EL CULTIVO DEL CÁRTAMO (Carthamus tinctorius L

SECRETARÍA DE AGRICULTURA, GANADERÍA, DESARROLLO RURAL, PESCA Y
ALIMENTACIÓN
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PECUARIAS
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INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES,
AGRÍCOLAS Y PECUARIAS
CENTRO DE INVESTIGACIÓN REGIONAL DEL NOROESTE
CAMPO EXPERIMENTAL NORMAN E. BORLAUG
EL CULTIVO DEL
CÁRTAMO
(Carthamus tinctorius L.)
EN MÉXICO
Lope Montoya Coronado
Investigador de la Red de Oleaginosas. CENEB-CIRNO-INIFAP
Ciudad Obregón, Sonora, México.
Septiembre del 2010
1
Derechos Reservados ©
Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias
Progreso No. 5, Barrio de Santa Catarina
Delegación Coyoacán
C.P. 04010 México D.F.
Teléfono: (55) 3871-8700
ISBN:
Primera Edición 2010
La presente publicación se terminó de imprimir en el mes de septiembre del
2010, en los talleres gráficos de SGI, Hidalgo #512 poniente, Colonia Centro,
Cd. Obregón, Sonora. Teléfono/Fax (644) 414-39-14.
No está permitida la reproducción total o parcial de esta publicación, ni la
transmisión de ninguna forma o por cualquier medio, ya sea electrónico,
mecánico, fotocopia, por registro u otros medios conocidos o por conocer, sin
el permiso previo y por escrito del Instituto Nacional de Investigaciones
Forestales, Agrícolas y Pecuarias.
2
CONTENIDO
Página
Índice de cuadros ......................................................................................... 5
Agradecimientos ........................................................................................... 6
Prológo ......................................................................................................... 7
I.- INTRODUCCIÓN...................................................................................... 9
1.1.- Situación mundial .......................................................................... 9
1.2.- El cultivo de cártamo en México................................................... 12
II.- USOS DEL CÁRTAMO .......................................................................... 14
2.1.-Semilla .......................................................................................... 14
2.2.- Aceite .......................................................................................... 16
2.3.- Pasta ........................................................................................... 17
III.- NORMAS DE CALIDAD ....................................................................... 18
IV.- ORIGEN CITOGENÉTICO ................................................................... 20
4.1.- Clasificación taxonómica ............................................................. 20
4.2.- Morfología .................................................................................... 21
4.3.- Descripción de la planta ............................................................... 23
V.- REQUERIMIENTOS EDAFOCLIMÁTICOS ........................................... 24
5.1.- Ecología....................................................................................... 24
5.2.- Temperaturas .............................................................................. 25
5.3.- Fotoperiodo ................................................................................. 25
5.4.- Altitud .......................................................................................... 25
5.5.- Latitud .......................................................................................... 26
5.6.- Suelo ........................................................................................... 26
5.7.- Salinidad ...................................................................................... 26
5.8.- Humedad .................................................................................... 27
VI.- GENÉTICA ........................................................................................... 28
6.1.- Caracteres de calidad de semilla y aceite .................................... 28
6.2.- Caracteres de la planta y del desarrollo ....................................... 29
6.3.- Caracteres de resistencia a enfermedades .................................. 31
VII.- MEJORAMIENTO GENÉTICO ............................................................ 31
7.1 Técnicas de cruzamientos ............................................................. 31
7.2 Método de pedigree o genealógico ................................................ 34
3
Página
VIII.- EL MEJORAMIENTO GENÉTICO DE CÁRTAMO EN MÉXICO ........ 35
8.1.- Variedades .................................................................................. 37
8.1.1.-Linoleicas ................................................................................... 38
8.1.2.-Oleicas ...................................................................................... 40
8.1.3.-Variedades altamente tolerantes a falsa cenicilla Ramularia
carthami ...................................................................................... 42
IX.- TÉCNICAS DE CULTIVO .................................................................... 46
9.1.- Preparación del terreno ............................................................... 46
X.- FERTILIZACIÓN ................................................................................... 47
10.1.- Fertilización foliar ....................................................................... 48
10.2.- Fertilización al suelo .................................................................. 50
10.2.1- Nitrógeno ................................................................................. 50
10.2.2.- Fosforo ................................................................................... 52
10.3.- Métodos y época de aplicación .................................................. 53
XI.- FECHAS DE SIEMBRA ........................................................................ 54
XII.- MÉTODO Y DENSIDADES DE SIEMBRA .......................................... 55
XIII.- MANEJO DE RIEGOS ....................................................................... 57
XIV.- CONTROL DE MALEZA .................................................................... 61
14.1.- Métodos de control .................................................................... 62
14.1.1.- Preventivo. .............................................................................. 62
14.1.2.- Cultural. .................................................................................. 64
14.1.3.- Mecánico. ............................................................................... 64
14.1.4.- Químico. ................................................................................. 64
14.2.- Control integrado. ...................................................................... 67
XV.- CONTROL DE INSECTOS PLAGAS ................................................. 68
XVI.- CONTROL DE ENFERMEDADES ..................................................... 76
XVII.- COSECHA ........................................................................................ 84
XVIII.- BIBLIOGRAFÍA ................................................................................ 86
4
ÍNDICE DE CUADROS
Página
Cuadro 1. Países productores de cártamo (t) ............................................................. 9
Cuadro 2. Superficie (ha) cosechada de cártamo (miles de hectáreas) a nivel
mundial ..................................................................................................... 10
Cuadro 3. Rendimiento (t/ha) de cártamo a nivel mundial ....................................... 10
Cuadro 4. Países exportadores de aceite de cártamo (t) ......................................... 11
Cuadro 5. Principales países importadores de cártamo (t) ...................................... 11
Cuadro 6. Producción de cártamo en México (2002-2008) ...................................... 13
Cuadro 7. Principales estados productores de cártamo en México (2008) .............. 13
Cuadro 8. Especificaciones químicas de semilla de cártamo oleico ........................ 15
Cuadro 9. Perfil de ácidos grasos de semilla de cártamo alto monoinsaturado
regional..................................................................................................... 15
Cuadro 10. Comparación de la composición típica de los ácidos grasos en
variedades oleicas y linoleicas .............................................................. 17
Cuadro 11. Porcentaje de ácidos grasos en el aceite de diversos cultivos ............. 18
Cuadro 12. Normas Mexicanas para la comercialización de semilla de cártamo
(NMX-FF-090-SCFI-2008. 7/28 ............................................................. 19
Cuadro 13. Especificaciones de composición de ácidos grasos en aceites
provenientes de granos de cártamo de las variedades de alto
poliinsaturado y alto monoinsaturado. ................................................... 19
Cuadro 14. Clasificación taxonómica del cártamo .................................................... 20
Cuadro 15. Respuesta a sales de diversos cultivos ................................................ 27
Cuadro 16. Cantidad de nitrógeno (kg/ha) para fertilizar cártamo en el sur de
Sonora. México ...................................................................................... 51
Cuadro 17. Fuente de Fuente de fertilizantes y su factor de conversión a dosis
comercial ............................................................................................... 54
Cuadro 18. Fechas de siembra utilizadas en los estados productores de
cártamo en México ................................................................................ 55
Cuadro 19. Semillas por metro lineal en surcos con una y doble hilera de
siembra .................................................................................................. 57
Cuadro 20. Calendario de riegos para cártamo, aplicable en suelos de barrial
compactado ........................................................................................... 58
Cuadro 21. Calendario de riegos para cártamo aplicable en suelos de barrial
profundo ................................................................................................. 58
Cuadro 22. Calendario de riegos para cártamo, aplicable en suelos de aluvión ..... 59
Cuadro 23. Prácticas para el control cultural de maleza perenne ........................... 63
Cuadro 24. Herbicidas utilizados en el combate de maleza en cártamo ................. 67
Cuadro 25. Insecticidas sugeridos para el combate de los principales insectos
plaga del cultivo de cártamo .................................................................. 75
Cuadro 26. Normas de calidad para el grano cosechado de cártamo..................... 85
5
AGRADECIMIENTOS
Mi más sincero agradecimiento a todo el personal investigador en
activo y retirado del INIFAP, que de alguna manera me brindaron su
invaluable apoyo para poder realizar esta obra, que considero será de gran
utilidad para los productores de cártamo en México y del extranjero; así como
para técnicos agrícolas e instituciones de investigación y de enseñanza
superior.
En este libro se plasman los principales resultados de actividades de
Investigación, Validación, Transferencia de Tecnología y de Experiencias en
Siembras Comerciales. Todas estas realizadas por instituciones nacionales e
internacionales, pero principalmente por investigadores involucrados en
proyectos de oleaginosas del INIFAP, financiados por SAGARPA, CONACYT,
COFUPRO, Fondo de Oleaginosas de México, Fundación Produce Sonora y
por los Productores Sonorenses a través del Patronato Para la investigación y
Experimentación Agrícola del Estado de Sonora (PIEAES).
Todo mi agradecimiento también al gran equipo de colaboradores de
campo y oficina por el gran esfuerzo realizado para alcanzar las metas.
A mi esposa Leonor, mis hijos Luis Alberto, Lope Eduardo y Alejandra
por su apoyo y comprensión.
A mi madre Doña Conchita y a la memoria de mi padre Luis por su
gran enseñanza.
MC. Lope Montoya Coronado
6
PROLOGO
El cultivo de cártamo presenta varias fortalezas y oportunidades que
nos llevan a la pregunta de porque no ha sido una opción solida y consistente
en el patrón de cultivos de la agricultura Mexicana. En efecto el cártamo
posee fortalezas como bajos requerimientos de agua, siendo una planta
rustica con pocos problemas de plagas, enfermedades, así como poco
sensible a situaciones extremas tanto en bajas como altas temperaturas. En
el ámbito de las oportunidades, se reporta que cerca del 40% de la superficie
en México es árida ó semiárida, lo cual representa una oportunidad para
explotar este cultivo en las áreas con baja disponibilidad de agua.
Asimismo, en toda la cadena productiva existen oportunidades de
éxito. En la fase primaria se cuenta con tecnología que permite al agricultor
explotar el potencial de rendimiento con bajo riesgo en la producción, en la
fase de transformación México cuenta con infraestructura industrial
subempleada en todo el país, lo cual significa que hay la capacidad de
transformar toda la producción que se pueda obtener en un año, y en la fase
de distribución y consumo, el aceite de cártamo ha mostrado una demanda
creciente en el mercado tanto en el ámbito nacional como internacional. Más
aún, en el mercado nacional la demanda supera a la oferta al grado que el
92% de las oleaginosas son importadas del mercado internacional.
Ante el panorama anterior la publicación del Cultivo de Cártamo en
México es una aportación muy relevante en congruencia con dos de los
objetivos estratégicos del INIFAP como son: primero, generar y adaptar
conocimientos en donde cabe destacar que la tecnología de producción de
esta oleaginosa es producto de la tenacidad de un grupo de investigadores
que han logrado crear las condiciones para realizar investigación de
vanguardia generando variedades más productivas, tolerantes a la
enfermedad conocida como falsa cenicilla, así como mayor contenido y
calidad de aceite para satisfacer las preferencias del consumidor y de la
industria.
El segundo objetivo estratégico relacionado con un aspecto muy
relevante de la misión y el mandato del INIFAP, promover y apoyar la
7
Innovación Tecnológica. En este sentido el grupo de investigadores del
INIFAP distribuidos en gran parte de nuestro país han participado en el
proceso de generación de cinco nuevas variedades de cártamo linoleico y
oleico con resistencia a la falsa cenicilla y potencial de rendimiento
competitivo nacional. Este grupo de investigadores han realizado también
validación y transferencia de tecnología para apoyar la innovación
tecnológica.
Como un elemento importante de apoyo a la innovación se presenta el
libro El Cultivo de Cártamo en México, cuyo contenido está diseñado de una
forma muy sencilla y amena. En la primera parte se presentan las
características de la planta de cártamo, sus usos y requerimientos
ambientales. En la segunda parte se abordan brevemente los métodos de
mejoramiento y su aplicación en la generación de variedades en México. En
la tercera parte se describe la tecnología de producción con el objetivo de
apoyar tanto a productores como técnicos a obtener el potencial de
rendimiento, así como a reducir los riesgos en el cultivo de esta oleaginosa.
Esta publicación se inserta también como un elemento del plan de
acción del INIFAP 2010-2014. En primer lugar alineado con la política del
Gobierno Mexicano a través de la SAGARPA al impulsar el cultivo del
cártamo, como parte del reto de reducir las importaciones de oleaginosas del
92% al 60% y de esta manera disminuir la fuga de divisas.
En segundo lugar, con el cultivo de esta oleaginosa se pueden obtener
beneficios para todos los eslabones de la cadena de valor: en el sector
primario es una alternativa para la diversificación productiva y desarrollo del
campo Mexicano; en el sector agroindustrial obtener la materia prima
necesaria para la transformación del producto que satisfaga la necesidades
de aceite de calidad del consumidor tanto en el mercado nacional como
internacional.
Con los elementos antes citados se espera que la obra del El Cultivo
de Cártamo en México, contribuya en los próximos años a fortalecer la
competitividad de esta oleaginosa y a la consolidación de una alternativa para
el patrón de cultivos de la agricultura nacional.
Dr. Erasmo Valenzuela Cornejo
8
I.- INTRODUCCIÓN
1.1.- Situación mundial
El cártamo es una planta oleaginosa conocida también como alazor,
azafrán bastardo, azafrancillo, azafrán romí, kusum, honghua y safflower. El
nombre del género Carthamus en Árabe se refiere al color rojizo del colorante
vegetal que se usaba en alimentos o para colorear telas y otros objetos, y el
de la especie tinctorius se refiere a teñir o colorear. El colorante está
constituido básicamente por ácido cartamínico y por inocartamina. Los
centros de mayor diversidad genética de esta especie se encuentran en
Etiopía y la India. Se considera que es uno de los cultivos más antiguos, ya
que su semilla se ha encontrado en tumbas de Egipto de más de 4000 años
de antigüedad y su uso fue reportado en China hace aproximadamente 2200
años. (Claridades Agropecuarias 1994).
A nivel mundial, la India es el país de mayor producción de cártamo
con 36.5%, pero la mayor parte de su producción es para consumo interno
(Cuadro 1). El segundo país productor es Estados Unidos de América con
22.8% y México con 15.6%, es el tercer productor. Los reportes mundiales
indican que en el año de 2008 la superficie cultivada de cártamo fue de
691,436 hectáreas mientras que en 2002 fue de 722,160 hectáreas, lo que
representó un descenso del 6.33% en el periodo (Cuadro 2).
CUADRO 1. PAÍSES PRODUCTORES DE CÁRTAMO (t)
PAIS
2002
2003
2004
2005
2006
2007
2008
INDIA
230,000
178,500
134,900
173,600
228,600
240,000
225,000
E. U.
135,160
123,630
86,800
99,330
86,820
94,798
140,810
MÉXICO
52,855
200,587
230,866
94,422
73,536
113,334
96,413
CHINA
32,000
28,000
30,000
32,000
30,000
32,000
32,500
ETIOPÍA
5,000
5,043
7,039
5,957
5,957
11,176
8,075
OTROS
105,484
168,124
164,405
176,730
103,689
130,740
112,416
MUNDIAL
560,499
703,884
654,010
487,617
528,602
622,048
615,214
Fuente: Faostat. 2010.
9
CUADRO 2. SUPERFICIE (ha) COSECHADA DE CÁRTAMO A NIVEL MUNDIAL.
PAÍS
2002
2003
2004
2005
2006
2007
2008
CHINA
12,000
12,000
12,000
12,000
12,000
13,000
13,000
E. U.
79,320
85,790
64,350
66,170
72,440
69,605
78,910
ETIOPÍA
8,300
8,401
9,715
8,868
8,867
13,019
8,999
INDIA
404,300
36,9500
363,900
369,100
364,600
350,000
350,000
MÉXICO
52,758
146,600
212,000
86,957
69,883
93,141
65,000
OTROS
165,482
255,453
287,710
276,661
159,929
199,410
175,527
MUNDIAL
722,160
877,744
949,675
819,756
687,719
738,175
691,436
Fuente: Faostat. 2010.
El rendimiento medio mundial de esta oleaginosa en los años 2002 al
2008 fue de 780 kg/ha (Cuadro 3); Estados Unidos registró el mayor
rendimiento promedio para este período (1,470 kg/ha), seguido por, México
(1,185 kg/ha) y Etiopia (718 kg/ha).
CUADRO 3. RENDIMIENTO (t/ha) DE CÁRTAMO A NIVEL MUNDIAL.
PAIS
2002
2003
2004
2005
2006
2007
2008
E.U.
1.7
1.4
1.3
1.5
1.2
1.3
1.7
ETIOPÍA
0.6
0.6
0.7
0.6
0.6
0.8
0.8
INDIA
0.5
0.4
0.3
0.4
0.6
0.6
0.6
MÉXICO
1.0
1.3
1.0
1.0
1.0
1.2
1.4
MUNDIAL
0.77
0.80
0.68
0.71
0.76
0.84
0.88
Fuente: Faostat. 2010.
El principal producto comercializado de cártamo es el aceite. Sin
embargo, las exportaciones de aceite de cártamo han sufrido una importante
caída, lo mismo que su producción en los últimos años, esto debido
probablemente, a los bajos rendimientos y al aumento en la producción de
10
otras oleaginosas. Durante el período comprendido entre los años 2002 y
2007, Estados Unidos tomó mayor importancia como exportador
representando 36.8% de las exportaciones totales; México y Argentina
exportaron el 34.1% y el 18.0% del volumen total. (Cuadro 4)
CUADRO 4. PAÍSES EXPORTADORES DE ACEITE DE CÁRTAMO (t)
PAIS
2002
2003
2004
2005
2006
2007
E. U.
19,459
14,129
16,445
19,110
17,933
16,999
MÉXICO
10,026
5,899
8,206
9,233
12,342
15,751
ARGENTINA
8,834
6,500
12,501
19,519
5,773
8,310
PAÍSES BAJOS
17,634
17,286
6,724
8,172
7,462
4,390
OTROS PAÍSES
1,352
1,429
419
214
4,204
624
MUNDIAL
57,305
45,243
44,295
56,248
47,714
46,074
Fuente: Faostat
En 2007, los países más demandantes del aceite de cártamo fueron
Estados Unidos, Japón, Alemania, Países Bajos, México y Reino Unido, los
cuales participan con el 94% del total de importaciones. El volumen mundial
comercializado fue de 89 mil toneladas de aceite. (Cuadro 5)
CUADRO 5.PRINCIPALES PAÍSES IMPORTADORES DE ACEITE DE CÁRTAMO
(t)
PAIS
2,002
2,003
2,004
2,005
2,006
2,007
ALEMANIA
25,184
17,185
20,608
11,486
13,317
13,939
ESTAD UNIDOS
15,775
33,994
36,144
27,680
24,880
31,858
JAPÓN
19,156
14,493
13,265
15,051
13,639
14,021
MÉXICO
171
67
1,828
639
3,012
7,407
19,350
19,666
20,067
12,419
17,118
15,174
791
863
225
287
1,174
1,857
OTROS PAÍSES
3,544
30,300
3,134
7,610
3,825
5,222
MUNDIAL
83,971
116,568
95,271
75,172
76,965
89,478
PAÍSES BAJOS
REINO UNIDO
Fuente: Faostat
11
1.2.- El cultivo de cártamo en México
Las oleaginosas constituyen una buena alternativa de cultivos durante
el ciclo de otoño-invierno. En México, el cártamo ha sido de los más
ampliamente sembrados. La característica de esta oleaginosa es que cuenta
con contenido de aceite de 37 a 41% y dependiendo del tipo de variedad
puede contar con 75% de ácido oleico y 12% de linoleico o 75% de ácido
linoleico y 12% de oleico. Esta última característica lo coloca como uno de los
mejores aceites para el consumo humano, ya que ambos ácidos reducen los
niveles de colesterol en la sangre, lo cual evita en cierta medida los
problemas cardiovasculares.
El cártamo es una especie vegetal que se adapta a regiones de baja
precipitación pluvial y baja humedad relativa. Aún bajo condiciones de riego,
con solo el 50% del volumen de agua utilizada por trigo (3.5 millares de
metros cúbicos), con este cultivo se obtienen producciones de alrededor de
cuatro toneladas por hectárea, y esta propiedad aunada a los bajos costos de
producción, lo hacen económicamente muy aceptable por los productores.
El cártamo se introdujo al continente americano por los Estados
Unidos de América en el siglo XIX por españoles y portugueses. En México,
se cultivó por primera vez en 1905 en San José de Parangueso del Valle de
Santiago, Guanajuato. En el año de 1948 se iniciaron las pruebas de
adaptación por parte de la Secretaría de Agricultura y Ganadería (SAG)
encontrando buenas condiciones ecológicas para su desarrollo en los estados
de Morelos, Guanajuato y Jalisco. Las evaluaciones de introducciones de
líneas se continuaron hasta el año de 1956. En el ciclo agrícola 1956-1957,
en el Centro de Investigaciones Agrícolas del Noroeste (CIANO), ubicado en
el Valle del Yaqui, Sonora, México, se iniciaron los trabajos sobre fechas de
siembra, densidades y formación de variedades. Estos mismos trabajos
también se iniciaron en el estado de Sinaloa, Méx.; de tal manera que en
1960 se puede considerar como el año en que se inició su cultivo a nivel
comercial en el noroeste de México y como el año de inicio de los primeros
trabajos de investigación en la Región el Bajío y Tamaulipas (Robles, 1980).
La producción de cártamo en México (Cuadro 6), ha presentado
altibajos durante los últimos años, observándose un decremento del 13.5%
entre 1996 y 1998, sin embargo, ésta se incrementó en 2% entre 1998 y
2000.
12
CUADRO 6. PRODUCCIÓN DE CÁRTAMO EN MÉXICO (2002-2008)
CONCEPTO
SUPERFICIE
CULTIVADA (ha)
RENDIMIENTO (t./ha)
PRODUCCIÓN (t)
2002
2003
2004
2005
2006
2007
2008
52,758 146,600 212,000 86,957 69,883 93,141 65,000
1.0
1.3
1.0
1.0
1.0
1.2
1.4
52,855 200,587 230,866 94,422 73,536 113,334 96,413
Fuente: SIACON. 2010.
Los principales estados productores son: Sonora (Cuadro 7), Baja
California, Baja California Sur, Tamaulipas, San Luis Potosí, Jalisco y Sinaloa.
En los tres primeros se cultiva bajo condiciones de riego y en los restantes
bajo riego, humedad residual y temporal. De estos estados, únicamente
Sonora y Baja California Sur producen aceite del tipo oleico. Otros estados en
los cuales también se ha sembrado cártamo con éxito y que pueden ser
opciones son: Coahuila, Chihuahua, Durango, Nuevo León y Michoacán.
CUADRO 7. PRINCIPALES ESTADOS
MÉXICO (2008)
PRODUCTORES
DE
CÁRTAMO
EN
SUPERFICIE
COSECHA (ha)
PRODUCCIÓN (t)
RENDIMIENTO (t/ha)
SONORA
29,263
61,971
2.12
TAMAULIPAS
14,682
5,438
0.37
SINALOA
12,070
10,400
0.86
JALISCO
1,545
3,664
2.37
513
543
1.06
2,073
4,083
1.97
ESTADO
BAJA CALIFORNIA
MICHOACÁN
Fuente: SIACON. 2010.
Actualmente, en México, la demanda de aceites para consumo
humano aumenta cada año, por lo cual se tienen que importar
aproximadamente cuatro millones de toneladas de semilla y aceites crudos, lo
que ocasiona una fuerte fuga de divisas por este concepto. Esta situación
hace necesaria la producción de oleaginosas en nuestro país donde el
cártamo representa una de las mejores alternativas.
13
II.- USOS DEL CÁRTAMO
Antiguamente su planta tierna y semillas se utilizaban para alimentar
ganado y actualmente, su mayor importancia es por el contenido de aceite en
la semilla. La calidad del aceite de cártamo estriba en los altos porcentajes de
ácidos grasos oleico y linoleico presentes. Comercialmente existen
variedades con alto contenido de ácido linoleico que se utilizan para el
consumo humano y en la industria en la elaboración de jabón y como agente
secante que evita que se tornen amarillas las pinturas y barnices, etc., y otras
variedades sobresalen por el ácido oleico, las cuales se utilizan como
aderezos en ensaladas y frituras, para cubrir diversos productos comestibles
para evitar la absorción y/o pérdida de humedad; también es usado en la
elaboración de cosméticos ya que no es alergénico, en medicamentos y en la
formulación de alimentos de infantes. Se reporta que estos ácidos son
altamente benéficos para los humanos ya que ayudan a reducir los niveles de
colesterol de la sangre (Berglund- et al., 1998).
