Triyodotironina Total (tT3) Código del producto: 125

Acc.w = Anticuerpo Inmovilizado Monoespecífico (Cantidad
constante)
Ag = Antígeno Nativo (Cantidad variable)
Enz
Ag = Conjugado Enzima-Antígeno (Cantidad constante)
AgAcc.w.= Complejo Antígeno-anticuerpo
Enz
AgAccw = Complejo Conjugado enzima-antígeno-Anticuerpo
Ka = Tasa Constante de Asociación
k-a = Tasa Constante de Disociación
K = Ka / K –a = Constante de Equilibrio
Después que el equilibrio se mantiene, la fracción unida al
anticuerpo es separada del antígeno no unido por decantación o
aspiración. La actividad de la enzima en la fracción unida al
anticuerpo es inversamente proporcional a la concentración
nativa del antígeno. De acuerdo al uso de varios sueros de
referencia con diferentes concentraciones de antigeno conocido
una curva dosis respuesta se genera a partir de la cual la
concentración de antígeno de una muestra desconocida puede
ser determinada.
Triyodotironina Total (tT3)
Código del producto: 125-300
Propósito:
La
Determinación
cuantitativa
de
la
Concentración de Triyodotironina en Suero Humano o
plasma por ensayo inmunoenzimométrico con microplacas.
RESUMEN Y EXPLICACION DE LA PRUEBA
La medición de la concentración de triyodotironina sérica es
generalmente considerada como una herramienta valorable en
el diagnóstico de la disfunción tiroidea. Su importancia ha
proporcionado el ímpetu para la mejora significativa de la
metodología del ensayo que ha ocurrido en las últimas 2
décadas. La llegada del anti-suero monoespecífico y el
descubrimiento de agentes bloqueadores a las proteínas
séricas que se une a T3 han desarrollado en la evolución del
radioinmunoensayo en forma simple.
Esta metodología de inmunoensayo con enzima en microplacas
proporciona la técnica con sensibilidad óptima donde se
requiere algunas manipulaciones técnicas. En este método, la
referencia del suero, muestra del paciente o el control se
adiciona primero al pozo de la microplaca.- El conjugado
enzima T3 es adicionado y entonces los reactivos son
mezclados. Una reacción de competencia resulta entre el
conjugado de enzima y la triyodotironina nativa para un número
limitado de anticuerpos que se combinan a los sitios
inmovilizados en el pozo.
REACTIVOS
Materiales Proporcionados
A. Suero Humano de Referencia– 1ml/vial- Iconos A-F
6 viales de suero de referencia para la triyodotironina a
concentraciones aproximadas de 0 (A), 0.5 (B), 1.0 (C), 2.5 (D),
5.0 (E) y 7.5 (F) ng/ml. Almacenar de 2-8ºC. Un preservante ha
sido adicionado.
Para unidades SI: ng/ml x 1.536=nmol/L
B. Reactivo de Enzima- T3 total- 1.5 ml/vial – icono E
Un (1) vial que contiene conjugado de T3- peroxidasa de
rábano (HRP) en una matriz estabilizada con albúmina. Un
preservante ha sido adicionado. Almacenaje de 2-8ºC.
B
C. Buffer de Conjugado T3/T4 Total – 13 ml – Icono
Un (1) botella de reactivo que contiene buffer, colorante rojo,
preservante e inhibidores de unión a proteínas. Almacenar a 2-8
ºC.
D. Microplaca cubierta de Anticuerpo T3 - 96 pozos- Icono
Una microplaca de 96 pozos cubiertas con suero anti-T3 de
oveja y empacada en una bolsa de aluminio con un agente
desecante. Almacenar de 2-8ºC.
E. Concentrado de Solución de Lavado- 20 ml – Icono
Un vial que contiene un surfactante en suero salino tamponado.
Un preservante ha sido adicionado. Almacenar de 2-30ºC.
A
F. Substrato A – 7 ml/vial- Icono S
Una (1) botella que contiene tetrametilbenzidina (TMB) en
buffer. Almacenar de 2-8ºC.
Después de completar el período de incubación requerida, el
anticuerpo unido al conjugado de enzima-T3 es separado del
conjugado no unido enzima-T3 por aspiración o decantación.
La actividad de la enzima presente en la superficie del pozo es
cuantificada por reacción con un sustrato adecuado para
producir color.
El empleo de varios sueros de referencia de concentraciones
conocidos de triyodotironina permite la construcción de una
curva dosis respuesta de actividad y concentración.
