUCTOR
3
NERVIOSO
5
MUSCULOESQUELÉTICO
2
DIGESTIVO
14
OJO
2
RENAL
1
ONCOLOGÍA
2
TOTAL
51
Tabla 29. Aparatos o sistemas más afectados en pacientes atendidos del periodo
del 14 de mayo al 13 de julio de 2012.
Gráfica 11. Aparatos o sistemas más afectados en pacientes atendidos del periodo
del 14 de mayo al 13 de julio de 2012.
110
EDADES
EDAD
Mayores de un año
Menores de un año
Total de pacientes
CANTIDAD DE
PACIENTES
24
14
38
Tabla 30. Registro de edades de pacientes atendidos en el área de medicina del
periodo del 14 de mayo al 13 de julio de 2012.
En la tabla 30 se puede observar que la mayoría de los pacientes que recibí como
estudiante a cargo de los casos en el periodo del 14 de mayo al 13 de julio de
2012 fueron mayores de un año (63%), en la gráfica 12 se observa que la edad de
mayor frecuencia es al año de edad, y en cuanto a meses, la mayor frecuencia de
pacientes fue de dos meses de edad.
Gráfica 12. Edades de los pacientes atendidos en consulta (años).
111
Gráfica 13. Edades de los pacientes atendidos en consulta (meses).
DERMATOLOGÍA
PATOLOGÍA
CANTIDAD
QUISTE SEROSO
1
NEOPLASIA
1
PIODERMA
2
MORDEDURAS POR CONGENERE
1
DERMATITIS ALERGICA AL PIQUETE DE PULGA
1
DERMATITIS ATÓPICA
1
DERMATOFITOSIS
2
LIPOMAS
1
SARNA DEMODÉCICA
1
CARCINOMA DE CÉLULAS ESCAMOSAS
1
TOTAL
12
Tabla 31. Enfermedades dermatológicas en pacientes durante mi rotación en el
área de medicina, del periodo del16 de julio al 14 septiembre de 2012.
112
Grafica 14. Enfermedades dermatológicas en pacientes durante mi rotación en el
área de medicina, del periodo del16 de julio al 14 septiembre de 2012.
MEDICINA PREVENTIVA
En cuanto a medicina preventiva lo que más realicé fue desparasitaciones,
seguida de primovacunación a pacientes cachorros caninos.
MEDICINA PREVENTIVA
VACUNACIÓN
DESPARASITACIÓN
OOFOROSALPINGOHISTERECTOMÍA
TOTAL DE PACIENTES
CANTIDAD
4
5
1
10
Tabla 32. Registro de medidas preventivas realizadas a los pacientes durante mi
rotación en el área de medicina, del periodo del16 de julio al 14 septiembre de
2012.
113
Gráfica 15. Medidas preventivas realizadas a los pacientes durante mi rotación en
el área de medicina, del periodo del16 de julio al 14 septiembre de 2012.
DIGESTIVO
DIAGNÓSTICO
HERNIA INGUINAL
GASTROENTERITIS INFECCIOSA PARASITARIA (GIARDIASIS)
PROCTITIS POLIPOIDE ACTIVA CRÓNICA
GASTROENTERITIS INFECCIOSA VIRAL (PARVOVIROSIS CANINA)
ENFERMEDAD PERIODONTAL
COLITIS BACTERIANA
CUERPO EXTRAÑO EN INTESTINO DELGADO
INTOXICACION POR AINES
TOTAL DE PACIENTES
1
2
1
3
2
1
1
1
12
Tabla 33. Enfermedades digestivas diagnosticadas en pacientes durante mi
rotación en el área de medicina.
114
Gráfica 16. Enfermedades digestivas diagnosticadas en pacientes durante mi
rotación en el área de medicina.
En la gráfica 16 podemos observar que las pruebas complementarias para llegar a
un diagnóstico más utilizadas fueron Hemograma, Química sanguínea y ELISA.
PRUEBAS DIAGNÓSTICAS
HEMOGRAMA
QUÍMICA SANGUÍNEA
URIANÁLISIS
PUNCIÓN AGUJA FINA
ULTRASONIDO
COLONOSCOPÍA
COPROPARASITOSCÓPICO
PANEL DERMATOLÓGICO
BIOPSIA
RAYOS X
PERFIL TIROIDEO
ELECTROMIOGRAFÍA
ELISA
PRUEBA DE
FLUORESCEÍNA
CANTIDAD
7
7
5
2
3
1
4
5
1
3
2
1
7
2
Tabla 34. Pruebas diagnósticas más solicitadas durante mi rotación en el área de
medicina.
115
Gráfica 17. Pruebas diagnósticas más solicitadas durante mi rotación en el área de
medicina.
ÁREA DE LABORATORIO CLÍNICO
ESPECIE
CANINO
FELINO
CAPRINO
BOVINO
TORTUGA
EQUINO
HURÓN
TOTAL
CANTIDAD
233
19
3
1
1
5
1
263
Tabla 35. Registros de laboratorio por especie durante el periodo del 17 de
septiembre al 15 de noviembre de 2012.
116
SEXO DEL PACIENTE
SEXO
HEMBRA
MACHO
TOTAL
CANTIDAD
129
134
263
Tabla 36. Registros de laboratorio por sexo del paciente durante el periodo del 17
de septiembre al 15 de noviembre de 2012.
EDADES
EDAD
MENORES DE UN AÑO
MAYORES DE UN AÑO
SIN REGISTRO DE EDAD
TOTAL
NUMERO DE
REGISTROS
53
204
6
263
Tabla 37. Registros de laboratorio por edad del paciente durante el periodo del 17
de septiembre al 15 de noviembre de 2012.
Gráfica 18. Registros de edades (años) en estudios de laboratorio durante el
periodo del 17 de septiembre al 15 de noviembre de 2012.
117
Gráfica 19. Registros de edades (meses) en estudios de laboratorio durante el
periodo del 17 de septiembre al 15 de noviembre de 2012.
PRUEBA O ESTUDIO SOLICITADO
PRUEBA
HEMATOCRITO
PROTEÍNAS PLASMÁTICAS
HEMOGRAMA
QUÍMICA SANGUÍNEA
PERFIL RENAL
URIANÁLISIS
PUNCIÓN AGUJA FINA
EXÁMEN LÍQUIDOS
CITOLOGÍA VAGINAL
CULTIVO BACTERIANO Y ANTIBIOGRAMA
COPROPARASITOSCÓPICO
COPROLÓGICO
BIOPSIA
PANEL DERMATOLÓGICO
PRUEBA DE ACETATO
TRICOGRAFÍA
RASPADO CUTÁNEO
HISOPADO
AGLUTINACIÓN LEPTOSPIRAS
CANTIDAD
3
3
141
81
3
36
51
10
5
1
5
3
1
15
3
3
6
1
1
118
PRUEBA SUPRESIÓN DEXAMETASONA
IMPRONTA
TOTAL
1
2
375
Tabla 38. Estudios de laboratorio realizados en el periodo del 17 de septiembre al
15 de noviembre de 2012.
Gráfica 20.Estudios de laboratorio realizados en el periodo del 17 de septiembre al
15 de noviembre de 2012
119
ELISA
PARVOVIRUS CANINO
DISTEMPER CANINO
LEUCEMIA VIRAL FELINA/SIDA FELINO
BRUCELLA
PVC/CORONAVIRUS/GIARDIA
TOTAL
(PVC) PARVOVIRUS CANINO
CANTIDAD
9
12
9
5
1
36
Tabla 39. Estudios de ELISA realizados en el periodo del 17 de septiembre al 15
de noviembre de 2012
Gráfica 21. Estudios de ELISA realizados en el periodo del 17 de septiembre al 15
de noviembre de 2012.
120
IMAGENOLOGÍA
RAYOS X
ESPECIE
CANTIDAD
CANINOS
112
FELINOS
9
CONEJO
1
COCODRILO
1
TOTAL
123
Tabla 40. Registros de estudios radiográficos realizados durante el periodo del 16
de noviembre de 2012 al 15 de enero de 2013.
Gráfica 22. Registros de estudios radiográficos realizados durante el periodo del
16 de noviembre de 2012 al 15 de enero de 2013.
REGIÓN PROYECTADA
MIEMBRO TORÁCICO IZQUIERDO
COLUMNA
TÓRAX
MIEMBRO PELVICO DERECHO
ABDOMEN
FALANGES
MIEMBRO TORÁCICO DERECHO
CADERA
CUELLO
CANTIDAD
13
6
40
9
31
1
5
8
3
121
CARA
RODILLA
MIEMBRO PÉLVICO IZQUIERDO
CRANEO
TOTAL
1
1
8
4
130
Tabla 41. Registros de regiones anatómicas proyectadas solicitadas durante el
periodo del 16 de noviembre de 2012 al 15 de enero de 2013.
Gráfica 23.Regiones anatómicas proyectadas solicitadas durante el periodo del 16
de noviembre de 2012 al 15 de enero de 2013.
122
ULTRASONIDOS
ULTRASONIDOS
REALIZADOS
ABDOMEN
ABDOMEN
ABDOMEN
ABDOMEN
ABDOMEN
DIGESTIVO
RENAL
DIAGNÓSTICO DE
GESTACIÓN
HEPATICO
BAZO
5
4
5
2
3
Tabla 42. Estudios ultrasonográficos realizados durante el periodo del 16 de
noviembre de 2012 al 15 de enero de 2013.
Gráfica 24. Estudios ultrasonográficos realizados durante el periodo del 16 de
noviembre de 2012 al 15 de enero de 2013.
123
DISCUSIÓN
Durante la realización de mi servicio social titulación en el Hospital de Pequeñas
Especies de la FESC, efectuando diversas actividades a través de las diferentes
áreas que conforman el hospital
En el área de cirugía como se puede observar en la tabla 11, durante el periodo
del 15 de marzo al 11 de mayo de 2012, se realizaron 41 cirugías en total, donde
la mayoría de los pacientes eran caninos ocupando un 88% de las cirugías
realizadas (Gráfica1), con un total de 36 pacientes, esto es de relevancia, ya que
nos muestra la importancia de los caninos como mascotas, siendo la especie que
las personas eligen para este fin, los felinos ocupando el segundo lugar con 4
pacientes, siendo el 10% del total de las cirugías realizadas y solo a una mascota
no convencional, un conejo (Oryctolagus cuniculus) se le realizó un procedimiento
quirúrgico de ortopedia, .
De las 41 cirugías que se realizaron, la tabla 12 nos indica que la mayoría (51%)
fueron cirugías de tejidos blandos, realizándose 21 cirugías, 11 ortopedias y 7
cirugías de medicina preventiva, la tabla 13 nos muestra que la cantidad de cirugía
de medicina preventiva fueron: Ooforosalpingohisterectomías 4, limpiezas
dentales 4 y una orquiectomía; esto indica el interés por los propietarios por la
salud
de
sus
mascotas.
En
el
caso
de
las
cirugías
como
Ooforosalpingohisterectomías y orquiectomías la indicación primaria para la
realización
de
cirugía
reproductiva
es
limitar
la
reproducción.
La
Ooforosalpingohisterectomía de forma electiva se realiza comúnmente para
prevenir ciclos estrales y gestaciones no deseadas. Esto es de suma importancia,
pues indica que en la actualidad existe mayor interés y educación para evitar la
sobrepoblación de dicha especie.35 Los beneficios adicionales que brindan
incluyen la prevención de piómetra y neoplasias ováricas y uterinas. La incidencia
de tumores mamarios reduce dramáticamente cuando los animales son
esterilizados a corta edad. El riesgo de neoplasia mamaria es del 0.5% y 8% para
perras esterilizadas antes de su primer y segundo estro, respectivamente. La OSH
124
se realiza de manera terapéutica en casos de piómetra, distocias cáncer uterino u
ovárico, hiperplasia vaginal o prolapso.10, 35,39
Las razones más comunes para realizar la castración en perros es la prevención
de problemas de conducta inducidos por hormonas, gestaciones no deseadas y
tumores testiculares, los cuales ocurren en 29% de perros intactos, está indicada
en casos de testículos traumatizados torcidos o infectados y para prevención y
tratamiento de adenomas perianales, quistes prostáticos, prostatitis, hiperplasia
prostática benigna, abscesos prostáticos y alopecia asociada a hormonas
sexuales.35 En perros con hiperplasia prostática benigna, la próstata disminuye su
tamaño en un 50% después de la tercera semana después de la castración, los
signos clínicos se resuelven a los 2 o 3 meses. La resolución de adenomas
perianales se ha reportado en un 95% en perros después de la castración.
34
Como se puede observar en la Tabla 14 del total de las 21 cirugías realizadas de
tejidos blandos, el mayor número de estas se trataron de nodulectomías,
desbridación de abscesos, hernia inguinal (Tabla 15), en segundo lugar se
encuentran las cirugías relacionadas a aparato genitourinario.
En cuanto a las 11 cirugías ortopédicas que se realizaron, 3 de ellas corresponden
a osteosíntesis de fémur, en estos casos la reducción de la fractura se realizó por
medio de clavo intramedular. Es el método más accesible al médico veterinario, y
de bajo costo, que permite buenos resultados en general, el cual se ha
seleccionado como base para osteosíntesis en huesos largos dentro de la cirugía
ortopédica. Se menciona además que en pequeñas especies, el hueso que con
mayor frecuencia se fractura es el fémur. La mayoría de estas fracturas no
pueden ser tratadas mediante la reducción cerrada, debido a lo cual en ocasiones
se selecciona la reducción abierta. La fractura debe estabilizarse para permitir una
consolidación apropiada, los yesos o férulas no están recomendados para las
fracturas femorales, porque es difícil estabilizar adecuadamente al fémur con estos
métodos.30, 34,39
125
En segundo lugar de cirugías ortopédicas, se encuentra la sustitución
extracapsular de ligamento cruzado anterior de rodilla, con 2 procedimientos
quirúrgicos realizados. Estudios recientes sugieren que las razas caninas más
activas pueden estar predispuestas a la ruptura del LCA.