2.1.-Semilla
El fruto del cártamo es la semilla y presenta una cubierta fibrosa y dura
que protege al grano formado por dos cotiledones y un embrión. El color de la
semilla generalmente va de cremoso a blanco; sin embargo, en algunas
variedades puede tener tonalidades grises y cafés. La semilla de cártamo es
por sí misma estable y muy segura para almacenar por largos periodos de
tiempo.
Las semillas de las variedades de cártamo utilizadas a nivel mundial
cuentan con una relación de 60% de almendra y 40% de cáscara, pero dentro
del germoplasma se puede observar una amplia variación.
Dentro de los esquemas del fitomejoramiento, se trata de formar
variedades que cuenten con alto porcentaje de almendra y bajo de cáscara ya
que con ello se aumenta el porcentaje de aceite. A nivel nacional y mundial, la
semilla contiene de 35 a 40% de aceite y después de su extracción, la
cascarilla cuenta con 24% de proteína. www.ext.nodak.edu/extpubs/plantsci/
crops/a870w.htm
La semilla de cártamo comercial con alto contenido de ácido graso
monoinsaturado u oleico en su único tipo y grado de calidad debe cumplir con
las siguientes especificaciones: (Cuadro 8)
14
CUADRO 8. ESPECIFICACIONES QUÍMICAS DE SEMILLA DE CÁRTAMO
OLEICO.
ÁCIDO GRASO
MÍNIMO
MÁXIMO
ÁCIDO OLEICO (Ácido octadecenoico)
-.-
74%
ÁCIDO LINOLÉNICO (Ácido octadecatrienoico)
-.-
≤ 0.2 %
La composición típica de la semilla de cártamo alto monoinsaturado
regional se describe en el Cuadro 9.
CUADRO 9. PERFIL DE ÁCIDOS GRASOS DE SEMILLA DE CÁRTAMO ALTO
MONOINSATURADO REGIONAL.
MÍNIMO
(%)
MÁXIMO
(%)
Ácido mirístico C14:0
0.0
0.1
Ácido palmítico C16:0
5.0
6.0
Ácido palmitoleico C16:1
0.0
0.2
Ácido esteárico C18:0
1.5
2.0
Ácido oleico C18:1
74.0
80.0
Ácido linoleico C18:2
13.0
18.0
Ácido linolénico C18:3
0.0
0.2
Ácido araquídico C20:0
0.0
0.3
Ácido gadoléico C20:1
0.0
0.2
ÁCIDO GRASO
NMX-F-161-2005
En la semilla de cártamo comercial alto monoinsaturado se aceptará
una tolerancia máxima de 2.0% en ácidos grasos libres (AGL).
La composición de los ácidos grasos oleico y linolenico, estarán
sujetos a la tolerancia máxima y mínima que se especifica en la PROY NMXF-161-2004, para el aceite de cártamo alto monoinsaturado. Adicional a esto
15
se considerará la composición del perfil de ácidos grasos de la semilla de
cártamo alto monoinsaturado regional. (Diario Oficial de la Federación, 2004)
2.2.- Aceite
El aceite de cártamo oleico es de excelente calidad, con elevados
niveles de ácido graso oleico, de color amarillo y sabor muy suave. Es un
aceite libre de ceras.
Los numerosos lípidos que forman parte habitual de nuestra dieta se
diferencian entre sí, por las características de los ácidos grasos que forman
sus moléculas.
En bioquímica se habla de instauración cuando dos átomos de
carbono contiguos en la cadena carbonada pierden un átomo de hidrógeno
cada uno y se unen por un enlace doble, en vez de hacerlo mediante uno
sencillo. De tal manera que, cuando los ácidos grasos no contienen ningún
enlace en su cadena, químicamente se dice que están saturados, si solo tiene
uno se les denomina monoinsaturados y si contienen dos o más enlaces
dobles se les llama poliinsaturados.
La leche, queso, tocino o la yema del huevo son ricos en grasas
saturadas, el aceite de oliva es una masa monoinsaturada y el maíz, girasol o
soya son poliinsaturadas.
Desde hace 20 años se venía recomendando el consumo de los
poliinsaturados (altos en ácido linoleico) para bajar el nivel de colesterol en la
sangre, el cual obstruye las arterias y puede provocar infartos. En realidad,
ambos son benéficos. Sin embargo, éstos ácidos también afectan los niveles
del colesterol considerado bueno y que es útil para las células.
En los últimos años, se identificó que los aceites con ácidos
monoinsaturados (altos en ácido oleico) podían bajar el colesterol dañino, sin
afectar el colesterol bueno.
El índice de yodo indica el grado de instauración del total de ácidos
grasos en el aceite. Un alto número significa menos saturación; esta es la
razón por la cual los tipos linoleicos tienen más alto índice de yodo que los
oleicos (Cuadro 10) (Weiss, 1971).
16
CUADRO 10. COMPARACIÓN DE LA COMPOSICIÓN TÍPICA DE LOS ÁCIDOS
GRASOS EN VARIEDADES OLEICAS Y LINOLEICAS.
CARACTERÍSTICA
LINOLEICAS (*)
ÁCIDO OLEICAS (*)
C16 PALMÍTICO %
5.0
5.0
C18 ESTEÁRICO %
5.2
2.0
18:1 OLEICO %
15.0
77.0
18:2 LINOLEICO %
77.0
15.0
18:3 LINOLEICO %
-1.0
-1.0
OTROS %
0.7
1.3
ÁCIDOS GRASOS LIBRES %
0.03
0.03
ÍNDICE DE IODO
144.0
92.0
0.1
0.1
1.474
1.690
VALOR DE PERÓXIDO AT SHIPMENT
ÍNDICE DE REFRACCIÓN(25% C)
* En promedio,el aceite de las variedades del tipo linoleico cuenta con aproximadamente 78% de
ácidos poliinsaturado, 15% de monoinsaturados y 7% de ácidos grasos saturados; mientras que
el aceite de las oleicas cuenta con 78% de monoinsaturados, 15% de poliinsaturados y 7% de
ácidos grasos saturados.
Fuente: (Smith, 1996).
2.3.- Pasta
La cascarilla, pasta o residuo vegetal que resulta como subproducto
de la extracción de aceite es alta en proteína y fibra, y es utilizada como
suplemento proteico en la alimentación de ganado y aves. La semilla entera
también es usada como alimento para pájaros y la planta entera se puede
utilizar como forraje en la alimentación de ganado cuando se corta antes de la
etapa de floración (Weiss, 1971 y http://www.enbuenasmanos.com/articulos/
muestra.asp?art=1205)
En el Cuadro 11 se presenta una comparación de los principales
ácidos grasos en aceites de diferentes plantas cultivadas.
17
CUADRO 11. PORCENTAJE DE ÁCIDOS GRASOS EN EL ACEITE DE DIVERSOS
CULTIVOS.
CÁRTAMO
CANOLA SOYA MAÍZ GIRASOL CACAHUATE OLIVO
ÁCIDOS GRASOS
OLEICO LINOLEICO
14:0
-
-
0.75
0.1
-
-
0.1
-
16:0 PALMÍTICO
5
5-7
4.0
10.8
11.4
6.0-7.0
10.0
11.0
18:00 ESTEÁRICO
-1
2
1.6
4.0
1.9
4.0-5.0
2.3
2.2
20:0
-
-
0.5
-
-
-
-
-
22:0
-
-
0.4
-
-
-
-
-
7.0
10.4
6-9
15.1
13.3
10.8
17.8
13.5
-
-
0.25
0.2
-
-
0.1
0.8
77
15
61.0
23.8
25.3
17-20
47.1
75.8
20:1
-
-
1.5
0.2
-
-
1.4
0.3
22:1
-
-
0.2
-
-
-
-
-
TOTAL MONOINSATURADOS
77
15
61-64
24.3
25.3
20.4
48.6
77.1
18:2 LINOLEICO
15
77
19-26
53.3
60.7
68.8
33.6
8.3
-
-
8-13
7.1
0.7
-
-
0.6
15
77
27-35
60.6
61.4
68.8
33.6
8.8
TOTAL
SATURADOS
16:1
18:1 OLEICO
18:3 LINOLENICO
TOTAL POLIINSATURADOS
III.- NORMAS DE CALIDAD
En México, para efecto de comercialización de las diferentes
variedades de cártamo se manejan tres grados de calidad. El grano de estas
debe cumplir con las especificaciones físicas y químicas en los Cuadros 12 y
13.
18
CUADRO 12. NORMAS MEXICANAS PARA LA COMERCIALIZACIÓN DE
SEMILLA DE CÁRTAMO. (NMX-FF-090-SCFI-2008. 7/28)
PARÁMETROS
FISICOQUÍMICAS
PRIMERA
SEGUNDA
TERCERA
(GRADO I)
(GRADO II
(GRADO III)
IMPUREZAS (%)
1.0
2.0
3.0
GRANOS DAÑADOS (% MÁXIMO)
1.0
1.5
2.0
HUMEDAD (%)
6.0
6.0
6.0
CONTENIDO DE ACEITE (%)
>35
32 a 35
<32
CUADRO 13. ESPECIFICACIONES DE COMPOSICIÓN DE ÁCIDOS GRASOS EN
ACEITES PROVENIENTES DE GRANOS DE CÁRTAMO DE LAS
VARIEDADES
DE
ALTO
POLIINSATURADO
Y
ALTO
MONOINSATURADO (Carthamus tinctorius L).
ALTO POLIINSATURADO (%)
ALTO MONOINSATURADO (%)
MÍNIMO
MÁXIMO
MÍNIMO
MÁXIMO
ACIDO MIRÍSTICO C14:0
0
0.2
0.0
0.1
ACIDO PALMÍTICO C16:0
5.3
8.0
5.0
6.0
ACIDO ESTEÁRICO C20:0
1.9
2.9
1.5
3.5
ACIDO ARAQUÍDICO C20:0
0.2
0.4
0.0
0.5
ACIDO BEHÉNICO C22:0
0.2
0.8
0.0
0.2
ACIDO LIGNOCÉRICO C24:0
0.0
0.2
ND
ND
TOTAL ÁCIDOS GRASOS SATURADOS
7.6
12.5
6.5
10.3
0
0.2
0.0
0.2
ACIDO OLEICO C18:1
8.4
30.0
7.0
83.0
ACIDO GADOLÉICO C20:1
0.1
0.3
0.0
0.5
ACIDO ERÚCICO C22:1
0.0
1.8
ND
ND
ACIDO TETRACOSADECENÓICO C24:1
0.0
0.2
ND
ND
TOTAL ÁCIDOS GRASOS MONOINSATURADOS
8.5
32.5
70.0
83.7
ÁCIDO LINOLEICO C18:2
67.8
83.2
13.0
18.0
0
0.1
0.0
0.5
67.8
83.3
13.0
18.5
PARÁMETRO ÁCIDO GRASO
ACIDO PALMITOLEÍCO C16:1
ÁCIDOS 18:3, SIN ASIGNAR CIS O TRANS
TOTAL ÁCIDOS GRASOS POLIINSATURADOS
NOTA: ND = No detectados
19
IV.- ORIGEN CITOGENÉTICO
El cártamo, con base a su número cromosómico diploide está
clasificado en cuatro grupos: I. Carthamus tinctorius, C. arborescens, C.
oxyacanthus, y C. palaestinus con 2n igual a 24. II. C. alexandrinus, C.
glaucus, C. syriacus y C. tenuis con 2n igual a 20. III. C. lanatus con 2n igual
a 44 y IV. C. baeticus con 2n igual a 64. Las especies del grupo I proceden en
su mayor parte del oeste de Asia; los híbridos entre esas especies son
fértiles. Las especies del grupo II se encuentran en el este de la región
mediterránea; sus flores contienen antocianina, mientras que las del Grupo I
carecen de ella. Cruzas interespecíficas entre el grupo II no se han estudiado.
El C. lanatus es probablemente un alopoliploide entre especies
pertenecientes a los Grupos I y al II, ya que se ha encontrado en regiones en
donde abundan esos dos grupos. El C. baeticus se localiza en la península
Ibérica y el norte de África, probablemente tuvo al C. lanatus como uno de sus
progenitores y el otro sea alguna especie del Grupo II.
Híbridos interespecíficos del Grupo I con II, I con III y II con III son
estériles. Híbridos entre C. lanatus y C. baeticus son parcialmente fértiles.
En C. tinctorius se han determinado dos variedades botánicas, la
inermis y la typicus; la primera se caracteriza por carecer de espinas y la
segunda por su espinosidad.
4.1.- Clasificación taxonómica
El cártamo (Carthamus tinctorius L.) pertenece a la siguiente
clasificación taxonómica (Cuadro 14).
CUADRO 14. CLASIFICACIÓN TAXONÓMICA DEL CARTAMO.
Reino: Vegetal
División: Tracheophyta
Sub-división: Pteropsidae
Clase: Angiospermae
Sub-clase: Dicotyledoneae
Familia: Compositae o Asteraceae
Sub-familia: Carduceae/ tubiloflora
Tribu: Cynereae
Género: Carthamus
Especie: tinctorius
Sub-especie: Inermis(sin espinas), typicus(con espina)
20
El sistema de clasificación, basado en información anatómica,
corológica (biogeográfica, relacionada a distribución) y biosistemática, ha sido
desarrollado y propuesto por López en 1989. En este sistema, los géneros
Carthamus y Carduncellus son remplazados por cuatro nuevos géneros:
Phonus cuya distribución geográfica se encuentra en la península Ibérica
(España y Portugal) y norte de África; Lamottea, principalmente encontrado
en las región poniente del Mediterráneo; Carthamus distribuido en el oeste y
centro de Asia, así como en el Mediterráneo y Carduncellus distribuido en la
región occidental de Europa, región del Mediterráneo, norte de África, Egipto
e Israel (Palestina).
Las especies de los géneros Phonus, Lamottea y Carduncellus son
todos clasificados como perennes y tienen 24 cromosomas en su genoma y el
género Carthamus contiene sólo especies anuales y cuenta con miembros de
20, 22, 24, 44 y 64 cromosomas, incluyendo algunas especies alopoliploides
putativos. Sólo el nuevo género Carthamus está subdividido en secciones con
las especies indicadas.
Sección Carthamus. Cuenta con 24 cromosomas e incluye las
siguientes especies: C. curdicus H., C. gypsicola I., C. oxyacanthus B., C.
palaestinus E., C. persicus W. y C. tinctorius L.
Sección Odonthagnathius. Cuenta con 20 ó 22 cromosomas e
incluye las siguientes especies: C. boissieri H., C. dentatus V., C. divaricatus
B. (con 22 cromosomas), C. glaucus B., C. turkestanicus M.
Sección Atractylis. Cuenta con un presumible número X de 11 e
incluye numerosos poliploides incluyendo las siguientes especies: C. lanatus
L., C. creticus N. y C. turkestanicus M (Li y Mündel, 1996).
4.2.- Morfología
El cártamo es miembro de la familia Compositae o Asteraceae. La
planta es anual con raíz pivotante, su tallo es erecto, ligeramente pubescente
o glabro, sólido y ramificado. El número de ramas varía de acuerdo al
genotipo y a la densidad de siembra. El tipo de germinación es epígea, es
decir que los cotiledones salen al emerger del suelo. El hipocotilo al emerger
es
verde
amarillento
o
incoloro,
es
glabro
y
cilíndrico.
http://es.wikipedia.org/wiki/C%C3%A1rtamo
21
Posterior a la emergencia se
presenta una etapa de lento
desarrollo, durante la cual una gran
cantidad de hojas son producidas
cerca
del
nivel
del
suelo,
llamándosele etapa de “roseta”. Las
hojas en esta etapa carecen de
espinas, son grandes y ovaladas o
alargadas con color verde intenso y
glabras.
Permanecen en semilatencia
por aproximadamente un mes
cuando las temperaturas son bajas, y
menor
tiempo
cuando
las
temperaturas son altas. En esta
misma etapa se lleva a cabo el
crecimiento rápido de la raíz, la cual
inicia a profundizar en búsqueda de
humedad. Posteriormente, se inicia
la elongación del tallo y la
ramificación. Ahora las hojas son
más cortas, ovaladas, aserradas y
con dentaduras coriáceas que terminan en pequeñas espinas.
Las
inflorescencias
son capítulos no caducos
localizados en la terminación
de
las
ramas.
Son
esferoides revestidos por
brácteas
puntiagudas
y
coriáceas; las brácteas son
consistentes y sirven como
protección natural.
Las florecillas son en
cantidades variables pero
alrededor de 50. Los pétalos
pueden
ser
de
color
22
amarillo, anaranjado, rojo y blanco-cremoso, cuando están frescas. Al
secarse, las flores amarillas pueden permanecer amarillas o tornarse
anaranjadas y las anaranjadas pueden permanecer anaranjadas o tornarse
de color rojo; en las de color rojo y blanco no se han observado cambios de
color al secarse. La corola es pentámera, el androceo cuenta con cinco
estambres soldados en el ápice formando un cilindro hueco por el que pasa el
estilo filiforme terminando éste en el estigma. El ovario contiene solo un óvulo.
El fruto es un aquenio de color blanco o cremoso, glabro surcado por
cuatro aristas. El vilano es corto y no persistente. El pericarpio está algo
adherido al embrión y el tegumento es liso.
4.3.- Descripción de la planta
La semilla para germinar requiere temperaturas ambientales mayores
de 40 C, con temperaturas del suelo de 15 a 20 0C; la semilla germina muy
rápido y en un término de siete a ocho días emergen las plántulas y pasan por
la etapa de roseta por un periodo de cuatro a cinco semanas, sí la siembra se
realiza en fecha óptima. Durante éste tiempo la planta produce bastantes
hojas al nivel del suelo y empieza el crecimiento rápido de la raíz.
Posteriormente, se presenta la elongación rápida del tallo y aproximadamente
a una altura de 30 cm aparecen las ramas. La altura de planta puede variar
de 40 cm hasta 2.0 m dependiendo de la fecha de siembra y de la densidad
de población. Fechas de siembra posteriores al periodo óptimo de siembra y
23
bajas poblaciones reducen la altura de la planta. Aproximadamente a una
altura de 30 cm aparecen las ramas del tallo principal, también llamadas
ramas primarias; el número de éstas dependerá de la densidad de población
utilizada, de la fecha de siembra y de otros factores como la humedad del
suelo, posteriormente, se pueden llegar a formar ramas secundarias y
terciarias. El ángulo de ramificación con respecto al tallo puede variar de 30 a
70 oC, este grado es controlado genéticamente y ambientalmente.
Posteriormente, se inicia la formación de botones florales y después la
floración. Ésta se inicia en los botones de las ramas primarias, después en los
de las secundarias y así sucesivamente. Dependiendo de la ubicación en la
planta, del manejo del cultivo y de las condiciones ambientales, entre otros.
En cada capítulo, las primeras flores que abren y son polinizadas son las
situadas en la periferia y después las del centro de la inflorescencia. El
número de semillas en cada capítulo puede variar de 20 a 100.
Existen genotipos con alto porcentaje de autofecundación (95%). Las
variedades cultivadas en México fluctúan en alrededor del 85 a 90%. Las
abejas son los principales medios de la polinización cruzada.
El fruto o aquenio maduro de las variedades más comunes está
constituido por un 33-60% de cáscara y 40-60% de almendra. Los contenidos
de aceite pueden variar de 20 a más de 45% en la semilla. La selección para
altos contenidos de aceite en la semilla de las nuevas variedades ha reducido
el grosor de la testa o pericarpio. Una semilla individual alcanza su madurez
fisiológica alrededor de 25 días después de iniciada la floración.
El cártamo requiere de al menos 120 días para completar su ciclo
normal. Sin embargo, dentro de las fechas recomendadas para las diferentes
regiones de México, la planta alcanza su madurez de cosecha desde los 140
a los 170 días después de la siembra (Kaffka, 2000).
V.- REQUERIMIENTOS EDAFOCLIMÁTICOS
5.1.- Ecología
El cártamo se adapta a regiones de poca precipitación pluvial y baja
humedad relativa, principalmente, lo cual le permite escapar a enfermedades
radicales y foliares.
24
Para su primera fase de desarrollo vegetativo, se requieren
temperaturas bajas que corresponde a la época de la planta denominada
“roseta”, que es cuando esta semilatente respecto a su crecimiento. En esta
fase pueden transcurrir de seis a ocho semanas, después de las cuales se
realiza un fuerte crecimiento al iniciar la formación del tallo principal y luego
continuar con la ramificación. En esta última etapa, se presenta el aumento de
la temperatura, la que favorece el máximo desarrollo vegetativo y las
condiciones adecuadas para una óptima floración y fructificación. (Robles,
1980).
5.2.- Temperaturas
Requiere condiciones de clima templado a frío en sus primeras fases
del desarrollo y templado a caliente a mediados y finales de su desarrollo,
respectivamente.
La temperatura óptima es entre 20 y 35 0C, temperaturas menores de
5 a 100C afectan su desarrollo, pudiendo llegar a causarle quemaduras
dependiendo de la intensidad y duración de ésta y de la etapa de desarrollo
en la que se encuentre; siendo más tolerante durante las primeras etapas del
desarrollo. Se reporta también que a mayor densidad de población la planta
es más susceptible a heladas, las temperaturas mayores de 400C afectan la
polinización y por consecuencia a la producción y calidad de la semilla.
(Robles, 1980)
5.3.- Fotoperiodo
Este factor no influye en gran medida en el desarrollo de este cultivo
como en otras especies, sin embargo, dentro del germoplasma mundial se
pueden identificar genotipos que puedan marcar diferencias.
5.4.- Altitud
Las mejores regiones productoras de este cultivo se encuentran entre
0 a 800 msnm. En regiones mayores a 1,000 msnm la producción decrece.
En México las regiones más productoras se encuentran en los estados de
Baja California, Sonora, Sinaloa y Tamaulipas y éstas se ubican entre los 0 y
100 msnm. Sin embargo, durante los últimos ciclos este cultivo ha presentado
25
muy buen comportamiento en la región de la Laguna de Chapala, la cual está
ubicada a 1,950 msnm.
5.5.- Latitud
Se considera que las mejores áreas productoras de cártamo están
enclavadas entre los 400 Latitud N y 400 S, exceptuadas las regiones
próximas a la región ecuatorial, ya que en estas regiones, tanto la
temperatura como la humedad, son muy altas y se sabe que la planta
necesita frío al inicio del desarrollo y baja humedad para evitar enfermedades.
5.6.- Suelo
Los mejores rendimientos de cártamo se obtienen en suelos
profundos, fértiles y bien drenados. Los suelos de las clases I y II son en los
que se obtienen los mejores rendimientos, mientras que en los de clase III y
IV se presentan problemas con pudriciones de raíz y limitaciones en la
humedad disponible (Kaffka, 2000).
En general esta planta se adapta a cualquier tipo de suelo. Si
consideramos tres tipos de suelo: los suelos de textura media, que son en los
que se obtienen las mayores producciones, seguido de los arenosos y por
último los arcillosos.
En los suelos medios y arenosos, los riesgos de problemas de raíz son
menores, ya que retienen mayor humedad aprovechable para la planta,
evaporándose o lixiviándose más rápido la humedad en exceso después de
un riego o lluvia; en cambio en los de tipo barrial esta humedad en exceso se
mantiene más tiempo, favoreciendo o manteniendo condiciones más propicias
para el desarrollo de hongos en el suelo.
5.7.- Salinidad
Una salinidad excesiva en el suelo reduce el rendimiento de la mayoría
de los cultivos. Estas reducciones pueden variar desde ligeras hasta totales,
dependiendo del cultivo y de la severidad del problema de sales.
El cártamo tolera más la salinidad que otros cultivos, siendo superado
por cebada, algodonero, remolacha, trigo y zacate ryegrass (Cuadro 15). El
26
cultivo de cártamo es más sensible a la salinidad durante la germinación que
en etapas más avanzadas. La salinidad afecta al porcentaje de germinación,
disminuyendo la población inicial del cultivo; después de la emergencia
algunas plantas no toleran los niveles elevados de salinidad y mueren.
Durante el desarrollo del cultivo el crecimiento es lento y las plantas afectadas
son pequeñas y raquíticas. La tasa de transpiración es baja, la estructura de
las células se altera, la floración se adelanta por lo que se reduce el ciclo
vegetativo. En algunas plantas, la floración de los capítulos no prospera y en
algunos casos donde existe floración no hay formación de grano. Finalmente,
en algunos casos en el llenado de grano, éstos no alcanzan a hacerlo
completamente, disminuyendo el tamaño y el peso de semilla. Otro de los
factores que también se ve afectado negativamente por la salinidad es el
porcentaje
de
aceite
(Palacios,
1990;
Soltanpour,
2001).
