“VPH y CÁNCER DE CÉRVIX EN ASTURIAS” Dra. Cristina Pérez Menéndez Avilés, Octubre 2011 Introducción Cáncer de cuello uterino - Epidemiología 2º cáncer + común en mujer a nivel mundial. Causa principal de muerte a mediana edad en la mayoría de los países en desarrollo. Incidencia global: - 11,3/100.000 en países más desarrollados. - 18,7/100.000 en países en desarrollo. - 44,3/100.000 en África. 493.243 casos por año En Europa es el 7º cáncer más común entre las mujeres y el 3º entre aquellas con una edad comprendida entre los 15 y 44 años. Introducción Cáncer de cuello uterino- Epidemiología Incidencia en España: Mortalidad en España: 11º cáncer más común entre las mujeres. 15º cáncer por mortalidad. 2.103 casos por año 739 fallecen WHO/ICO Information Centre on HPV and Cervical Cancer (HPV Information Centre). Human Papillomavirus and Related Cancers in Spain. Summary Report 2010. Date accesed October 2011. Available at www.who.int/hpvcentre. Introducción Cáncer de cérvix en España Asturias Navarra Zaragoza Girona Incidencia Asturias año 2000: 11,6/100.000 Tarragona Mallorca Cuenca Albacete Periodo 1993-1997: Murcia Granada Islas Canarias Mallorca Tarragona Asturias Islas Canarias Murcia Girona Granada Zaragoza Albacete Navarra Cuenca 12.05 9.03 8.11 7.94 7.39 7.38 6.13 5.58 5.36 3.74 3.36 0 1 2 3 4 5 6 7 8 9 10 11 12 Introducción VPH y Cáncer cervical Estudios de epidemiología apoyados por técnicas moleculares, identificaron la infección por ciertos tipos de virus del papiloma humano (VPH) como “causa necesaria" para el desarrollo de cáncer cervical. Infección más frecuente de todas las enfermedades de transmisión sexual. Virus del papiloma humano inductor de la carcinogénesis. El cáncer cervical sólo se desarrollará si existe una presencia persistente del ADN de VPH. Introducción Virus del papiloma humano (VPH) Más 200 tipos ≠ 118 aislados y caracterizados. 40 tipos de VPH afectan al tracto genital. Clasificación Epidemiológica de los VPH ANOGENITALES: VPH AR 16, 18, 31, 33, 35, 39, 45, 51, 52, 56, 58, 59 VPH BR 6, 11, 40, 42, 43, 44, 54, 61, 70, 72, 81 y CP6108 VPH probable AR 26, 53, 66, 68, 73, 82 AR: Alto Riesgo; BR: Bajo Riesgo. . Datos de Muñoz N y cols. HPV in the etiology of human cancer. Vaccine 2006;24:1-10 Cáncer cervical VPH AR 95% casos 16 50%-60% 18 10-12% 45 5% 31 4% Introducción VPH: Estructura Familia Papillomaviridae Partículas víricas proteínicas sin envoltura Ø de 55-60nm Cápside viral de 72 capsómeros ordenados en icosaedro Introducción VPH: Estructura ADN de doble cadena circular de 7900 pb E1, E2, E4 y E5: Reproducción virus y contagiosidad. E6 y E7: Proceso de oncogénesis (“transformación”). Diferentes según los diferentes tipos virales. L1-L2: Proteínas mayor y menor de la cápside. Región de mayor conservación génica. Inmunogénicos. Vacunas profilácticas. LCR (Región no codificante): Elementos reguladores. Introducción Diagnóstico molecular del VPH ¿Por qué un diagnóstico molecular? Los modelos de cultivo in vitro son poco adecuados y costosos y los anticuerpos carecen de valor diagnóstico. Significado del genotipo en el pronóstico de la infección: Está demostrado que existen genotipos con una mayor capacidad de establecer lesiones crónicas y cáncer. ADN-VPH EN CÁNCER CERVICAL 30%-60% 75% 95% 99% SENSIBILIDAD - + SOUTHERN TESTS PARA LA DETECCIÓN DE ADN-VPH FISH TS.PCR; L1.PCR HC I GP.PCR HC II HC III realtime-PCR 1980 1990 2000 Bosch et al. J Clin Pathol 2002; 55: 244-65. Introducción Técnicas de detección de ADN de VPH Técnicas de Biología Molecular para la detección de ADN de VPH en muestras FFPE: -Hybridación in situ -PCR es la técnica molecular más sensible E2 E6 E7 E1 E5 L1 L2 E4 1 2 3 4 5 6 7 7,9 kb primers “degenerados” CGTCCMARRGGAWACTGATC MY09/11 PGMY GCMCAGGGWCATAAYAATGG GP5+/6+ AMPLICOR® ROCHE SPF10 450 bp 150 bp 170 bp 65 bp Introducción Técnicas de detección de ADN de VPH PCR Primers de consenso GP5+/6+ PGMY SPF10 MY09/11 primers específicos Hibridación reversa RFLP Array PCR en tiempo real Secuenciación Objetivo Objetivo Objetivo principal: o Comparar los resultados de dos sistemas de genotipado del ADN de VPH basados en PCR, para poder determinar cual presenta mayor sensibilidad y especificidad en el análisis de tejidos fijados en formol e incluidos en parafina (FFPE). Material y Métodos Metodología Diseño de la muestra: -Estudio retrospectivo de casos consecutivos de CCI, diagnosticados mediante biopsia desde Enero de 1998 hasta Diciembre del 2007. -Servicios de Anatomía Patológica de todas las Áreas Sanitarias de Asturias (8 Áreas): San Agustín de Avilés, HUCA, Jove, Cabueñes, Mieres, Riaño, Jarrio, Cangas de Narcea y Arriondas. -235 biopsias con diagnóstico histopatológico de CCI, fijadas en formol e incluidas en parafina. -Las Hematoxilinas fueron re-evaluadas. -Estudio aprobado por el Comité Ético del HUCA. Resultados y Discusión 1er Estudio de estas características en casos de CCI en Asturias: Nº Importante de muestras: 235 casos de CCI Técnicas de detección viral altamente sensible Marco Internacional de investigación: Retrospective International Survey of Human Papillomavirus Types in Cervical Cancer (RIS HPVTT). Material y Métodos Metodología SPF10-LiPA 25 PCR SYSTEM ( Versión 1; labo Biomedical Products, Rijswijk, The Netherlands). Técnica Sandwich Material y Métodos Metodología SPF10-LiPA 25 PCR SYSTEM ( Versión 1; labo Biomedical Products, Rijswijk, The Netherlands). Técnica Sandwich Material y Métodos Metodología SPF10-LiPA 25 PCR SYSTEM ( Versión 1; labo Biomedical Products, Rijswijk, The Netherlands). SPF10 PCR Técnica Sandwich Material y Métodos Metodología SPF10 PCR SPF10 Molijn A y cols. J Clin Virol 2005;32:43-51. Control positivo: Controles negativos: HeLA Parafina blanco Mix PCR sin muestra Lesión no dependiente de VPH Material y Métodos Metodología SPF10-LiPA 25 PCR SYSTEM ( Versión 1; labo Biomedical Products, Rijswijk, The Netherlands). Técnica Sandwich Enzyme Inmuno Assay DNADNA Enzyme Inmuno Assay -54 Genotipos VPH: AR, PAR,BR. -25 Genotipos VPH: AR, PAR, BR. -No diferencia VPH 68/73 - DO 450 LiPA25 LiPA 25 Material y Métodos Metodología SPF10-LiPA 25 PCR SYSTEM ( Versión 1; labo Biomedical Products, Rijswijk, The Netherlands). Técnica Sandwich -globina (-) y VPH(-) Muestras descartadas del estudio Material y Metodos Metodología PCR más hibridación en microarray - 35 genotipos de VPH : AR, PAR, BR. Biopsia Extracción de ADN AmplificaciónADN ADN Amplificación HibridaciónEspecífica Específica Hibridación MY09/11 Molijn A y cols. J Clin Virol 2005;32:43-51. Controles de calidad internos: Control de ADN de