Las reconstrucciones extracapsulares comprenden la colocación de suturas afuera
de la articulación mediante orificios perforados en el fémur y/o tibia, comprenden la
colocación de suturas afuera de la articulación o redirección del ligamento
colateral lateral.34,39
En menor proporción se encuentra la osteosíntesis de fractura de maxilar, retiro de
clavo intramedular de miembro pelviano derecho, biopsia de hueso, osteosíntesis
de fractura de tibia y fíbula, colocación de placa iliaca en pelvis y amputación de
dedos IV y V, todas ellas con una intervención quirúrgica.
La tabla 17 nos muestra que del total de cirugías se realizaron más intervenciones
en hembras 59% que en machos 41% y como nos muestra la tabla 18, las razas
más comunes en intervenciones quirúrgicas fueron, Mestizos o perros sin raza (6
pacientes), Labrador y Bóxer (con 4 pacientes cada uno).
Durante mi rotación por el área de hospitalización que abarco del periodo del 14
de mayo al 13 julio del 2012, se hospitalizaron un total de 89 pacientes, de los
cuales el 92% se trataron de pacientes caninos, el 7% de pacientes felinos (6
pacientes) y un hurón (Mustela putorius furo), como podemos observar en la Tabla
19, de los 89 pacientes, el 58% fueron pacientes machos. Y la raza que con más
frecuencia se hospitalizó son los Mestizos o perros sin raza con un total de 15
pacientes, seguida de la raza Labrador que con un total de 7 pacientes fue la
segunda raza más común, les siguen razas como Golden Retriever, Schnauzer
(con 6 pacientes respectivamente), y razas como Bull Terrier Inglés y
Chihuahueño ambos con 5 pacientes fueron también comunes.
Durante este periodo la mayoría de los pacientes fueron llevados al hospital de
caninos en general, el 21% se hospitalizó en el área de infecciosos debido a una
enfermedad infectocontagiosa como Parvovirus canino, Distemper canino entre
126
otras, el motivo de hospitalización del total de los 89 pacientes fue 51
hospitalizados para realizarse algún procedimiento médico y 38 pacientes dado
que se les realizó un procedimiento quirúrgico.
A pesar de la introducción de nuevas vacunas, de la mejoría de su técnica y de
nuevas modalidades diagnósticas/terapéuticas introducidas en la medicina
veterinaria durante los últimos 15 años, la morbilidad asociada a las enfermedades
infecciosas entre los animales de compañía todavía representan un número
significativo de los animales remitidos a la consulta veterinaria. La complicación
más que la prevalencia de las enfermedades infecciosas, es el hecho de que los
organismos patógenos no son estáticos. El desarrollo de resistencia microbianas,
aparición de nuevas cepas de virus y el aumento de susceptibilidad a la
enfermedad infecciosa justifican la constante vigilancia de las infecciones clínicas
y subclínicas.25, 37
Durante la realización de mi rotación por el área de medicina estuve a cargo de 37
consultas, las cuales la mayoría fueron pacientes caninos 97% y sólo un paciente
felino. Lo que nos dice la preferencia de la población por mascotas caninas sobre
otras como felinos o incluso mascotas no convencionales como hurones, conejos,
tortugas etc.
En cuanto a los pacientes caninos que recibí la mayoría fueron pacientes sin raza
definida o mestizos, lo que demuestra que en la población canina la diversidad
genética que pueden traer estos pacientes, seguidos por razas como el Golden
Retriever, Schnauzer, Cocker Spaniel, Labrador y Chihuahueño. Esto también nos
muestra información relevante de la Historia Clínica, ya que muchos de los
padecimientos tienen predisposición genética. La mayoría de las consultas fueron
para pacientes machos (65%).Se tuvieron más consultas en pacientes mayores de
un año, siendo precisamente el año de edad la mayoría de consultas, en cuanto a
pacientes menores del año de edad, la mayor parte de los pacientes que
requirieron consulta, tenían dos meses de edad.
127
En cuanto al aparato o sistema afectado se tuvieron más consultas de digestivo en
segundo lugar dermatológico y consultas de medicina preventiva, y sólo una de
renal (urolitiasis).3, 33,37
Las enfermedades gastrointestinales agudas pueden ser controladas de acuerdo a
la semiología que se esté presentando. Las causas de estos problemas pueden
ser muy variadas e incluir a la dieta (mala calidad, digestibilidad, etc.), problemas
infecciosos como parasitarios, virales y bacterianos.12, 33
Las etiologías más frecuentes abarcan gastroenteritis infecciosas por parásitos
gastrointestinales especies tales como helmintos y protozoarios; causas víricas
como Parvovirus Canino, Coronavirus, Distemper Canino, intolerancia o alergia
alimentaria, cambios bruscos de dieta (diarrea de tipo osmótica). Los signos en
una enteritis infecciosa son variables y similares a los de una enteritis no
infecciosa; no existen signos patognomónicos indicativos de trastornos infecciosos
específicos. Dentro del manejo de los pacientes gastroentéricos, debemos de
incluir el control de los signos clínicos como el uso de terapia de fluidos,
analgésicos y antiespasmódicos, el uso de antimicrobianos, antiparasitarios y
cambios de dieta.5, 25
En cuanto problemas dermatológicos, 12 consultas las enfermedades que más se
presentaron fueron piodermas y dermatofitosis, otras enfermedades que se
presentaron fueron quiste seroso, lipomas, sarna demodécica, carcinoma de
células escamosas, se recibió una consulta en un canino con una neoplasia en
piel, el cual se le indicó al propietario la necesidad de realizar pruebas
complementarias para poder determinar el tipo de neoplasia del cual se trataba, a
lo que le propietario se rehusó a realizarle dichas pruebas que eran Punción con
aguja fina, principalmente por problemas económicos, no se realizaron las
pruebas, y no se pudo llegar al diagnóstico definitivo. Los tratamientos que se
manejan en dermatología van desde el control alimenticio, como tratamientos
sistémicos (antibióticos, corticoides como antipruriginosos y ácidos grasos omega
3-6, antimicóticos) y tópicos (baños con componentes restauradores de piel y
128
medicados con Amitraz, geles, ungüentos, pomadas como hidratantes y
estimulantes del sistema de defensa).1, 5,33
De las 51 consultas recibidas, 10 de estas fueron para medicina preventiva, en
especial desparasitaciones y vacunaciones, esto nos indica la preocupación por
los propietarios de que sus mascotas estén protegidos, ya que con estas medidas
se previenen enfermedades infecciosas, esto relacionado a las consultas que se
recibieron en cuanto a sistema digestivo, donde el 25% de estas se trataron de
gastroenteritis infecciosa de origen viral por Parvovirus canino en cachorros
promedio de dos meses de edad. Otra enfermedad común que se presentó fue
gastroenteritis infecciosa parasitaria por Giardia, ambas enfermedades se
previenen con una correcta vacunación y desparasitación, lo que trae beneficios
para los propietarios a largo plazo y trae más beneficios que costos.
Así mismo se recibieron dos pacientes con enfermedad periodontal progresiva,
enfermedad que puede provocar enfermedades incluso sistémicas. Para retardar
la recurrencia de placa y acumulación de cálculos se les hace a los propietarios la
recomendación del cepillado diario, y en su caso la indicación de la exfoliación
anual o semestral3, el mayor temor de muchos propietarios son las complicaciones
de la anestesia, pero si el procedimiento se efectúa apropiadamente las
complicaciones son mínimas.
Para
llegar
al
diagnóstico
de
las
enfermedades
se
recurrió
pruebas
complementarias donde el Hemograma, Química sanguínea y las pruebas de
ELISA fueron las principales, en segundo lugar pruebas como Urianálisis, Panel
Dermatológico (Raspado cutáneo, Tricografía, Prueba de acetato), fueron también
de importancia, este último debido al número de consultas dermatológicas.
Las pruebas que se realizaron solo una vez fueron la colonoscopía, biopsia y la
electromiografía, ésta última se contó con el apoyo del electromiógrafo del
laboratorio de Fisiología General de la FESC.
129
En el área de laboratorio clínico en el periodo del 17 de septiembre al 15 de
noviembre de 2012, se recibieron muestras de 263 pacientes, esto nos demuestra
la importancia de las pruebas de laboratorio en el diagnóstico, incluso en
mascotas no convencionales como el hurón (Mustela putorius furo) y tortuga.
La edad es un factor importante la mayoría de las muestras eran de pacientes
mayores de un año (Gráfica 18), donde la mayor cantidad de muestras eran de
pacientes de 3 y 8 años, en segundo lugar pacientes de 10 años, en tercer lugar
pacientes de dos años.
De los 263 pacientes se realizaron 375 estudios de laboratorio, en primer lugar
encontramos el hemograma con 141 estudios realizados, como lo mencionan
varios autores la biometría hemática es uno de los estudios realizados que con
más frecuencia se solicitan al laboratorio, tanto en los pacientes ambulatorios
como en los hospitalizados, así mismo es el primer examen al que se enfrenta el
clínico en la valoración diagnóstica de un paciente. Aunque se considera como un
solo examen de laboratorio, se valoran tres líneas celulares, cada una con
funciones diferentes entre sí, pero que comparten un origen común, la médula
ósea: eritrocitos, leucocitos y plaquetas. 25,36
Las bioquímicas sanguíneas se encuentran como el segundo estudio más
solicitado. El estudio de química sanguínea sirve para medir en el suero los
elementos disueltos. Que en condiciones normales deben mantenerse en un
rango determinado gracias a la homeostasis. Cualquier alteración en los valores
resultantes comparados con el rango normal corresponde a una alteración que
deberá ser identificada e interpretada.
La punciones o aspirados tisulares con aguja fina se encuentra como tercer
estudio más solicitado, esto es de importancia ya que indica que es aplicado en
forma activa como una herramienta de utilidad diagnóstica en medicina veterinaria,
el examen microscópico de un espécimen citológico es un método sencillo y de
costo eficiente en medicina veterinaria.19
130
Parte importante de las pruebas de diagnóstico son las pruebas de ELISA, ya que
son pruebas rápidas, donde se puede determinar si el animal tiene una
enfermedad infecciosa, como podemos observar en la tabla 39, se realizaron 36
estudios, donde la prueba más empleada fue la de Distemper canino, seguida de
Parvovirus canino y Leucemia Viral Felina/ SIDA felino.
En el periodo comprendido del 16 de noviembre de 2012 al 15 de enero de 2013,
en el área de Imagenología se recibieron 123 pacientes, a los cuales se les
realizaron 130 estudios radiográficos (Tabla 40).
El 91% de los pacientes fueron caninos (112 pacientes), 9 pacientes felinos (7%),
un paciente conejo (Oryctolagus cuniculus) y un paciente cocodrilo (Crocodylus
acutus).
Al obtener información acerca de cuál fue la región a la que más estudios
radiográficos se les realizaron, obtenemos información valiosa, en este periodo fue
tórax y en segundo lugar abdomen, esto nos orienta acerca de la casuística del
Hospital, en cuanto a las radiografías abdominales los pacientes son afectados del
aparato digestivo y como se puede apreciar en la Tabla 33, la mayoría de las
consultas son de trastornos digestivos, en cuanto a radiografías de tórax podría
deberse a problemas respiratorios o cardiacos.
Las enfermedades respiratorias constituyen un problema clínico, frecuente en la
práctica veterinaria de pequeños animales, de los problemas respiratorios en el
Hospital se encuentra más frecuente la Traqueobronquitis infecciosa. Respecto a
enfermedades cardiacas son relativamente frecuentes en perros y gatos, las más
diagnosticadas en el hospital, son Insuficiencia Cardiaca Congestiva Izquierda Y
Derecha.
Los beneficios que la sociedad obtiene con el funcionamiento del Hospital de
Pequeñas Especies de la FESC, son numerosas, ya que además de que se trata
de un Hospital con instalaciones y equipo de primer mundo, donde se realizan
todos los procesos necesarios para el cuidado y preservación de la salud animal, a
precios bastante accesibles para la comunidad que cuente con mascotas, además
131
de que se brindan asesorías sobre el cuidado de sus mascotas, preservando no
solo la salud animal, sino también la humana, ya que muchas enfermedades son
de tipo zoonóticas, es decir transmisibles al hombre, lo cual da un beneficio directo
a la comunidad.
CONCLUSIONES
Durante la realización de mi servicio social titulación en el HEMyCPE de la FESC,
a lo largo de un año, cumplí con los objetivos planteados, participe de forma activa
en todas las áreas del Hospital, donde pude llevar a la práctica conocimientos
adquiridos en la licenciatura, así como obtener nuevos, desarrollar mayor destreza
en el manejo, cuidado de los animales y realización de procedimientos médicos y
quirúrgicos; así como en la elaboración de exámenes físicos y métodos de
diagnóstico, desarrollar una gran cantidad de actividades que se llevan a cabo en
la práctica profesional, esto me ha motivado a seguir con mi desarrollo profesional
en el área de la clínica de pequeñas especies.
Siendo que a lo largo de los últimos años, se ha observado un incremento del
interés de las personas hacia la salud y bienestar de las mascotas, por tal motivo
el Médico Veterinario tiene la responsabilidad de mantenerse preparado
para
lograr el bienestar animal y social. La actividad hospitalaria en medicina veterinaria
cobra una gran importancia para la carrera, ya que los procedimientos realizados
en las distintas áreas son un potencial para el desarrollo de la capacitación en la
medicina de perros y gatos, debido a que forman parte de la profesionalización en
las pequeñas especies e integran parte de la medicina de vanguardia a nivel
mundial, más aun, porque son un pilar importante en la generación de
conocimiento en instituciones.
Mi estancia en el Hospital definitivamente cumplió todas mis expectativas; ya que
se me permitió desarrollar habilidades con las que no contaba, así mismo me
surgieron nuevos objetivos, ya que el dedicarse a las pequeñas especies requiere
132
de médicos altamente preparados y dedicados, un ejemplo de esto son los
médicos que laboran en el Hospital de Pequeñas Especies..
Me permitió adquirir nuevos conocimientos y complementar los obtenidos en la
licenciatura, esto gracias a que los médicos responsables en turno de las
diferentes áreas y el responsable del programa se encargaron de enriquecer mi
preparación y de acuerdo a su experiencia laboral y conocimientos, se me permitió
aportar mi opinión en los diferentes casos que se presentaron, esto con el único
objetivo de llegar a un diagnóstico y tratamiento correcto, mediante la integración
de todo lo aprendido.