(http://agric.ucdavis.edu/crops/ oilseed/saff6soil.htm)
CUADRO 15. RESPUESTA A SALES DE DIVERSOS CULTIVOS
CULTIVO
CEBADA
ALGODONERO
REMOLACHA
TRIGO
RYEGRASS
CÁRTAMO
SORGO
SOYA
ARROZ
MAÍZ
CACAHUATE
FRIJOL
0
8.0
7.7
7.0
6.0
5.6
5.3
4.0
5.0
3.0
1.7
3.2
1.0
REDUCCIÓN DEL RENDIMIENTO (%)
mmhos / cm
10
25
10.0
13.0
9.6
13.0
8.7
11.0
7.4
9.5
6.9
8.9
6.2
7.6
5.1
7.2
5.5
6.2
3.8
5.1
2.5
3.8
3.5
4.1
1.5
2.3
50
18.0
17.0
15.0
13.0
12.2
9.9
11.0
7.5
7.2
5.9
4.9
3.6
FUENTE: Soltanpour, P.N. and R.H. Follett. 2001.
5.8.- Humedad
La planta de cártamo requiere de menos humedad para producir que
muchos otros cultivos. Inicialmente se pensaba que este cultivo era resistente
a la sequía, pero esta confusión sobrevino debido a que en algunas áreas el
manto freático está muy alto y por otro lado, a que la planta tiene un sistema
27
radical muy extenso y profundiza mucho (dos a tres metros), obteniendo de
esta manera suficiente humedad para completar su ciclo. En algunas áreas
del estado de California en Estados Unidos de América, se han encontrado
plantas cuya raíz profundiza hasta 3.7 m, en suelos profundos y bien
drenados. (http://agric.ucdavis.edu/crops/oilseed/ saff6soil.htm)
En suelos en los cuales la retención de humedad aprovechable por las
plantas es muy baja, el efecto de ésta en la planta se refleja en una reducción
del área foliar, de la altura de la planta, del número de ramas, del número de
capítulos y el número de semillas por planta (Hashemi, 1994).
VI.- GENÉTICA
A continuación se resumen algunos trabajos con el propósito de indicar
el tipo de acción de los genes que han sido encontrados determinando
caracteres potencialmente útiles en cártamo.
6.1.- Caracteres de calidad de semilla y aceite.
Debido a que semilla con pericarpio grueso tiende a mantener bajo el
contenido de aceite, la reducción en la proporción del pericarpio incrementa
directamente el porcentaje de aceite. Se ha encontrado un número de genes
que gobiernan para fenotipos específicos, y han sido identificados de la
siguiente manera: testa parcial (par par), recesivo a testa normal,
independientemente heredada de testa delgada (th th) y testa rayada (stp
stp), testa rayada gris (stp2) y testa reducida (rh rh) (pequeñas manchas
oscuras en la semilla). La testa parcial produce aquenios los cuales son
predominantemente oscuros debido a una reducción en las capas exteriores
del esclerénquima del pericarpio, resultando en altos niveles de aceite y
proteína; el carácter de testa parcial es recesivo a testa reducida. Testa
normal es dominante o parcialmente dominante a testa reducida,
dependiendo de los progenitores utilizados con testa normal. Testa delgada
(th th) está asociado con un efecto pleiotrópico por el grosor de las paredes
de las células endoteliales en las anteras, con un tipo de esterilidad
estructural masculina, pero no se pudo producir el híbrido debido a la
sensibilidad de estos genotipos al efecto del ambiente. Testa rayada (stp stp),
está asociado a un color y olor indeseable en el aceite. (Abel y Lorance, 1975;
Urie, 1986 y Sangale- et al., 1982).
El gene recesivo th en estado homocigótico disminuye la proporción de
la cáscara de cártamo a 20% comparadas con 40% en variedades normales y
28
el contenido de aceite se incrementa a 46% comparadas con el 39%
observado de las normales (Rubis, 1967)
El mejoramiento genético para calidad de aceite significa cambiar la
composición de los ácidos grasos, éste a su vez requiere de la manipulación
del proceso sintético de los ácidos grasos, principalmente los ácidos oleico y
linoleico. La cantidad de estos ácidos depende de los alelos OL, ol1 y ol
(Knowles, 1989; Stumpf, 1975). Los tres genes que controlan la producción
de los ácidos oleico, linoleico y esteárico (ol ol, li li, y st st, respectivamente),
parecen ser genes recesivos mayores en diferentes loci. Incrementos en el
ácido esteárico están acompañados por decrementos en el porcentaje de
oleico o linoleico o ambos y, en ciertos genotipos al parecer las condiciones
frescas durante el desarrollo del cultivo reducen los ácidos esteárico y oleico
e incrementan el ácido linoleico. Dos alelos han sido reportados para el locus
ol y este locus está ligado a la esterilidad trigénica masculina-femenina (S1)
(Urie, 1986; Urie and Zimmer, 1970a, 1970b, 1986; Ladd y Knowles, 1971;
Carapetian y Knowles, 1993). Los estudios genéticos indican que la calidad
del aceite en la semilla del cártamo es determinado por el genotipo de la
semilla y no tiene efecto maternal (Yermanos et al., 1967).
6.2.- Caracteres de la planta y del desarrollo
Se ha estudiado el periodo de floración usando cruzas interespecíficas
de cártamos cultivados y silvestres, encontrándose como una característica
de herencia cuantitativa, influenciada por efectos del gene de dominancia,
aditividad y epistasis. Con base a cruzas de 10 progenitores dialélicos, se
encontró dominancia parcial para días a floración y sobredominancia en la F1
a dominancia completa en la F2 para días a madurez fisiológica.
Se ha identificado que el número de capítulos por planta es el
componente de rendimiento más importante en cártamo. Este mismo carácter
fue el que más contribuyó a un efecto heterótico en 17 cruzas de cártamo. El
número de ramas primarias y secundarias fue el segundo contribuidor más
importante al efecto heterótico. Muchos de los caracteres estudiados
parecieron ser controlados por la acción de un gene no aditivo con un grado
de sobredominancia.
Respuestas correlacionadas en varias cruzas mostraron que el
carácter número de capítulos por planta fue el que mejor contribuyó como
criterio de selección para rendimiento de grano. El número de capítulos por
29
planta fue controlado por cuatro grupos de genes en una cruza dialélica
incompleta de 10 progenitores con la acción de un gene principalmente no
aditivo. Sin embargo, la acción de un gene aditivo controló el número de
ramas primarias. Otro estudio de seis generaciones indicó que los efectos de
dominancia fueron predominantes para capítulos por planta y ramas por
planta de tal manera que recomiendan la selección recíproca recurrente para
el mejoramiento del rendimiento en cártamo.
Generalmente el cártamo no presenta dormancia y puede germinar en
el capítulo si se presentan lluvias al momento de la cosecha. Al realizar
cruzas interespecíficas de cártamo (C. tinctorius) con sus relativos silvestres
(C. palaestinus) se encontró una variación no aditiva para el tiempo de
germinación en la mayoría de las cruzas. Asimismo, se observó una
segregación transgresiva para la no germinación. De estos trabajos se
deduce que genes en un mínimo de cuatro locis controlan la germinación.
Uno de los factores limitantes en la producción de cártamo en el
Noroeste de México es su ciclo muy largo que fluctúa entre 150 y 180 días a
la cosecha, dependiendo de la fecha de siembra, por lo que no compite con
los cereales y no permite la rotación con los segundos cultivos. Por lo
anterior, se están desarrollando materiales de ciclo corto con el fin de facilitar
la rotación con otros cultivos, que se mantengan menor tiempo en el campo y
además requieran de menor cantidad de agua. En lo que respecta a la
variabilidad en la altura de planta es predominantemente genético; sin
embargo, esta característica es influenciada por el ambiente. Son varios los
genes que condicionan la altura de planta. Los programas de mejoramiento
genético buscan reducir la altura de planta de los genotipos con el objetivo de
incrementar el índice de cosecha.
La correlación entre rendimiento de grano, altura de planta y ciclo
vegetativo no es muy significativa (Ashri, 1976) por lo tanto las selecciones
artificiales para mayor rendimiento pueden combinarse con selecciones de
plantas de porte bajo y ciclo vegetativo corto.
Para que el cultivo de cártamo tenga éxito, se requiere de variedades
con superioridad en rendimiento de grano, bajo condiciones óptimas y que
también puedan mostrar rendimientos relativamente mejores en condiciones
subóptimas (Blum, 1979).
El carácter de espinosidad en las hojas es básicamente dominante
sobre el carácter sin espinas ya que en el grado de espinosidad están
30
involucrados cuatro genes Sa, Sb, Sc y Sd. El gene Sa es considerado el
gene principal, con cualquiera de otros dos genes remanentes, actuando
como duplicados complementarios en acción. El color de flor es considerado
como neutral para rendimiento de grano y aceite (Kotecha, 1979; Gupta y
Singh, 1988a, Ashri, 1971).
6.3.- Caracteres de resistencia a enfermedades
La genética y modo de herencia de la tolerancia o resistencia a
enfermedades, como en los casos de estrés por otros factores bióticos o
abióticos, como insectos, maleza, salinidad, alcalinidad, etc., no está bien
definida en muchos de los casos. Normalmente estas características son
incorporadas más fácilmente por medio de evaluaciones de germoplasma a
diferentes estreses en campo o en laboratorio y seleccionando aquellos que
sobrevivan a las diferentes tensiones e incluirlos en el lote de progenitores.
Con base a estos últimos tipos de trabajos se ha logrado incorporar tolerancia
a diversas enfermedades, así como utilización de diferentes métodos como
son: retrocruzas y selección en masa de líneas resistentes (Li y Mündel,
1996). Dentro de las variedades de cártamo, se cuenta con mucha variación a
la respuesta del ataque de tizón foliar Alternaria carthami y roya o chahuixtle
Puccinia carthami y algunas altamente tolerantes han sido liberadas (Musa y
Muñoz, 1989).
VII.- MEJORAMIENTO GENÉTICO
7.1.- Técnicas de cruzamientos
El cártamo es un cultivo predominantemente autógamo, con un
potencial genético de 90% de autopolinización, aunque dependiendo de las
condiciones ambientales la polinización cruzada puede llegar hasta el 50%,
de tal manera que en ciertas poblaciones de cártamo la homogeneidad se
puede perder rápidamente. En el estado de Sonora el porcentaje de
polinización cruzada reportada, varía de 6.8 a 10%, la cual es considerada
baja. Las abejas de varios géneros, así como otros insectos son atraídos por
la flor del cártamo para tomar polen y néctar, y son los principales medios
para la polinización cruzada. El viento no es un factor que influye en la
polinización cruzada de este cultivo. Con el fin de asegurar una
homogeneidad genética en estudios genéticos y de mejoramiento, las flores
de los progenitores a usar, normalmente se cubren con bolsas de papel
durante uno o dos años para su autopolinización (Muñoz, 1977).
31
Para llevar a cabo los cruzamientos, se seleccionan botones florales
en etapas avanzadas (Figura 1), con unas tijeras se corta la mitad de las
brácteas del capítulo para dejar descubiertas las flores (Figura 2). Utilizando
unas pinzas de disección curvas se lleva a cabo la emasculación, tomando el
pedicelo floral y se quiebra con movimientos laterales, lo que permite que
desprendan la corola y las anteras sin romper los sacos polínicos (Figura 3).
Con las pinzas se toma la parte superior de la corola sacándose hacia arriba,
quedando solamente los estigmas (Figura 4); una vez terminada esta
actividad, con el fin de evitar la desecación de los estigmas e impedir la
entrada de polen extraño, el botón floral se cubre con una bolsa de papel
identificándola con la fecha de emasculación y el nombre del progenitor, que
en este caso será el femenino (Figura 5).
FIGURA 1
FIGURA 2
FIGURA 3
FIGURA 4
FIGURA 5
32
Al siguiente día, cuando los estilos se han elongado, las florecillas
emasculadas son fertilizadas con polen de capítulos preseleccionados y que
estén liberando alta cantidad de polen (Figura 6). Posteriormente, el botón ya
polinizado se cubre con la misma bolsa y se anota la fecha de la hibridación y
del progenitor masculino correspondiente (Figura 7). Con el fin de llevar un
registro de eficiencia de cruzamientos, se incluyen las letras iniciales del
nombre de las personas que realizó la hibridación (Figura 8) En general, el
desarrollo de esta técnica toma mucho tiempo y es la más empleada dentro
de los programas de mejoramiento (Robles, 1980).
FIGURA 6
FIGURA 7
FIGURA 8
33
En la India se desarrolló una técnica llamada emasculación en masa
que toma menos tiempo que la emasculación individual de florecillas y
permite una producción más eficiente de semillas, producto de las cruzas y
consiste en lo siguiente: durante el inicio de la floración se seleccionan de 5 a
10 capítulos bien desarrollados de 4 a 5 ramas de la parte superior y se
cubren con bolsas de polietileno de una densidad baja a media. Todas las
ramas restantes de las plantas son eliminadas. La temperatura y la humedad
que se forma dentro de la bolsa, previene la dehiscencia de las anteras.
Durante la mañana, cuando los capítulos alcanzan el 50% de la
floración, se retira la bolsa y se lleva a cabo la polinización con el progenitor
previamente seleccionado y se vuelve a tapar; esta operación se realiza
durante tres días, con el fin de maximizar la fertilización. Cuando los capítulos
alcanzan el 100% de floración, las bolsas de polietileno se cambian por
bolsas de papel para reducir la humedad y prevenir enfermedades en el
capítulo. Con esta técnica, una persona puede cubrir 15 capítulos por hora,
comparado con la emasculación convencional en la que se emasculan 15
florecillas en cada uno de 12 capítulos.
Utilizando la técnica en masa se pueden obtener 1,207 semillas por
persona, por hora, comparado con 102 que se obtienen por el método
convencional. La técnica de emasculación en masa sólo es efectiva a
temperaturas moderadas, esto debido a que con altas temperaturas el polen
puede esterilizarse dentro de las bolsas (Li y Mündel, 1996).
7.2.- Método de pedigree o genealógico
Los mejoradores de plantas de cártamo generalmente usan
variaciones del método de pedigree o genealógico por medio de selecciones
individuales de poblaciones segregantes desde la generación F2,
seleccionando caracteres altamente heredables como precocidad, resistencia
a enfermedades, etc. Líneas uniformes a partir de las generaciones F3 o F4
con una alta expresión de caracteres deseados pueden ser avanzadas a
ensayos de rendimiento a pequeña escala. Las retrocruzas han sido utilizadas
para introducir caracteres específicos, especialmente la resistencia a las
enfermedades en las variedades comerciales.
La selección masal en campos naturalmente infestados con una
multitud de enfermedades ha sido utilizada para desarrollar variedades con
34
una mejor resistencia. Programas de selección recurrente, el uso de
germoplasma con esterilidad genética masculina y el sistema de esterilidad
citoplasmática masculina, también han sido usados por los fitomejoradores de
cártamo para incorporar resistencia a enfermedades e incrementar los
potenciales de rendimiento (Li y Mündel, 1996).
VIII.- EL MEJORAMIENTO GENÉTICO DE CÁRTAMO EN MÉXICO.
En el Noroeste de México se inició la experimentación con cártamo en
el año de 1958, con pruebas de adaptación y rendimiento, de introducciones
mejoradas y determinación de las prácticas óptimas de cultivo. Los defectos
de adaptación varietal y la longevidad natural del cártamo, originaron la
necesidad de mejorar genéticamente los cultivares mediante nuevas
introducciones, calificaciones y clasificaciones, selecciones y cruzamientos de
diversas fuentes, atacando problemas de rendimiento de grano y aceite, que
son los más difíciles de manejar y superar, combinatoriamente con las demás
características deseables, a veces antagónicas como son las resistencias o
tolerancias a enfermedades, insectos plagas y extremos de humedad,
eficiencia en el uso de nutrimentos, agua y luz, y competencia particularmente
con maleza, y hasta características agronómicas y convencionales de
manejo.
Fue en el año de 1971 cuando en la ciudad de Los Mochis, Sinaloa se
inició la calificación y clasificación disponible, que incluía a las variedades
comerciales recomendadas de origen extranjero, nuevas introducciones y una
colección mundial introducida de los Estados Unidos en 1969, consistente de
1552 líneas. Para el año de 1972, se iniciaron los trabajos de mejoramiento
genético con 202 hibridaciones individuales simples, entre 18 variedades
comerciales y experimentales sobresalientes en productividad y resistencia a
enfermedades (Quilantán, 1978).
Las variedades de cártamo a nivel mundial han sido desarrolladas a
través de diferentes métodos de mejoramiento genético (Knowles, 1980;
Harrigan, 1989). En los programas de fitomejoramiento de México el método
más comúnmente utilizado es el de pedigree o genealógico, como lo
mencionan (Krupinsky, 1974; Harrigan, 1985). También se utiliza el método
de retrocruzas para la incorporación de genes de resistencia a enfermedades
y contenido de aceite.
35
En el método genealógico, primeramente como en todos los
programas de mejoramiento, se reúne la mayor variación genética posible
existente dentro de la especie, se caracteriza, se evalúa y con el fin de
generar mayor variación genética, se realizan las cruzas entre progenitores
previamente seleccionados. La semilla híbrida obtenida de las cruzas se
siembran en surcos de seis metros de longitud, separados a 80 cm, la semilla
obtenida de estos surcos da origen a la generación F1, la cual se cosecha en
masa y a partir de la generación F2 y hasta F5 se realizan selecciones de
plantas individuales con las características deseadas y desde la generación
F3 y hasta F6 la selección se hace en masa. Desde la generación F2 hasta la
F6, el tamaño de parcela es de dos surcos de 6 m de longitud por 80 cm de
ancho y cada 20 líneas se ponen los testigos regionales.
Posterior a la selección masal, las líneas se someten a la primera
evaluación de rendimiento, a la que se le llama parcela preliminar de
rendimiento (PPR’S), no utilizándose un diseño experimental. En este nivel el
tamaño de parcela es de cuatro surcos de 6 m de longitud por 80 cm de
ancho, sin repeticiones. Las líneas seleccionadas en PPR’S pasan a ensayos
de rendimiento formales a nivel región durante dos años, empleando en estos
casos diseños experimentales con cuatro repeticiones y los genotipos
seleccionados de estos ensayos son los que conforman un ensayo que se
distribuye a nivel nacional a los cuales se les denomina Ensayo Uniforme de
Líneas Élite. En todos los ensayos de rendimiento de grano, se incluyen un
mínimo de tres testigos correspondientes a las mejores variedades utilizadas
en forma comercial en cada una de las localidades. En el Ensayo Uniforme es
en donde se identifican a los genotipos con mayor rendimiento, estabilidad de
rendimiento, alta tolerancia a enfermedades y alta calidad industrial. Los más
sobresalientes, se seleccionan para liberarse como variedades. En los últimos
años, se han implementado las parcelas de validación tecnológica en las
cuales se evalúa el comportamiento de las líneas élite en campos de los
productores, en áreas no menores de una hectárea y aplicando la tecnología
de producción utilizada por el propio productor, y aquellas líneas élite que
muestren un buen comportamiento a este nivel, son las que se eligen para ser
liberadas como variedades.
En estas parcelas de validación además de evaluarse las líneas líneas
élite en parcelas comerciales para obtener indicadores sobre su potencial de
rendimiento, también sirven para demostrar las bondades de las nuevas
tecnologías generadas en los centros de investigación, facilitar la
36
transferencia de tecnología a los agentes de cambio y productores por medio
de demostraciones e incrementar semilla antes de su liberación.
Las retrocruzas, también son ampliamente utilizadas en los programas
de mejoramiento y van enfocadas principalmente a la incorporación de
resistencia a enfermedades y alto contenido de aceite y ácidos grasos oléico
y linoléico.
Varios autores indican que la selección de plantas individuales en las
generaciones F2, F3 y F4, con base en el criterio de número de capítulos por
planta y rendimiento de semilla por planta es la más acertada para el
mejoramiento del rendimiento de grano (Patil et al., 1994). Los parámetros
más relacionados con rendimiento en otros estudios genéticos han sido: los
días a madurez, número de capítulos por planta, número de ramas primarias
y el número de semillas en la cápsula principal (Misra y Yadav, 1991 y Abel,
1976). Mientras que con base a las correlaciones de los componentes
mayores para rendimiento de grano, se indica que las características a
seleccionar para mejorar rendimiento de grano y contenido de aceite en forma
simultánea son plantas con pocos capítulos pero de tamaño grande con alta
cantidad de semillas de tamaño chico. (Ramachandram y Goud, 1982).
Los programas de mejoramiento genético de cártamo en México,
pertenecientes al Instituto Nacional de Investigaciones Forestales Agrícolas y
Pecuarias (INIFAP), actualmente están ubicados en los Campos
experimentales sur de Tamaulipas en el estado del mismo nombre, en el
Campo Experimental Valle de Culiacán en Sinaloa y Campo Experimental
Valle del Yaqui en Sonora.
8.1.- Variedades
Las variedades que a
continuación se describen son
producto de investigaciones
realizadas desde los inicios
del mejoramiento en México,
por
los
Programas
de
Mejoramiento Genético de
Cártamo del INIFAP y de
algunas empresas extranjeras.
37
8.1.1.- Linoleicas
GILA. Es un cultivar norteamericano de alta ramificación, su follaje es
verde oscuro; cada rama produce una cabezuela terminal cuyas flores son de
color amarillo-anaranjado. La floración se presenta de los 110 a los 115 días y
sus días a cosecha van desde los 175 a 180 días dependiendo de la fecha de
siembra. Es resistente al acame, desgrane y tolerante a la pudrición de raíz;
alcanza una altura promedio de 140 cm y su potencial de rendimiento es
superior a las 3 ton/ha, con un porcentaje de aceite en la semilla de 35%.
SAFFOLA 208. También de origen de Norteamérica, es semejante a
Gila en algunas características, como grado de espinosidad, ramificación,
color de flor, ciclo vegetativo y resistencia al acame, desgrane y pudrición de
raíz. Alcanza una altura superior a la de Gila (1.45 m), su rendimiento es
similar a Gila, aunque su contenido de aceite es del 37%.
HUMAYA 65. Es una variedad del tipo semitardío. El color de flor es
amarillo y cuando seca es rojo. La altura de planta es de 145 cm. Su
rendimiento es muy similar a Gila, sin embargo, es más tolerante a roya y
alternaria. Su contenido de aceite es de 33 a 35%.
KINO 76. Es una planta espinosa, ramificada, su follaje es verde claro,
las flores son amarillas cuando frescas, tornándose a un color rojizo al
secarse. Los tallos son suculentos durante los primeros 60 días,
presentándose ligeramente doblados después del primer riego de auxilio.
Inicia su floración de los 120 a 125 días y su altura es de 1.45 m. Es tolerante
a roya y su ciclo vegetativo es de 185 a 190 días. Su rendimiento es de
aproximadamente 17% más que Gila. La semilla es de color blanco y cáscara
delgada y su contenido de aceite es de 38%.
ACEITERA. El nombre original de esta variedad es Alhuey. La planta
es más ramificada que Gila y Kino 76; sus flores son amarillas cuando están
frescas y anaranjado-rojizo al secarse. El color del follaje es verde brillante.
Su floración es de 110 a 115 días y se cosecha a los 185-190 días después
de la siembra. Es resistente al acame y la planta alcanza una altura de 1.65
m. Su rendimiento promedio es de 5% más que Gila y su porcentaje de aceite
es del orden de 41%.
38
MANTE-81. La planta es de follaje color verde opaco. Inicia su
floración a los 110 días y su ciclo vegetativo es de 160 días. El color de flor es
amarillo cuando frescas y rojizas al secar. La altura de planta es de 131 cm.
Es resistente a roya y susceptible a alternaria, aunque presenta un menor
grado de ataque que las variedades Gila y Saffola 208. Su rendimiento
promedio es del 10% mayor que Gila y su porcentaje de aceite es del 39%.
SAHUARIPA’88. Es una variedad con follaje verde claro de ciclo
intermedio. Inicia su floración a los 120 días y alcanza su madurez fisiológica
a los 150 días y la madurez de cosecha a los 180 días. Las flores son
amarillas cuando frescas y rojizas cuando seca. La altura de planta es de 150
cm, es resistente al acame y altamente tolerante a roya y alternaria. Su
rendimiento promedio es de 300 kg/ha más que Gila y el contenido de aceite
es de 39%.