la muestra: gen humano CFTR de 892 pb Control de la reacción de la amplificación: Plásmido de 1200pb Interpretación Interpretación Resultados y Discusión Concordancia de la positividad a ADN de VPH Microarray LiPA Positivas Negativas Nº Total de muestras Concordancia de detección del VPH del 77,8%. Positivas 160* 6 166 Índice de Kappa: 0, 24 Negativas 43 12 55 Concordancia baja Nº Total de muestras 203 18 221 *3 casos MicroArray y LiPA positivos son : VPH 61 por Microarray. Diferencias estadísticamente significativas p <0,05 De las 221 muestras que conforman el estudio 160 resultaron positivas con ambas técnicas. Prevalencia del VPH para LiPA: Prevalencia del VPH para Microarray: (166/221) 91,9 % (203/221) 75,1 % Resultados y Discusión Concordancia de la positividad a ADN de VPH Las muestras fijadas en formol e incluidas en parafina pueden tener el ADN dañado1,2,3. Frecuencias de casos positivos de VPH relativamente bajos en estos tejidos al utilizar los cebadores consenso MY09/112,4 Amplifican segmentos relativamente largos en muestras con el ADN dañado. La eficacia de la PCR decrece con el incremento del tamaño del fragmento a amplificar, ya que la fijación en parafina dificulta una amplificación de secuencias mayores de 200pb 2,5 Las técnicas que amplifican pequeños fragmentos de ADN de VPH mayor sensibilidad con especímenes degradados menos resultados falsos negativos6. 1- Kleter B y cols.Am J Pathol 1998; 153:1731-9;2-Biedermann K y cols.J Clin Mirobiol 2004;42:3758-65;3-Greer C y cols.Clinical Pathol 1991;95:117-24; 4-Baay MFD y cols.J Clin Microbiol 1996;34:745-47;5- Karlsen F y cols.Lab Invest 1994:71-604-11.6- IARC Handbooks on cancer prevention,IARC Press; 2005. Resultados y Discusión Concordancia tipo específica Concordancia tipo específica en los casos positivos para al menos una técnica: Concordancia total N 88 % 42,1 Concordancia parcial 59 28,2 Discordante 62 29,7 Total 209 100,0 -”Concordancia total”: Ambas técnicas detectan el mismo/mismos tipos virales en una muestra determinada. -”Concordancia parcial”: La concordancia no es total, pero ambas técnicas detectan al menos un mismo tipo de virus -”Discordante”: Cuando los tipos detectados con cada técnica no coinciden. Resultados y Discusión Concordancia tipo específica DISCORDANTES (N=62) 43 6 N 16 5 4 4 3 2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 MICROARRAY LiPA negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo negativo 16 18 52 16 y 83 18y61 16 16 16 16 16 61 58 61 61 16 y 58 16y61 6y31 33y59 16 45 18 33 31 39 52 51 35 x 16y18 68o73 16y52 11y39 35,68o73 negativo negativo negativo negativo negativo 52 33 x 68o73 45 16 56 31 18,52y68o73 45 18 16 35 CONCORDANTES PARCIAL (N=59) N 10 5 5 4 3 2 2 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 1 MICROARRAY 16y61 16y18 16y58 16y84 16y53 11y16 16y33 16 16 16 16 16 16 18 45 11,16 16y33 16y35 16y35 16y39 16y45 16y45 16y51 16y59 16y66 18y58 33y58 35y58 33y58 45y61 58y66 11,16,81 16,58 y 61 11,18,58y61 18,33 y 61 LiPA 16 16 16 16 16 16 33 16y51 16y45 16y52 16y53 16y56 16y33 18y52 35y45 11,16 y35 16 16 35 39 16 45 16 59 16 18 33 35 58 16y45 16y58 16 16 18 16y33 Resultados y Discusión Concordancia tipo específica Se observan diferencias en los genotipos de VPH: - Diseño de los cebadores MY09/11 consenso degenerados amplifica amplio espectro de genotipos de VPH pero con varios niveles de sensibilidad entre ellos1, podría dar falsos negativos para ciertos tipos virales por su menor sensibilidad2. - Diseño de los cebadores SPF de determinados VPH3. consenso no degenerados más sensible en la detección Detectan fragmentos más pequeños de la región L1 viral, detección ultrasensible de un ancho espectro de genotipos VPH aunque tengan baja carga viral3,4. 