El programa de Servicio Social Titulación me parece una excelente herramienta
para los estudiantes de Medicina Veterinaria que se quieran dedicar a las
pequeñas especies, es además una excelente opción de titulación porque te
brinda un panorama del desarrollo de la práctica médica en la vida profesional.
RECOMENDACIONES Y SUGERENCIAS
En un Hospital Veterinarios se tiene como principal objetivo el brindar atención
médica destinada a la prevención, curación o rehabilitación de las mascotas, que
por diversas razones encuentren comprometida su salud, y así reincorporarlas a
su función zootécnica.
Es por esto que recomiendo la capacitación de los integrantes de servicio social,
servicio social titulación y prácticas profesionales, ya que en las diferentes áreas,
se cuenta con equipo o aparatos, los cuales necesitan ser utilizados y manejados
de forma correcta para optimizar el manejo médico que se realiza.
Una molestia común por parte de los propietarios, es el prolongado tiempo de
consulta, por lo cual recomendaría aumentar el personal, tanto de académicos que
apoyan en las diferentes áreas, como los estudiantes que se encuentran
realizando servicio social, prácticas profesionales e incluso como voluntarios, para
133
poder optimizar tiempos, trabajando en equipo, para disminuir un poco la carga de
trabajo.
Se debe mejorar la comunicación y organización entre las diferentes áreas, para
brindar un mejor servicio a los clientes, ya que algunas veces entre los propios
compañeros no existe una buena coordinación acerca de las actividades que se
deben realizar en las áreas del hospital; así mismo considero que se debe unificar
criterios entre los médicos respecto a ciertos tratamientos y manejos médicos.
Referente al aspecto académico sugiero que se aumenten las clases, cursos y
asesorías dentro de las instalaciones del Hospital, ya que fueron una buena
herramienta durante la realización de mi servicio social titulación, y ayudó a
reforzar los conocimientos adquiridos en la licenciatura. También recomiendo que
se apoye a los alumnos mediante becas para la participación en cursos y
congresos veterinarios nacionales e internacionales, como incentivo para la
preparación del Médico Veterinario, así mismo se deberían aumentar los cursos
veterinarios y congresos dentro de las instalaciones, para dar mayor difusión al
Hospital de Pequeñas Especies de la FESC.
134
BIBLIOGRAFÍA
1. Aiden F. Manual de Dermatología en Pequeños Animales y exóticos. BSAVA.
Barcelona. 2013.
2. Anónimo. Instituciones económicas y sociales. La labor desarrollada en la Escuela
Nacional de Medicina Veterinaria en el año escolar de 1918. Revista Agrícola.
Tomo IV p: 131-134
3. Anónimo. La creación de la Escuela Nacional de Veterinaria, Revista Agrícola.
Tomo I.
4. Bonagura J. D. Terapéutica veterinaria de pequeños animales. XIII Edición. Mc
Graw-Hill Interamericana de España, S.A.V. Vol. I y II. 2001.
5. NOM -157 – SSA1. Protección y Seguridad Radiológica en el Diagnóstico Médico
con Rayos X. Diario Oficial de la Federación. México 1996.
6. Payró J. L, Gutiérrez C. A. Diplomado en Medicina, Cirugía y Zootecnia en Perros
y Gatos. Módulo 13 Unidad Zootécnica General. Primera edición. UNAM, México
1997.
7. Dunn J. K. Textbook of Small Animal Medicine. Ed. W. B. Saunders. U.K. 2000.
8. Fritsch R., Gerwing M. Ecografía de perros y gatos. Editorial Acribia. España.
9. Hoad J. Minor Veterinary Surgery A Handbook for Veterinary Nurses. First edition.
Elsevier. 2006.
10. Hudson, J. A. Abdominal Radiology for the Small Animal Practitioner. Ed. Teton
NewMedia. 2002.
11. Jack C. M., Watson P. M. Guía de medicina veterinaria canina y felina. 2ª.
Edición. Mc Graw-Hill. 2005.
12. Latimer K. S., Mahaffey E. A., Prasse K. W. Duncan & Prasse´s Patología Clínica
Veterinaria. 4ª edición. Editorial Multi-Médica. Barcelona. 2005.
13. Manteca, J. (2003): Etología Clínica Veterinaria del Perro y del Gato. Multimédica
Ediciones Veterinarias. 3ª Edición
14. Birchard, SJ. Sherdin, RG. Manual Clínico de Procedimientos en Pequeñas
Especies. Segunda edición. Ed. Mc Graw Hill, 2000.
15. Manzo RM. Examen Físico en Perros y Gatos. (Tesis de Licenciatura). Veracruz.
México.
16. Martínez HM., Lloréns P.P. Radiología veterinaria de pequeños animales 1° ed.
Madrid España: Interamericana Mc Graw – Hill. 1992.
135
17. Méndez AR. Principios de interpretación radiográfica. Tema 8 de la signatura de
Imagenología Veterinaria. Facultad de Medicina Veterinaria y Zootecnia UNAM
18. Meyer & Harvey. El Laboratorio En Medicina Veterinaria Interpretación y
Diagnóstico. Segunda Edición, Editorial Inter-Médica.
19. O’Brien RT. Thoracic Radiology for the Small Animal Practitioner. First edition.
Teton NewMedia. 2000.
20. Pedrosa CS, Gómez CR. Tratado de radiología clínica Vol.1. 2° ed. Madrid
España: Interamericana Mc Graw – Hill, 1997.
21. Radostits, O. M., I.G. Mayhew, D. M. Houston. Examen y Diagnóstico Clínico en
Veterinaria. Editorial Elsevier. Madrid 2002.
22. Ramsey IK. Manual de Enfermedades Infecciosas en Pequeños Animales. BSAVA.
Barcelona. 2013.
23. Román de Carlos A.M. Historia de la Medicina Veterinaria. Biblioteca FMVZUNAM. 1998
24. Rubin A., Carr A. P. Canine Internal Medicine Secrets. Editorial MOSBY Elsevier.
USA 2007.
25. Rubin IS., A. Carr. Canine Internal Medicine Secrets. Ed. Mosby. USA.2007
26. Schaer M. Medicina clínica del perro y el gato. Ed. Masson Elsevier.
Barcelona.2006.
27. Slatter, D. Manual de cirugía en pequeñas especies. Editorial McGraw Hill,
Interamericana 1997.
28. Tams TR. Handbook of small animal gastroenterology. 2a. Edición. Saunders.
2006.
29. Thrall D.E. Manual de radiodiagnóstico veterinario. 4° ed. Madrid España: Elsevier,
2003.
30. Tiller P.L., Smith W. K. La consulta veterinaria en 5 minutos canina y felina. 4ª
edición. Editorial Inter-Médica, Argentina, 2008.
31. Tista OC. Fundamentos de Cirugía. Fascículos de Cirugía. FMVZ-UNAM.
México.2002
32. Tobias, KM. Manual of Small Animal Soft Tissue Surgery. First edition. WileyBlackwell. USA. 2010.
33. Villers E, L. Blackwood. Manual de Diagnóstico de Laboratorio. Editorial BSAVA,
España, 2013.
136
34. W. Nelson, R. & Couto, G. Manual of Small Animal Internal Medicine. 2a edición.
Editorial Elsevier Mosby 2005.
35. Walker P. J. Aspectos Relevantes del Examen Físico en Perros (Canis familiaris).
(Tesis de licenciatura). Morelia Michoacán. México. Universidad Michoacana de
San Nicolás de Hidalgo. 2007.
36. Welch F. T. Cirugía En Pequeños Animales. Editorial Inter-Médica. Argentina 1999.
137
ANEXOS
FORMATO 1. Expediente clínico
138
139
140
141
FORMATO 2. Orden Clínica
142
Formato 3. Orden Terapéutica
143
Formato 4. Hoja de Progreso
144
Formato 5. Autorización de Hospitalización
145
Formato 6. Autorización para procedimientos quirúrgicos.
146
Formato 7. Calendario de Vacunación
147
Formato 8. Solicitud de Estudio de Radiográfico
148
Formato 9. Carta Técnica de Estudios Radiográficos
149
Formato 10. Solicitud de Estudio Ultrasonográfico
150
Formato 11. Hoja de Dermatología
151
Formato 12. Autorización de Servicio de Endoscopía
152
Formato 13. Solicitud de Estudio de Laboratorio
153
154
Formato 14. Resultados Estudios de Hemograma
155
Formato 15. Resultados Estudios de Urianálisis
156
Formato 16. Resultado de Bioquímica Sanguínea Perfil Básico emitido por Laboratorios
QUIMILABCO.VET
157
Formato 17. Solicitud de Estudio Histopatológico
158
Formato 18. Reporte Electrocardiográfico
159
MASTOCITOMA GRADO I EN UN PACIENTE CANINO DE ONCE AÑOS.
REPORTE DE CASO CLÍNICO
160
ÍNDICE DE CONTENIDO
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
INTRODUCCIÓN
INCIDENCIA
RESEÑA
ETIOLOGÍA
PRESENTACIÓN Y SIGNOS CLÍNICOS
ESTADIFICACIÓN
DIAGNÓSTICO
PRONÓSTICO
8.1Grado tumoral
8.2Márgenes quirúrgicos
8.3Residencia tumoral
8.4Tumores múltiples
8.5 Estadificación tumoral
8.6Medición de la proliferación tumoral
9. TRATAMIENTO
9.1 Tratamiento quirúrgico
9.2 Terapia radiante
9.3 Terapias locales
9.4 Nuevas terapias
9.5 Terapia auxiliar
9.6 Inmunoterapia
9.7 Tratamientos sistémicos
9.8 Quimioterapia
10. CASO CLÍNICO
a) Reseña
b) Motivo de Consulta
c) Historia Clínica
d) Examen Físico
e) Diagnósticos Diferenciales
f) Plan Diagnóstico
g) Plan Terapéutico
11. DISCUSIÓN
12. BIBLIOGRAFÍA
PÁGINA
163
165
165
165
166
168
169
174
175
177
178
178
179
180
181
182
183
184
184
185
186
187
188
190
191
192
192
193
195
195
197
207
209
161
ÍNDICE DE FIGURAS
PÁGINA
Figura 1. Representación esquemática de un mastocito……………………………..…….164
Figura 2. Acción de los mastocitos………………………………………………………...….164
Figura 3. Degranulación de mastocito……………………………………………………...…170
Figura 4. Paciente canino, hembra, Schnauzer, “SALPI”……………………………..……191
Figura 5. Nodulación en miembro posterior izquierdo………………………………………192
Figura 6. Nodulación de 6 cm de diámetro aproximadamente, a nivel de los metatarsos y
abarcando la articulación metatarsofalangeana……………………………………….…….194
Figura 7. Nodulación de 6 cm de diámetro aproximadamente, a nivel de los metatarsos y
abarcando la articulación metatarsofalangeana………………………………………...…...194
Figura 8. Toma radiográfica lateral de miembro posterior izquierdo……………………....196
Figura 9. Toma radiográfica dorso-plantar de miembro posterior izquierdo…………..….197
Figura 10. Estudio Citológico de la nodulación en miembro pelviano izquierdo 100X
(H&E)………...………………………………………………………………………………..….198
Figura 11. Citología de la nodulación. (100x, H&E)………………………………………....199
Figura 12. Estudio citológico de nodulación en parte ventral del cuello. (100x H&E)…..201
Figura 13. Estudio citológico “Quiste Epidermoide”, realizado 27 de abril de 2012. (100X
H&E)…………………………………………………………………………………………..…..201
Figura 14. Estudio radiográfico lateral de tórax…………………………………………...…203
Figura 15. Estudio radiográfico ventro-dorsal de tórax…………………………………..….204
Figura 16. Estudio ultrasonográfico (hígado)……………………………………….………..205
Figura 17. Estudio ultrasonográfico…………………………………………………….……..205
Figura 18. Lesiones circulares hipoecoicas en lóbulo hepático……………………….…..206
Figura 19. Inflamación de la mucosa del estómago asociado a síndrome paraneoplásico
del Mastocitoma…………………………………………………………………………….…..206
ÍNDICE DE TABLAS
PÁGINA
Tabla 1. Esquema de estadificación para los Tumores de Células Cebadas…………….109
Tabla 2. Esquema de graduación de Patnaik para los Mastocitomas…………………….176
Tabla 3. Criterio de clasificación del mastocitoma según la Organización Mundial de la
Salud…………………………………………………………………………………………..….180
Tabla 4. Esquema de tratamiento para Tumor de Células Cebadas en perros……….…182
162
1. INTRODUCCIÓN
Las células cebadas (“mastocitos”) normales derivan del tejido hematopoyético y
conectivo. Se encuentran a través de todo el cuerpo en residencia perivascular, de
manera particular en piel y tejido subcutáneo, parénquima pulmonar, conducto
digestivo e hígado, donde cumplen un rol integral en las reacciones alérgicas y
procesos inflamatorios. Las células cebadas se presentan en ocasiones en médula
ósea y casi nunca en la circulación sistémica.14
Las células cebadas juegan un papel importante en la iniciación de la respuesta
inmune, interviniendo en la migración y activación de neutrófilos, así como en
reacciones de hipersensibilidad. Las células cebadas maduras presentan gránulos
citoplasmáticos que contienen mediadores bioactivos. En su membrana, las
células cebadas maduras presentan inmunoglobulina E (IgE) que se encuentra
unida a un receptor de membrana. Cuando las IgE presenta uniones
entrecruzadas causan la liberación de mediadores bioactivos contenidos dentro de
los gránulos citoplasmáticos, que incluyen histamina, heparina, proteasas,
leukotrienos y citoquinas como factor de necrosis tumoral alfa (TNF-α) e
interleucinas (IL4, IL5 y IL6), induciendo un incremento de la permeabilidad
vascular, vasodilatación, espasmo muscular, prurito, anticoagulación y activación
de
eosinófilos
y
neutrófilos;
que
en
conjunto
causan
reacciones
de
hipersensibilidad localizadas y en casos severos reacciones de hipersensibilidad
sistémica con la resultante vasodilatación, estasis sanguínea y edema. La
histamina produce atracción quimiotáctica
de eosinófilos, los
cuales la
neutralizan.2, 9,14
163
Figura 1. Representación
esquemática de un mastocito. 24
Figura 2. Acción de los
mastocitos. 25
Tumor de células cebadas cutáneo
Considerando
su
comportamiento
biológico
impredecible,
se
prefiere
la
denominación “Tumores de Mastocitos” en lugar de “Mastocitoma” o “Sarcoma de
Mastocitos”, (MCT Masto Cella Tumor).23
164
2. INCIDENCIA
En los perros, el mastocitoma por lo común reside en el tejido cutáneo y
subcutáneo, son tumores comunes de la piel (16-21% de los tumores cutáneos).1,
2, 9, 14, 15,19.