H. Solución de parada – 8ml/vial – Icono
Una (1) botella que contiene un ácido fuerte (HCl 1N).
Almacenar de 2-30ºC.
El empleo de varios sueros referencia con concentraciones de
triyodotironina conocidas permite la construcción de una grafica
de actividad y concentración. De acuerdo a la interpolación en
la curva de dosis respuesta, la actividad de una muestra
desconocida puede ser correlacionada a la concentración de
T3.
I. Instrucciones del Producto
Nota 1: No usar reactivos más allá de la fecha de expiración
Nota 2: Los reactivos abiertos son estables por 60 días cuando
son almacenados de 2-8ºC.
Nota 3: Ver al final del inserto la configuración para varios
reactivos por tamaño de kit.
PRINCIPIO
Ensayo Inmunoenzimométrico Competitivo (TIPO 5)
Los reactivos esenciales requeridos para un inmunoensayo de
fase sólida incluyen el anticuerpo inmovilizado, el conjugado
enzima-antígeno y el antígeno nativo.
Después de la mezcla del anticuerpo inmovilizado, el conjugado
enzima-antígeno y un suero que contiene el antígeno nativo,
una reacción de competencia resulta entre el antígeno nativo y
el conjugado enzima-antígeno para un número limitado de sitios
de unión insolubilizados. La interacción es ilustrada por la
siguiente ecuación:
Ka
Enz
Enz
Ag + Ag + Acc.w.
AgAcc.w. + Ag Ac cw
K-a
Materiales requeridos pero no proporcionados:
G. Substrato B – 7 ml/vial – Icono SB
Una (1) botella que contiene peróxido de hidrógeno (H2O2) en
buffer. Almacenar de 2-8ºC.
STOP
1.
Pipeta(s) de 50µl con una precisión superior al 1.5%
2.
Pipeta(s) o dispensadores para las distribuciones repetidas
de 0.100 ml y 0.350ml con una precisión superior al 1.5%.
3.
Pipeta(s) de volumen ajustable (20-200 µl) y (200-1000µl)
para el conjugado y las diluciones del sustrato.
4.
Lavador de microplaca o una botella de lavado (opcional).
5.
Lector de microplaca con capacidad de absorbancia con
filtros de 450nm a 620nm.
6.
Tubo de prueba para mezclar los substratos A y B.
7.
Papel absorbente para secar los pozos de la microplaca.
8.
Cubierta plástica o de microplaca para los pasos de
incubación.
9.
Aspirador al vacío o vacuo (opcional) para los pasos del
lavado.
3.
Adicionar 0.100ml (100µl) de Reactivo de trabajo A,
solución de conjugado T3 Enzima a todos los pozos. (Ver
sección preparación de reactivos).
4.
Agitar la microplaca ligeramente por 20-30 segundos para
mezclar y cubrir.
5.
Incubar 60 minutos a temperatura ambiente.
6.
Descartar los contenidos de la microplaca por decantación
o aspiración, si decanta, utilice papel absorbente para
extraer el exceso de humedad.
7.
Adicionar 350µl de buffer de lavado (ver Sección
Preparación de Reactivos), decante o aspire. Repita 2
veces mas para un total de 3 lavados. Un lavador de
placa automático o manual puede ser usado. Siga las
instrucciones del fabricante para el uso apropiado. Si
utiliza una botella de lavado, llene cada pozo por
presión del contenedor (evitando formación de
burbujas) Decante el lavado y repita 2 veces
adicionales.
8.
Adicione 0.100 ml (100µl) de solución de substrato de
trabajo a todos los pozos (Ver Sección de Preparación del
Reactivo). Siempre adicione reactivos en el mismo
orden para minimizar las diferencias del tiempo de
reacción en los pozos.
10. Cronómetro
11. Materiales de control de calidad.
PRECAUCIONES
Para el uso Diagnóstico in Vitro
No para el Uso Interno ni Externo en Humanos o Animales
Todos los productos que contienen suero humano se
encontraron no reactivos para el Antígeno de Superficie de la
Hepatitis B, VIH 1 y 2 y anticuerpos para VHC por los reactivos
licenciados por la FDA. A pesar de que nos test no conocidos
aseguran que agentes infecciosos están ausentes todos los
productos sericos humanos deberán ser manipulados como
potencialmente
peligrosos
y
capaces
de
transmitir
enfermedades. Adecuados procedimientos de laboratorio para
el manejo de productos sanguíneos pueden ser encontrados en
el Centro de Control de Enfermedades/ Instituto Nacional de
Salud, “Bioseguridad en Laboratorios Microbiológicos y
Biomédicos”, 2da Edición, 1988, HHS Publicación Nº (CDC) 888395.