1- Gravitt PE. y cols. J Clin Microbiol 2000;38:357-61; 2- Depuydt CE y cols. J Cell Mol Med 2007;11:881-91; 3- Kleter B y cols. Am J Pathol 1998; 153:1731-9; 4- Kleter B y cols. J Clin Mirobiol 1999; 37:2508-17; Resultados y Discusión Concordancia de detección de infecciones múltiples Microarray detecta un 35% de infecciones múltiples (58/166 muestras positivas por Microarray) LiPA detecta un 8,9% de infecciones múltiples (18/203 muestras positivas por LiPA) Índice de concordancia para la detección de infecciones simples o múltiples: se consideran sólo las muestras positivas para ambas técnicas (N=160). LiPA MICROARRAY Infección Simple Nº Total de Infección Múltiple muestras Infección Simple 95 9 104 Infección Múltiple 51* 5 56 Nº Total de muestras 146 14 160 *10 casos Microarray VPH 16 y 61- LiPA VPH 16 4 casos Microarray VPH 16 y 84- LiPA VPH 16 Concordancia 62,5% Índice de Kappa: 0,003 Concordancia insignificante Diferencia No significativa p › 0,05 Resultados y Discusión Concordancia de detección de infecciones múltiples 22 % de los muestras tanto precancerosas como frescas no parafinadas con Microarray1. 4.4% en parafinadas con SPF10 PCR-LiPA252 - Diseño de los cebadores MY09/11 consenso degenerados detecta amplio espectro de genotipos de VPH pero cadecen de alta especificidad en la detección de los mismos. Reacción cruzada de los cebadores3. Tras consultar la bibliografía se podría decir, que este es el primer gran estudio comparativo entre ambas técnicas para muestras parafinadas. -La dificultad de la realización de la técnica es similar para ambos métodos, siendo la interpretación de los resultados más sencilla con el Microarray. -El riesgo de contaminación es alto para ambas técnicas al estar basadas en PCR. 1- Gomez-Roman JJ y cols. APMIS 2009;117:22-7. 2- Kleter B y cols. J Clin Microbiol 1999;37:2508-17. 3- Gravitt PE. y cols. J Clin Microbiol 2000;38:357-61. Conclusiones Conclusiones En nuestras muestras de archivo, fijadas en formol e incluidas en parafina, se ha demostrado que la técnica LiPA tiene un 20% más de sensibilidad para la detección del ADN de VPH que la técnica basada en Microarays. El uso de la técnica basada en microarrays, con material parafinado, no aporta un grado de sensibilidad suficiente para considerarlo una técnica útil cuando se utiliza este tipo de material. Es posible que su menor sensibilidad sea debida a que los cebadores utilizados amplifiquen una región genómica demasiado larga al tratarse de muestras con el ADN probablemente dañado. La técnica basada en microarrays detecta un mayor porcentaje de infecciones múltiples que LiPA, posiblemente debido al diseño de sus cebadores degenerados, lo que permite detectar un amplio espectro de genotipos de VPH, sin embargo carecen de una alta especificidad en la detección de los mismos. “Muchas gracias por su atención”