En la mayoría de los casos son solitarios, pero cerca del 6% de los casos, la
distribución es múltiple.1, 2
3. RESEÑA
El Mastocitoma suele presentarse en perros gerontes (8.2 a los 10.5 años, edad
promedio 9 años), sin embargo, pueden afectarse perros de apenas 6 meses, sin
predilección sexual. 1, 2, 9, 14,19.
Se presenta más en razas Braquicefálicas como Bóxer, Staffordshire Bull Terrier,
Labrador, Golden Retriever, Weimeraner, Beagle, Schnauzer, Boston Terrier y
Shar-pei.9 14
El Bóxer, Ridgeback Rhodesian, Pug, Boston Terrier, Pitbull Terrier y Weimaraner
tienen riesgo aumentado (4 a 8 veces más riesgo que la población general), para
el desarrollo de Mastocitoma. El Bóxer, Pug y Weimaraner muestran mayor
tendencia al Mastocitoma múltiple que otras razas. Los Tumores de Células
Cebadas o Mastocitomas en razas derivadas del Bulldog, como Bóxer y Pug y tal
vez Golden Retriever, por lo usual son de menor grado microscópico (bien
diferenciados), que en otras razas. El Shar-Pei, sobre todo los ejemplares jóvenes
es escasamente diferenciado y de comportamiento biológico agresivo.1, 9
4. ETIOLOGÍA
La causa es desconocida; sin embargo pueden ser de importancia la
predisposición racial, la inflamación crónica y los virus.
Se tienen informes que los sitios de inflamación crónica en perros pueden dar
lugar a Mastocitomas.3
165
Alteraciones genéticas en la expresión del c-kit (receptor de membrana de células
precursoras),
capaz de provocar crecimiento de las células, y normalmente
expresado en células hematopoyéticas y células cebadas, se han visto en algunos
perros con Mastocitomas, y la expresión no regulada de c-kit puede contribuir al
desarrollo de Mastocitomas.10
Estudios recientes encontraron que las mutaciones en el protooncogen c-kit
pueden correlacionarse con un grado microscópico superior y posibilidades
abiertas para las estrategias terapéuticas. Las mutaciones del c-kit también se
pueden aprovechar para diferenciar entre Mastocitoma muy escasamente
diferenciado y la variedad no granulada del linfoma.8, 9,11
5. PRESENTACIÓN Y SIGNOS CLÍNICOS
En el perro es poco habitual identificar Mastocitoma sin afectación tegumentaria.
Los Mastocitomas son muy variables en apariencia, y su aspecto clínico no
permite predecir malignidad o comportamiento. El Mastocitoma es uno de los 5
tumores cutáneos principales, que aparecen como inocentes tumores de grasa, o
como verrugas de base ancha y gruesa; pueden simular a la mayoría de las
lesiones tegumentarias primarias y secundarias, incluyendo máculas, pápulas,
nódulos, tumores y costras.12,14
La mayoría de los Mastocitomas cutáneos se presentan como nódulos
intracutáneos, con un diámetro de 10 o más cm. Algunos causan ulceración de la
epidermis superpuesta; otros son nódulos eritematosos, elevados, solitarios
o
múltiples, con alopecia de la piel superpuesta. Suelen originarse en la dermis y
con frecuencia se extienden hacia el tejido subcutáneo y musculatura subyacente
(la extensión suele ser más frecuente con las neoplasias de crecimiento rápido).9
Los perros con Mastocitomas por lo común son evaluados debido a una
tumefacción difusa (edema e inflamación alrededor del tumor primario o su lesión
metastásica), eritema o magullamiento del área lesional. Estos episodios pueden
ser agudos, y ocurrir durante o brevemente después de la actividad física. Muchos
Mastocitomas se presentan con edema local asociado, prurito y hemorragia. 15, 21
166
Los Mastocitomas cutáneos bien diferenciados, tienden a ser de crecimiento lento,
alopécicos, son lesiones solitarias y puede estar presente por meses.18
Los Mastocitomas pobremente diferenciados, tienden a un rápido crecimiento,
ulcerados y son lesiones pruríticas, con lesiones satelitales pequeñas cercanas.
Puede haber evidencia de
linfadenopatopatía local u organomegalia en la
palpación abdominal.12
Algunos mastocitomas existen durante meses o años, antes de exhibir
diseminación acelerada; otros se comportan de forma agresiva desde el comienzo.
Aproximadamente el 30% son agresivos, rápidamente hacen metástasis a la piel
adyacente, al drenaje linfático y a órganos distantes, en particular hígado, bazo y
médula ósea.13, 15
Por lo común, los Mastocitomas residen en los miembros, la piel abdominal y
torácica. Son menos habituales alrededor del rabo y lomo. Algunos Mastocitomas
aparecen con rapidez en la cara, pies, axilas, que parecen picaduras de insectos.
Aproximadamente el 50% de los tumores se localizan en el tronco y perineo, 40%
en las extremidades y 10% en cabeza y región cervical. Alrededor del 6% de los
casos son mastocitomas múltiples.1, 3
Los Mastocitomas primarios pueden ocurrir en otros tejidos: conjuntiva, tejido
conectivo o tracto gastrointestinal. Los Mastocitomas no cutáneos son raros con
un comportamiento biológico diferente.6
Otra característica biológica de los Mastocitomas caninos es que pueden volverse
sistémicos, comportándose como una condición hematopoyética maligna. Estos
perros por lo usual tienen antecedentes de un Mastocitoma cutáneo que ha sido
escindido. La mayor parte de los pacientes con enfermedad de células cebadas
sistémica (ECCS) son evaluados debido a letargia, anorexia, vómito y pérdida
ponderal de peso, en asociación con esplenomegalia, hepatomegalia, palidez de
mucosas, anemia y en ocasiones, masas cutáneas detectables.15
Los signos clínicos reflejan la extensión sistémica de la enfermedad, así como la
presencia de signos desarrollados por la liberación de histamina, heparina y otras
167
sustancias vasoactivas. Algunos casos presentan signos gastrointestinales como
anorexia, náusea, vómito, diarrea, melena, dolor abdominal y anemia microcítica e
hipocrómica, causados por una hiperhistaminemia que estimula a los receptores
H2 de las células parietales en estómago, causando una hipersecreción de ácido
clorhídrico, además aumenta la motilidad gastrointestinal y la permeabilidad
capilar que provocan una trombosis intravascular con una ulceración de la mucosa
subsecuente. Otros desórdenes causados por la liberación de histamina, heparina
y otras sustancias vasoactivas son inflamación peritumoral, hemorragia local
prolongada y retraso de la cicatrización.16
Otros efectos sistémicos poco usuales incluyen colapso, hipotensión y dificultad
respiratoria.21
Los Mastocitomas tienen gránulos intracitoplasmáticos que contienen sustancias
vasoactivas (ejemplo proteasas, citocinas, heparina e histamina), estos gránulos
metacromáticos pueden degranular en ocasiones, debido a la manipulación
mecánica, durante el examen de estos tumores, que produce eritema y formación
de ronchas. Este fenómeno (signo de Darier) se ha observado en caninos y
felinos, y se considera de importancia diagnóstica. El mastocitoma puede crecer y
contraerse con celeridad.3,
El propietario puede comentar que el tumor se agranda de repente y luego
disminuye de tamaño, durante un periodo de casi 24 horas. Este antecedente
debería aumentar la sospecha de Mastocitoma.15
6. ESTADIFICACIÓN
Todos los perros con Mastocitoma deben ser estadificados para determinar el
alcance de su enfermedad. Esto es de especial importancia en los pacientes
donde se considera la cirugía agresiva, como amputación o terapia radiante. El
esquema de estadificación vigente.
168
ESTADIO
0
1
2
3
4
DESCRIPCIÓN
Neoplasia escindida en forma incompleta (a enfermedad
microscópica), sin afectación de ganglios linfáticos regionales.
Neoplasia confinada a la dermis sin afectación de linfonodos
regionales
Neoplasia confinada a la dermis con afectación de linfonodos
regionales.
Múltiples neoplasias dérmicas o grandes infiltrativas con
afectación de linfonodos regionales o sin ella.
Cualquier neoplasia con metástasis distantes o afectación
sistémica.
Tabla 1. Esquema de estadificación para los Tumores de Células Cebadas.
Ogilvie G.K.,
Moore A. S., Manejo del Paciente Canino Oncológico. Buenos Aires (Argentina). Intermédica, 2008, pp 815.
7. DIAGNÓSTICO
La apariencia clínica del Mastocitoma canino es muy variable, pero el examen
citológico de un aspirado de la neoplasia es un método sencillo y generalmente es
suficiente para realizar el diagnóstico previo a la cirugía. Los hallazgos citológicos
consisten en encontrar una población monomórfica de células redondas a
poligonales, con citoplasma rosa pálido y con la presencia de gránulos
intracitoplasmáticos azules o púrpuras (basofílicos), con manchas metacromáticas
con tinción de Hematoxilina y Eosina (Figura 3). Con frecuencia se encuentran
presentes eosinófilos y en ocasiones se puede observar la presencia de
fibroblastos, debido a la liberación de factores quimiotácticos contenidos en los
gránulos de las células cebadas.1, 12, 13,14
En algunos casos, cuando las tinciones tipo Diff-Quik son utilizadas, los gránulos
no son teñidos adecuadamente, esto es importante en ser considerado, ya que el
encontrar en un aspirado de un tumor cutáneo/subcutáneo la presencia de células
redondas sin gránulos, pero que tengan semejanza a células cebadas, es
recomendado realizar tinciones de Giemsa o Wright para evidenciar los gránulos y
establecer el diagnóstico. Además en el caso de mastocitomas pobremente
diferenciados pueden presentar pocos gránulos pequeños pobremente teñidos o
incluso, no presentarlos.13, 14
169
El diagnóstico de los Mastocitomas a menudo se establece con la citología de la
aspiración con aguja fina, pero la biopsia escisional es necesaria para la
graduación microscópica exacta. La ACAF (Aspiración Citológica con Aguja Fina),
no reemplaza a la Histopatología cuando se trata de predecir el comportamiento
biológico. La graduación histopatológica se ha correlacionado con la recurrencia y
sobrevida.
Figura 3. Degranulación de mastocito (H&E, 100X)
Morris J., Dobson J. Small Animal Oncology. Primera edición. Blackwell Science. USA. 2001
Los nódulos linfáticos regionales deben de ser evaluados cuidadosamente y ser
aspirados en el caso de ser palpables (aunque se consideren de tamaño normal).
Debido a que es normal la presencia ocasional de células cebadas en nódulos
linfáticos normales o reactivos, se debe de tener cautela en la determinación de
metástasis; generalmente las células cebadas malignas en los nódulos linfáticos
tienden a presentarse en agregados y no como células únicas aisladas. Si existe
la sospecha de metástasis, es recomendable remover quirúrgicamente el nódulo
linfático en cuestión para ser evaluado histopatológicamente.1, 5,17
Estos tumores pueden elaborar sustancias bioactivas que desencadenan edema,
eritema o magullamiento del área afectada. La ulceración gastrointestinal también
puede ocurrir como resultado de la hiperhistaminemia (aproximadamente el 80%
170
de los perros sacrificados debido a mastocitomas avanzados tienen ulceración
gastroduodenal). En consecuencia, todo paciente canino con Mastocitoma debería
ser estudiado por sangre oculta fecal. El sangrado intra y posoperatorio profuso y
el retardo cicatrizal se verifican en algunos casos como una consecuencia de las
sustancias bioactivas liberadas desde las células cebadas5, 14, 17,22
Para establecer el estadio de un paciente canino con Mastocitoma cutáneo, se
debe considerar lo siguiente:
Historia clínica, exploración física, citología tumoral y de médula ósea y
radiografías.14
 HISTORIA CLÍNICA
Permite saber durante cuánto tiempo ha estado presente la masa y la velocidad
con que ésta crece.
 EXPLORACIÓN FÍSICA
Una exploración física completa puede determinar la localización y el número de
neoplasmas y de los linfonodos de drenaje; además se debe realizar palpación
abdominal, radiología o ecografía para determinar si existe hepatoesplenomegalia.
Si se detecta linfadenopatía, hepatomegalia o esplenomegalia, deberá realizarse
un Aspirado Citológico con Aguja Fina del linfonodo o del órgano afectado, para
detectar tumores metastásicos o mastocitosis sistémica.23
 HEMOGRAMA COMPLETO:
Puede revelar anemia o desviación a la izquierda sugestivos de sangrado o
perforación gastrointestinal, respectivamente. Cualquiera de las dos puede ser el
resultado de la liberación de histamina crónica desde el Mastocitoma. En los
pacientes con mastocitosis sistémica es frecuente encontrar neutrofilia, que puede
resultar de la inflamación por el tumor primario, debido a la producción de citosinas
por los mastocitomas. En ocasiones también presentan eosinofilia y basofilia
171
periféricas, asociadas con la producción de IL5 generada por los mastocitos,
además de grandes cantidades de células cebadas circulantes.23
 ASPIRACIÓN DE LINFONODOS:
En presencia de linfadenopatía se indica la Aspiración Citológica con Aguja Fina
del linfonodo afectado. La presencia de acúmulos de células cebadas (y
eosinófilos) señala que el Mastocitoma ya no está confinado a la residencia
primaria. Las células cebadas pueden infiltrar un linfonodo regional en un perro
con mastocitoma, como respuesta inflamatoria frente al tumor; en consecuencia,
un resultado citológico sospechoso se debería confirmar con biopsia. 1, 5
 RADIOLOGÍA Y ULTRASONOGRAFÍA:
La esplenomegalia o hepatomegalia pueden indicar diseminación sistémica del
Mastocitoma. Se puede identificar linfadenopatía (especialmente en linfonodos
sublumbares para tumores perianales). Los aspirados pueden confirmar la
sospecha de metástasis. La enfermedad metastásica pulmonar es excepcional en
el mastocitoma. Un estudio ecográfico reciente demostró que si bien el hígado y
bazo
tenían
agrandamiento
subjetivo
mostraban
aumento
difuso
de
la
ecogenicidad y nódulos hipoecoicos, en presencia de Mastocitoma, ambos
órganos también presentaron infiltrados de células cebadas indetectables para la
ultrasonografía. Esto implica que la ecografía es de mayor utilidad para estadificar
perros con Mastocitoma, si se acompaña con histopatología o citología.