QUIRIEGO’88. El color del follaje de esta variedad es verde claro. Su
ciclo es intermedio. Inicia la floración a los 115 días, alcanza la madurez
fisiológica a los 145 días y la madurez de cosecha a los 175 días después de
la siembra. El color de flor es amarillo cuando fresca y amarillo cuando seca.
La altura de planta es de 145 cm, es resistente al acame y altamente tolerante
a roya y alternaria. El rendimiento promedio es de 400 kg/ha más que Gila y
su porcentaje de aceite es de 38%.
SAN JOSÉ 89. Es una variedad de ciclo vegetativo intermedio, inicia
su floración a los 120 días y la madurez fisiológica a los 150 días. Su tallo es
erecto, rígido, tolerante al acame y la planta alcanza alturas de 150 cm. Las
flores son amarillas cuando frescas y se tornan rojizas al secar. Presenta una
alta tolerancia a roya y alternaria; el rendimiento de grano es de 20% más que
la variedad Gila y el contenido de aceite es de 37.6%.
SINALOA’90. El color del follaje de esta variedad es verde intenso,
inicia su floración a los 103 días y madura fisiológicamente a los 148 días. La
altura de planta promedio es de 155 cm. El color de flor es amarillo cuando
fresca y anaranjada cuando seca. Es tolerante al acame, tolerante a alternaria
y moderadamente tolerante a roya. Su rendimiento promedio es de 19% más
que Gila y el promedio de aceite es de 37.5%.
SAN IGNACIO’92. Esta variedad cuenta con un follaje de color verde
claro y alcanza una altura promedio de 127 cm. El ciclo vegetativo es del tipo
39
intermedio, iniciando su floración a los 117 días y la madurez fisiológica la
alcanza a los 152 días. Las flores cuando frescas y secas son de color
anaranjado y el polen amarillo. Es Tolerante al acame, es altamente tolerante
a roya y alternaria; su rendimiento promedio es del 10% superior a la variedad
San José’89, y la semilla contiene 32.6% de aceite.
SONORA’92. Es una variedad de ciclo intermedio-precoz, inicia su
floración a los 113 días y la madurez fisiológica a los 137 días después de la
siembra. Las flores cuando frescas y secas son de color anaranjado y el polen
amarillo. Tiene una altura promedio de 116 cm, siendo una de las variedades
con menor porte. Es tolerante al acame, alternaria y roya. Su rendimiento
promedio es del 11% superior a la variedad San José’89 y cuenta con un
contenido de aceite en la semilla de 36.4%.
BÁCUM’92. El ciclo vegetativo de esta variedad es del tipo intermedio,
la planta alcanza una altura de 126 cm. Inicia su floración a los 112 días y
alcanza su madurez fisiológica a los 137 días. Las flores cuando frescas y
secas son de color anaranjado y el polen amarillo. Es tolerante al acame y
altamente tolerante a roya y alternaria. Su rendimiento promedio es del 8%
superior a la variedad San José’89 y cuenta con un porcentaje de aceite del
orden del 37.5%.
8.1.2.- Oleicas
QUILANTÁN’97. Es la primera variedad de cártamo mexicana del tipo
oleica. Su ciclo vegetativo es intermedio, inicia su floración a los 113 días
después de la siembra y la madurez fisiológica a los 148 días. Las flores
frescas son de color amarillo y se tornan anaranjadas cuando secan; el polen
es de color amarillo. Cuenta con una altura de planta de 136 cm. Es
altamente tolerante al acame, alternaria y roya. El rendimiento promedio es de
3.5% más que el testigo del tipo linoleico Bácum’92 y 14.5% más que el
testigo del tipo oléico de origen estadounidense S-518. La semilla cuenta con
un porcentaje de aceite de 35.8%.
S-518. Esta es una variedad de origen estadounidense del tipo
intermedio-tardío. Inicia su floración a los 118 días y alcanza su madurez
fisiológica a los 151 días. Las flores son de color amarillo cuando frescas y
anaranjado cuando secas. La planta alcanza una altura de 136 cm. Es
altamente tolerante al acame, tolerante a alternaria pero susceptible a la roya
40
de la hoja. Su rendimiento promedio es del 10.7% menor que la variedad
linoleica Bácum’92 y 14.5% menor que la variedad oleica Quilantán’97. El
porcentaje de aceite contenido en la semilla es de 40.6%. (Chanda, 1990;
Chanda et al., 1993; García et al., 1993; Montoya, 1998).
S-344. Fue desarrollada por la compañía Seedtec, una división de
California Oils Corporation, para sustituir la variedad S-518 en México.
Proviene de la cruza entre la línea experimental 4114 con Bácum 92, Inicia su
floración entre 115-118 días y madura entre los 145-150 días. La planta
alcanza una altura promedio de 130 cm sembrada en fecha óptima. El color
de la flor fresca es amarillo y rojizo al secarse, muy similar a S-518. El peso
de 1000 semillas es de 39g. La semilla contiene un promedio de 42.6% de
aceite, la composición de aceite tiene un promedio de 81% de ácido oleico.
En rendimiento de grano ha sido competitivo con S-518, con un promedio de
2.38 ton/ha comparados con 2.34 ton/ha de S-518. Tiene más resistencia a
roya y alternaría que S-518. Sin embargo, es susceptible a la falsa cenicilla
del cártamo ocasionada por Ramularia Cárthami. Es una variedad de amplia
adaptación y puede establecerse en las regiones productoras de cártamo en
México.
CW-99. Esta variedad fue desarrollada por la compañía California
West, para sustituir la variedad CW-88 en México, Inicia su floración entre
116-120 días y madura entre los 148-150 días. La planta alcanza una altura
promedio de 140 cm sembrada en fecha óptima. El color de la flor fresca es
amarillo y rojizo al secarse, muy similar a S-518. El peso de 1000 semillas es
de 40 g.La semilla contiene un promedio de 41.0% de aceite, la composición
de aceite tiene un promedio de 76% de ácido oleico. En rendimiento de grano
ha sido competitivo con S-518, con un promedio de 2.60 ton/ha comparados
con 2.34 ton/ha de S-518. Es susceptible a roya, alternaria y falsa cenicilla. Es
una variedad de amplia adaptación y puede establecerse en las regiones
productoras de cártamo en México.
Actualmente, las variedades más ampliamente sembradas a nivel
nacional son Bácum’92 y S-518 en Baja California, Sonora y Sinaloa.
Bácum’92 y Sonora’92 en Jalisco y Michoacán y Bácum’92, Sonora’92 y
Tantoán en Nuevo León y Tamaulipas.
Las variedades linoléicas y oléicas no se deben de mezclar en las
siembras, y para evitar posibles cruzamientos las parcelas deben de estar
41
separadas al menos por 600 m una de otra. (Chanda et al., 1990; Chanda et
al., 1993; García et al., 1993; Montoya, 1998)
8.1.3.- Variedades altamente tolerantes a falsa cenicilla Ramularia
carthami
A partir del ciclo 2000/2001 apareció en México una enfermedad
identificada como Ramularia carthami, a la cual por su sintomatología se le
denominó falsa cenicilla.
Durante el ciclo 2003/2004 en el sur del estado de Sonora las pérdidas
por causa de esta enfermedad se estimaron en 133,000 toneladas,
equivalentes a 440 millones de pesos. Como resultado de esto, en el año
2001 se iniciaron los trabajos tendientes a la generación de variedades del
tipo oleico y linoleico con alta tolerancia a esta enfermedad (Montoya et al,
2008a, Montoya et al, 2008b). Los primeros frutos de estas investigaciones se
obtuvieron en el año de 2008 al liberarse en el Campo Experimental Valle del
Yaqui-CIRNO-INIFAP las primeras cuatro variedades del tipo linoleico y una
del tipo oleico con alta tolerancia a esta enfermedad, alto rendimiento y
estabilidad, además de contar con características de calidad altamente
aceptables para la industria aceitera. A continuación se describen estas.
CIANO-OL es del
tipo oleica proviene de la
cruza entre la línea CD663/SICEN y la línea
QUIR-6/S-518. Es una
variedad de ciclo vegetativo
intermedio. Dentro de su
periodo óptimo de siembra
(1o de diciembre al 15 de
enero), la floración inicia a
los 112 días y la madurez
fisiológica a los 148 días.
La altura promedio es de
130 cm y resistente al
acame. Las flores frescas
son de color amarillo y cuando se secan se tornan anaranjadas; el polen es de
color amarillo. El peso promedio de 1,000 granos es de 42.5 gramos con un
42
peso específico de 52.0 kg/hl. La semilla contiene un promedio de 37.4% de
aceite y 20.0% de proteína. El aceite es del tipo oleico y contiene un promedio
de 75.0% de ácido oleico y 12.5% de ácido linoleico
La variedad CIANO-OL bajo presión de falsa cenicilla y sin aplicaciones
de fungicidas para el control de la misma, ha superado en rendimiento de grano
a la variedad comercial testigo del tipo oleica de origen estadounidense S-518.
En el Valle del Yaqui, Sonora, en promedio de los ciclos 2004-05 hasta 2006-07,
registró un rendimiento de 3,100 kg/ha superando a S-518 en 19.2%, la cual
registró 2,600 kg/ha.
CIANO-LIN
es
una variedad del tipo
linoleica y proviene de la
cruza entre la línea RCORIGINAL / BÁCUM’92.
Es de ciclo vegetativo
intermedio. Dentro de su
periodo
óptimo
de
siembra
(1o
de
diciembre al 15 de
enero), la floración inicia
a los 114 días y la
madurez fisiológica a los
152 días. Presenta una
altura promedio de 140
cm y es resistente al
acame. Las flores frescas son de color amarillo y cuando se secan se mantienen
del mismo color. El peso promedio de 1,000 granos es de 37.0 gramos con un
peso específico de 51.6 kg/hl. La semilla contiene un promedio de 41.5% de
aceite y 18.0% de proteína. El aceite es del tipo linoleico y contiene un promedio
de 79.6% de ácido linoleico y 11.5% de ácido oleico
La variedad CIANO-LIN bajo presión de falsa cenicilla y sin aplicación de
productos para su control ha superado en rendimiento de grano que la variedad
comercial testigo del tipo linoleica de origen mexicano Bácum`92. En el Valle del
Yaqui, Sonora, en promedio de los ciclos 2004-05 hasta 2006-07, registró un
rendimiento de 3,200 kg/ha superando a Bácum’92 en 14.3%, la cual registró
2,800 kg/ha.
43
RC-1002-L
es
del
tipo
linoleica.
Proviene de la cruza
entre la línea SELQUIRIEGO y la variedad
S-719. Es de ciclo
vegetativo
intermedio.
Dentro de su periodo
óptimo de siembra (1o
de diciembre al 15 de
enero), la floración inicia
a los 112 días y la
madurez fisiológica a los
148 días. Presenta una
altura promedio de 140
cm. Las flores frescas son de color amarillo y cuando se secan se tornan
anaranjadas. El peso promedio de 1,000 granos es de 37.5 gramos con un peso
específico de 51.2 kg/hl. La semilla contiene un promedio de 40.5% de aceite y
19.0% de proteína. El aceite es del tipo linoleico y contiene un promedio de
78.6% de ácido linoleico y 11.8% de ácido oleico.
La variedad RC-1002-L bajo presión de falsa cenicilla y sin aplicación de
productos para el control de esta ha resultado superior en rendimiento de grano
que la variedad comercial testigo del tipo linoleica de origen mexicano
Bácum`92. En el Valle del Yaqui, Sonora, en promedio de los ciclos 2004-05
hasta 2006-07, registró un rendimiento de 3,100 kg/ha superando a Bácum’92
en 10.7%, la cual registró 2,800 kg/ha.
RC-1005-L es del tipo linoleica y proviene de la cruza entre la línea SELQUIRIEGO y la variedad S-555. Es de ciclo vegetativo intermedio a tardío.
Dentro de su periodo óptimo de siembra (del 1o de diciembre al 15 de enero), la
floración inicia a los 117 días y la madurez fisiológica a los 155 días. La planta
presenta una altura promedio de 145 cm. Las flores frescas son de color
amarillo y cuando se secan se mantienen del mismo color. El peso promedio de
1,000 granos es de 35.0 gramos con un peso específico de 51.2 kg/hl. La
semilla contiene un promedio de 41.9% de aceite y 18.0% de proteína. El aceite
es del tipo linoleico y contiene un promedio de 77.0% de ácido linoleico y 12.0%
de ácido oleico.
44
La variedad RC-1005-L bajo presión de falsa cenicilla y sin aplicación de
productos para el control de la misma ha resultado superior en rendimiento de
grano que la variedad comercial testigo del tipo linoleica de origen mexicano
Bácum`92. En el Valle del Yaqui, Sonora, en promedio de los ciclos 2004-05
hasta 2006-07, registró un rendimiento de 3,300 kg/ha superando a Bácum’92
en 17.9%, la cual registró 2,800 kg/ha.
RC-1033-L es del tipo linoleica y proviene de la cruza entre la línea RCORIGINAL y la variedad S-555. Es una variedad de ciclo vegetativo intermediotardío. Dentro de su periodo óptimo de siembra (del 1o de diciembre al 15 de
enero), la floración inicia a los 118 días y la madurez fisiológica a los 155 días.
La planta presenta una altura promedio de 150 cm. Las flores frescas son de
color amarillo y cuando se secan se mantienen del mismo color. El peso
promedio de 1,000 granos es de 38.0 gramos con un peso específico de 52.5
kg/hl. La semilla contiene un promedio de 40.8% de aceite y 19.0% de proteína.
El aceite es del tipo linoleico y contiene un promedio de 77.7% de ácido linoleico
y 12.0% de ácido oleico.
La variedad RC-1033-L bajo presión de falsa cenicilla y sin aplicación de
productos para el control de la misma ha resultado superior en rendimiento de
grano que la variedad comercial testigo del tipo linoleica de origen mexicano
Bácum`92. En el Valle del Yaqui, Sonora, en promedio de los ciclos 2004-05
hasta 2006-07, registró un rendimiento de 3,100 kg/ha superando a Bácum’92
en 10.7% la cual registró 2,800 kg/ha.
Durante su periodo de evaluación, las variedades CIANO-OL, CIANOLIN, RC-1002-L, RC-1005-L Y RC-1033-L mostraron alta tolerancia a falsa
cenicilla Ramularia carthami, tizón de la hoja Alternaria carthami Chowdhury y
tolerancia media a la roya de la hoja Puccinia carthami Corda, mientras que las
variedades testigo S-518 y Bácum’92 mostraron alta susceptibilidad a las tres
enfermedades fungosas. Asimismo, han mostrado una alta estabilidad en su
rendimiento a través de localidades y fechas de siembra, sugiriéndose para su
siembra en los estados de Sonora, Sinaloa, Baja California, Baja California Sur,
Jalisco, Guanajuato, Chihuahua y Tamaulipas. La siembra de esta variedad en
otras zonas agrícolas estará sujeta a los resultados experimentales que se
obtengan. (Montoya et al, 2008).
45
S-334: Es una variedad extranjera de la compañía Seed Tec, del tipo
oleica proviene de la cruza entre los progenitores GPB4 y la variedad
Bácum’92. Es una variedad de ciclo vegetativo intermedio. La floración inicia
a los 112 días y la madurez fisiológica a los 140 días. La altura promedio es
de 145 cm y resistente al acame. Las flores frescas son de color amarillo y
cuando se secan se tornan anaranjadas; el polen es de color amarillo. El peso
promedio de 1,000 granos es de 38 gramos con un peso específico de 53.0
kg/hl. La semilla contiene un promedio de 38-40% de aceite. El aceite es del
tipo oleico y contiene del 76 al 81%.
La variedad S-334 bajo presión de falsa cenicilla y sin aplicaciones de
fungicidas para el control de la misma, ha superado en rendimiento de grano
a la variedad comercial testigo del tipo oleica de origen estadounidense S518. En el Valle del Yaqui, Sonora, en promedio ha registrado un rendimiento
de 3,150 kg/ha superando a S-518 en 9.8%, la cual registró 2,870 kg/ha.
IX.- TÉCNICAS DE CULTIVO
9.1. Preparación del terreno
Como
en
cualquier otro tipo de
cultivo, la preparación
de una buena cama de
siembra
es
muy
importante en cártamo.
Bajo las condiciones de
producción bajo riego,
se sugiere realizar un
cinceleo cada dos o
tres
años
a
una
profundidad de 40 a 50
cm y un barbecho
profundo (de 25 a 30
cm) el cual permitirá
airear el terreno, eliminar por exposición plagas del suelo como gallina ciega y
también malezas como zacate Johnson principalmente de semilla. Con esta
roturación del suelo el riego de presiembra queda bien pesado siendo esto de
46
gran ventaja principalmente en suelos de aluvión en los cuales solo se aplica
el riego de presiembra.
Posterior al barbecho, se dan dos pasos de rastra cruzados con el fin
de mullir bien el terreno, así como la nivelación por medio de un tablón o land
plane con el objetivo de reducir los problemas de desniveles al momento de la
siembra y al aplicar los riegos de auxilio.
En las áreas en donde se siembra, aprovechando la humedad residual
del temporal, se realiza un barbecho antes del inicio del periodo de lluvias,
con el fin de captar la mayor cantidad posible de humedad en el suelo.
Cuando las siembras se realizan en humedad residual después de arroz o
después de maíz en los suelos de aluvión, es necesario que una vez
cosechado éste, tan pronto como dé “punto” el suelo, se realicen en forma
cruzada dos pasos de rastra, acondicionando detrás de ésta un pedazo de riel
o un tablón, que permitirán desmenuzar los terrones y favorecer la nivelación
del terreno.
Otra de las opciones para sembrar en humedad residual después de
maíz es el de revestir únicamente el surco y posteriormente sembrar, tratando
de depositar la semilla en la parte más húmeda (Montoya, 1998; Rodríguez,
et al., 1998; García, 1997; Camarillo- et al., 1983; Medina, et al., 2001;
Céspedes, 1983; Núñez y Alvarez, 1998; López, et al., 1983; Quihuis et al.,
1980).
La labranza que se sugiere para la preparación del suelo en la siembra
de cártamo en suelos salinos, es únicamente el rastreo, ya que se ha
encontrado que se obtienen mejores rendimientos que cuando se realiza el
barbecho o el cinceleo (Ochoa y Beltrán, 1990).
X.- FERTILIZACIÓN
En condiciones de baja fertilidad natural, el suelo no proporciona los
nutrientes suficientes para lograr un rendimiento satisfactorio de los cultivos.
Por lo tanto, es necesario suplementar las deficiencias de nutrientes propios
del suelo por medio de un suministro de fertilizantes químicos (Orozco, 1997).
47
El contenido óptimo de nutrimentos no es una magnitud constante,
sino que depende fundamentalmente del nivel de producción que se pretende
alcanzar. Las plantas de alta producción requieren:
 Un elevado contenido de nutrimentos disponibles en el suelo.
 Un buen suministro de todos los nutrimentos necesarios y útiles.
 Evitar sobredosificaciones perjudiciales (Finck, 1988).
Los macronutrientes son: Nitrógeno, Fósforo, Potasio, Calcio, Azufre y
Magnesio, estos a su vez pueden subdividirse en:
 Macronutrientes primarios: Nitrógeno, Fósforo y Potasio.
 Macronutrientes secundarios: Calcio, Azufre y Magnesio.
Los micronutrientes son los elementos absorbidos en menores
proporciones: se miden en miligramos por litro (mg/l), o en partes por millón
(ppm) que representan la misma concentración, ellos son: Cloro, Boro, Zinc,
Manganeso, Cobre, Molibdeno e hierro.
Los macronutrientes (primarios y secundarios) poseen un alto umbral
de toxicidad, es decir, que pueden absorberse en grandes cantidades sin
efectos nocivos, en cambio los micronutrientes tienen un nivel de toxicidad
bajo, y el límite (referido a la cantidad absorbida) entre la carencia y la
toxicidad está muy próximo (Rodríguez, 1992).
10.1.- Fertilización foliar
Desde hace muchos años se ha sabido que las plantas son capaces
de absorber elementos esenciales a través de sus hojas. La absorción tiene
lugar en los estomas y también a través de la cutícula de las hojas. De
ordinario, el movimiento de los elementos es más rápido a través de los
estomas, pero la absorción total puede ser la misma a través de la cutícula
(Tamhane, 1986).
Los fertilizantes se aplican generalmente al suelo para ser absorbidos
por la raíz, pero la planta también los puede absorber por la hoja y puede ser
48
ventajoso aplicarlos así por economía, por evitar algún factor edáfico, para
tener una más rápida respuesta, etc. Cuando la deficiencia del suelo en N o P
es muy grande, no se puede dar todo lo necesario del elemento en aspersión
foliar, pues resultaría una solución con excesiva presión osmótica y
provocaría efectos nocivos a la planta (Rojas, 1982).
El concepto de nutrición foliar se ha limitado a señalar a esta vía para
la alimentación de la planta como ocasional, complementaria y directa a las
hojas. Sin embargo, la realidad va más allá de las expectativas comunes ya
que las plantas, absorben y acumulan los compuestos aplicados “foliarmente”,
también por otros órganos y tejidos aéreos como son frutos, flores axilas,
tallos y todos los puntos meristemáticos de las plantas (Yáñez, 1998).
La fertilización foliar, hoy en día, se ha convertido en una práctica
común e importante para los productores; debido a que corrige las
deficiencias nutrimentales de las plantas y favorece su buen desarrollo así
como para coadyuvar en la mejora de los cultivos, optimizando el rendimiento
y calidad del producto. La fertilización foliar no sustituye a la fertilización
tradicional de los cultivos, pero si se considera una práctica especial que sirve
de respaldo, garantía o apoyo para suplementar o completar los
requerimientos nutrimentales de un cultivo, que no se puede abastecer
mediante la fertilización común al suelo (Trinidad y Aguiar, 1998).
La fertilización foliar tiene especial impacto sobre el desarrollo de las
plantas bajo las siguientes condiciones:
a).- Estrés ambiental por temperatura o humedad extremas o
deficientes.
b).- Alta demanda de nutrientes (etapa crítica)
c).- Deficiencia especifica de uno o más elementos
d).- Plantas con bajas reservas de nutrientes en el tejido
e).- Manejo de cultivos en condiciones de temporal
f).- Presencia de nemátodos, enfermedades radicales, plagas del
suelo.
g).- Enfermedades vasculares (Yáñez, 1998; Rodríguez, 1989)
49
Entre los factores que influyen en la absorción de nutrimentos se citan
los siguientes: características de la solución por asperjar, condiciones del
medio, edad de la planta y hojas, así como de nutrimentos por asperjar. Para
el buen éxito de la fertilización foliar es necesario tomar en cuenta, según el
cultivo por fertilizar, la concentración de la sal portadora del nutrimento, el pH
de la solución, la adición de coadyuvantes y el tamaño de la gota del
fertilizante líquido. En cuanto al medio ambiente, se debe de considerar la
temperatura del aire, el viento, la luz, la humedad relativa y la hora de
aplicación. Del nutrimento por asperjar se cita su valencia y el ion
acompañante, la velocidad de penetración y la translocabilidad del nutriente
dentro de la planta (Kovacs, 1986, citado por Trinidad y Aguiar, 1998).
10.2.- Fertilización al suelo
10.2.1.- Nitrógeno
El nitrógeno es la base de la nutrición de las plantas y uno de los
componentes más importantes de la materia orgánica. Sin nitrógeno la planta
no puede elaborar los materiales de reserva que han de alimentar los órganos
de crecimiento y desarrollo.
El nitrógeno es el elemento fertilizante que más influye en el desarrollo
de las plantas, pero debe ir siempre acompañado de fósforo y potasio de
forma equilibrada para obtener el máximo rendimiento (Baudilio, 1983).
El nitrógeno presenta un elemento necesario para la multiplicación
celular y el desarrollo de los órganos vegetales. Aumenta la superficie foliar y
la masa protoplásmica activa, reduciendo los glúcidos disponibles,
indispensables para las síntesis, disminuye el grueso de las paredes celulares
celulósicas en los tejidos jóvenes. En éstos es donde el nitrógeno proteico
alcanza los porcentajes más elevados.
En la hoja se encuentra distribuido entre los cloroplastos y el
citoplasma; aumenta durante el curso del desarrollo, pasando por un máximo
en el momento de la floración, después se nota un descenso brusco al salir
del limbo para asegurar la fructificación y la formación de los proteidos de la
semillas. Por el contrario, éstas están profundamente degradadas durante la
germinación por hidrólisis enzimática (Demolon, 1972)
50
La fertilización en el cultivo de cártamo es una práctica necesaria. La
cantidad de nitrógeno está en función de la rotación de cultivos, de las
expectativas de rendimiento y del tipo de suelo. Debido a la alta capacidad de
enraizamiento de este cultivo, le permite disponer de fertilizante que por
posición no pudo estar disponible para cultivos de granos pequeños
sembrados antes de éste. Sin embargo, cuando se rota con cultivos de raíz
profunda, será necesario añadir mayor fertilizante. Como en cualquier cultivo,
se recomienda llevar a cabo un análisis de suelo antes de la siembra para
conocer el estado nutricional de este y determinar las necesidades de
fertilizante a aplicar (Uvalle y Moreno, 1990).