RECOLECCION DE MUESTRA Y PREPARACION
Se deben seguir las precauciones en la recolección de
muestras de sangre, plasma o suero por punción venosa. Para
la comparación exacta con los valores normales establecidos,
se debe obtener una muestra de suero o plasma por la mañana
en ayunas. La sangre será recogida en un tubo de punción
venosa con tapa roja sin aditivos o anticoagulantes para suero
(o tubos que contengan EDTA o Heparina). Permitir que la
sangre coagule. Centrifugar la muestra para separar el suero o
plasma de las células.
Las muestras pueden ser refrigeradas de 2-8ºC por un período
máximo de 5 días. Si la muestra no puede ser procesada
durante este tiempo, la muestra deberá almacenarse a
temperatura de -20ºC hasta 30 días. Evitar el congelamiento y
descongelamiento repetitivo. Cuando se procesa en duplicado,
se requiere 0.100ml de muestra.
PREPARACION DE REACTIVOS
1. Reactivo de Trabajo A- Solución de Conjugado T3Enzima
Diluir el conjugado T3-enzima 1:11 con el buffer del conjugado
T3/T4 total en un contenedor adecuado. Por ejemplo, diluir
160µl de conjugado con 1.6 ml de buffer para 16 pozos (un
exceso leve de solución es hecha). Este reactivo será usado
dentro de las 24 horas para el rendimiento máximo del ensayo.
Almacenar de 2-8ºC.
Formula general:
Cantidad de búfer requerido = número de pozos * 0.1
Cantidad de enzima T3 necesaria =# de pozos* 0.01
i.e = 16 x 0.1 = 1.6ml de búfer de conjugado T3/T4 total
16 x 0.01 =0.16ml (160µl) para el conjugado enzimático T3.
2. Buffer para Lavado
Diluir los contenidos del Concentrado de Lavado a 1000 ml con
agua destilada o desionizada en un contenedor de almacenaje
adecuado. Almacenar a temperatura ambiente de 20-27ºC
hasta 60 días.
3. Solución de Substrato de Trabajo
Vierta los contenidos del vial ámbar marcada con “A” dentro del
vial claro marcado como solución “B”.Colocar la tapa amarilla al
vial claro para fácil identificación. Mezcle e identifique según
corresponda. Almacenar de 2-8ºC.
Nota: No usar el substrato de trabajo si se ve azul.
PROCEDIMIENTO
Antes de iniciar el procedimiento, permita que todos los
reactivos, sueros de referencia y los controles alcancen
temperatura ambiente (20-27ºC).
1.
Marque los pozos para cada suero de referencia control y
suero de pacientes para ser procesadas por duplicado.
Coloque las tiras de pocillos no usadas dentro de la
bolsa de aluminio, sellarlo y almacenarlo de 2-8ºC.
2.
Pipetear 0.050 ml (50µl) del suero de referencia apropiado,
control o muestra dentro del pozo asignado.
NO MEZCLAR LA MICROPLACA DESPUES ADICIONAR DE
SUBSTRAT0
9.
Incube a temperatura ambiente por 15 minutos.
10. Adicione 0.050 ml (50µl) de solución de parada para cada
pozo y mezcle ligeramente (por 15-20 segundos). Siempre
adicione reactivos en el mismo orden para minimizar
las diferencias del tiempo de reacción en los pozos.
11. Lea la absorbancia en cada pozo de cada pozo a 450 nm
(usando una longitud de onda de 620-630 nm para
minimizar las imperfecciones del pozo) en un lector de
microplaca. Los resultados deberán ser leídos dentro
de los 30 minutos siguientes a la adición de la
solución de parada.
Nota: Para reprocesar muestras con concentraciones mayores
de 7.5 ng/ml, pipetear 25µl de muestra y 25µl del suero de
referencia 0 dentro del pozo de la muestra (esto mantiene una
concentración uniforme de la proteína). Multiplicar el valor leído
por 2 y obtendrá la concentración de Triyodotironina.