La enfermedad metastásica pulmonar del Mastocitoma cutáneo canino es rara en
extremo; en consecuencia la radiología torácica pocas veces resulta de utilidad
para la estadificación.4, 15
 ASPIRADOS DE MÉDULA ÓSEA
La presencia de más de 10 células cebadas/1000 células nucleadas, indica
diseminación sistémica del Mastocitoma. Puesto que las células cebadas pueden
estar acompañadas por eosinófilos, la presencia de eosinofilia medular debería
motivar una investigación profunda por mastocitos. En un estudio de 16 perros con
172
mastocitosis sistémica (ECCS), los aspirados de médula ósea resultaron
superiores a los extendidos de la capa flogística o sangre. 15,16
 ESTUDIOS MISCELÁNEOS:
En un estudio, 8 de 16 (50%) perros con enfermedad sistémica, tuvieron
manifestaciones clínicas generales. De estos 8 perros, se efectuaron 5 necropsias,
y 3 tuvieron ulceración gástrica (la histamina liberada por los Mastocitomas se fija
a los receptores H2 estimulando la secreción de ácido clorhídrico por las células
parietales, con la resultante ulceración y sangrado gastrointestinal). La prueba de
sangre oculta fecal puede ser de utilidad en pacientes con enfermedad de células
cebadas. En muchos casos, las heces pueden contener cantidades mínimas de
sangre
insuficientes
para
producir
melena.
La
evidencia
de
sangrado
gastrointestinal en el paciente con Mastocitoma es una indicación para el bloqueo
farmacológico de la hiperhistaminemia inducida por las células cebadas
(bloqueantes H2 como cimetidina, ranitidina, famotidina).16
 EXTENDIDOS DE LA CAPA FLOGÍSTICA:
Se debe tener cautela con la interpretación, porque la mastocitemia se ha
comunicado en una variedad de procesos inflamatorios agudos caninos. Por tal
motivo, algunos oncólogos creen en la actualidad que éste procedimiento, es de
mínimo valor en la estadificación del Mastocitoma canino. (Ya no se recomienda
como parte de la estadificación del Mastocitoma).3, 5,15
La mastocitosis sistémica se refiere a una enfermedad (ECCS) en la cual se
presentan dos o más de las siguientes características, sumadas al TCC cutáneo:
 Afección hepática o esplénica.
 Afección ganglionar distante.
 Médula ósea que contiene >10 células cebadas/1000 células nucleadas.
 Presencia de células cebadas en extendidos de sangre o capa flogística (ya
no se le otorga especificidad para el Mastocitoma).
173
Estos hallazgos por sí solos no establecen el diagnóstico de mastocitosis
sistémica. En un estudio, los perros sanos tuvieron células cebadas en la citología
ganglionar de 11 sobre 46 ejemplares (25%), con una mediana de 5
mastocitos/preparado; en médula ósea se identificó un mastocito en 2 de 51
perros normales (5%), y no hubo células cebadas en 53 extendidos de la capa
flogística. En contraste cuando se categorizaron los perros con extendidos
positivos, (capa flogística), solo el 27% de aquellos con Mastocitoma tuvo más de
10 células cebadas/preparado (promedio: 71), comparando con el 76% de los
casos con enfermedad inflamatoria (promedio: 276). En más del 95% de las
ocasiones el frotis de capa flogística positivo no fue indicativo de Mastocitoma, en
consecuencia, este método no debe emplearse en la búsqueda de un
Mastocitoma oculto.14
8. PRONÓSTICO
La investigación clínica reciente condujo a la identificación de los factores
pronósticos para perros sometidos a cirugía y radioterapia, y modificó el
pensamiento acerca de conceptos previamente bien aceptados. En un estudio, los
machos tuvieron el peor pronóstico luego de la quimioterapia para el Mastocitoma,
y en otra serie, los perros con más de 8 años tuvieron casi 3 veces mayor
probabilidad de morir por su enfermedad luego del tratamiento para el
Mastocitoma. Los perros con tumores que crecen a un ritmo mayor de
1cm/semana tuvieron el peor pronóstico en un estudio preliminar de animales
tratados sólo con cirugía.13, 14
Las metástasis a los linfonodos regionales son comunes, aunque en ocasiones un
tumor "salta" el linfonodo satélite y hace metástasis en el segundo o tercer
linfonodo regional, por ejemplo, un Mastocitoma digital se disemina hasta un
linfonodo ilíaco o sublumbar, parece ser que los Mastocitomas en ciertas
residencias anatómicas son más agresivos que los tumores en otras regiones, por
ejemplo, los Mastocitomas distales, perineales, inguinales y extracutáneos (por
ejemplo, orofaríngeos, intranasales) parecen tener un mayor potencial metastásico
174
que las masas de grado similar en otras ubicaciones (por ejemplo, tronco,
cuello).14
8.1 Grado tumoral
El grado microscópico desde hace tiempo ha sido considerado el factor pronóstico
más importante para el paciente canino con Mastocitoma cutáneo. Si bien la
graduación se puede establecer sobre especímenes citológicos, la histopatología
continúa siendo el método más confiable para graduar un Mastocitoma canino.
A pesar de que el grado histológico es muy importante y en la actualidad es el
factor de mayor consistencia y confiabilidad para establecer el pronóstico en la
mayoría de los mastocitomas.5, 9
En un estudio preliminar de 300 perros en los cuales el Mastocitoma había sido
resecado con “bordes limpios a simple vista”, la recurrencia fue del 25% para los
tumores bien diferenciados (grado I). Este porcentaje aumentaba hasta el 44%
para los moderadamente diferenciados (grado II) y 76% para los indiferenciados
(anaplásicos; grado 3). El tiempo de supervivencia también demostró depender del
grado; el 6% de los perros con tumores de grado 3, 45% con grado 2 y 93% con
grado 1, sobrevivieron 4 años luego de la escisión quirúrgica.17,18
Estudios recientes utilizando procedimientos quirúrgicos más agresivos e
histopatología para examinar los bordes (más que la impresión clínica del cirujano)
demostraron que los perros con Mastocitoma grado 2 tuvieron una tasa de
recurrencia local mucho menor y tiempo de supervivencia más prolongado. No
obstante. La graduación todavía es un factor pronóstico importante. En un estudio,
los tumores grado 3, tuvieron mayor probabilidad de ser resecados en forma
incompleta y hacer metástasis. En otro informe, los tumores grado 3 tuvieron 4
veces más probabilidad de causar muerte que aquellos grados más bajos. En un
tercer estudio, el intervalo libre de enfermedad fue significativamente menor en
perros con Mastocitoma de grado 3. Otro estudio británico de 280 perros con
Mastocitoma, encontró que solo el 18% fue de grado 3, pero la sobrevida mediana
para este grupo fue <10 meses; la sobrevida mediana para perros con tumores de
175
grados 1 o 2 fue >3,5 años. El crecimiento tumoral fue más probable en perros
con tumores de grado 3 (19%) que en aquellos con grados 2 (6%) o 1 (1%). 15
El esquema de Paitnak para la graduación de Mastocitomas es el sistema más
utilizado y es el siguiente
GRADO
1
2
3
DESCRIPCIÓN
Mastocitoma confinado a dermis y espacios interfoliculares. Las
células son monomórficas con citoplasma amplio, límites definidos y
gránulos intracitoplasmáticos de tamaño medio. No hay mitosis, el
edema y necrosis son mínimos.
Mastocitoma que infiltra o sustituye tejido dérmico inferior o
subcutáneo. Las células son moderadamente pleomórficas, con
células fusiformes y gigantes esparcidas. En gran parte, el
citoplasma se distingue por gránulos finos y en ocasiones grandes,
en ocasiones grandes, aunque no siempre es definido por estos. Las
mitosis son raras (0-2 por campo de alto poder). Se presentan áreas
de edema y necrosis difusas.
Mastocitoma sustituye el tejido subcutáneo y profundo. Las células
son pleomórficas con muchas binucleadas. El citoplasma es
indefinido con gránulos finos o ausentes. Las mitosis son habituales
(3-6 por campo de alto poder). Son comunes la hemorragia, edema y
necrosis.
Tabla 2. Esquema de graduación de Patnaik para los Mastocitomas. Patnaik A. K., Ehler W.J,
MacEwen E.G. Canine Cutaneous Mast Cell Tumor: Morphologic Grading and Survival Time in 83 dogs. Vet. Pathol. 1984; 21:496-474.
Aproximadamente el 80 al 85% de los mastocitomas grado dos se consideran
curados con una escisión quirúrgica completa. Mientras que el aproximado 20%
restante tiene el potencial de causar metástasis a nódulos linfáticos regionales y
nódulos linfáticos y órganos distantes. Es por esto que existe un esfuerzo en poder
subclasificar esta categoría en grado 2-bajo y grado 2-alto utilizando otros
indicadores pronósticos, como marcadores proliferativos (Ki67, AgNOR, PCNA,
localización de c-kit, mutación de c-kit) e índices proliferativos como el Índice
Mitósico (IM) o Índice de Actividad Mitósica (IAM). Esto sugiere que es necesario
realizar modificaciones al actual sistema de clasificación histológica, donde se
176
subclasifiquen los mastocitomas de grado bajo y grado alto basándose en
marcadores e índices proliferativos.5, 8, 11,18
8.2 Márgenes Quirúrgicos
La entereza de la escisión quirúrgica (bordes “limpios” o “sucios”) es un factor
pronóstico significativo y también de importancia para determinar si se requiere
cirugía adicional o terapia radiante adyuvante. A menudo existe discrepancia entre
la valoración del cirujano sobre los bordes y los resultados de la histopatología. En
un estudios, 22 de 59 tumores que se consideraron resecados por completo,
resultaron en bordes cuestionables (10) o incompletos (12) sobre la base del
examen histopatológico.14, 18
Otro estudio definió tres niveles de escisión quirúrgica sobre la base de la
histopatología. Los tumores fueron seccionados en un plano y dos veces en un
plano perpendicular a la primera, para obtener al menos 4 márgenes laterales y 1
profundo. Este procedimiento probablemente sea muy importante para determinar
de un modo confiable la entereza de escisión quirúrgica. Los márgenes se
consideraron completos si había más de 1 mm de tejido normal alrededor de las
células tumorales, completos pero cercanos si eran < 1 mm, e incompletos si las
células cancerosas estaban en el margen. Otros investigadores consideraron a los
márgenes completos pero cercanos si el ancho era entre 1 y 10 mm. 14
En un estudio de 214 perros con bordes quirúrgicos examinados, hubo 23
recurrencias en el campo operatorio. Catorce de 83 perros (17%) con bordes
incompletos tuvieron recrecimiento tuvieron recrecimiento, comparados con 2 de
41 perros (5%) y de 3 de 90 (3%) con márgenes completos.15
Otro estudio indicó que algunos perros con escisiones incompletas tenían mayor
tendencia al desarrollo de la enfermedad metastásica. Debido a esta observación,
y como la recurrencia tumoral todavía es más frecuente luego de la escisión
quirúrgica incompleta, se deben lograr bordes limpios cuando sea factible, no
confiando en las resecciones marginales.14
177
8.3 Residencia Tumoral
En algunos estudios, los perros con neoplasias de las extremidades tuvieron un
tiempo de supervivencia y período libre de enfermedad más extensos, que
aquellos con TCC en el tronco, aunque no fue un hallazgo constante.15
Aunque a menudo se informaba que el Mastocitoma inguinal y perineal tenía
pronóstico malo, prescindiendo del grado microscópico, en forma reciente se
demostró que esta idea no siempre es verdadera. Si bien desde hace tiempo se
consideró que los Mastocitomas en tales lugares suelen ser más recurrentes que
aquellos en otras ubicaciones, la terapia local agresiva a menudo induce control a
largo plazo, sin diferencias en la tasa de recurrencias, o tiempo de supervivencia,
tiempo hasta la recurrencia, o tiempo de supervivencia comparado con los perros
que tienen Mastocitomas en otras residencias.15, 18
Los Mastocitomas que tienen una alta actividad metastática ganglionar regional
(60% de los evaluados) son los Mastocitomas del hocico.11
8.4 Tumores Múltiples
Si bien el esquema de estadificación incluye a los tumores múltiples como el
estadio más alto, su presencia no ha demostrado ser el peor factor pronóstico. En
un estudio que comparó 145 perros con Mastocitoma solitario y 50 perros con
Mastocitoma múltiple, no hubo diferencias significativas en el tiempo de
supervivencia entre ambos grupos. Las tasas de sobrevida al año fueron del 88 y
86% para estos grupos. A los 2 años de la cirugía, el 83% de los perros con
Mastocitoma solitario y el 86%de aquellos con Mastocitomas múltiples todavía
estaban vivos. Mientras que 8 perros con estadio 2 (Mastocitoma solitario con
metástasis ganglionar) tuvieron una sobrevida mediana de 431 días, aquellos con
estadio 3 Mastocitoma múltiple y estadio 1 Mastocitoma solitario no alcanzaron
una sobrevida mediana. Hallazgos preliminares similares fueron comunicados en
otra investigación. En apariencia, se debería corregir el esquema de estadificación
descrito para excluir el estadio 3.14
178
8.5 Estadio Tumoral
Puede ser que la presencia de metástasis sea un indicador más preciso de
pronóstico malo que el estadio, como se describiera. Tres estudios demostraron
que la presencia de metástasis al momento del diagnóstico, más que el estadio
clínico, fue el predictor de la escasa sobrevida; los perros con metástasis en
linfonodos tuvieron 8 veces más probabilidad de morir por el Mastocitoma en un
estudio, y el hallazgo de enfermedad metastática se correlacionó con 12 a 30
veces más probabilidad de muerte en otra serie.