En lo que respecta a la fertilización nitrogenada, en el Cuadro 16 se
presenta una aproximación razonada que resume toda la información
disponible.
CUADRO 16. CANTIDAD DE NITRÓGENO (kg/ha) PARA FERTILIZAR CÁRTAMO
EN EL SUR DE SONORA, MÉXICO.
CULTIVO
ANTERIOR
TIPO DE SUELO
ALUVIÓN LIGERO Y
BARRIAL
BARRIAL PEDREGOSO COMPACTADO
ALUVIÓN PESADO Y
BARRIAL PROFUNDO
ALGODÓN
120
160
180
CÁRTAMO
85
110
120
TRIGO
95
120
120
MAÍZ
120
120
145
El método de aplicación de nitrógeno va a depender de la fuente a
usar. Si se utilizan granulados, éstos se pueden aplicar al voleo con
fertilizadora “voladora” o con “clipper”, incorporándolo después con un paso
de rastra, o bien, se pueden aplicar en banda por ambos lados del surco al
momento de ir surcando o al momento de revestir surcos antes de la siembra;
este último método es el empleado para aplicar fuentes de nitrógeno líquidas
y gaseosas. Es importante mencionar que el fertilizante nitrogenado no se
debe de colocar en la misma línea en la que quedará la siembra ya que este
quema a la semilla afectando su germinación.
51
10.2.2.- Fosforo
El fósforo es el nutrimento relacionado con los flujos de energía en la
planta, y a diferencia del nitrógeno, en general tiene muy poca movilidad en el
suelo. Su disponibilidad puede reducirse cuando existen problemas de fijación
química, especialmente en suelos muy ácidos, volcánicos o altamente
calcáreos.
La reserva del fósforo en el suelo está conformada por un componente
orgánico, el cual transitará por un proceso de mineralización antes de pasar a
formas solubles, y un componente que se encuentra fijado químicamente o
adsorbido por los minerales existentes y los coloides, el cual está en continuo
equilibrio con el fósforo de la solución del suelo que puede ser aprovechado
por los cultivos. Conforme el P soluble del suelo se agota, una parte del P
adsorbido o fijado químicamente, se transforma en P soluble y pasa a formar
parte de la reserva disponible para el cultivo. Por otro lado conforme aumenta
el P soluble mediante la fertilización, una fracción de éste pasa a formar parte
de la reserva de P fijado y adsorbido, y allí es conservado hasta que bajan las
reservas de P asimilable. Este proceso se da en continuo y es afectado por la
humedad y temperatura del suelo, pero sobre todo por las características
físicas y químicas del mismo (INIFAP-2005)
La fertilización con fósforo se debe realizar siempre en función de un
análisis de suelo. Si el análisis por el método de Bray P-1, indica que hay
menos fósforo asimilable por hectárea que el nivel crítico (13 en aluvión
ligero, 17 en barrial compactado y 21 en aluvión pesado y barrial profundo),
se recomienda aplicar fósforo a razón de nueve kilogramos de P2O5 por
hectárea por cada kilogramo debajo de dicho nivel (Uvalle y Moreno, 1990;
Musa et al., 1990; Moreno y García, 1983; Torres, 1978; Navarro et al., 1980)
La función para estimar la cantidad de fósforo a utilizar es la siguiente:
Po = 9 (Pu-Pl)
Donde:
Po = Cantidad de fósforo por aplicar
Pu = Umbral (13 en aluvión ligero, 17 en barrial compactado y 21 en aluvión pesado y
barrial profundo)
Pl = Cantidad determinada por el laboratorio
52
Ejemplo: Suponga que se desea fertilizar cártamo en un suelo donde hubo
algodonero. El suelo es de barrial profundo y el análisis de
laboratorio indicó que el suelo posee 10 kg de fósforo por hectárea.
Como fuente de nitrógeno se usará amoniaco anhídro y como
fuente de fósforo fosfato de amonio.
De acuerdo al Cuadro 16, el requerimiento de nitrógeno en este tipo de
suelo y rotación es de 180 kg por hectárea y con base a la fórmula antes
descrita la de fósforo sería de: Po= 9 (21-10) = 99 kg por hectárea.
La cantidad de fosfato monoamónico (11-52-0) se calcula multiplicando
esta última cantidad por el factor en el Cuadro 19 del apéndice, es decir 99 x
1.92 = 190.08 kg. Además este fertilizante aportaría la siguiente cantidad de
nitrógeno: 190 x 0.11 = 20.9 kg.
Con base a que la fuente fosfatada ya está aportando 20.9 kg de
nitrógeno, necesitaríamos 159.1 kg de nitrógeno para completar la dosis
inicial. Por lo anterior se necesitarían 159.1 x 1.22 = 194.1 kg de amoniaco
anhidro.
10.3.- Métodos y época de aplicación
En los lotes en los cuales no se aplicarán riegos de auxilio, la
fertilización con fósforo y nitrógeno se debe realizar en forma total antes del
riego de presiembra o al momento de presiembra. La aplicación será
preferentemente al voleo antes de surcar en banda, si se utilizan granulados,
e inyectados si es amoniaco anhidro o agua amoniacal. Para aplicar fósforo
se sugiere el fosfato monoamónico (11-52-0) o ácido fosfórico inyectado en
suelos ricos en carbonato y pH mayor de 7.5. Cabe señalar, que en suelos sin
reacción de carbonatos y pH menor de 7.5, se sugiere utilizar super fosfato
triple (0-46-0) o fosfato diamónico (18-46-0) en banda.
En los suelos donde se aplicarán riegos de auxilio, el fósforo se debe
aplicar en forma total antes del riego de presiembra o a la siembra, y se
sugiere aplicar del 50 al 75% de nitrógeno junto con el fósforo y el otro 25 a
50% restante en el primer riego de auxilio.
53
En el Cuadro 17 se presentan las concentraciones de las diferentes
fuentes de fertilizantes y su factor para transformarlo a material comercial
(Aragón y Borbón 1982; Beltrán, 1982; Chavira, 1979).
CUADRO 17. FUENTE DE FERTILIZANTES Y SU FACTOR DE CONVERSIÓN A
DOSIS COMERCIAL.
MATERIAL
AMONIACO ANHÍDRO
UREA
FACTOR PARA EL NUTRIMENTO
N-P-K (%)
N
P2O5
K2O
82-0-0
1.22
0.0
0.0
46-0-0
2.17
0.0
0.0
SULFATO DE AMONIO
20.5-0-0
4.88
0.0
0.0
NITRATO DE AMONIO
33.5-0-0
2.98
0.0
0.0
FOSFATO DIAMÓNICO
18-46-0
5.56
2.17
0.0
NITRATO DE POTASIO
13.5-0-46
7.41
0.0
2.17
FOSFATO MONOAMÓNICO
11-52-0
9.09
1.92
0.0
SUPERFOSTATO TRIPLE
0-46-0
0.0
2.17
0.0
ÁCIDO FÓSFÓRICO
0-54-0
0.0
1.85
0.0
CLORURO DE POTASIO
0-0-60
0.0
0.0
1.67
SULFATO DE POTASIO
0-0-50
0.0
0.0
2.0
AGUA AMONIACAL
20-0-0
5.0
0.0
0.0
POLIFOSFATO DE AMONIO
10-34-0
10.0
2.94
0.0
UAN-32
32-0-0
3.12
0.0
0.0
XI.- FECHAS DE SIEMBRA
La fecha de siembra para el cultivo de cártamo es uno de los factores
de mayor importancia en la producción, ya que la oportunidad de ésta es
decisiva para obtener los máximos rendimientos. La fecha de siembra del
cultivo de cártamo en México varía de una región productora de cártamo a
otra. Sin embargo, todas ellas caen dentro del ciclo que se le conoce como de
otoño-invierno. A nivel nacional su siembra se realiza desde el primero de
noviembre en las áreas de temporal hasta finales del mes de enero en las
áreas de riego. En el Cuadro 18 se presentan las fechas de siembra para
cada una de las zonas productoras de cártamo en México.
54
CUADRO 18. FECHAS DE SIEMBRA UTILIZADAS EN
PRODUCTORES DE CÁRTAMO EN MÉXICO.
LOS
ESTADOS
ESTADO PRODUCTOR
FECHA DE SIEMBRA
BAJA CALIFORNIA Y BAJA CALIFORNIA SUR
15 NOVIEMBRE – 15 ENERO
SONORA
15 NOVIEMBRE – 15 FEBRERO
SINALOA EN RIEGO
15 NOVIEMBRE – 15 ENERO
SINALOA BAJO TEMPORAL
1° NOVIEMBRE – 15 DICIEMBRE
CHIHUAHUA
10 DICIEMBRE – 31 ENERO
JALISCO
20 NOVIEMBRE – 31 DICIEMBRE
TAMAULIPAS
1° NOVIEMBRE – 31 DICIEMBRE
Cuando el cultivo se siembra en fechas más tempranas que las
recomendadas, se exponen más a los daños por heladas; asimismo,
desarrollan un área foliar muy exuberante, mayor altura de planta que induce
problemas de acame y su ciclo vegetativo se alarga, de tal manera que es
mayor el número de días que queda expuesta al ataque de enfermedades y
plagas. En la contraparte, cuando se siembra en fechas posteriores a las
recomendadas, el desarrollo de la planta es muy raquítico, ya que su periodo
de roseta se acorta por efecto de las altas temperaturas y disminuye el
número de ramas que darán origen a los capítulos, se reduce el número de
capítulos por planta, el número de semillas por capítulo, el peso del grano y
por ende al rendimiento (Deokar et al., 1984; Ortega y Montoya 1998 y
Montoya et al., 2008b). Asimismo, la población de plantas disminuye por efecto
del daño del barrenador del tallo (Pacheco, 1994) y el porcentaje de aceite en
la semilla también se ve afectado; en contraste, algunos trabajos
desarrollados en Canadá, en los estados de Alberta y Manitoba, indican que
el porcentaje de aceite no se ve afectado por la variación en la fecha de
siembra (Mundel et al., 1994). Es importante mencionar, que por cada día que
se retrase la siembra, después de la fecha recomendada, el rendimiento de
grano disminuye en promedio 20 kilogramos por hectárea (Musa y Muñóz,
1989; Muñoz, 1977; Grageda et al., 1999).
XII.- MÉTODO Y DENSIDADES DE SIEMBRA
En suelos de barrial, el cártamo se puede sembrar tanto en seco como
en húmedo o “tierra venida”, mientras que en suelos de aluvión éste se
55
deberá sembrar únicamente en húmedo. La profundidad de siembra, cuando
la siembra es en seco, debe ser de 2 a 4 cm y en húmedo de 6 cm en suelos
de textura pesada y de 8 cm en suelos de textura ligera.
En los inicios del cultivo de cártamo en el sur del estado de Sonora el
método más utilizado era el de la siembra con máquina triguera; es decir en
líneas con separación de 17 cm a la que también se le llamaba “a la vuelta y
vuelta”. Los rendimientos obtenidos bajo este sistema eran económicamente
aceptables. Sin embargo, este método se dejó de usar principalmente debido
a que el productor no tenía posibilidades de llevar a cabo labores culturales
de cultivo para eliminar la maleza, de tal manera que en muchas de las áreas
con alta infestación de maleza los rendimientos se veían seriamente
afectados.
En la actualidad, el método de siembra más utilizado es el de surcos y
los distanciamientos más utilizados son los de 75, 80 y 92 cm para siembras a
una hilera y de 80 cm a 100 cm con dos hileras.
Las densidades de plantas utilizadas en las diferentes áreas
productoras de cártamo en México son muy variables; sin embargo, en forma
general se sugieren densidades de siembra desde 150,000 plantas por
hectárea en siembras tempranas y hasta 240,000 en fecha tardía. En el
Cuadro 19, se presenta el número de semillas por metro lineal necesario para
alcanzar dichas poblaciones, en los diferentes métodos y fechas de siembra,
lo anterior considerando siempre un 80% de germinación de la semilla.
56
CUADRO 19. SEMILLAS POR METRO LINEAL EN SURCOS CON UNA Y DOBLE
HILERA DE SIEMBRA.
FECHAS DE SIEMBRA
ANCHO DE SURCOS (CM)
TEMPRANA
TARDÍA
HILERA SENCILLA
75
80
92
14
15
17
22
24
26
DOBLE HILERA
92
9
14
100
10
15
*Estas poblaciones se logran con densidades de 7 a 10 kg/ha de semilla
Cuando se utilizan densidades menores a las recomendadas, se corre
el riesgo que la población se vea afectada por el ataque de gusanos
trozadores o barrenador del tallo. Asimismo, a baja densidad el tallo engrosa
mas de lo normal lo que trae como consecuencia problemas durante la trilla.
Cuando se utilizan densidades mayores, el tallo de la planta se desarrolla
muy débil induciendo al acame y como resultado la reducción en el
rendimiento. En las parcelas con alta densidad, el dosel de las plantas
rápidamente cubre el área, creándose un microclima de muy alta humedad, el
cual induce a que desarrollen los patógenos causantes de roya, falsa cenicilla
y tizones.los cuales afectan en gran medida al rendimiento. Cuando la
siembra se realiza en suelo con problemas de sales, las densidades de
siembra que se deben de utilizar son de 310,000 a 350,000 plantas/ha
(Ochoa
y
Beltrán,
1990;
Chavira,
1977;
Castillo,
1982).
(http://www.ianr.unl.edu/pubs/fieldcrops/nf36.htm)
XIII.- MANEJO DE RIEGOS
Debido a que este cultivo cuenta con una alta capacidad de
enraizamiento para explorar grandes profundidades en el suelo en búsqueda
de humedad aprovechable se le ha confundido con una planta tolerante a la
sequía. Sin embargo, el cártamo al igual que en otros cultivos del tipo C-3,
para poder producir rendimientos económicamente aceptables, necesita de
una buena disponibilidad de agua. Por lo anterior, en las diferentes áreas
57
productoras de México y del mundo, el cártamo se ha venido sembrando bajo
condiciones de temporal, humedad residual y bajo diferentes sistemas y
número de riegos; todos ellos dependiendo de las condiciones agroecológicas
de la región.
Bajo las condiciones de riego, el uso y manejo adecuado del agua de
riego es un factor determinante para la obtención de buenos rendimientos en
cártamo. El número de riegos se determina, principalmente, por la textura del
suelo, la profundidad del manto freático y la etapa de desarrollo del cultivo.
En los Cuadros 20, 21 y 22, se presenta la información sobre riegos,
de acuerdo al tipo de suelo. El intervalo de riego sugerido puede modificarse
de acuerdo a la fecha de siembra, lluvias y temperaturas que se presenten
durante el ciclo vegetativo; para fechas tardías es recomendable aplicar los
riegos con base a la etapa fenológica del cultivo y no considerar el número de
días, debido a que en dichas fechas tardías el ciclo vegetativo del cultivo se
acorta y las etapas fenológicas se presentan más rápidamente.
CUADRO 20. CALENDARIO DE RIEGOS PARA CÁRTAMO, APLICABLE EN
SUELOS DE BARRIAL COMPACTADO.
RIEGOS
INTERVALO (días)
ETAPA DEL CULTIVO
LÁMINA (cm)
Presiembra
---
---
15
1º de auxilio
50 DDS
Inicio de ramificación
10
2º de auxilio
80 DDS
Inicio de formación de botón
floral
10
3º de auxilio
110 DDS
Inicio de floración (10-15 %)
10
DDS = Días después de la siembra
CUADRO 21. CALENDARIO DE RIEGOS PARA CÁRTAMO APLICABLE EN
SUELOS DE BARRIAL PROFUNDO.
RIEGOS
INTERVALO (días)
ETAPA DEL CULTIVO
LÁMINA (cm)
Presiembra
---
---
15
1º de auxilio
55 DDS
Ramificación
10
2º de auxilio
90 DDS
Formación de botón floral
10
DDS = Días después de la siembra
58
CUADRO 22. CALENDARIO DE RIEGOS PARA CÁRTAMO, APLICABLE EN
SUELOS DE ALUVIÓN.
RIEGOS
INTERVALO (días)
ETAPA DEL CULTIVO
LÁMINA (cm)
Presiembra
---
---
20
1º de auxilio
65-70 DDS
Ramificación
10
DDS = Días después de la siembra
La justificación de los riegos en cártamo en suelo de barrial o arcilla,
estriba en que a mayor número de riegos es mayor el rendimiento de grano.
El primer riego de auxilio ayuda a la planta a desarrollar un mayor número de
ramas; el segundo induce a la formación de un mayor número de capítulos
por planta, en tanto que el tercero asegura el llenado de grano. Las
componentes del rendimiento que son más influenciadas positivamente por el
número de riegos en suelos de barrial son: el peso de 1000 granos, número
de capítulos por planta, diámetro del capítulo, gramos por capítulo, índice de
cosecha y el porcentaje de aceite.
Debido a la alta susceptibilidad de este cultivo a las enfermedades de
la raíz, es necesario evitar los riegos pesados o la aplicación de éstos cuando
el suelo muestre mucho agrietamiento. Asimismo, la longitud de los surcos no
59
debe ser mayor de 250 metros, para evitar asfixia a la planta que induzcan
pudriciones de la raíz.
En cuanto a los suelos de aluvión, el número de riegos es menor,
debido a que la raíz penetra con mayor facilidad y el cultivo aprovecha la
humedad que aporta el manto freático. Asimismo, en áreas en las cuales los
suelos estén desnivelados, debe evitarse la aplicación de riegos de de auxilio,
ya que el riesgo de muerte de plantas por encharcamiento es muy alto.
Es importante señalar, que en todos los tipos de suelo, es necesario
realizar cultivos antes y después de los riegos de auxilio, para evitar
agrietamientos y mantener la humedad aprovechable por más tiempo (Musa-
60
et al., 1990; Musa y
Gándara, 1991; Montoya,
1998;
Chavira,
1979;
Montoya et al., 2008b).
Bajo condiciones de
salinidad en el suelo, es
necesario mantener alta la
humedad, de tal manera
que se sugieren aplicar al
menos tres riegos de
auxilio durante el desarrollo
del
cultivo
(Sánchez,
1989).
Debido a la amplia variación en la respuesta de las variedades a las
diferentes condiciones ambientales bajo temporal, se hace necesario llevar a
cabo evaluaciones de diferentes genotipos con el fin de seleccionar aquellos
con mejor comportamiento (Patil, 1992).
XIV.- CONTROL DE MALEZA
El cultivo de cártamo requiere de prácticas adecuadas de control de
maleza para evitar reducciones en su rendimiento. En este cultivo las malas
hierbas aparecen desde sus primeras etapas, y sobre todo cuando la plántula
de cártamo crece muy lentamente y permanece en estado de roseta por
varios días, en este período el cultivo es extremadamente susceptible a la
competencia de la maleza, la cual puede abatir hasta en 65% el rendimiento
de grano.
Para evitar dicha disminución, es conveniente realizar medidas de
control de maleza durante los 60 días posteriores a la emergencia del cultivo,
periodo que se ha determinado como el período crítico de competencia
maleza-cártamo. La maleza más importante en este cultivo son el girasol
(Heliantus annus L.), mostaza (Brassica campestris L.), malva (Malva
parviflora L.), mostacilla (Sisimbrium irio L.), alpistillo (Phalaris spp.), avena
silvestre (Avena fatua L.), correhuela (Convolvulus arvensis L.) y zacate
Johnson (Sorghum halepense L.) Pers., especies que se pueden combatir
61
más eficientemente integrando los métodos de control que se mencionan a
continuación (Contreras y Tamayo, 1999).
14.1.- Métodos de control
Los métodos de control para la maleza perenne, se clasifican en
culturales, químicos, biológicos e integrados. Estos métodos, aplicados en su
época adecuada y con las frecuencias y seguimiento óptimos, permiten
mantener las poblaciones de especies perennes, en niveles que no ocasionan
reducciones significativas en los rendimientos de los cultivos. En el primer
grupo se consideran los preventivos para evitar la diseminación de semilla de
maleza como: limpieza de maquinaria, aperos, semilla de siembra, etc., evitar
la formación de semilla de maleza, el uso de estiércol fermentado y pastoreo
regulado en áreas libres de maleza. En las estrategias de control correctivo,
se incluyen el arranque y escardas manuales, así como las cultivadoras de
tracción animal y motorizada, la preparación de terrenos, rotación de cultivos,
métodos y densidades de siembra, inundación, quema, entre otras.
14.1.1.- Preventivo
Es una de las medidas más práctica y económica y tiene como
objetivo evitar la introducción y establecimiento de especies nocivas al terreno
y está basado principalmente en medidas legales, mantener libre de maleza
los canales y orillas de caminos, considerando que en los distritos de riego el
agua y el viento constituyen un medio natural de diseminación de la maleza;
por lo tanto, la limpieza de la maquinaria, el empleo de semilla certificada,
instalación de cedazos o mallas en canales parcelarios, así como regular el
pastoreo del ganado, deben considerarse como otras medidas importantes.
Las prácticas preventivas permiten evitar la diseminación de semillas y
fragmentos rizomas, raíces, estolones, etc. En los terrenos libres de
infestaciones o con presencia sólo de manchones.
Limpieza de maquinaria y aperos. Incluyen prácticas sencillas como
la limpieza de maquinaria y aperos de labranza, cuando se trasladan de
porciones de terrenos infestados (manchones), hacia las partes libres de
estas especies o de terrenos con problemas de malezas hacia terrenos
limpios, ya que los terrones incrustados en los equipos agrícolas llevan
consigo fragmentos de rizomas y semillas de malas hierbas (Cuadro 23).
62
CUADRO 23. PRÁCTICAS
PERENNE.
PARA EL
CONTROL
METODO
CULTURAL
DE MALEZA
PRACTICAS
 Limpieza de maquinaria y aperos de labranza
 Semilla y fertilizantes certificados.
PREVENTIVO
 Evitar producción de semilla de maleza.
 Abonos Orgánicos fermentados
 Pastoreo regulado
 Impedir la entrada de semilla por las regaderas.
 Prácticas para la preparación del terreno
 Escardas manuales y mecánicas
CORRECTIVO
 Métodos y cantidades de siembra
 Coberteras vegetales y plásticos
 Solarización, inundación y quema
 Rotaciones de cultivo
Uso de semilla certificada. Debe indicarse que el uso de semilla
certificada incrementa la seguridad de que ésta no viene contaminada con
semilla de maleza; sin embargo, es necesaria la verificación por parte de los
productores, ya que hasta los fertilizantes han sido señalados como
contaminados con semilla de malas hierbas (Tamayo, 2001).
Evitar la producción de semilla de maleza. Es imperativo evitar la
producción de semilla de las poblaciones de maleza ya establecidas en los
terrenos de cultivo, puesto que algunas de estas especies perennes, llegan a
producir cantidades muy importantes de semillas por planta (Tamayo, 2001).
Fermentar Abonos Orgánicos. Cuando se utilicen abonos orgánicos
como gallinaza o estiércol, se recomienda que éstos se sometan a un proceso
de fermentación antes de introducirlos a los terrenos de cultivos, ya que esta
práctica realizada correctamente, permite que la temperatura se incremente
hasta alrededor de los 70 grados centígrados, lo que ocasiona que las
semillas de maleza que se encuentren en estos tipos de abono pierdan su
viabilidad.
63
Regular el pastoreo: En la mayoría de los terrenos de algunas
regiones, se permite el libre pastoreo en las socas o residuos de cosecha,
sobre todo en épocas de sequía, donde esta actividad representa una
remuneración económica por la renta de algunos de estos terrenos a los
ganaderos de la región serrana. Por otra parte debe señalarse, que el ganado
representa un excelente medio de dispersión para las semillas de las
diferentes especies de malas hierbas, por lo que es necesario, si no es
posible evitar el pastoreo, someter al ganado a una especie de cuarentena
antes de introducirlo al terreno, para que desechen la semilla de maleza que
haya ingerido dos o tres días antes.
Evitar la entrada de semilla por regaderas. El agua de riego es un
medio de dispersión de maleza muy eficiente, por lo que se sugiere mantener
limpios los canales o regaderas, para impedir la diseminación de semillas de
malas hierbas. Aunque es difícil decidir sobre el control en los canales
secundarios y primarios, se recomienda la colocación de mayas en las
compuertas, para filtrar el agua a la entrada del terreno de cultivo de interés,
para evitar la entrada de semillas de un gran número de especies con semilla
grande (Tamayo, 2001).