CONTROL DE CALIDAD
Cada laboratorio ensayará los controles a niveles en el rango
del hipotiroideo, eutiroideo e hipertiroideo para el monitoreo del
rendimiento del ensayo. Estos controles serán tratados como
desconocidos, determinando los valores en cada procedimiento
de prueba. Las graficas de control de calidad permitirán el
seguimiento del rendimiento de reactivos suministrados. Los
métodos estadísticos pertinentes serán empleados para acertar
en las tendencias. El laboratorio individual agrupará los límites
del rendimiento del ensayo aceptable. Además, la absorbancia
máxima será consistente con la experiencia anterior. La
desviación significativa de un rendimiento establecido
previamente, puede indicar cambio no notificado en condiciones
experimentales o degradación de los reactivos del kit. Reactivos
frescos serán usados para determinar la razón de estas
variaciones.
CALCULO DE RESULTADOS
Una curva dosis respuesta es usada para obtener la
concentración de Triyodotironina en muestras desconocidas.
1.
Registrar la absorbancia obtenida de la impresión del
lector de microplacas como se muestra en el Ejemplo 1.
2.
Graficar la absorbancia para cada suero duplicado de
referencia versus la concentración de T3 correspondiente
en ng/ml en el papel de gráfica lineal (no promediar los
duplicados del suero de referencia antes del trazo).
3.
Dibujar la mejor curva fija a través de los puntos
obtenidos.
4.
Para determinar la concentración de T3 de una muestra
desconocida, localice la absorbancia promedio de los
duplicados para cada desconocido en el eje vertical Y de la
gráfica, encuentre el punto de intersección sobre la curva y
lea la concentración (en ng/ml) del eje horizontal X de la
gráfica (el duplicado del desconocido puede ser
Si más de 1 placa es usada, se recomienda repetir la curva
dosis respuesta.
5.
La adición de la solución sustrato inicia una reacción
cinética, la cual es terminada por la adición de la solución
de paralización. Por tanto, la adición de los substratos y la
solución de detención serán adicionadas en la misma
secuencia para eliminar cualquier desviación durante la
reacción.
Valor
(ng/ml)
Media
0
2.101
0.5
1.662
1.0
0.966
2.5
0.551
5.0
2.507
C1
2.073
D1
2.128
E1
1.678
Cal B
Cal C
F1
1.646
G1
0.964
H1
0.969
A2
0.550
Cal D
Cal E
B2
0.551
C2
0.372
D2
0.369
E2
1.701
Cal F
Ctrl 1
F2
2.556
6.
Los lectores de placa miden verticalmente. No tocar el
fondo de los pozos.
7.
La falla en remover la solución adherente adecuadamente
en los pasos de aspiración o lavado por decantación
puede resultar en una pobre replicación y resultados
falsos.
8.
0.370
7.5
1.726
0.92
0.734
3.58
1.638
G2
0.755
H2
0.791
A3
1.145
B3
1.115
Ctrl 2
1.130
Paciente
1.95
* Los datos que se presentan en el ejemplo 1, figura 1 tienen el
propósito de ilustrar solamente, por lo tanto no deberán ser
utilizados en lugar de la curva estándar elaborada con cada
ensayo.
No se deben emplear muestras altamente lipémicas,
hemolizadas o contaminadas
4.
2.604
Cal A
B1
Abs (B)
Abs (A)
Numero
de Pozo
I.D.
Muestra
A1
3.
Usar componentes del mismo lote. No mezclar los
reactivos de diferentes lotes.
9. Es esencial un pipeteo preciso y exacto así como seguir el
tiempo exacto y la temperatura requerida. Cualquier
desviación de las instrucciones de uso puede arrojar
resultados inexactos.
10. Se deben seguir las buenas prácticas de laboratorio todos
los estándares nacionales aplicables, regulaciones y leyes
de manera estricta para asegurar el cumplimiento y uso
adecuado del dispositivo.
11. Es importante calibrar todos los equipos, por ejemplo:
pipetas,
lectores,
lavadores
y/o
instrumentos
automatizados con este reactivo y realizar un
mantenimiento preventivo rutinario
12. El análisis de riesgo – como lo requiere la directiva IVD
98/79/EC de la marca CE- para estos y otros dispositivos
elaborados por Monobind, pueden ser solicitados vía
Email: Monobind@monobind.com
B. Interpretación
1. Los resultados de laboratorio por si solos son únicamente un
aspecto para determinar el cuidado del paciente y no deben ser
la única base para una terapia, particularmente si los resultados
están en conflicto con otros determinantes.
2. Para resultados de pruebas válidas, los controles adecuados
y otros parámetros deben estar dentro de los rangos listados y
requerimientos del ensayo.