Un problema potencial con la estadificación en que se pueden encontrar pequeñas
cantidades de células cebadas en circulación, bazo, hígado y medula ósea, de
modo que su importancia es incierta. En un estudio, la presencia de algunas
células cebadas en estos lugares no tuvo influencias sobre el tiempo de
supervivencia en perros con Mastocitoma de grado 2. Las células cebadas pueden
infiltrar un linfonodo regional en el paciente canino con mastocitoma, como
respuesta inflamatoria contra el tumor; en consecuencia, la citología sospechosa
se debería confirmar con histopatología.17, 21
La clasificación de Mastocitoma según la Organización Mundial de la Salud se
muestra en la Tabla 3:
ESTADIO CLÍNICO DEL MASTOCITOMA EN PERROS
GRADO
CARACTERÍSTICAS
0
Tumor solitario, incompleta escisión de la dermis
I
Tumor cutáneo solitario, sin metástasis a linfonodos regionales
II
Tumor cutáneo solitario, con metástasis que involucran
linfonodos regionales
Múltiples tumores cutáneos, tumores infiltrativos, con o sin
metástasis a linfonodos regionales
Estadios 0-III con metástasis distantes
III
IV
179
Sub estudio A
Sub estudio B
No hay signos de enfermedad sistémica, perro clínicamente
normal
Signos clínicos de enfermedad, perro clínicamente enfermo
Tabla 3. Criterio de clasificación del mastocitoma según la Organización Mundial
de la Salud. Dobson J. M., Duncan B., Manual of Canine and Feline Oncology. BSAVA. 2003
8.6 Medición de la Proliferación Tumoral
Las regiones organizadoras nucleolares argirofílicas (AgNOR) se presentan en el
núcleo, captan colorantes argénticos y son una medición indirecta de la
proliferación celular. El número promedio de AgNOR/célula se correlaciona bien
con el grado tumoral en especímenes de histopatología y citología, y parecer ser
un predictor independiente de la muerte relacionada con el tumor. En un estudio.
El recuento de AgNOR fue más alto en perros que experimentaron enfermedad
metastásica.17, 19, 21
Otro método para medir la proliferación celular, coloración para el antígeno nuclear
de células proliferativas (PCNA), también fue predictor de metástasis y escasa
sobrevida en perros con MCT cutáneo. La asociación entre PCNA y tiempo de
supervivencia fue menos evidente en otro informe. Los autores de una
investigación propusieron el uso de combinado del grado microscópico, AgNOR y
PCNA, para determinar el pronóstico exacto, no pudo ser establecido para el 20%
de los perros con Mastocitoma, destacando la heterogeneidad de esta
enfermedad.
Un tercer método para medir la proliferación celular, coloración para Ki67,
demostró buena correlación con el grado tumoral. El número promedio de células
Ki67-positivas fue significativamente superior en perros que fallecieron por
Mastocitoma. Por otra parte, cuando los perros con Mastocitoma de grado 2
fueron agrupados en función del Ki67, hubo correlación significativa con la
sobrevida posoperatoria.
Los perros con Mastocitoma que tuvieron un índice mitótico >10/10 campos de
alto poder (400 X) mostraron mayor probabilidad de fallecer por mastocitoma que
aquellos con menores puntajes.19, 20
180
El contenido de ADN de las células en los Mastocitomas resultó anormal en cerca
del 30% de los tumores. Se notó la tendencia a un menor tiempo de supervivencia
en los perros con contenido de ADN anormal.21
Estudios recientes encontraron que las mutaciones en el protooncogen c-kit
pueden asociarse con un grado microscópico superior. Los patrones de coloración
inmunohistoquímica para el c-kit tuvieron correlación con la recurrencia y
sobrevida en perros con Mastocitoma manejados con tratamiento quirúrgico solo.8,
11,14
Los niveles de la proenzima metaloproteinasa de matriz 9 (MMP-9) fueron más
altos en Mastocitoma de grado 3 que 2. Esto no resulta llamativo, porque las MMP
toman intervención en la invasión tumoral del tejido circundante. Todavía no se
comunica la correlación con el pronóstico.18
Las mutaciones en el gen supresor tumoral p53 se identificaron en casi el 50% de
los Mastocitomas cutáneos en un estudio, y fueron menos comunes en tumores de
grado 3. En otro estudio, las células con p53 mutado fueron más comunes en los
tumores de grado 3. Si bien uno de estos informes menciono la correlación con el
tiempo de supervivencia, la asociación no fue superior al vínculo entre grado y
sobrevida. El otro estudio no demostró asociación entre el p53 y la sobrevida. 2, 15,21
9. TRATAMIENTO
Se comunicó la regresión espontanea del Mastocitoma cutáneo múltiple en un
cachorro, pero este es un fenómeno excepcional. El control del Mastocitoma
canino consiste en el uso de cirugía, quimioterapia o terapia radiante, ya sea en
forma individual o combinada (Ver Tabla 4).1, 10
181
CLASIFICACIÓN OMS
GRADO PAITNAIK
I
I y II
I
III
II
I-III
III y IV
TRATAMIENTO
RECOMENDADO
Ablación quirúrgica
Completa: Observación
Incompleta:
ablación
más
amplia o radioterapia
Ablación quirúrgica
Completa: Prednisona*
Incompleta:
ablación
más
amplia y Prednisona*, o
Radiación más Prednisona*
Ablación quirúrgica
Completa: Prednisona*
Incompleta:
ablación
más
amplia y Prednisona*, o
Radiación y Prednisona* o
Prednisona* sola
Terapia local si es posible,
más alguno de los siguientes:
Prednisona*
Quimioterapia CVP†
Vincristina‡
*Prednisona: 1-2 mg/kg, vía oral (SID) por una semana, luego 0.5-1mg/kg, SID, por tres semanas, después
0.5-1mg/kg días alternos por tres semanas, después reducir la dosis a 50% cada tres semanas
†CVP: Ciclofosfamida 50 mg/m2 (1.6mg/kg), por vía oral, días alternos o cuatro días por semana; Vinblastina
2mg/m2 (0.06mg/kg), IV, una vez por semana; Prednisona, 20-40mg/m2 (1-2mg/kg), por vía oral, días
alternos.
‡Vincristina: 0.5 a 0.75mg/m2, IV cada semana
SID=Una vez al día
Tabla 4. Esquema de tratamiento para Tumor de Células Cebadas en perros.
Modificado de Dobson J. M., Duncan B., Manual of Canine and Feline Oncology. BSAVA. 2003
9.1 TRATAMIENTO QUIRÚRGICO
La escisión quirúrgica se indica si el Mastocitoma es solitario y no hay evidencia
de afección ganglionar o diseminación sistémica. La resección debe ser amplia y
profunda hasta un margen mínimo de 2-3 cm alrededor de los límites tumorales
observados, y en un plano fascial por debajo. Con esta modalidad agresiva, la
recurrencia para los grados 1 y 2 es mínima. Un estudio reciente evaluó la
entereza de la escisión quirúrgica en márgenes de 1, 2 y 3 cm desde los bordes
en Mastocitomas de grados 1 y 2. Todos los tumores grado 1 fueron escindidos a
1 cm de los bordes del Mastocitoma, pero sólo el 75% de los grados 2 tuvieron
escisión completa a la misma distancia. Todos los tumores grado 2 fueron
escindidos a 2 cm de los bordes lesionales, con lo cual los autores especularon
182
que puede ser factible la resección completa con estos márgenes más estrechos
que los regularmente recomendados.1, 14, 16,22
La escisión quirúrgica debe ser agresiva. Todo el tejido resecado debe ser
remitido a patología para determinar la entereza de la escisión quirúrgica. Si el
tumor es de grado 1 o 2 y la escisión es completa, no se requiere tratamiento
adicional. La extensión del tumor más allá de los bordes quirúrgicos, o el informe
de márgenes cercanos justifica una rápida escisión más amplia, si es posible. Una
segunda intervención quirúrgica debe incluir el campo previo más márgenes
laterales de 2-3 cm y tejido profundo adicional. Si esto no se puede llevar a cabo
por la ubicación lesional u otros factores, o si el Mastocitoma es de grado 3, se
indica terapia adicional. El paciente debe ser valorado por terapia radiante, si está
disponible. La quimioterapia puede ser considerada si se detectan metástasis o el
Mastocitoma es de grado 3.1, 14
9.2 Terapia Radiante
Los Mastocitomas son sensibles a los efectos de la terapia radiante, incluso en
dosis moderadas. En un estudio, el 44% de 23 perros tuvo respuestas
satisfactorias a la terapia radiante, con un control tumoral >12 meses y longevidad
promedio de 24 meses. Puede emplearse sola o combinada con otras
modalidades terapéuticas para tratar los mastocitomas extirpados en forma
incompleta o no extirpables. Dar una dosis total de 40 a 48 Gy en un periodo de
tres a cuatro semanas.
En otro estudio que empleó terapia radiante de rayo externo para tratar 95
Mastocitomas de 85 perros, se obtuvo una sobrevida mediana y tiempo mediano
libre de enfermedad de 63 y 17 meses, respectivamente; el 79% estaba libre de
enfermedad al año y el 77% a los 2 años. En esta serie el tiempo de supervivencia
fue menor en perros con grados más altos, y la recurrencia y sobrevida fueron
afectadas por la residencia tumoral. Los perros con neoplasias de los miembros
tuvieron mayor tiempo libre de enfermedad y supervivencia que aquellos con
tumor sobre el tronco. Los perros con tumores de grado 2 tuvieron un tiempo de
183
supervivencia más prolongado que aquellos con
Mastocitoma grado 3. Si es
necesario, irradiar los ganglios linfáticos regionales afectados.1, 14, 15, 16, 20,22
9.3 Terapias Locales
La inyección de agua des ionizada en el sitio de la resección quirúrgica incompleta
redujo la recurrencia local del tumor, comparando con la cirugía marginal sola.15
Para los TCC moderadamente diferenciados, examinados en un estudio, 7 de 27
tumores recurrieron en forma local luego de la inyección. Las inyecciones eran
dolorosas si se empleaban volúmenes sustanciales, y algunos perros necesitaron
sedación profunda o anestesia.
En contraste, un estudio demostró que los perros operados y tratados con agua
desionizada tenían mayor probabilidad de recurrencia, y que esta era más rápida
que en los animales sometidos a tratamiento quirúrgico solo.15
La inyección de agua desionizada no se recomienda en el tratamiento de
Mastocitomas. Las inyecciones intralesionales de Triamcinolona 1mg/cm de
diámetro tumoral cada 2 semanas, produjeron buen control paliativo local.
9.4 Nuevas Terapias
Las mutaciones en protooncogen c-kit, demostraron conducir a la fosforilación
constitutiva del producto génico, y se piensa que las mismas son importantes en el
desarrollo y progresión del Mastocitoma canino. No hay evidencia de asociación
racial con tales mutaciones. Las anormalidades en el c-kit son más comunes en
los tumores de grados 2 y 3, que en el Mastocitoma de grado 1, denotando un rol
en el comportamiento biológico de la enfermedad. En un estudio las mutaciones
fueron indicadas en más de un tercio de los perros con tumores de grados 2 o 3.1,
9,15
La importancia terapéutica de estos hallazgos es que los inhibidores de la cinasa
pueden ser de utilidad. El Mesilato de Imatinib causó remisiones clínicas en
pacientes humanos con similares mutaciones del c-kit, pero utilizado en perros
produjo morbilidad seria y mortalidad, limitando su utilidad clínica en los pacientes
veterinarios. 8,12
184
Los inhibidores de proteínas tirosina kinasa (TK), en específico inhibidores de Kit
han demostrado ser eficaces en el tratamiento de mastocitomas. Kit es un receptor
tirosina kinasa que se encuentra en células cebadas normales y neoplásicas,
además de encontrarse en otras células normales del organismo como las células
madre hematopoyéticas. El receptor Kit es específico para el ligando factor de
células madre (Stem Cell Factor; SCF) que al unirse a Kit, induce la transducción
de señal que promueve la diferenciación, sobrevivencia y función de las células
cebadas. Los mastocitomas además pueden presentar una sobreexpresión o
mutación de Kit (hasta un 30% de los mastocitomas presentan una mutación de
Kit) que lleva a la inducción de la señalización a través de Kit en ausencia de
SCF. Los fármacos orales para uso veterinario en perros que actualmente se
encuentran disponibles Estados Unidos de América son el Masitinib (Kinavet) es
un inhibidor principalmente de Kit y el receptor del factor de crecimiento derivado
de plaquetas (PDGF-R) y el Toceranib (Palladia) que es un inhibidor de Kit,
receptor del factor de crecimiento del endotelio vascular (VEGF-R) y PDGF-R, que
juegan un papel importante en la angiogénesis. Estudios recientes han
demostrado que el Toceranib presenta actividad biológica hasta en un 60% de los
casos de mastocitomas de grado histológico 2 y 3. La dosis recomendada de
toceranib en perros es de 2.75 mg/kg, vía oral, tres veces por semana y de
Masitinib 10 a 12.5 mg/kg, vía oral, cada 24 horas y es recomendado en ambos
casos, monitorear de manera cercana con hemograma, química sanguínea,
examen general de orina y si es indicado una relación proteína-creatinina en orina.
Con el uso de inhibidores de proteínas kinasa como únicos agentes o en
combinación con quimioterapia es esperado obtener un mejor control de los casos
de perros con mastocitoma.6, 9, 12,16
9.5 Tratamiento auxiliar
La farmacoterapia auxiliar es importante en el Mastocitoma canino. Los animales
con mastocitosis o Enfermedad de Células Cebadas Sistémica deben recibir
bloqueantes H2, porque la rápida desgranulación de los mastocitos neoplásicos
puede tomar lugar durante la intervención quirúrgica o quimioterapia. 3
185
La hiperhistaminemia sistémica también puede presentarse con la enfermedad
recurrente. El objetivo terapéutico es prevenir la ulceración gastrointestinal
asociada con los altos niveles de histamina, y tratar las ulceraciones ya presentes.