14.1.2.- Cultural
Este método puede considerarse como el de mayor importancia, ya
que incluye a varios grupos, y su correcta aplicación impide la introducción y
proliferación de las especies de malas hierbas en los terrenos de cultivo.
En aquellos lotes con problema de maleza, es conveniente sembrar en
húmedo. Esta práctica elimina hasta un 70% de las infestaciones iniciales de
las malas hierbas al preparar la cama de siembra. Una vez emergido el
cultivo, se sugiere mantener libre de maleza al cultivo durante los primeros 60
días, mediante pasos de cultivadora y deshierbes manuales.
14.1.3.-Mecánico
Se sugiere dar dos cultivos mecánicos; el primero a los 30 días
después de la siembra, y el segundo después del primer riego de auxilio. Lo
anterior, con el fin de controlar la maleza y a la vez conservar la humedad del
terreno, auxiliando esta labor mecánica con deshierbes manuales.
64
Dentro de los métodos de control cultural correctivo, se incluyen todas
las prácticas que contribuyen de una u otra forma al control de maleza
durante la preparación del terreno para la siembra.
Barbecho. Esta práctica es eficiente para el control de los órganos
subterráneos de maleza perenne, ya que al quedar estos completamente
expuestos al sol por un período razonable, pueden ser eliminados por
deshidratación. Cabe indicar, que esta práctica permite la incorporación de
semillas de maleza que se encuentran en la superficie del suelo, a
profundidades que no le permiten por el momento germinar, quedando de
reserva para el siguiente barbecho que podrá extraerlas, germinando las que
hayan conservado su viabilidad.
Rastreo. El rastreo contribuye a eliminar de manera eficiente la
maleza en los terrenos, siempre y cuando esta práctica se realice
oportunamente, es decir, antes de la producción de semilla en el caso de
terrenos en descanso o en etapas tempranas del desarrollo de la maleza para
las siembras en húmedo, ya que si éstas se desarrollan de más, la eficiencia
de esta práctica se reducirá y requerirá de un segundo rastreo. Es preciso
señalar, que el rastreo contribuye a la fragmentación de los órganos aéreos y
subterráneos de malezas anuales y perennes, lo que contribuye a evitar la
producción de semilla.
Así mismo, el rastreo consigue poner al descubierto una buena
cantidad de rizomas de maleza perenne, que si antes del siguiente rastreo
65
(durante la preparación del terreno) se da oportunidad a que se deshidraten, y
si entre cada rastreo se permite un tiempo razonable para el efecto de la
exposición de los rizomas al sol, se obtiene cada vez un mayor control de los
mismos (Tamayo, 2001).
Sin embargo, estas labores culturales consiguen dispersar los
manchones de este tipo de maleza, por lo que es necesario considerar la
limpieza de los discos cuando hayan pasado por las áreas infestadas, antes
de introducirse en las áreas libres de este tipo de maleza, o bien realizar el
control químico antes de las prácticas, para que los rizomas dispersados
tratados con herbicidas, tengan menor probabilidad de establecerse y rebotar.
14.1.4.- Químico
El control químico de maleza se basa en el empleo de substancias
químicas denominadas comúnmente herbicidas; su recomendación se basa
en los resultados de la secuencia de investigaciones, que han permitido
determinar el o los herbicidas, dosis y épocas de aplicación, selectividad y
residualidad, para el usuario y el medio ambiente.
El uso de herbicidas está plenamente justificado para el control
integrado de maleza, ya que el control cultural por si solo, no es suficiente
para mantener las poblaciones de estas especies en niveles que no
ocasionen daño a los cultivos de interés; los herbicidas han demostrado ser
eficientes y económicos, siempre y cuando se consideren los resultados de
investigación para el uso de su dosis y época de aplicación más apropiada.
Diversas substancias han sido evaluadas y seleccionadas por su alta
efectividad en el control de maleza y con el mínimo riesgo (Tamayo, 2001).
Cuando el terreno cuenta con una alta infestación de maleza es
importante considerar este tipo de combate. En el cuadro 24, se presenta la
información sobre los herbicidas, dosis y época de aplicación contra las
principales malas hierbas del cártamo.
Cabe indicar que a nivel mundial no se ha identificado herbicida para el
control de maleza de hoja ancha, selectivo al cultivo de cártamo. Sin embargo
en los estados de Sonora y Baja California, varios productores agrícolas han
ensayado con la aplicación del herbicida Si Tui (Harmony + Ally) para el
control de correhuela, chual, malva y girasol. Las dosis por ellos utilizada
varía de 10 a 20 gr/ha de material comercial. Con la aplicación de este
66
herbicida se observa un 100% de control de la maleza de hoja ancha, pero
también se observa que el herbicida daña al cultivo en menor medida,
reponiéndose en el transcurso de 7 a 10 días, continuando su desarrollo
normal. No obstante esta medida de control de maleza, no es recomendada
por el INIFAP ya que los riesgos de daño al cultivo por un mal uso del
herbicida son muy altos, además que la compañía propietaria del herbicida no
recomienda su uso en esta oleaginosa.
14.2.- Control integrado.
Este tipo de control implica tomar medidas preventivas para evitar la
introducción y establecimiento de nuevas especies de maleza en el terreno,
además de emplear los métodos culturales, como la siembra en húmedo,
práctica que elimina alrededor de un 70% de la maleza existente, integrando
éstas al control mecánico. Asimismo, se sugiere limitar la aplicación de
herbicidas selectivos al cártamo a la hilera de siembra, lo cual reduce el costo
del control de maleza y consecuentemente un menor riesgo de contaminación
(Contreras
y
Tamayo,
1999;
Madrid
y
Cota,
1998).
(http://agric.ucdavis.edu/crops/oilseed/safflower.htm)
CUADRO 24. HERBICIDAS UTILIZADOS EN EL COMBATE DE MALEZA EN
CÁRTAMO.
HERBICIDA
DOSIS/ha
ÉPOCA DE APLICACIÓN
Trifluralina
980 g i.a.
TREFLAN
2.0 litros
Presiembra incorporado
con un paso de rastra
Fluazifop-p-butil
125 g i.a.
FUSILADE B/W
1.0 litros
Fluazifop-p-butil
250-375 g i.a.
FUSILADE B/W
2.0–3.0 litros
Glifosato
FAENA
Glifosato
FAENA
Aplicación en
postemergencia temprana
Aplicación en
postemergencia temprana
TIPO DE MALEZA
Maleza de hoja ancha
y angosta; como chual,
alpistillo y mostacilla
Gramíneas anuales y
cultivos anuales
voluntarios
Gramíneas perennes:
Zacate Johnson
1,200–1,920 g i.a. 30 días antes de la siembra
sobre el follaje de plantas Zacate Johnson
2.5 – 4.0 litros
con altura de 50 cm
2,880 – 4,800 g i.a. 30 días antes de la siembra
sobre el follaje con
Correhuela perenne
6.0 – 10.0 litros crecimiento vigoroso
NOTA: Con el Glifosato se sugiere no remover el suelo o cortar la maleza por lo menos 15 días
después de la aplicación para permitir que el producto se trasloque a los rizomas.
67
XV.- CONTROL DE INSECTOS PLAGAS
Existen algunas poblaciones de insectos que pueden estar presentes
como plagas en el cultivo de cártamo en México; sin embargo, normalmente
no llegan a ser un problema
que afecte su producción.
Es importante señalar, la
participación de cultivos
donde el uso de insecticidas
es mínimo dentro del
sistema
de
producción
agrícola del estado de
Sonora, ya que funcionan
como sitios agroecológicos
donde las poblaciones de
insectos plaga, al no ser
sometidos a constantes y
altas
presiones
de
selección,
diluye
su
resistencia
hacia
los
insecticidas; en base a lo
anterior, se debe poner
especial énfasis en utilizar
los insecticidas, como última
opción dentro del manejo
integrado
de
plagas,
siempre y cuando éstos
sean
técnicamente
justificables.
Los insecticidas que se sugieren para el combate de las diferentes
especies de insectos se muestran en el Cuadro 25. A continuación se
presentan algunos aspectos de la biología y hábitos, de las principales
especies plaga.
Gusanos trozadores (Agrotis spp., Peridroma saucia, Feltia
subterránea). Las larvas ocasionan el daño al trozar las plantas pequeñas
después de su emergencia. Las larvas son de colores oscuros, miden hasta 4
68
cm de longitud y se les encuentra enroscadas debajo de las plantitas trozadas
(Pacheco, 1985).
Esta plaga se presenta en focos de infestación, atacando al cultivo
durante la noche. El uso de insecticidas se justifica únicamente en grandes
focos de infestación si se detectan junto a las plantas trozadas larvas
enterradas; en tal caso y por los hábitos alimenticios del insecto, se sugiere
asperjar los insecticidas únicamente por vía terrestre y por la tarde.
Conchilla prieta (Blapstinus spp.). Los adultos de Ulus spp. Son
similares a los de Blapstinus spp. Excepto porque su cuerpo es más peludo y
las protibias se expanden externamente en el ápice. Estos detalles sólo se
detectan con un microscopio (Pacheco, 1985).
Esta plaga se encuentra en pequeños focos de infestación durante la
post-emergencia del cártamo en las orillas de los campos. Tanto los adultos
como las larvas se encuentran enterrados y trozan las plantitas en su base.
Los adultos son escarabajos pequeños de color negro de unos 6 mm de
largo; a las larvas se les llama falsos gusanos de alambre y son muy
delgadas, duras y brillantes, con las patas muy pequeñas y miden 1.5 cm de
largo. Esta plaga es difícil de controlar con aplicaciones al follaje por
encontrarse muy enterrada; pero en caso de infestaciones severas se sugiere
realizar aplicaciones en los focos de infestación, ya que normalmente la
población de plantas de cártamo es mayor que la requerida.
Pulgón Myzus (Myzus persicae). Esta especie de Aphididae puede
llegar a causar daños al cártamo, pero solo cuando las poblaciones
sobrepasen a varios cientos por planta chica. Los adultos son de tamaño
medio, de color verde pálido; las formas ápteras tienen líneas longitudinales
oscuras y las aladas tienen un área dorsal negra. Este insecto tiene una gran
cantidad de hospedantes cultivadas y silvestres entre las que se encuentran
hortalizas como el chile y el melón y crucíferas como la colza o mostaza y
malváceas como la malva entre otras familias de plantas. De éstas, los
pulgones se pasan al cártamo. Las poblaciones de este insecto se les puede
encontrar en el cogollo y en el envés de las hojas inferiores desde las
primeras etapas de desarrollo del cultivo hasta cerca de la floración causando
un amarillamiento y retraso en el desarrollo de las plantas. Se sugiere
combatir a la plaga, solo si las hojas se empiezan a enmielar al encontrarse
varios cientos de pulgones por planta joven (Pacheco, 1994).
69
Bajo las condiciones del noroeste, normalmente desaparece cuando la
planta empieza a formar los botones florales. Es una plaga muy resistente a
las dosis comerciales de insecticidas, por lo que el control químico se
recomienda solo en el caso de infestaciones severas, ya que el cártamo
resiste un fuerte daño físico al follaje sin bajar los rendimientos (Pacheco,
1985).
Chinches lygus (Lygus lineolaris) y chinche rápida (Creontiades spp.).
Los adultos y ninfas de estas chinches pueden chupar la savia de las plantas
desde la primera etapa del desarrollo del cultivo; sin embargo, en esta fase el
daño no es importante, siendo la etapa crítica durante la floración de la planta
y el desarrollo del grano. Estas especies chupan los botones florales y las
cabezuelas tiernas, ocasionando granos vacíos, mientras que adultos y ninfas
de la chinche apestosa chupan los granos en formación, ocasionando que
éstos aborten o no se llenen. Solo se sugiere el combate químico si se
detectan en promedio 40 chinches ligus o rápidas, o 10 chinches apestosas, o
una combinación de éstas por 100 redadas durante la formación de botones
florales.
70
Chinche Apestosa (Nezara viridual) y (Euschistus servís). Son las dos
especies de Pentatomidae más abundantes en el cártamo durante la época
de floración. Las chinches atacan los botones florales y las cabezuelas tiernas
chupando los granos en formación, ocasionando que éstos aborten o no
llenen.
Cuando se encuentren un promedio de 10 ó más chinches por 100
redadas y que además haya chinches ligus y rápida, se sugiere el control de
la plaga con insecticidas.
Araña roja (Tetranychus spp.). Generalmente esta plaga se presenta
en los meses de marzo a mayo en la región de Las Huastecas y se establece
en el envés de las hojas, consumiendo la savia de las nervaduras. Se forman
colonias de arañitas que se reconocen por la gran cantidad de sustancia
sedosa con que protegen sus huevecillos. La parte infestada presenta un
color blanquecino y polvoso y a medida que aumenta la plaga, las plantas se
secan.
Falso medidor de la col (Trichoplusia ni). Las palomillas son de color
negruzco con una mancha plateada similar a un “8”; en las alas superiores;
ovipositan sobre el follaje y las larvitas agujeran las hojas al alimentarse de
ellas. Las larvas se reconocen por que caminan en forma arqueada, ya que
no tienen falsas patas abdominales en el tercero y cuarto segmentos
abdominales.
Esta plaga defolia al cultivo, y se puede presentar en cualquier etapa
fenológica de la planta. Debido a que el cártamo resiste bastante el daño del
follaje, se sugiere combatir las poblaciones del insecto, solo cuando éstas
amenacen con destruir una tercera parte del follaje.
Gusano soldado (Spodoptera exigua). Las larvas de esta plaga, al
igual que las del falso medidor de la col causan defoliaciones al cultivo,
pudiendo presentarse desde la emergencia hasta la floración. Se sugiere
aplicar insecticida, solo tomando en consideración el total de especies
defoliadoras, al encontrar daños en un 10 por ciento o más daños al follaje
sobre todo en plantas jóvenes.
Gusano bellotero (Heliothis virescens y Helicoverpa zea). Estas dos
especies de Noctuidae se presentan en el cártamo durante la época de
71
floración. Las larvas barrenan los botones florales y las cabezuelas tiernas por
la parte inferior, haciendo que se pudran. Se sugiere el control químico
cuando las larvas sean pequeñas y se encuentren más de 5% de botones o
cabezuelas con gusanos. Para el control de esta plaga con insecticidas, hay
que tomar en cuenta su alta resistencia, además normalmente las larvas se
encuentran protegidas dentro de los botones y cabezuelas.
Palomilla de la cabezuela (Homeosoma electellumn Hulst.). En la
región de Las Huastecas, el daño principal de este insecto es causado por la
larva. Se presenta durante la época de floración hasta el llenado de grano.
Las larvas barrenan los botones florales y los capítulos tiernos, haciendo que
se pudran; atacan también a las semillas perforándolas y alimentándose de
su contenido. En los capítulos atacados es característico observar una
especie de telaraña, debajo de la cual se localiza la larva.
Barrenador del tallo (Melanagromyza virens Loew.). La larva de esta
mosquita Agromyzidiae es una plaga de cierta importancia en el cártamo, ya
que desde 1971 se le ha encontrado desde el Valle del Fuerte hasta el Valle
del Yaqui atacando a este cultivo. En los EE.UU. fue encontrada por primera
vez atacando al cártamo en 1958, pero ya era conocido que atacaba al
guayule, crisantemo, chícharo, girasol, verbena, chual, espinaca, estafiate y
otras especies silvestres (Mueller and Lange, 1959.
El adulto es una mosquita de 3 a 9 mm de longitud de color negro
verdoso con brillo metálico. En las primeras etapas del desarrollo del cultivo,
la hembra oviposita en las yemas terminales y eclosionan en tres a cinco
días, barrenando las terminales y tallos cuando están tiernos, se van
barrenando hacia abajo buscando la base del tallo principal para después
pupar. La parte superior de la planta, en la etapa de plántula y roseta, se
empieza a marchitar para después morir; el ataque en planta ramificada
induce una marchitez; las hojas se desarrollan cloróticas y finalmente mueren.
Considerando que las larvas y pupas están dentro de las ramas y tallos no se
sugiere el control químico a menos que se tengan antecedentes del problema
en el lote y se detecte oportunamente la llegada de la plaga.
Gusano prieto (Vanesa cardui y V. carye). Estas dos especies de
Nymphalidae son muy comunes en el sur de Sonora al final del otoño. Las
larvas grandes atacan al cártamo particularmente cuando la planta es
pequeña.
72
V. cardiu tiene una distribución mundial, los adultos miden de 4 a 6 cm
de extensión alar; su color es café-satinado con áreas y manchas negras,
anaranjadas y puntos blancos; las larvas llegan a medir hasta 4 cm, son de
color negrusco con una banda de color claro a los lados del cuerpo; tienen la
particularidad de estar cubiertas por gruesas espinas que emergen de
pináculos situados en la parte dorsal del cuerpo.
(V. carye). Esta especie es menos común que la anterior en el sur de
Sonora; las mariposas son ligeramente más pequeñas que las de V. cardui, y
con las alas superiores truncadas en su ápice; las larvas, son de color
negruzco y están armadas con espinas que emergen de pináculos cerdígeros
que se encuentran en la parte superior del cuerpo y se diferencia de la
especie anterior por tener manchas amarillentas en el cuerpo.
Las larvas de las dos especies comen vorazmente las plantas de
cártamo llegando a defoliarlas en un corto periodo de tiempo; el ataque a
plantas grandes es menos común y por lo tanto de menos trascendencia.
Para prevenir el daño de esta plaga se recomienda eliminar a las
hospedantes silvestres, particularmente a la malva.
Gusano saltarín (Elasmopalpus lignosellus). Esta especie de
Pyralidae se puede presentar en focos de infestación durante la postemergencia del cártamo.
Las larvitas miden hasta 2 cm; se desarrollan bajo la tierra en túneles
de seda y barrenan los tallos a la altura del nudo de la raíz matando a las
plantitas; se les reconoce por que tienen el aspecto de cubiertas de color
verde-azulado y se mueven nerviosamente cuando se les disturba.
Solo cuando se presentan grandes focos de infestación con muchas
plantas trozadas por metro lineal, se recomienda el uso de insecticidas,
preferentemente de largo poder residual y aplicados con maquinaria terrestre.
También se recomienda adelantar el riesgo para matar a las larvas por
ahogamiento (Pacheco, 1985)
Gallina ciega (Phyllopha ssp. y Cotalpa spp). A las larvas de estos
Scarabaeidae se les llama “gallina ciega”; y a los adultos “mayates de junio”.
Esta plaga puede ocasionar daños severos al cártamo sembrado en suelos
73
de aluvión, en donde las larvas se desarrollan en grandes poblaciones. Los
adultos de Phyllophaga spp. Son color café y los de Cotalpa spp. de color
amarillo-cremoso; ovipositan durante junio en el suelo, las larvas tienen forma
arqueada muy característica, con las patas torácicas muy desarrolladas; son
de color blanco-sucio, con el ápice del abdomen de color azul-grisáceo y la
cabeza de color café-claro. Pasan por seis instares larvarios, llegando
alcanzar hasta 5 cm de longitud; se desarrollan lentamente durante 10 a 11
meses alimentándose de las raíces de maleza silvestre y de cultivos
agrícolas, haciendo que las plantitas colapsen de un día para otro.
Al final de la primavera las larvas alcanzan su madurez y pupan en una
celda de tierra a pocos centímetros de la superficie del suelo; los adultos
emergen en grandes cantidades durante junio; son fuertemente atraídos por
la luz; su vida es muy efímera, se aparean, ovipositan y mueren en menos de
un mes.
Se recomienda que no se siembre cártamo en terrenos donde
rutinariamente se constaten daños fuertes por esta plaga. No se recomienda
el uso de insecticidas, debido a la dificultad para lograr que éstos lleguen a
las larvas.
Los terrenos rutinariamente infestados, se recomienda mantenerlos
libre de vegetación silvestre mientras están en descanso, para evitar
alimentar a las larvas. Las siembras de cártamo en suelo arcilloso no tienen
problemas con esta plaga (Pacheco, 1985).
Gusano peludo (Estigmene acrea). Esta especie de Arctiidae puede
convertirse en plaga del cártamo durante la época de post-emergencia. Los
gusanos grandes provienen de soya tardía o de hospedantes silvestres,
comen vorazmente las plantitas de cártamo; en tales casos, hay necesidad de
controlar a la plaga aplicando insecticidas específicos en las áreas de
cártamo infestadas o en los campos colindantes.
Grillo de campo (Acheta domesticus). Esta especie de Gryllidae se
puede presentar en campos de cártamo colindando con baldíos o drenes
enmalezados. Los adultos y ninfas atacan a las plántulas desde su
emergencia hasta antes de emitir botones florales, trozándolas de la base o
defoliándolas según su edad.
74
En caso de ataques severos, que normalmente ocurren en las orillas
de los campos, se recomienda la aplicación de cebos envenenados con
insecticidas, esparcidos en los focos de infestación y en las áreas colindantes
de donde provenga la plaga (Pacheco, 1994).
Otras plagas que se pueden observar ocasionalmente en el cultivo de
cártamo pero que no llegan a ser problema son: el trips de la cebolla Trips
tabaci y el trips güero Frankiniella
occidentales (Kaffka,2000).
http://agric.ucdavis.edu/crops/ oilseed/safflower.htm
CUADRO 25. INSECTICIDAS SUGERIDOS PARA EL COMBATE DE LOS
PRINCIPALES INSECTOS PLAGA DEL CULTIVO DE CÁRTAMO.
INSECTICIDA
Dimetoato
AFLIX
ROGOR L 40
Ometoato
FOLIMAT 1000
Metamidofos
TAMARON 600
AGRESOR 600
Clorpirifos
LORSBAN 480
Thiodicarb
LARVIN 375
SEMEVIN
parathion metilico
PARATHION METILICO
monocrotofos
NUVACRON 60
novaluron
SALSA
RIMON 10 EC
GUSANO
TROZADOR Y
CONCHILLA
PRIETA
900 g ia/ha
1.5 L/ha
1.5 L/ha
720 g ia/ha
1.5 L/ha
GUSANOS
FALSO
PULGON Y
MEDIDOR, BARRENADOR
SOLDADO Y
DEL TALLO
BELLOTERO
400 g ia/ha
1.0 L/ha
1.0 L/ha
400 g ia/ha
400 ml/ha
CHINCHES
400 g ia/ha
1.0 L/ha
1.0 L/ha
400 g ia/ha
400 ml/ha
600 g ia/ha
1.0 L/ha
1.0 L/ha
720 g ia/ha
1.5 L/ha
375 g ia/ha
1.0 L/ha
1.0 L/ha
720 gia/ha
1 L/ha
600 g ia/ha
1 lt/ha
20 a 25 g ia/ha
200 a 250 ml/ha
200 a 250 ml/ha
75
XVI.- CONTROL DE ENFERMEDADES
Problemática Fitosanitaria. Un factor de gran importancia que ha
influido sobre todo en el rendimiento y la sanidad del cultivo, es el problema
fitosanitario, que ha estado presente en casi todas las regiones del mundo
que se dedican a la producción del cártamo, y México, no ha sido la
excepción.
Se mencionan varios organismos patógenos que causan daño a la
planta y como consecuencia impactan el rendimiento.
Pudrición de raíz por Phytophthora. (Phytophthora drechler Tuckeri
y Phytophthora crytogea). Esta enfermedad está ampliamente distribuida y
causa serios problemas en cártamos bajo riego, atacan a la raíz y a la parte
baja del tallo bajo condiciones favorables; actualmente no se ha identificado a
ninguna variedad comercial inmune a esta enfermedad. Las plantas son
susceptibles en todas las etapas del desarrollo, pero los síntomas se hacen
visibles de floración hacia delante. Las plantas infectadas empiezan a
decolorarse, se marchitan y mueren. En las etapas tempranas de la infección,
las raíces pueden mostrar un tejido rojizo; posteriormente, las raíces
infectadas y la parte baja del tallo empiezan a tornarse de un color oscuro.