3. Si los kits de prueba están alterados, ya sea por mezcla de
partes de diferente kits, lo cual puede producir resultados de
prueba falsos o si los resultados son interpretados
incorrectamente, Monobind no tendrá responsabilidad.
4. Si se utiliza el sistema de reducción de datos controlados por
Computador para interpretar los resultados del ensayo, es
necesario que los valores de predicción para los calibradores se
ubiquen dentro del 10% de las concentraciones asignadas.
5. La concentración de Triyodotironina total sérica depende
de multiples de factores: función de glándula tiroides y su
regulación, la concentración de globulina que se une a la
tiroxina (TBG) (3,4) y la unión de la Triyodotironina a TBG. Así,
la concentración de Triyodotironina total solamente no es
insuficiente para evaluar el estado clínico.
La curva es un ejemplo solamente.
PARAMETROS DE CC
Los resultados de la prueba se consideraran válidos teniendo
encuenta los siguientes criterios:
1.
La absorbancia (DO) del calibrador a 0 ng/ml deberá ser ≥
1.3
2.
4 de 6 grupos de control de calidad estarán dentro de los
rangos establecidos.
ANALISIS DE RIESGOS
A. Desempeño de la prueba
1. Es importante que el tiempo de reacción en cada pozo sea
sostenido en forma constante para resultados
reproducibles.
2.
El pipeteo de las muestras no se extenderá más de 10
minutos para evitar derivaciones.
6. Una disminución de los valores de Triyodotironina total se
encuentra en enfermedades relacionadas con el metabolismo
de proteínas, ciertas enfermedades hepáticas y administración
de testosterona, difenilhidantoína o salicilatos. Una tabla de
drogas de interferencia y condiciones, la cual afecta los valores
de tiroxina total, ha sido compilada por el Journal de la
Asociación Médica de Químicos Clínicos.
RANGOS ESPERADOS DE VALORES
Un estudio de una población adulta eutiroidea fue tomado para
determinar los valores esperados para el Sistema de prueba T3
ELISA Los valores promedio (R), desviación estándar (σ) y
rangos esperados (±2 σ) se presentan en la Tabla 1. El número
total de muestras fue 105.
TABLA I
Valores Esperados para el Sistema de Prueba T3
ELISA
(En ng/ml)
Promedio (X)
Desviación estándar (σ)
Rangos esperados (±2 σ)
1.184
0.334
0.52 - 1.85
Es importante tener encuenta que el establecimiento de un
rango de valores esperados, se ha definido por un método
dado, para una población de personas “normales” y
dependiendo de multiplicidad de factores: la especificidad del
método, la población probada y la precisión del método en las
manos del analista. Por estas razones cada laboratorio
dependerá del rango de valores esperados establecidos por el
fabricante, hasta que se determine un rango local determinado
por el analista usando el método con muestras propias de la
región donde le laboratorio se encuentra localizado.
CARACTERISTICAS DE RENDIMIENTO
A. Precisión
La precisión intra e interensayo del Sistema de Prueba de
microplaca tT3 ELISA AccuBindTM, se determino mediante
análisis de 3 diferentes niveles de suero pool control. El número
(N), valor promedio (X), la desviación estándar (σ) y el
coeficiente de variación (CV) para cada uno de estos sueros
control se presentan en la Tabla 2 y Tabla 3.
TABLA 2
Precisión intraensayo (Valores en mg/ml)
Muestra
Bajo
Normal
Alto
N
16
16
16
X
0.78
1.92
3.55
σ
0.06
0.10
0.14
C.V.
7.9 %
5.4%
3.9%
TABLA 3
Precisión Inter Ensayo* (valores en mUI/ml)
Muestra
Bajo
Normal
Alto
N
10
10
10
X
0.76
1.85
3.43
σ
0.07
0.13
0.16
C.V.
8.9 %
6.7%
4.5%
* Medido en 10 experimentos en duplicado durante un período de 10 días.
B. Exactitud
El Sistema de prueba tT3 ELISA AccuBindTM fue comparado
con un método de radioinmunoensayo de referencia. Las
muestras biológicas de poblaciones eutiroideas, hipotiroideas e
hipertiroideas fueron usadas (Los valores van del rango de 0.15
ng/ml – 8.0 ng/ml). El número total de muestras fue 120. La
última ecuación (y=mx+b) y la correlación del coeficiente se
calculo para el método ELISA tT3 AccuBindTM en comparación
con el método de referencia. Los datos obtenidos son descritos
en la Tabla 4.