Esto tiende a ocurrir en perros con procesos extensos y sustanciales, recurrencia
de enfermedad cutánea o diseminación sistémica del Mastocitoma. La cimetidina
reduce la producción de ácido gástrico mediante la inhibición competitiva de la
acción de la histamina sobre sus receptores H2, en las células parietales. La
ranitidina y famotidina, bloqueantes H2, con menor frecuencia de administración,
pueden emplearse por efectos similares. El Omeprazol, que inhibe la producción
de ácido gástrico por las células parietales, mediante el bloqueo de la bomba de
protones, también puede ser utilizado. Los perros con evidencia de ulceración y
sangrado gastrointestinal se pueden beneficiar con sucralfato en dosis de 0,5-1 g,
cada 8 horas, vía oral. El sucralfato reacciona con el ácido estomacal formando
una sustancia pastosa, altamente condensada, viscosa, adhesiva, que se fija a la
superficie de las ulceraciones gástricas y duodenales. La barrera resultante
protege a la úlcera de las potenciales propiedades ulcerogénicas de la pepsina,
ácido y bilis, permitiendo su reparación. Los bloqueantes H1 como la
Difenhidramina, se deberían considerar junto con la cimetidina, antes y después
de la extracción del Mastocitoma, para prevenir los efectos negativos de la
liberación de histamina local sobre la fibroplasia y reparación de la herida. Un
bloqueante H1 de segunda generación, Loratadina, demostró ser muy efectivo
inhibiendo la liberación de histamina al bloquear la desgranulación de las células
cebadas caninas normales y, por lo tanto, puede ser una buena opción paliativa en
perros con Mastocitoma.13, 14, 16,21
9.6 Inmunoterapia
La recurrencia fue registrada en el 70% de los Mastocitomas luego de la inyección
de un inmunomodulador inespecífico (Corynebacterium parvum) en el sitio de la
escisión quirúrgica incompleta. Esta cantidad es coincidente con el comunicado
para perros tratados con cirugía sola. Asimismo, un paciente canino con
mastocitoma cutáneo múltiple tuvo control a largo plazo y regresión de las masas,
186
con
el
tratamiento
intralesional
de
otro
inmunomodulador
inespecífico
(Propionibacterium acnés; Inmunoregulin). Por lo tanto, existe suficiente
información para recomendar la inmunoterapia en esta enfermedad. 15
9.7 Terapia Sistémica
La enfermedad metastásica es más frecuente en perros con Mastocitoma de
grado 3 y en pacientes con resecciones incompletas de los tumores cutáneos.
Cuando los Mastocitomas hacen metástasis o se diseminan en forma sistémica,
las terapias localizadas (cirugía o terapia radiante), sólo son adecuadas, como
paliativos del malestar u obstrucción mecánico. Para estos pacientes se indica la
terapia sistémica.
Los glucocorticoides básicamente son paliativos, pero pueden suceder algunas
respuestas a largo plazo. La Prednisona (2 mg/kg, vía oral, una vez al día, durante
una semana, luego 0.5-1mg/kg, SID, por tres semanas, después 0.5-1mg/kg días
alternos por tres semanas, después reducir la dosis a 50% cada tres semanas), se
administra en tanto no haya progreso tumoral. Los perros libres de enfermedad
después de 6 meses tuvieron menor incidencia de recurrencia; en consecuencia,
la terapia suele suspenderse en ese momento.21
Se desconoce el mecanismo exacto de los efectos citotóxicos sobre los
mastocitomas, aunque el proceso puede ser paralelo a la actividad de los
glucocorticoides sobre los linfocitos (Los glucocorticoides disminuyen la cuenta de
linfocitos circulantes y el tamaño de los ganglios linfáticos, por que inhiben la
actividad mitótica linfocitaria. Al parecer, su acción primaria consiste en inhibir la
producción de interleucina por los linfocitos T, con lo que detiene de manera eficaz
la proliferación de los linfocitos).
Los receptores de glucocorticoides se encuentran en el citoplasma de las células
cebadas caninas; estos sitios podrían intervenir en la susceptibilidad de los
mastocitomas a los corticosteroides. No interesa el tipo de glucocorticoide
administrado, pero la aplicación intralesional puede ser más efectiva que la
administración sistémica. Pocos efectos colaterales cushingoides se observan con
los glucocorticoides de acción corta, como la Prednisona. La duración de la
187
remisión por lo usual es de 10 a 20 semanas. El único estudio controlado con el
uso de Prednisona para tratar perros con mastocitoma mensurable informó que 5
de 21 perros (24%) demostraron respuestas objetivas (1 completa 4 parciales). De
los 5 perros que respondieron, 2 tuvieron mastocitomas solitarios, 2 múltiples y 1
metástasis ganglionar regional.15
Aunque los receptores para progesterona y estrógenos fueron identificados en las
células tumorales de perros con mastocitoma, todavía se debe investigar el rol de
los esteroides sexuales en el tratamiento de la enfermedad.
Llamativamente, las proteínas de resistencia a multidrogas (Glucoproteína-p y
proteína asociada a resistencia multidrogas) fueron detectadas en el 25% de los
mastocitomas cutáneos caninos. Estas proteínas son importantes en la resistencia
de las células tumorales a los glucocorticoides y a gentes quimioterapéuticos,
como Doxorrubicina y Vincristina. Ambas proteínas faltaban en los tumores de
grado 3, lo cual es alentador, porque estos son los mastocitomas que con mayor
asiduidad requieren quimioterapia.6, 13
9.8 QUIMIOTERAPIA
Algunos artículos combinan los resultados de la quimioterapia
adyuvante
obtenidos con tumores de grados 2 y 3, de modo que es fácil interpretar a
información con claridad para los casos que tienen sólo enfermedad de grado 3.
Se han identificado varios agentes quimioterapéuticos con cierta eficacia objetiva
contra el Mastocitoma canino, incluyendo Vinblastina y CCNU (Lomustina). La
tasa de respuesta global para los protocolos que contienen estos agentes
quimioterapéuticos varía entre el 40 y 50%, aunque algunas de las respuestas son
de corta duración.1, 6, 10, 14
 VINBLASTINA (2mg/m2, IV, semanal) y la Prednisona fueron utilizadas
para tratar el TCC en una serie. La tasa de respuesta global en 15 perros
con enfermedad mensurable fue del 47% (7 de 15 casos); hubo 5
respuestas completas y 2 parciales. La duración de remisión mediana fue
de
5
meses.
En
un
protocolo
con
los
mismos
dos
agentes
188
quimioterapéuticos fue administrado en 15 perros con Mastocitomas
resecados en forma inadecuada, solo el 7%, (un caso) tuvo recurrencia
local, aunque éste y dos 2 más experimentaron nuevos tumores cutáneos.
Otros 25 perros tratados con Vinblastina y Prednisona, luego de la escisión
quirúrgica incompleta de Mastocitoma de grado 2, tuvieron una sobrevida
mediana de 24 meses. La vinblastina es mielosupresora y se deben hacer
hemogramas semanales antes de su administración en los intervalos entre
aplicaciones. 14, 15, 21
En otro estudio, la vinblastina (2-3 mg/m2 IV, cada 3 semanas) y
ciclofosfamida (250-300 mg/m2, vía oral durante 4 días, días 8 a 11, cada 3
semanas) se combinaron con prednisona (1mg/kg/día, vía oral). Todos los
pacientes tratados tenían metástasis ganglionares. La tasa de respuesta
global en 14 perros evaluados con enfermedad mensurable fue del 73% (11
de 15 casos). Todos tuvieron respuestas parciales, y la sobrevida mediana
para estos 11 casos fue de 6 meses (en un rango de 4 a 10 meses). 14, 15
 LOMUSTINA (CCNU) es un alquilante empleado para tratar neoplasias
hematopoyéticas en seres humanos. Se administró en 19 perros en dosis
de 90 mg/m2, vía oral, cada 4 semanas. Esta droga se puede combinar con
seguridad con prednisona. Si se emplea CCNU, el hemograma completo y
enzimología hepática, deben ser valorados antes de cada administración,
suspendiendo su aplicación si hay trombocitopenia o hiperactividad
enzimática hepática.15
 VINCRISTINA no demostró eficacia en el tratamiento de Mastocitoma. En
ese estudio, sólo 2 perros (7%) tuvieron remisiones parciales, y 9 (32%)
debieron suspender la terapia por la toxicidad gastrointestinal pronunciada.
La vincristina no forma parte de los agentes quimioterapéuticos de primera
línea para el tratamiento del Mastocitoma canino.6, 13, 21
189
 L-ASPARGINASA fue recomendada como droga activa en el tratamiento de
perros con TCC. En una serie, 3 de 6 perros con TCC cutáneo demostraron
respuestas objetivas, durante un intervalo breve de 1 a 2 meses. Uno de
otros dos perros demostró respuesta objetiva durante 6 meses. 6, 13, 15, 20
 DOXORRUBICINA y prednisona fueron empleadas en 9 perros con
enfermedad mensurable. No hubo respuesta en 7 perros que habían
recurrido luego de la quimioterapia combinada, y se nota una respuesta
parcial en el animal que no había sido tratado.
No se recomienda en el tratamiento del TCC canino.6, 15
190
10. PRESENTACIÓN DEL CASO CLÍNICO
a) RESEÑA
FECHA: 11 de abril de 2012
EXPEDIENTE: AA1007
ESPECIE: Canino
NOMBRE: “SALPI”
RAZA: Schnauzer
SEXO: Hembra
EDAD: 11 años
COLOR: Sal y pimienta
PESO: 6.3 kg
Figura 4. Paciente canino, hembra,
Schnauzer, “SALPI”
 MEDICINA PREVENTIVA: Calendario de vacunación y desparasitación
completo.
 HÁBITAT: Vive dentro de casa, 2 veces por semana sale a caminar,
convive con dos perros Cobrador de Labrador adultos.
 DIETA: Croquetas dos veces al día.
 Esterilizada hace 8 años
191
b) MOTIVO DE CONSULTA
Nodulación en Miembro pelviano izquierdo a nivel de los metatarsos, que ha ido
creciendo desde hace 20 días atrás.
Figura 5. Nodulación en miembro posterior izquierdo
c) HISTORIA CLÍNICA
Los dueños refieren que hace 20 días aproximadamente, comenzó a claudicar y
notaron el crecimiento de una nodulación en Miembro Pelviano Izquierdo, que se
fue inflamando, fue llevada con MVZ externo, el cual no les dio diagnóstico, ni
tratamiento.
Así mismo refieren que la claudicación en los últimos días ha sido intermitente. La
han notado triste y no quiere salir a caminar.
192
Posteriormente fue llevado al Hospital de Pequeñas Especies, donde al examen
físico se encontró lo siguiente:
d) EXAMEN FÍSICO
 Estado mental: Alerta
 Temperatura: 38.9°C
 Frecuencia cardiaca: 112 ppm
 Frecuencia respiratoria: 44 rpm
 Condición corporal: 2/5
 Normohidratado
 TLLC: 2 seg.
 Mucosas: Rosadas
Linfonodo poplíteo izquierdo aumentado de tamaño, 2:1 en relación con el
linfonodo poplíteo derecho.
A la auscultación se puede apreciar un Soplo 4/6, más audible en válvula mitral.
En miembro pelviano izquierdo se encuentra una nodulación de 6 cm de diámetro
aproximadamente a nivel de los metatarsos y abarcando la articulación
metatarsofalangeana, nodulación de consistencia firme, con bordes bien definidos,
no móvil, no se presenta dolor a la palpación, el miembro se apoya correctamente.
193
Figuras 6 y 7. Nodulación de 6 cm de diámetro aproximadamente, a nivel de los
metatarsos y abarcando la articulación metatarsofalangeana.
EXAMEN POR APARATOS Y SISTEMAS:
 Músculoesquelético:
Presenta anormalidad al caminar de tipo intermitente, la cual incrementa con el
ejercicio, en Miembro pelviano izquierdo.
 Sistema Tegumentario:
Presenta lesiones en piel, desde hace 3 años, sobre todo en el vientre, simétricas,
de presentación estacional, fue llevada con MVZ externo al Hospital de Pequeñas
Especies, el cual le diagnosticó Dermatitis por contacto y le recetó tratamiento (el
propietario no sabe cuál), mejoró con la medicación.
194
LISTA DE PROBLEMAS
1. Nodulación de 6 cm de diámetro, en MPI a nivel de metatarsos.
2. Depresión
3. Claudicación grado I de MPI
4. Linfonodo poplíteo izquierdo aumentado de tamaño
5. Soplo mitral 4/6
LISTA MAESTRA
I. Nodulación en MPI a nivel de metatarsos
II. Soplo 4/6
e) DIAGNÓSTICOS DIFERENCIALES
 Mastocitoma
 Carcinoma de células escamosas
 Linfoma cutáneo
DIAGNÓSTICO PRESUNTIVO
“MASTOCITOMA”
f) PLAN DIAGNÓSTICO
Debido a los hallazgos encontrados en el examen físico (nodulación en MPI,
linfadenopatía) y
a la historia clínica (rapidez de aparición, edad), se decide
realizar Aspiración con Aguja Fina de la nodulación.
Así mismo se realizó Estudio Radiográfico de Miembro Pelviano Izquierdo.
195
Figura 8. Toma radiográfica lateral de miembro posterior izquierdo.
En la imagen de arriba se observa en las adyacencias del tejido óseo la presencia
del tumor abarcando falange distal, media y proximal.
196
Figura 9. Toma radiográfica dorso-plantar de miembro posterior izquierdo.
En la imagen se observa una reacción perióstica en la falange V, además de
zonas de osteolisis inicial en diáfisis de la falange media del dedo V.
g) PLAN TERAPEUTICO
Se le administró Ranitidina (1ml) intralesional, y se le recetó Ranitidina suspensión
(2.2mg/kg) cada 6 horas, hasta nueva indicación y se citó a la paciente para el día
16 de abril para revisión y realización de Electrocardiograma y toma de muestras
para estudios de sangre Hemograma, Química sanguínea.
197
16 de abril de 2012
SUBJETIVO: La dueña refiere que a partir de la administración intralesional de
Ranitidina, y la realización de la Aspiración Citológica con Aguja Fina el día 13 de
abril del 2012, la nodulación se ha inflamado y ha aumentado su tamaño.