Esta enfermedad puede ser devastadora, particularmente si el cultivo
es regado tardíamente y las plantas ya han mostrado síntomas de estrés de
humedad por falta de riego. Esto también puede ocurrir en campos no
regados si se presentan fuertes lluvias en etapas tardías. Esporas infecciosas
de Phytophthora son liberadas de cuerpos fructíferos presentes en el suelo
cuando el suelo se empieza a saturar. La enfermedad es más activa cuando
el suelo está completamente saturado; los daños pueden ser menores
durante los primeros riegos y posteriormente se empiezan a dispersar cuando
el número de esporas se incrementa. La resistencia de la planta de cártamo a
la infección no es constante. El cultivo al parecer se hace más susceptible si
se presenta un estrés por sequía, haciéndose evidente cuando se empiezan a
secar las hojas inferiores. Aunque aparentemente la planta es más
susceptible durante la formación de botones-floración, otros factores pueden
contribuir a la susceptibilidad. De acuerdo a la maduración de la planta, las
temperaturas también se incrementan y alcanzan un rango en el cual la
enfermedad es más activa.
76
En los suelos con drenaje pobre y/o alto niveles de inóculo, el riesgo
de la enfermedad es mayor al llevar a cabo los riegos.
Marchitez por Fusarium. (Fusarium oxysporium f. sp. carthami). La
alta capacidad de diseminación de esta enfermedad la convierte en muy
peligrosa; los síntomas característicos son marchitez y amarillamiento en las
hojas viejas de un lado de la planta. Las plantas jóvenes normalmente
mueren y las viejas pueden morir o bien se pueden afectar solo las ramas del
lado infectado. Una decoloración de color café del tejido vascular ocurre en el
tallo y raíz.
El agente causal invade las raíces y se disemina en forma sistémica
dentro del tallo, ramas y hojas a través de los tejidos vasculares. El hongo
persiste en el suelo y en residuos de cosecha, también se puede transmitir
por semilla, debido a que se mantiene en tejidos internos de la cascarilla. Son
pocas las variedades existentes con resistencia a esta enfermedad o a ciertas
razas del hongo. Para prevenir esta enfermedad se sugiere utilizar
únicamente semilla certificada libre del patógeno y evitar las siembras en
lotes con antecedentes.
Pudrición del pie. [(Macrophomina phaseoli (Maubl) Sabih). También
conocida como pudrición carbonosa. Las plantas afectadas no crecen ni
llegan a producir. Este hongo invade las raíces y el cuello y causa una
pudrición que destruye el parénquima, quedando al descubierto el tejido
fibroso de la parte afectada, la cual muestra los picnidios y esclerosios,
estructuras resistentes del hongo como pequeños puntos negros que
sobreviven en los residuos de cosecha. Estos residuos son medios eficaces
de diseminación, así como el agua de riego y la tierra en los implementos
agrícolas. Las medidas profilácticas para esta enfermedad incluyen la rotación
con gramíneas, el uso de semilla certificada libre del hongo y sembrar en
suelos con buen drenaje.
Marchitez por verticillium. (Verticillium dahliae). Esta enfermedad
ataca plantas en cualquier etapa del desarrollo durante condiciones de clima
fresco, pero la planta no muere rápidamente sino que generalmente durante
la madurez se seca más rápidamente que las normales. Una característica de
los síntomas tempranos, es una clorosis intervenal y marginal de las hojas en
la parte inferior. Posteriormente, de la parte inferior a la superior de la planta,
y en forma progresiva, las hojas toman una apariencia moteada; asimismo, se
77
hace evidente una coloración oscura en el tejido vascular de las plantas
infectadas.
El hongo causal puede tener su origen, tanto en el suelo, como en la
semilla. El organismo es favorecido por temperaturas frías, texturas de suelo
ligeras, alta fertilización nitrogenada y alta humedad edáfica. El hongo invade
las raíces y se distribuye dentro del tallo y las hojas a través de los tejidos
vasculares. Todas las variedades comerciales son susceptibles a esta
enfermedad. Para su prevención, se sugiere no sembrar la semilla producida
en campos infestados y llevar a cabo la rotación de cultivos, principalmente
con especies de gramíneas como son trigo, maíz, arroz, sorgo y caña de
azúcar.
Tizón del capítulo. (Botrytis cinerea Pers.). Este hongo ataca
principalmente en regiones con alta humedad ambiental. Los capítulos
infectados por esta enfermedad se tornan de un verde claro y posteriormente
toman un color blanquecino. Dependiendo de la etapa en que el hongo afecte
al capítulo, la semilla puede resultar vacía, con poco peso o normal. Las
esporas del hongo se diseminan por el viento y son ampliamente distribuidas
y las infecciones pueden ocurrir desde el inicio del botón floral hasta capítulos
maduros. No existen variedades comerciales resistentes. Para su prevención,
se sugiere evitar las siembras de cártamo en áreas en las que exista alta
humedad relativa.
Falsa cenicilla. Esta enfermedad es causada por el hongo Ramularia
carthami, Sacc (Figuras 8 y 9) y es la principal enfermedad que afecta al cultivo
de cártamo a nivel nacional. Su característica principal es que presentan
conidias hialinas, en forma de cilindro, típicamente de dos células, pero
pueden observarse muchas de una y más pocas de tres células, su forma
puede ser ligeramente curva o encorvada. Los conidióforos generalmente se
encuentran agrupados, éstos son cortos, y pueden ser hiialinos o subhialinos;
simples, curvos o doblados, con una cicatriz prominente en un extremo.
Sintomatología. Esta enfermedad generalmente inicia en el estrato
inferior de la planta, aunque puede manifestarse en cualquier parte de la
misma. Se observa infectando hojas, pecíolos, brácteas y algunas partes del
tallo. Inicialmente se presenta en forma de manchas en forma circular, de
color blanco cremoso; conforme avanza su desarrollo, aparece un halo
clorótico que posteriormente se hace amarillo, el tejido del centro de la lesión
78
adquiere un color café claro oscuro. Por otra parte, el centro de estas lesiones
al irse envejeciendo, se torna blanquecino (Figura 10) y con apariencia de un
polvillo granuloso, que son las estructuras del patógeno. Estas manchas al
crecer se unen, hasta secar gran parte de la hoja, con lo que adquiere una
apariencia atizonada.
FIGURA 8
FIGURA 9
Así mismo, estas lesiones pueden llegar a cubrir las brácteas y parte
del capítulo (Figura 11), lo que afecta directamente la fase de formación,
llenado y desarrollo del grano.
FIGURA 10
FIGURA 11
79
Cenicillas. Existe la posibilidad de que las cenicillas sean las
enfermedades de las plantas más comunes, conspicuas más ampliamente
distribuida y más fácil de reconocer. Afecta a todo tipo de plantas, las
cenicillas se caracterizan por formación de manchas, constituidas por masas
de hifas de color blanco a grisáceo sobre los tejidos. Las cenicillas producen
pequeños cleistotecios esféricos del tamaño de la cabeza de un alfiler que al
principio son de color blanco, mas tarde pardo amarillento, y finalmente
negros. Las cenicillas son los hongos que se observan con mayor frecuencia
sobre la parte superior de las hojas, pero afectan también el envés de las
mismas, tallo, retoños jóvenes, yemas, flores y frutos inmaduros. Se
consideran que el uso creciente de cantidades de nitrógeno para la
producción de mayor cosecha, aumenta la severidad de la enfermedad como
la cenicilla (Agrios, 1991).
Como se identifica la enfermedad. La enfermedad se identifica con
manchas en las hojas circulares y regulares. Por una masa blanquecina en el
centro por las fructificaciones del hongo (esporas), cuando las manchas se
secan se observa una coloración café en los márgenes, el tamaño es variable
y puede alcanzar un radio de 5 mm, puede encontrarse en ambos lados de
las hojas al inicio de la enfermedad ocurre en el primer tercio de la planta y el
avance es muy rápido, es decir, cuando aparece el síntoma ya han
transcurrido 15 días de que el hogo entró a la planta. La infestación se realiza
en cadena la enfermedad ataca a todas las variedades y todas las fechas de
siembra y densidades (Montoya y Álvarez, 2004; Montoya y Ochoa, 2005;
Pérez et al., 2004; Ramírez et al., 2008)
Condiciones Favorables.
El hongo sobrevive en el suelo y en restos de la cosecha anterior, en
forma de seudoesclerocios, hasta por un periodo de dos años. La humedad
relativa (HR) superior al 70% y temperaturas entre 5 a 25 °C, con un óptimo
de 16 a 17 °C favorecen la formación de las estructuras reproductivas del
patógeno. Por otra parte la germinación y penetración del hongo a la hoja
puede tardar de dos a tres días, con una humedad relativa superior al 95%.
Apareciendo los síntomas entre los 10 a 15 días posteriores a la infección.
Germoplasma Resistente.
Todas las variedades de cártamo que actualmente se utilizan a nivel
comercial son susceptibles a Ramularia Cartami Sacc. (Figura 12). Sin
80
embargo, existen reportes de
la
existencia
de
germoplasma, como fuente
de resistencia de cártamo a
esta enfermedad, en Siria,
India, Egipto y Pakistán (Djue
y Manuel, 1996, citado por
Pérez et al., 2004). Por otra
parte, en los trabajos de
investigación del INIFAP se
detectó a la línea CC13285Y-1Y-1Y-1Y-3Y-0Y la cual
fue
clasificada
como
resistente a este hongo
(Wong, 2004, citado por Pérez et a., 2006) Figura 13.
FIGURA 12
Debido a que la falsa cenicilla se presenta en todas las fechas y
densidades de siembra recomendadas, se sugiere se siembre durante el
periodo del 1° de diciembre al 15 de febrero con el fin de exponer a la planta
el menor tiempo posible a esta enfermedad y utilizar densidades de 10 a 20
plantas por metro lineal, que son las menos afectadas. En los suelos con alta
retención de humedad, suficiente para completar el ciclo normal de la planta,
se deben evitar los riegos de auxilio, ya que éstos crean un microclima de alta
humedad ambiental que induce a una mayor incidencia de la cenicilla.
La aplicación de
fungicidas preventivos se
debe realizar cuando se
presenten condiciones de
alta humedad ambiental
con mancozeb (3 L/ha de
Dithane-MZ) y chlorotalonil
(2 L/ha de Cheyene-720F).
Las aplicaciones curativas
se
deben
iniciar
al
observarse
el
primer
síntoma de la enfermedad
con los productos que han
registrado
la
mayor
eficacia
como
son:
FIGURA 13
81
tebuconazole (500 ml/ha de Folicur 250 EW), epoxiconazol (1 L/ha de Opus),
kresoxim-metil (200 g/ha de Stroby DF, difenoconazole (500 ml/ha de Sico)
(Montoya, et al. 2008b), trifloxistrobin (120 g/ha de Flint) y carbendazim (500
ml/ha de Derosal) (Ramírez et al. 2008). Si la fecha de siembra utilizada es
temprana, la enfermedad se presenta al inicio de ramificación del cultivo,
quizá sea necesaria una segunda y tercera aplicación de productos curativos
a intervalos de 20 días (Ramírez, et al, 2005).
Mancha foliar. (Alternaria carthami Chow). Esta enfermedad ataca a
la planta desde su estado inicial hasta adulta, afectando incluso la calidad de
la semilla. Por su efecto en la producción es una de las enfermedades más
importante en todas las regiones productoras de cártamo del mundo, ya que
puede abatir drásticamente el rendimiento (Harrigan et al., 1982).
La semilla infectada con este hongo puede redundar en fallas en la
germinación, debido a la pudrición de ésta. En casos de germinar, las
plántulas pueden sufrir damping off o bien presentar manchas irregulares de
color café con círculos concéntricos. Estas manchas con apariencia de tiro al
blanco se observan también en las hojas inferiores de las plantas adultas. Las
manchas crecen invadiendo más superficie de las hojas superiores, de tal
manera que una infección muy severa puede provocar atizonamiento en la
totalidad de la planta. Los capítulos afectados por el hongo presentan el
mismo tipo de lesión y atizonamiento y los granos de éstos son escasos y
gran parte de ellos están vacíos. La enfermedad es favorecida por humedad
ambiental y temperaturas altas, 80-100% y 28-300C, respectivamente
(Céspedes, 1991).
Para la prevención de esta enfermedad, se sugiere el uso de semilla
certificada, evitar la siembra en suelos con mal drenaje, evadir los riegos
pesados y encharcamientos, ajustarse a la densidad de siembra sugerida ya
que el amontonamiento propicia un microclima húmedo favorable al hongo.
Asimismo, se sugieren aplicaciones de fungicidas a base de Mancozeb y
oxicloruro de cobre antes de que el cultivo se cierre, para evitar la infección
por el hongo (Grupta, 1983).
Roya. (Puccinia carthami Corda). Está distribuida ampliamente en
todas las áreas de producción comercial, pero se acentúa en los estados de
Sonora y Sinaloa. La roya tiene ciclo de vida muy complejo y produce
diferentes tipos de esporas, esto dependiendo de la etapa del ciclo en el que
82
se encuentre presente. Telioesporas de color negro aparecen al final del ciclo
y pueden infestar semillas o pueden persistir en el suelo. Estas esporas
producen basidioesporas las cuales posteriormente infectan plántulas cuyo
origen fueron semillas infectadas o plántulas desarrolladas en suelo donde se
tuvo cártamo en el ciclo anterior. Las aeciosporas y telioesporas inician la
etapa foliar de la enfermedad en plantas viejas y provenientes del aire. La
infección foliar es caracterizada por pústulas de color café ladrillo
(conteniendo urediosporas) sobre los cotiledones, hojas y brácteas (Figura
14). La roya es más dañina cuando se presenta en etapa de plántula que en
etapas más avanzadas. Cuando la enfermedad se hace presente en la etapa
de plántula cuyo síntoma principal es una lesión café rojiza alrededor del
cuello que causa agrietamientos y estrangulamientos. Estas plantas
rápidamente se marchitan, se doblan y mueren. Cuando ataca a plantas más
avanzadas, se van observando pústulas en ambas caras de las hojas
superiores. Algunas de las hojas afectadas pueden presentar amarillamiento y
llegar incluso a secarse. La infección puede llegar hasta las brácteas de los
capítulos; estas infecciones, durante las etapas tempranas del desarrollo del
cultivo, pueden afectar del 10 al 15% al rendimiento de grano.
FIGURA 14
Para la prevención de esta enfermedad se sugiere el uso de semilla
certificada, libre del hongo y tratar la semilla con fungicidas. La rotación de
cultivos es también una buena medida para reducir las poblaciones del hongo
en el suelo. Los fungicidas curativos con mayor eficacia para el control de
roya en cártamo en el sur de Sonora son difenoconazole (500 ml/ha de Sico)
y tebuconazole (500 ml/ha de Folicur) (Ramírez, et al, 2005).
83
Mancha gris de la hoja (Stemphyllium sp.). Es una enfermedad que
se presenta esporádicamente y en forma aislada, sin presentar importancia
económica. El hongo produce manchas de 2 a 5 mm de diámetro de color
gris, tanto en las hojas como en las brácteas. Las condiciones ambientales
favorables a este hongo son de temperatura y humedad ambiental altas. El
estado de Tamaulipas se reporta como una de las regiones de México con
mayor incidencia de esta enfermedad. La prevención de esta enfermedad se
logra sembrando dentro de las fechas recomendadas, seleccionando
variedades altamente tolerantes y realizando aplicaciones con fungicidas a
base de Mancozeb. (Cervantes y Yáñez, 1989; Jiménez, 1977).
http://www.ext.nodak.edu/extpubs/plantsci/crops/a870w.htm (Kaffka, 2000).
http://agric.ucdavis.edu/crops/oilseed/safflower.htm
XVII.- COSECHA
Dependiendo de la fecha de siembra, manejo del cultivo y de las
condiciones ambientales, la cosecha se realiza de los 140 a los 190 días
después de la siembra. La cosecha se debe realizar cuando las hojas de la
planta y las brácteas de los capítulos o cabezuelas se tornen de color café,
existiendo muy pocas de los capítulos más tardíos con un tinte de verde muy
ligero. Estos últimos en realidad son muy pequeños y normalmente tienen
semilla malformada o vacía de tal manera que no contribuyen en gran medida
al rendimiento. Para esta etapa, la semilla es dura y se deberá desprender
fácilmente del capítulo y contener de seis a ocho por ciento de humedad; esta
baja humedad es requerida para evitar que el grano o la semilla se deterioren
por calentamiento o enmohecimiento. Asimismo, cuando la cosecha se realiza
con una humedad superior a 8% la calidad es mala ya que trae consigo
demasiada impureza. En el Cuadro 9, se presentan las normas de calidad
para la comercialización del cártamo.
La cosecha del cártamo se realiza con máquina combinada para
granos pequeños y los ajustes que deben hacer a esta son los siguientes: la
velocidad del cilindro debe ser de 760 a 915 rpm, dejando el cilindro y el
cóncavo a una separación de 9.5 a 16 milímetros. En ocasiones se puede
dejar una sola hilera de cóncavos.
Finalmente, el aire se debe graduar para obtener grano limpio y reducir
al máximo la velocidad del “papalote” (1.25 veces la velocidad de
84
traslocación). Cuando el cártamo esté muy seco, puede quitarse el “papalote”.
(Montoya, 1998) Berglund http://www.ianr.unl.edu/pubs/fieldcrops/nf36.htm
CUADRO 26. NORMAS DE CALIDAD PARA EL GRANO COSECHADO DE
CÁRTAMO.
HUMEDAD
IMPUREZAS
GRANOS
DAÑADOS
6%
0.1%
5%
SE ACEPTA CON UN
DESCUENTO POR
TONELADA DE:
10 kg = 6.1 a 7.0 %
29 kg = 7.1 a 8.0 %
1 kg por cada décimo
de grado excedente
hasta 6%
---
SE RECHAZA
Si tiene más de 8%
Si tiene más de 6%
Si tiene más
de 5%
SE ACEPTA SIN
DESCUENTO CON UN
MÁXIMO DE :
Fuente: SAGAR
85
XVIII.- BIBLIOGRAFIA
Abel, G. H. 1976. Relationships and uses of yield components in safflower breeding.
Agronomy Journal 68(3): 442-447.
Abel, G. H., and D. G. Lorance. 1975. Registration of Dart safflower. Crop Science
15:100.
Agrios, G. N. 1991. “Fitopatología”, Editorial Limusa. Mexico, D.F. pp. 282-283
Aragón, C. M. y J. T. Borbón. 1982. Evaluación de la respuesta del cártamo a 4
niveles de fertilización nitrogenada aplicado en 2 etapas bajo la rotación trigocártamo en suelos de aluvión. En Pacheco M., F. (ed). Avances de
Investigación-CIANO. N° 11. O-I 1981-1982. p.70.
Ashri. 1971. Evaluation of the world collection of safflower. Reaction to several
diseases and associations with morphological characters in Israel. Crop
Science 11:253-257.
Armenta, C. C. M., J. A. Ramírez y J.R. Valenzuela.2005. Epidemiología de la falsa
cenicilla del cártamo en el Valle del Mayo En: Acciones sobre el control de la
Falsa Cenicilla del Cártamo (Ramularia carthami) en el Sur de Sonora. INIFAPCESAVE.
Ashri. 1976.Salt tolerance of safflower. Agron.J. 56:38-40. NA. 367.
Baudilio J. 1983. Forrajes, Fertilizantes y Valor Nutritivo. Editorial Aedos Barcelona,
España. 2da. Edición. pp. 21-29.
Beltrán, F.M. J. 1982. Evaluación de 4 dosis de nitrógeno aplicado en dos etapas en
el suelo de aluvión, bajo dos sistemas de rotación en cártamo. En Pacheco M.,
F. (ed). Avances de la Investigación-CIANO. N° 11. O-I 1981-1982. p 92.
Berglund, D.R., N. Riveland and J. Bergman, 1998. Safflower production. North
Dakota
State
UniversityExtensión
Service.
www.ext.nodak.edu/extpubs/plantsci/crops/a870w.htm
Blum, A. 1979. Genetic improvement of drought resistance in crop plants. A case of
sorghum. In Mussel H. and R. C. Stables (eds). Stress physiology in crop
plants.. Wiley Interscience, New York, N. Y. U.S.A. pp. 429-445.
Camarillo, P. M., M. Machain y S de C. Guzmán. 1983. Guía para producir cártamo
en el valle de Mexicali. Folleto para Productores N° 6 CAEVAMEX-CIANOINIA. 16 p.
Carapetian, J. and P. F. Knowles. 1993. Genetic linkage between the trigenic, alefemale sterility and oil quality alleles in safflower. Crop Sci 33: 239-242.)
86
Castillo, T. N. 1982. Evaluación de 9 métodos de siembra en cártamo, en un suelo de
aluvión. En Pacheco M., F. (ed). Avances de la Investigación-CIANO. N° 11. OI 1981-1982. p-79.
Cervantes, M. E. y M. J. Yáñez. 1989. Resumen del Marco de Referencia y
resúmenes de los problemas del cártamo. Presentación anual ante Uper
Regional. SARH-INIFAP-CIFAP-Pánuco-CESTAM.
Céspedes, T. E. 1983. Guía para cultivar cártamo de temporal en las huastecas.
Folleto para productores Núm. 8. CACHUAS-CIAGON-INIA. 16 p.
Céspedes, T. E. 1991. Guía para cultivar cártamo en las Huastecas. Folleto para
productores N°6. SARH-INIFAP-CIFAP-Pánuco, Tampico, Tamps. México.
Claridades Agropecuarias. www. Infoaseca.gob.mx
Contreras, C. E. y L. M. Tamayo. 1999. Tecnología para el control de maleza en los
principales cultivos del Valle del Yaqui, Sonora. Publicación Técnica Núm. 1.
CEVY-CIRNO-INIFAP. p. 15-16.
Chavira, L. M. A. 1977. Respuesta del cártamo al incremento en población con
distintos niveles de nitrógeno y fósforo. En Pacheco M., F. (ed). Avances de la
Investigación-CIANO. O-I 1976-1977. p-46
Chavira, L. M. A. 1979. Exploración con niveles de nitrógeno y fósforo en cártamo (4°
año). En Pacheco M., F. (ed). Avances de la Investigación-CIANO. N° 5. O-I
1978-1979. p-46.
Chavira, L. M. A. 1979. Evaluación de un riego de auxilio a diferentes intervalos en 2
variedades de cártamo. En Pacheco M., F. (ed). Avances de la InvestigaciónCIANO. N° 5. O-I 1978-1979. p-50.
Demolon, A. y Pérez, 1972. Crecimiento de Vegetales Cultivados. Ediciones Omega,
S.A. Barcelona, España. 1972. pp. 199-201.
Deokar, A.B., N. D. Patil, B. S. Manke and M.. S. Munde. 1984. Response of safflower
Carthamus tinctorious varieties to different dates of sowing. Journal of
Maharashtra Agric. Univ. 9(1): 67-69.
Figueroa, L. P. y L. Montoya. 2005. Identificación del agente causal de la falsa
cenicilla del cártamo en el sur de Sonora. En: Acciones sobre el control de la
falsa cenicilla del cártamo (Ramularia carthami) en el Sur de Sonora. INIFAPCESAVE.
Figueroa, L. P. J. Cantúa y L. Montoya. 2005. Módulos demostrativos de la eficacia
de fungicidas para el control de la falsa cenicilla de cártamo en dos localidades
en el Valle del Yaqui. En: Acciones sobre el control de la Falsa Cenicilla del
Cártamo (Ramularia carthami) en el Sur de Sonora. INIFAP-CESAVE.
87
Figueroa, L. P. y L. Montoya. 2005. Etiología del agente causal de la Falsa cenicilla
del Cártamo en el sur de sonora. En: Acciones sobre el control de la Falsa
Cenicilla del Cartamo (Ramularia carthami) en el Sur de Sonora. INIFAPCESAVE.
Finck, A. 1988. Fertilizantes y Fertilización, Editorial Reverté, S.A. Barcelona, Bogotá.
pp 191, 342-343.
García, P. R. D. 1997. Guía para producir cártamo en el centro de Sinaloa. Folleto
para Productores N° 44. CEVACU-CIRNO-INIFAP. 12 p.
García, P. R. D., G. Chanda y M. Leyva. 1993. Sinaloa’90 Nueva variedad de cártamo
para el noroeste de México. Folleto técnico N° 14. CEVACU-INIFAP-SARH. 12
p.
Grageda, G. J., P. F. Ortega, R. J. Herrera y A. A. Fu. 1999. Componentes
tecnológicos para mejorar la productividad y rentabilidad en trigo, maíz, sorgo y
cártamo. Folleto Técnico N° 18. SAGAR-INIFAP-CIRNO.CECH. 55 p.
Grossbard y Atkinson. 1985. grg23 epsp Synthases: Compositions and Methods of
Use. http://www.freepatentsonline.com/y2008/0127372.html
Gupta, R. K., and S. B. Singh. 1988. Diallel analisis for seed yield, oil content and
other economic traits in safflower (Carthamus tinctorius L.). GenetikaYugoslavia 20:161-173
Gupta, R.S. 1983. Safflower “package of practices for increasing production” Indian
Council of Agricultural Research (ICAR). India. N°4. pp. 5-6.