TABLA 4
Media (X)
Este Método
Referencia
1.62
1.68
Análisis
Coeficiente
de correlación
y = 3.8 + 0.947(x)
0.987
Solamente un pequeño sesgo entre este método y el de
referencia se observa por la cercanía de los valores promedios.
La ecuación de regresión cuadrada última y el coeficiente de
correlación indican excelente correlación entre
métodos.
C. Especificidad
La reacción cruzada del anticuerpo de Triyodotironina a
sustancias seleccionadas fue evaluada por la adición de
cantidades de sustancia de interferentes a una matriz sérica en
varias concentraciones. La reacción cruzada fue calculada por
la derivación de un ratio entre la dosis de la sustancia que
interfiere a la dosis de tiroxina necesaria para desplazar la
misma cantidad del conjugado.
Sustancia
I-Triyodotironina
l-tiroxina
Yodotirosina
Diyodotirosina
Diyodotironina
Fenilbutazona
Salicilato de sodio
Reacción cruzada
1.0000
< 0.0002
<0.0001
<0.0001
<0.0001
<0.0001
<0.0001
Concentración
-10µg/ml
10µg/ml
10µg/ml
10µg/ml
10µg/ml
10µg/ml
D. Sensibilidad
TM
El procedimiento de tT3 ELISA AccuBind
tiene una
sensibilidad de 0.04 ng/ml. La sensibilidad fue acertada por la
determinación de la variabilidad del suero calibrador 0 ng/ml
usando 2σ estadísticas (95% de certeza) para calcular la dosis
mínima.
REFERENCIAS
1. Gharib, H., Ryan, R.J., Mayberry, W.E., & Hockett, T.,
"Radioimmunoassay for Triiodothyronine (T3):.Affinity and
Specificity of Antibody for T3",J Clinical Endocrinol. 33,509.
(1971)
2. Chopra, I.J., Ho, R.S.,& Lam, R. "An improved radioimmunoassay of triiodothyronine in human serum," J. Lab
Clinical Med. 80, 729. (1971).
3. Young, D.S., Pestaner, L.C., and Gilberman, U., "Effects of
Drugs on Clinical Laboratory Tests." Clinical Chemistry 21,
3660. (1975).
4. Sterling, L., Diagnosis and Treatment of Thyroid Disease,
Cleveland CRC Press, p.9-51. (1975).
5. Braverman, LE.:”Evaluation of thyroid status in patients with
thyrotoxicosis.” Clin.Chem. 42, 174-178. (1996)
6. Braverman, LE., Utigen, RD., Eds.: Werner and Ingbar’s ‘The
Thyroid – A Fundamental and Clinical Text’ 7th Ed.
Philadelphia. Lippinscott-Raven. (1996)
7. Comeau, L., Pianan, U., Leo-Mensah, T, et.al.:”An
automated chemiluminescent immunoassay test for total
triiodothyronine.” Clin.Chem.37, 941. (1991)
8. Chopra, IJ.:’Radioimmunoassay of iodothyronines-Handbook
of Radioimmunoassay.’ G.E. Abraham.Ed.New York. Marcel
Dekker, Inc. (1977)
9. Kozwich,D., Davis, G., Sockol, C.:”Development of total
triiodothyronine enzyme immunoassay in microtiter plate
format.” Clin.Chem. 37, 1040. (1991)
10. Papanastasiou-Diamandi, A., Khosravi, M.:”Total T3
(triiodothyronine) measurement in serum by time resolved
flourescence immunoassay.” Clin.Chem.37, 1029. (1991)
Revisión: 2
Date: 112210
Cat #: 125-300
Tamaño
96(A)
A
1ml set
1ml set
B
1(1.5ml)
2(1.5ml)
1(8ml)
2(8ml)
C
1(13ml)
2(13ml)
1(60ml)
2(60ml)
D
1placa
2 placas
5 placas
10placas
E
1(20ml)
1(20ml)
1(60ml)
2(60ml)
2(30ml)
Reactivo ( lleno )
promediado como se indica). En el siguiente ejemplo, la
absorbancia promedio (1.130) intercepta con la curva dosis
respuesta en 1.95ng/ml de concentración de T3 (Ver
Figura 1).
192(B)
480(D)
2ml set
960(E)
2ml set x2
F
1(7ml)
2(7ml)
1(30ml)
G
1(7ml)
2(7ml)
1(30ml)
2(30ml)
H
1(8ml)
2(8ml)
1(30ml)
2(30ml)