Al examen físico se encuentra que el linfonodo poplíteo izquierdo aumentó su
tamaño, respecto a la revisión realizada el día 13 de abril de 2012.
Se realiza la toma de muestra sanguínea para Hemograma y Química Sanguínea,
así mismo se realiza estudio Electrocardiográfico.
Los resultados de la citología diagnóstica realizada el 13 de abril indican que se
trata de MASTOCITOMA GRADO I (BIEN DIFERENCIADO)
Figura 10. Estudio Citológico de la nodulación en miembro pelviano izquierdo
100X (H&E)
198
Figura 11. Citología de la nodulación. (100x, H&E)
En la figura 10 y 11 se observa sobre un fondo proteináceo células redondas con
citoplasma
amplio
y
con
elevada
cantidad
de
gránulos
basofílicos
intracitoplasmáticos.
Debido a la rapidez del aumento de tamaño del linfonodo poplíteo izquierdo y a los
resultados de la citología se decide realizar cirugía de amputación de miembro
posterior izquierdo, considerando el tipo de neoplasia, y a su riesgo de metástasis
(15%).
Se continúa con tratamiento de Ranitidina (2.2mg/kg), PO, QID.
16 de abril de 2012
Lo resultados de los estudios de Hemograma indican trombocitosis ligera asociada
a hemorragia e hiperproteinemia asociada a hemoconcentración
En la química sanguínea los resultaron revelaron hipocreatininemia indicativa de
pérdida de masa muscular.
Hiperamilasemia ligera por disminución en la filtración glomerular.
CK ligeramente incrementada por lesión/catabolismo muscular.
199
Alteraciones proteicas asociadas a inflamación crónica (respuesta humoral).
Obteniendo los resultados de laboratorio se cita a la paciente para cirugía el día 19
de abril de 2012, indicándole los cuidados preoperatorios (paciente ayunado 12
horas y bañado).
19 de abril de 2012
Se presenta la paciente para cirugía, se autoriza la misma por los dueños; se le
realiza examen físico, donde se reporta mayor inflamación y crecimiento de la
nodulación en el miembro posterior izquierdo, la cual le produce malestar a la
paciente, así mismo se reporta prurito generalizado, el cual se sugiere puede
deberse a Dermatitis alérgica, la cual se le había diagnosticado con anterioridad
en un clínica veterinaria particular, y se procede a realizar la cirugía de amputación
de miembro posterior izquierdo, la cirugía se realizó con éxito y se hospitalizó a la
paciente y se mantuvo con tratamiento de: Terapia de fluidos, Enrofloxacina
(10mg/kg), IV, SID; Carprofeno (3mg/kg), SC, SID; Tramadol (gotas), PO, BID;
Compresas frías durante 15 minutos cada 6 horas.
Para el día 20 de abril de 2012 se mantuvo en hospitalización, se le realizó el
examen físico y se encontró deprimida y con dolor moderado, se decide dar de
alta al paciente, se continúa con el mismo tratamiento anterior en casa. Se cita
para el día 27 de abril para revisión.
27 de abril de 2012
En la revisión postquirúrgica la paciente presenta buena movilidad, orina y defeca
con normalidad y tiene buen apetito.
La herida quirúrgica no presenta secreción.
En la parte ventral del cuello se encuentra una tumoración de 0.2 cm de diámetro,
de consistencia firme, sin dolor a la palpación.
En la hoja de progreso se reporta que debido a su historial clínico (Mastocitoma
grado I en Miembro Posterior Izquierdo), la masa alojada en el cuello pudiera estar
relacionada con el mastocitoma, por lo que se decide tomar muestra citológica de
la nodulación.
200
30 de abril de 2012
Los resultados de la citología diagnóstica revelan que se trata de Quiste
epidermoide, a pesar de que este tipo de lesiones son de carácter benigno, es
conveniente su extirpación quirúrgica, ya que su ruptura generará una dermatitis a
cuerpo extraño severa. Se le informan de los resultados a los propietarios y se les
comunica de la necesidad de realizar la cirugía para extirpar el quiste epidermoide,
los dueños deciden que se realice la cirugía el día 03 de mayo de 2012.
Figura 12. Estudio citológico de nodulación en parte ventral del cuello. (100x H&E)
Figura 13. Estudio citológico “Quiste Epidermoide”, realizado 27 de abril de 2012.
(100X H&E)
201
En las figuras 12 y 13 se observan sobre un fondo eritrocítico, moderada cantidad
de material proteináceo laxo y gran cantidad de células escamosas, anucleadas,
queratinizadas y sin atípias, dispuestas en grandes grupos sobrepuestos.
03 de mayo de 2012
Se presenta la paciente con buen estado de ánimo, la dueña refiere que en el sitio
donde se realizó la Aspiración Citológica con Aguja Fina presentó secreción
purulenta, se continúa con el plan terapéutico, remoción quirúrgica del quiste
epidermoide. Ese mismo día se de alta a la paciente con tratamiento de
Amoxicilina PO, BID por 7 días y Meloxicam PO, SID durante 2 días.
26 de julio de 2012
La paciente se presenta de nuevo a consulta, debido a que ha presentado en los
últimos 4 días vómito, ha bajado de peso y se encuentra deprimida.
En el examen físico los linfonodos se encuentran normales, el peso de la paciente
es de 4.9 kg, en la palpación abdominal se encuentra distendido el abdomen, dolor
a la palpación en abdomen ventral craneal. Se le realiza Hemograma con carácter
de urgente, el cual los resultados fueron: Leucocitosis por neutrofilia y desviación a
la izquierda regenerativa. Inflamación severa focalizada. Trombocitosis leve por
hemorragia asociada a inflamación, hiperproteinemia asociada a inflamación.
Se le realizó estudios radiográficos de abdomen y tórax.
202
Figura 14. Estudio radiográfico lateral de tórax.
La interpretación del estudio radiográfico reportó:
Radiografía de abdomen-“se observa una estructura con densidad radiopaca en la
región ilíaca de aproximadamente 3 x 5 cm, incidentalmente se observan asas
intestinales dilatadas, y desplazamiento del colon en dirección ventral.”
203
Figura 15. Estudio radiográfico ventro-dorsal de tórax.
Radiografía de tórax- “De acuerdo al índice de Buchannan’s encontramos 11.5
cuerpos vertebrales, sugerente de cardiomegalia.”
Se realizó estudio complementario (ultrasonido abdominal)
204
Figura 16. Estudio ultrasonográfico (hígado)
Figura 17. Estudio ultrasonográfico.
205
Figura 18. Lesiones circulares hipoecoicas en lóbulo hepático
Figura 19. Inflamación de la mucosa del estómago asociado a síndrome
paraneoplásico del Mastocitoma.
206
En el reporte del estudio ultrasonográfico se reportó:
Se percibe una masa de ecogenicidad mixta con dimensiones de 2.7 x 5.7 cm y de
bordes lobulados en la cercanía de la bifurcación ilíaca. Además se encontraron 2
lesiones circulares hipoecoicas en lóbulo hepático con dimensiones de 1.5 y 2 cm
respectivamente.
Interpretación ultrasonográfica: Metástasis a linfonodo mesentérico y a hígado.
Debido al agravamiento de la salud de “Salpi”, los dueños deciden que se realice
la eutanasia de la paciente.
11.DISCUSIÓN
En el presente caso, el tumor diagnosticado en el miembro posterior izquierdo
involucraba un nódulo linfático regional, por lo tanto la metodología diagnóstica y
tratamiento
de
primera
desafortunadamente
por
intensión
razones
empleados
económicas
no
fueron
se
los
realizó
adecuados,
el
estudio
histopatológico para determinar mejor el pronóstico y sobrevida.
A pesar de que en la descripción citológica se trataba de un Mastocitoma Grado I
Bien diferenciado y que su localización en extremidad, (incidencia del 40%) 5, 9, es
de mejor pronóstico, porque en algunos estudios, los perros con neoplasias de las
extremidades tuvieron un tiempo de supervivencia y período libre de enfermedad
más extensos, que aquellos con TCC en el tronco. 9, 15
La decisión de una escisión quirúrgica completa de la extremidad fue adecuada,
ya que se trataba de un TCC solitario y la escisión quirúrgica debía ser agresiva,
debido a que la recurrencia para los grados 1 y 2 es mínima.13, 18
En los tumores de grado 1 o 2 si la escisión es completa, no se requiere
tratamiento adicional.13, 15
En la historia clínica se obtuvo un dato importante, donde la aparición y
crecimiento del tumor se desarrolló en un periodo corto de tiempo (20 días
207
aproximadamente), ya que como se ha podido observar en un estudio, los perros
con tumores que crecen a un ritmo mayor de 1cm/semana tuvieron el peor
pronóstico, en un estudio preliminar de animales tratados sólo con cirugía. 14, 17
No es posible establecer de manera exacta el pronóstico de todos los casos de
mastocitomas, todos éstos deberán considerarse potencialmente malignos ya que
pueden causar metástasis a nódulos linfáticos regionales y nódulos linfáticos y
órganos distantes, como: bazo,
hígado y médula ósea,
aunque
si ocurre
metástasis a un linfonodo está asociado a peor pronóstico.
Los perros con metástasis en linfonodos tuvieron 8 veces más probabilidad de
morir por el TCC en un estudio.15
El comportamiento biológico de los TCC caninos puede resumirse en una sola
palabra: Impredecible.13 Aproximadamente el 50% de los TCC son malignos, por
lo tanto la decisión del tratamiento terapéutico utilizado debe de ser de manera
individualizada, en cada caso, considerando múltiples factores que incluyen el
estado clínico, grado histológico, marcadores proliferativos y presencia de
mutación de Kit, presencia de factores pronósticos negativos, desarrollo de efectos
secundarios, posibles complicaciones, respuesta o falla a la terapia previa, costo y
disponibilidad del fármaco entre otros.20, 21
12.BIBLIOGRAFÍA
208
1. Argyle D.J., Brearley M.J. Turek M.M. Decision Making in Small Animal Oncology.
Primer edición. Wiley-Blackwell. USA.2008.
2. Ayl R. D., Couto C.G. Hammer A.S., et.al. Correlation of DNA Ploidy to Tumor
Histologic Grade, Clinical Variables, and Survival in dogs with Mast Cell Tumors.
Vet. Pathol. 1992; 29:386-390.
3. Birchard, SJ. Sherdin, RG. Manual Clínico de Procedimientos en Pequeñas
Especies. Segunda edición. Ed. Mc Graw Hill, 2000.
4. Book A. P., Fidel J., Wills T., et.al. Correlation of Ultrasound Findings, liver and
spleen cytology, and prognosis in the Clinical Staging of high metastatic risk canine
Mast Cell Tumors. Veterinary Radiology & Ultrasound 2011; Vol. 52, No. 5, 548554.
5. Cannas J.P., Schoning P. Canine mast cell tumors: a comparison of staining
techniques. J.Vet. Invest. 1994; 6:458-465.
6. Dobson J. M., Duncan B. Manual of Canine and Feline Oncology. Second edition.
England. 2003; 161-167
7. Elmslie R. E. Combination chemotherapy with and without surgery for dogs with
high grade mast cell tumors with regional lymph node metastases. Vet. Cancer Soc
Newsletter 1997; 20: 6-7.
8. Fujino T.Y., Fukushima Y., Watanabe K., et.al. Biological effect of tyrosine kinase
inhibitors on three canine mast cell tumor cell lines with various KIT statuses. J.Vet.
Pharmacol. Therap 2011; 35: 97-104.
9. Grabarevic Z., Spoljar J. B., Kurilj A. G., et.al. Mast Cell Tumor in Dogs-Incidence
and Histopathological Characterization. Coll, Antropol. 2009; 33:253-258.
10. Hahn K.A. Veterinary Oncology. Butterworth-Heinemann. USA. 2002.
11. London C.A., Galli S. J., Yuuki T., et.al. Spontaneous canine mast cell tumors
express tandem duplications in the proto-oncogene c-kit. Experimental Hematology
2009; 27:689-697.
12. Meuten D. J. Tumors in Domestic Animals. Iowa State Press. USA. 2002.
13. Morris J., Dobson J. Small Animal Oncology. Primera edición. Blackwell Science.
USA. 2001.
14. North S., Banks T. Introduction to Small Animal Oncology. Saunders Elsevier.
2009.
209
15. Ogilvie G.K., Moore A. S., Manejo del Paciente Canino Oncológico. Guía práctica
para la atención compasiva. Editorial Intermédica. Buenos Aires, Argentina 2008.
16. Ozaki K., Yamagami T., Nomura K., et.al. Mast Cell Tumors of Gastrointestinal
Tract in 39 dogs. Vet. Pathol. 2002; 39: 557-564.
17. Patnaik A. K., Ehler W.J, MacEwen E.G. Canine Cutaneous Mast Cell Tumor:
Morphologic Grading and Survival Time in 83 dogs. Vet. Pathol. 1984; 21:496-474.
18. Simoes J.P.C., Schoning P., Butine M. Prognosis of Canine Mast Cell Tumors: A
Comparison of Three Methods. Vet. Pathol. 1994; 31:637-647.
19. Strefezzi R. De F., Xavier J. G., Catao-Dias J. L. Morphometry of canine cutaneous
Mast Cell Tumors. Vet. Pathol 2003; 40: 268-275.
20. Strefezzi R. De F., Xavier J. G., Kleeb S. R., Catao-Dias J.L. Nuclear morphometry
in cytopathology: a prognosis indicator for canine cutaneous mast cell tumors. J.
Vet. Invest. 2009; 21: 821-825.
21. Tham D.H., Vail D.M. Withrow & MacEwen’s Small Animal Clinical Oncology.
Saunders Elsevier. USA. 2007.
22. Villalobos A.Kaplan.Canine and Feline Geriatric Oncology Honoring the HumanAnimal Bond. Blackwell Publishing. USA.2007.
23. W. Nelson, R. & Couto, G. Manual of Small Animal Internal Medicine. 4a edición.
Editorial Elsevier Mosby 2010.
24. http://www.ht.org.ar/histologia/NUEVAS%20UNIDADES/unidades/unidad3/
masto.htm
25. http://www.nature.com/nature/journal/v420/n6917/fig_tab/nature01324_F1.ht
ml
210