Gyulai, J. 1996. Market Outlook for safflower. In Great Falls, Montana. Mundel, H.H.,
Braun, J. and Daniels C. (eds). Proccedings of North American Safflower
Conference. Great Falls, Montana. Lethbridge, AB, Canadá. p-15.
Harrigan, E., F.S. 1985. Safflower breeding for disease resistance in Australia.
Sesame and Safflower Newsletter N°. 1: 44-45.
Harrigan, E., F.S. 1989. Review of research of safflower in Australia. Abstr. Second
Internacional Safflower Conference. Hyderaband, India. P.39.
Harrigan, E., F.S., Mc Rae, G.F., and Heritage, A.D. 1982. Sources of resistance to
Phytophthora cryptogea and Alternaria carthami for safflower breeding in
Australia. Jour. Austr. Inst. Agric. Sci. 48: 158-160.
Hashemi, D. A. 1994. Growth and yield of safflower as affected by drought stress.
Crop Research (Hisar) 7 (3): 313-319.
http://www.agronet.com.mx/cgi/articles.cgi?Action=View&Article=5&Type=A
http://www.oleaginosas.org/cat_60.shtm
88
http://www.ianr.unl.edu/pubs/fieldcrops/nf36.htm
http://www.kleinvie.com.ar/cartamo.htm
http://www.ianr.unl.edu/pubs/fieldcrops/nf36.htm
http://www.Chapingo.mx/terra/contenido/17/3/art201-207.p
http://www.enbuenasmanos.com/articulos/muestra.asp?art=1205
http://es.wikipedia.org/wiki/C%C3%A1rtamo
http://www.oleaginosas.org/cgi-bin/exec/search.cgi?cat=57&template=index%2F
categorias.html&start= 4&perpage=1
http://es.wikipedia.org/wiki/Carthamus_tinctorius
Jiménez, G.E. 1977. Evaluación de pérdida de rendimiento por efecto de roya en
cártamo. En Pacheco M., F. (ed). Avances de la Investigación-CIANO. O-I
1976-1977. p-14.
Kaffka, S.R., T. E. Kearney, P.D. Knowles, P.D., and Millar, M.D. 2000. Safflower
production in California. http://agric.ucdavis.edu/crops/oilseed/safflower.htm
Knowles, P.F. 1989. Genetics and breeding of oil crops. In Robbelen, G., Downey
R.K., and Ashri, A. Eds. Oil crops of the world, there breeding and utilization.
Mc Graw Hill Publishing Co. pp. 260-282.
Knowles, P.G. 1980. Safflower. In Fehr, W.R., and Hadley, H.H. eds. Hibridization of
crop plants.. Am Soc. Agron. Madison Wis.
Kotecha, A. 1979. Inheritance and association of six traits in safflower. Crop Science
19: 523-527.
Krupinsky, J.M. 1974. Safflower: a crop with an Alternaria leaf spot problem. Dept.
Plant Pathology. Proyect Document. University of Montana.
Ladd, S.L., and P. F. Knowles. 1971. Inheritance of alleles at two loci regulating fatty
acid composition of the seed oil of safflower (Carthamus tinctorius L.). Crop
Science 11: 681-684.
Li, Dahue and H. H. Mündel. H. H. 1996. Safflower. Carthamus tinctorius L. Promoting
the conservation and used underutilized and neglected crops. 7. Institute of
Plant Genetics and Crop Plant Research, Gatersleben/Internacional Plant
Genetic Resources Institute, Rome, Italy. 83 p.
López, G. A., J. M. Loaiza, J. G. Morua, P. F. Ortega, R. C. Romo y R. E. Torres.
1983. Cártamo. In. Guía para los cultivos agrícolas en los ríos Sonora Y San
Miguel. Folleto para Productores N° 6. CAECH-CIANO-INIA. pp. 50-56.
89
López, G. G. 1989. Acerca de la clasificación natural del género Carthamus L., s.1.
Anales del Jardín Botánico de Madrid 47(1):11-34.
Lyon, D.J., D. D. Baltensperger and E. Kerr. Growing safflower in Nebraska. 1991.
Nebraska Cooperative Extension NF91-36 http://www.ianr.unl.edu/pubs/fieldcrops/
nf36.htm
Madrid, C. M. y J. R. Cota. 1998. Tecnología para el control de correhuela en el Valle
del Mayo. Desplegable para Productores N° 2. CEMAY-CIRNO-INIFAPSAGAR).
Medina, O. S., A. González y J. A. Ruíz C., J.A. 2001. Guía para producir cártamo en
el centro y sur de Jalisco. Folleto para Productores N° 1. CECEJA-CIRPACINIFAP. 16 p.
Misra, R.K., and R. K. Yadav. 1991. Genetic Studies in safflower Carthamus tinctorius
L. Adv. Plant Sci 4(2): 319-323.
Montoya, C. L. y R. Álvarez, 2004. Prevención y Control de la Falsa Cenicilla en
Cártamo. Fichas tecnológicas, Sistema producto de cártamo. SAGARPAINIFAP-CIRNO-CEVY.
Montoya, C. L. y F. Ochoa, 2005. Guía para producir cártamo en el sur de Sonora.
Folleto para Productores Nª 37. SAGARPA-INIFAP-CIRNO-CEVY.pp24
Montoya, C. L. 2004a. Evaluación de 5 genotipos de cártamo tolerantes a cenicilla.
Reporte técnico. Documento de Circulación Interna. SAGARPA-INIFAPCIRNO-CEVY.
Montoya, C. L. 2004b. Validación de 6 fungicidas preventivos y curativos para
cenicilla en cártamo. Reporte Técnico. Documento de Circulación Interna.
SAGARPA-INIFAP-CIRNO-CEVY.
Montoya, C. L. 2004c. Evaluación de etapas de desarrollo de cártamo y niveles de
infección para el control de cenicilla. Reporte técnico. Documento de
Circulación Interna. SAGARPA-INIFAP-CEVY.
Montoya, C. L. 2004d. “Evaluación de fungicidas preventivos y curativos para cenicilla
en cártamo. Reporte técnico. Documento de Circulación Interna. SAGARPAINIFAP-CIRNO-CEVY.
Montoya, C. L. 1998. Guía para producir cártamo en Sonora. Folleto para Productores
N° 30. CEVY-CIRNO-INIFAP-SAGAR. 24 p.
Montoya, C. L. 1998. Quilantán’97. Variedad de cártamo tipo oleico para el noroeste
de México. Folleto Técnico N° 35. CEVY-CIRNO-INIFAP.SAGAR. 12 p
90
Montoya, C. L. et al. 2008a. CIANO-OL, CIANO-LIN, RC-1002, RC-1005 y RC-1033:
Variedades de cártamo altamente tolerantes a falsa cenicilla (Ramularia
carthami). Folleto Técnico Nª 60. CEVY-CIRNO-INIFAP-SAGARPA. 27p.
Montoya, C. L., et al. 2008b. GUÍA PARA PRODUCIR CÁRTAMO EN SONORA.
Folleto Para Productores Nª.38. CEVY-CIRNO-INIFAP-SAGARPA. 26p.
Moreno, R. O. H. y A. García. 1983. Respuesta del cártamo a N, P, K en rotación
cártamo-maíz-algodonero, en el Valle del Yaqui, Son. En Pacheco M., F. (ed).
Avances de la Investigación-CIANO. N° 13. O-I 1982-1983. p. 92.
Mueller,
J.
and
Lange
1959.
Stem
Borer
Found
on
http://ucce.ucdavis.edu/files/repositoryfiles/ca1303p4-64727.pdf
Safflower.
Mundel, H.H., R. J. Morrison, R. E. Blackshaw, T. . Entz, B. T. Roth, R. Gaudiel, y F.
Kiehn. 1994. Seeding date effect on yield, quality and maturity of safflower.
Canadian Journal of Plant Science 74(2): 261-266.
Muñoz, B. S. 1977. Determinación del porcentaje de polinización natural en cártamo
en el Valle del Yaqui, Son. En Pacheco M., F. (ed). Avances de la
Investigación-CIANO. O-I 1976-1977. p. 1.
Muñoz, B. S. 1977. Evaluación de 7 fechas de siembra en 5 variedades de cártamo
en suelos de aluvión y arcilloso en el Valle del Mayo. En Pacheco M., F. (ed).
Avances de la Investigación-CIANO. O-I 1976-1977. p. 42-43.
Musa, G. L. Ch. y E.Gándara. 1991. Aplicación del calendario de riego en la variedad
de cártamo Quiriego 88 en parcelas demostrativas en el valle del yaqui, Son.
En Pacheco M., F. (ed). Avances de la Investigación-CIANO. N° 29. O-I 19901991. p. 26.
Musa, G. L. Ch. y S. Muñoz. 1989. Ensayo para evaluar el rendimiento de 12
genotipos de cártamo en 4 fechas de siembra en el Valle del Yaqui, Son. En
Pacheco M., F. (ed). Avances de la Investigación-CIANO. N° 25. O-I 19881989. pp-32-33.
Musa, G. L. Ch., S. Muñoz, R. D. García y O. Leal. 1993. San ignacio’92, Sonora’92 y
Bácum’92: Nuevas variedades de cártamo para el noroeste de México. Folleto
técnico N° 21. CEVY-CIRNO-INIFAP-SARH. 24 p.
Musa, G. L. Ch., S. Muñoz y R. D. García. 1990. San José 89: Nueva variedad de
cártamo. Folleto Técnico N° 16. CEVY-CIFAPSON-INIFAP. 16 p.
Musa, G. L. Ch., et al. 1990. Guía para cultivar cártamo en el sur de Sonora. Folleto
para Productores Núm. 25. CEVY-CIFAPSON-INIFAP. 28 p.
Navarro, L. R. G., O. H. Moreno y A. Salazar. 1980. Evaluación de la respuesta del
cártamo a 16 tratamientos de fertilización nitrogenada, aplicados en 2 etapas y
5 densidades de población bajo 2 rotaciones de cultivos en suelos de aluvión.
En Pacheco M., F. (ed). Avances de la Investigación-CIANO. N° 7. O-I 19791980. p. 31-32.
91
Núñez, S., R. y F. Alvarez. 1998. Como producir cártamo en la región de Ojinaga,
Chihuahua. Folleto para Productores N° 2. CEDEL-CIFAPCH-INIFAP. 16 p.
Ochoa, B. F. y M. J. Beltrán. 1990. Evaluación de la fecha de siembra, densidad de
siembra y método de labranza en cártamo en suelo salino en el Júpare,
Huatabampo, Son. Avances de la Investigación-CIANO. O-I 1989-1990. N° 27.
p-88.
Orozco F. L. 1997. Suelos y Fertilización. Editorial Trillas, México D.F. p. 80.
Ortega, M. P. F. y L. Montoya. 1998. Evaluación de genotipos en la Costa de
Hermosillo. Informe técnico inédito. INIFAP-CIRNO-CECH. Hermosillo, Son.
Pacheco, M. F. 1985. Plagas de los cultivos agrícolas en Sonora y Baja California.
Libro Técnico Nº 1. 1ª edición. CIANO-INIA-SARH. 414 p.
Pacheco, M. F. 1994. Plagas de los cultivos oleaginosos en México. p. 504-505 Libro
Técnico N° 3. 1° edición. CIRNO-INIFAP-SARH. 600 p.
Palacios, S. J.E. 1990. Respuesta del cultivo de cártamo a diferentes niveles de
salinidad en el suelo en el Valle del Mayo, Son. Avances de la InvestigaciónCIANO N° 27. O-I 1989-1990. pp. 95-96.
Paredes y Ordoica, 1986. http://www.oleaginosas.org/cat_60.shtm
Patil, P. S., A. M. Deokar and B. I. Patil. 1992. Stability of yield in rainfed and irrigated
safflower. Journal of Maharashtra Agricultural Universities 17(1): 66-69.
Patil, V. D., S. Reddy and Y. S. Nerkar. 1994. Efficiency of early generation selections
for yield and related characters in safflower. Theoretical and Applied Genetics
89 (2-3): 293-296.
Perez, V. J.J., et al. 2004. Falsa cenicilla (Ramularia carthami Sacc.) enfermedad de
alto impacto en el cultivo del cártamo. Folleto para Productores No. 51.
SAGARPA-INIFAP-CIRNO-CEVC.
Quihuis, M. R., S. Aranda y J. Monge. 1980. Cultivo de cártamo en la región de
Caborca. Hoja Desplegable CIANO N° 59. CAE-Región de Caborca-CIANOINIA-SARH. 6 p.
Quilantán, V. L. 1978. Cártamo. In Cervantes S., T. ed. Recursos genéticos
disponibles a México. Sociedad Mexicana de Citogenética, A. C. pp. 209-213.
Ramírez, A., J.A. y C. M. Armenta. 2005. Determinación de los niveles de severidad y
los intervalos entre aplicaciones en el control de la falsa cenicilla del cartamo
(Ramularia carthami) en el Valle del Mayo. In. Acciones sobre el control de la
Falsa Cenicilla del Cártamo (Ramularia carthami) en el Sur de Sonora. INIFAPCESAVE.
92
Ramírez, A. J. A., C. M. Armenta y J. R. Valenzuela. 2005. Módulos demostrativos de
la eficacia de fungicidas en el control de la falsa cenicilla del cártamo
(Ramularia carthami) en dos localidades del valle del mayo. In. Acciones sobre
el control de la Falsa Cenicilla del Cartamo (Ramularia carthami) en el Sur de
Sonora. INIFAP-CESAVE.
Ramírez, A. J. A., et al. 2008. Control Químico de la falsa cenicilla del cártamo
(Ramularia Carthami) en el sur de Sonora. Folleto Técnico Nª 58. CEVYCIRNO-INIFAP-SAGARPA. 25p
Ramachandram, M., and V. Goud. 1982. Component of seed yield in safflower.
Genet. Agrar 26(3-4): 211-222.
Robles, S. R. 1980. Cultivo del cártamo. In Producción de oleaginosas y textiles.
Editorial LIMUSA. México. pp 331-391.
Rodríguez, M. B., A. López y J. Macías. 1998. Guía para cultivar cártamo de temporal
en el norte de Sinaloa. Folleto para Productores N° 6 CEVAF-CIRNO-INIFAP.
16 p.
Rodríguez, M. B., B. López y J. Macías. 1998. Guía para cultivar cártamo bajo riego
en el norte de Sinaloa. Folleto para Productores N° 5 CEVAF-CIRNO-INIFAP.
16 p.
Rodríguez, S.F. 1989. Fertilizantes, Nutrición Vegetal, AGT Editor, Primera
reimpresión, México, D.F. p. 157
Rodríguez, S.F. 1992. Fertilizantes, Nutrición Vegetal, AGT Editor, Segunda
reimpresión, México, D.F. p. 157.
Rojas, G. M. 1982. Fisiologia Vegetal Aplicada. 2da. Ed. McGraw–Hill de México, S.A
de C.V. pp. 110-112, 172-173.
Rubis, D. D. 1967. Genetics of safflower seed characters related to utilization.
Internacional research conference on utilization of safflower. Albano, Ca. ARSUSDA. Publ. 74-43. U. S. Gaverment Printing Office. Washington, D. C.
Shaiba, M.R., et al. 1996. Contribution of internode reserves to grain yield in tall and
semidwarf spring wheat. J. Gent. Brd. 50:91-100. (Biblio. Revista)
Sánchez, S. J. E. 1989. Respuesta del cártamo a diferentes potenciales de humedad
en el suelo salino, en el Júpare, Son. Avances de la Investigación-CIANO N° 25
O-I 1988-1989. F. Pacheco M. editor. p. 69.
Sangale, P.B., D. Pagar and S. Daftardar. 1982. Note an the association ef seed oil
content with hull, kernel and seed size of safflower. Indian J. Agric. Sci. 52(9):
613-614.
Smith, J. 1996. Safflower. AOCS Press, Champaign, Illinois. 606 p.
93
Soltanpour, P.N., and h. Follett. 2001. Crop tolerance to soil salinity. Crop Series N°
0.505.
Colorado
State
University
Cooperative
Extensión.
www.colostate.edu/pubs/crops/00505.html Stumpf,P. K. 1975. Biosynthesis of
saturated and unsaturated fatty acids by maturing Carthamus tinctorius L.
seeds. JACOS. 52: 484-490.
Tamayo, e. l. m. 2001, Manejo Integrado de Maleza en Trigo para el Noroeste de
México. Folleto Técnico Nº 42. INIFAO-CEVY. p.20-31
Tamhane R.V, 1986. In: Motiramani D.P., Bali, Y.P. Suelos: Su química y fertilidad en
zonas Tropicales. Editorial Diana, México D.F. p. 286.
Torres, B. C. 1978. Efecto de la fertilización N-P y la densidad de población sobre el
rendimiento de grano en cártamo. Avances de la Investigación-CIANO. N° 13.
O-I 1982-1983. F. Pacheco M. editor. p- 43-44.
Trinidad, A. S. y M. D. Aguiar. 1998. La fertilización foliar, un respaldo importante en
el rendimiento de los cultivos. Simposium Nacional sobre Nutrición de cultivos.
Querétaro, Qro. p. 26-27
Urie, A. L. 1986. Inheritance of partial hull in safflower Crop Sci.26: 493-498.
Urie, A. L., and E. Zimmer. 1970a. Registration of reduced-hull safflower lines,
reduced hull-1, -2, -3, -4. Crop Sci. 10:732.
Urie, A. L., and E. Zimmer. 1970b. Registration of thin-hulled, structurally male-sterile
safflower lines, th-5 and th-10. Crop Sci. 10: 463-466.
Weiss, E. A. 1971. Castor, Sesame and Safflower. Barnes and Noble, Inc., New Cork.
pp. 529-744.
www.aacrea.org.ar/economia/articulos/pdf/aaii_22_cartamo.pdf
www.qro.itesm.mx/agronomia2/extensivos.html Producción Vegetal. cártamo.
Yañez, R. 2002. Nutrición y regulación del crecimiento en hortalizas y frutales.
Simposium Nacional de horticultura. Saltillo; Coahuila, México D. F. p.
Yermanos, D.M., S. Hemstreet and J. Garber. 1967. Inheritance of quality and
quantity of seed oil in safflower. Crop Sci. 7: 417-422.
Ziv y Hagiladi, 1993http://www.Chapingo.mx/terra/contenido/17/3/art201-207.pdf
94
PERSONAL INVESTIGADOR DEL CAMPO EXPERIMENTAL NORMAN E. BORLAUG*
M.C. LOPE MONTOYA CORONADO
JEFE DE CAMPO / CÁRTAMO
montoya.lope@inifap.gob.mx
M. C. JESÚS RAFAEL VALENZUELA BORBÓN
RESPONSABLE DEL SITIO EXPERIMENTAL VALLE DEL MAYO
valenzuela.rafael@inifap.gob.mx
M.C. INÉS ARMENTA CÁRDENAS .................................................................................................................................. ENTOMOLOGÍA
armenta.ines@inifap.gob.mx
M.C. CÉSAR MARTÍN ARMENTA CASTRO .................................................................................................................. FITOPATOLOGÍA
armenta.cesar@inifap.gob.mx
M.C. RAMÓN ANTONIO ARMENTA CEJUDO ......................................................................................................................... ECONOMÍA
armenta.antonio@inifap.gob.mx
M.C. MANUEL DE JESÚS BELTRÁN FONSECA ................................................................................................SUELOS / VALIDACIÓN
beltran.manuel@inifap.gob.mx
M.C. FERNANDO CABRERA CARBAJAL................................................................................................... USO Y MANEJO DEL AGUA
cabrera.fernando@inifap.gob.mx
ING. JESÚS ANTONIO CANTÚA AYALA ............................................................................ LEGUMINOSAS COMESTIBLES / CANOLA
cantua.jesus@inifap.gob.mx
M.C. NEMECIO CASTILLO TORRES ................................................................................... LEGUMINOSAS COMESTIBLES / CANOLA
castillo.nemecio@inifap.gob.mx
Q.B. GABRIELA CHÁVEZ VILLALBA.............................................................................................................................................. TRIGO
chavez.gabriela@inifap.gob.mx
DR. JUAN MANUEL CORTÉS JIMÉNEZ ............................................................................................................... NUTRICIÓN VEGETAL
cortes.juanmanuel@inifap.gob.mx
M.S. OSCAR MANUEL COTA AGRAMONT ....................................................................................................................................... MAÍZ
cota.oscar@inifap.gob.mx
ING. EDGAR ALBERTO CUBEDO RUÍZ......................................................................................... FITOPATOLOGÍA/BIOTECNOLOGÍA
cubedo.edgar@inifap.gob.mx
M.C. JOSÉ JUAN DUARTE RAMÍREZ .......................................................................................................................................... SUELOS
duarte.jose@inifap.gob.mx
M.C. JOSÉ LUIS FÉLIX FUENTES ................................................................................................................. TRIGO / BIOTECNOLOGÍA
felix.joseluis@inifap.gob.mx
M.C. PEDRO FÉLIX VALENCIA ................................................................................................................... PREDICCIÓN DE COSECHA
felix.pedro@inifap.gob.mx
DR. PEDRO FIGUEROA LÓPEZ ...................................................................................................................... TRIGO / FITOPATOLOGÍA
figueroa.pedro@inifap.gob.mx
DR. GUILLERMO FUENTES DÁVILA .........................................................................................FITOPATOLOGÍA / CARBÓN PARCIAL
fuentes.guillermo@inifap.gob.mx
M.C. MANUEL DE JESÚS GUERRERO HERRERA ........................................................................................................... MAÍZ / AGAVE
guerrero.manuel@inifap.gob.mx
M.C. RAMÓN ALFONSO LAGARDA GONZÁLEZ ................................................................................ VALIDACIÓN DE TECNOLOGÍA
lagarda.alfonso@inifap.gob.mx
M.C. MANUEL MADRID CRUZ .........................................................................................................................MALEZA / ALGODONERO
madrid.manuel@inifap.gob.mx
M.C. ARTURO MORALES CUEN ............................................................................................................................................. FORRAJES
morales.arturo@inifap.gob.mx
M.C. ADOLFO MORENO BEDOY ................................................................................................. FITOPATOLOGÍA / BIOTECNOLOGÍA
moreno.adolfo@inifap.gob.mx
ING. XOCHILT MILITZA OCHOA ESPINOZA ........................................................................................................................... CÁRTAMO
ochoa.xochilt@inifap.gob.mx
DR. ALEJANDRO ORTEGA CORONA ............................................................................................................................... MAÍZ / AGAVE
ortega.alejandro@inifap.gob.mx
M.C. ALMA ANGÉLICA ORTÍZ ÁVALOS ............................................................................................................... NUTRICIÓN VEGETAL
ortiz.alma@inifap.gob.mx
M.C. JOSÉ ELISEO ORTÍZ ENRÍQUEZ........................................................................................................ USO Y MANEJO DEL AGUA
ortiz.eliseo@inifap.gob.mx
M.C. JUAN JOSÉ PACHECO COVARRUBIAS................................................................................................................ ENTOMOLOGÍA
pacheco.juanjose@inifap.gob.mx
M.C. ISIDORO PADILLA VALENZUELA ................................................................................................................... FRIJOL/GARBANZO
padilla.isidoro@inifap.gob.mx
M.C. JOSÉ ALFONSO RAMÍREZ ARREDONDO ........................................................................................................... FITOPATOLOGÍA
ramirez.alfonso@inifap.gob.mx
DR. JUAN MANUEL RAMÍREZ DÍAZ ......................................................................................................................................... CÍTRICOS
ramirez.juan@inifap.gob.mx
M.C. JESÚS ARTURO SAMANIEGO RUSSO ............................................................................................................................ CÍTRICOS
samaniego.arturo@inifap.gob.mx
M.C. ERNESTO SÁNCHEZ SÁNCHEZ..................................................................................................................................... FRUTALES
sanchez.ernesto@inifap.gob.mx
DR. LUIS MIGUEL TAMAYO ESQUER ........................................................................................................................................ MALEZA
tamayo.luismiguel@inifap.gob.mx
DR. VICTOR VALENZUELA HERRERA........................................................................................................................................... TRIGO
valenzuela.victor@inifap.gob.mx
DR. JUAN MANUEL VALENZUELA VALENZUELA ............................................................................................................ HORTALIZAS
valenzuela.juanmanuel@inifap.gob.mx
*Hasta Agosto del 2010
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La presente publicación se terminó de imprimir en el mes
de septiembre del 2010 en los talleres gráficos de
SGI, Hidalgo #512 poniente, Colonia Centro,
Cd. Obregón, Sonora.
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Su tiraje fue de 1,000 ejemplares
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