PREVENCION Y CONTROL DE LAS PRINCIPALES ENFERMEDADES REPRODUCTIVAS QUE AFECTAN A BOVINOS DE LECHERIA FAMILIAR DEL ESTADO DE CHIHUAHUA RESPOSNABLE DR. JESUS ARTURO PAYAN GARCIA COLABORADORES MVZ MC. VICTOR MANUEL BANDA RUIZ MVZ MC. ENRIQUE HERRERA LOPEZ MVZ MC. GUADALUPE SOCCI ESCATEL INSTITUCION PROPONENETE CAMPO EXPERMENTAL DELICIAS / CENTRO NACIONAL DE INVESTIGACIONES DISCIPLINARIAS EN MICROBIOLOGIA ANIMAL. INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES AGRICOLAS Y PECUARIAS. INTRODUCCION Las fallas reproductivas en al ganado bovino de lechería familiar, son los problemas que más afectan la producción de leche en este tipo de explotaciones. Estas alteraciones inician con la infertilidad la cual es la falta de calor; la repetición de calor, que indica que hubo una fecundación, pero el ovulo no es retenido en el útero; otra patología es la momificación fetal, la cual ocurre con la muerte del feto y la vaca no es capaz de expulsarlo y este se seca dentro del útero. Estos problemas en la lechería familiar no son muy observados ya que generalmente no se llevan registros, no así los abortos que es lo que más preocupa y ocupa el quehacer de los productores. Los problemas reproductivos en el ganado bovino lechero tienen muchas causas, desde los puntos de vista nutricionales, físicos, químicos y microbiológicos. Dentro de estos últimos, existen enfermedades que están muy relacionadas con estos problemas, y se ha demostrado que se encuentran en los hatos bovinos en forma endémica, como lo es por ejemplo los virus de Rinotraqueitis infecciosa Bovinas (IBR), Diarrea Viral Bovina (DVB), las bacterianas Leptospira y Brucela, y la parasitaria Neospora. La mayoría de los productores de lechería familiar no cuenta con medidas preventivas y de control para las enfermedades antes mencionadas, y esto es, calendarios de vacunación que estén de acuerdo con el establo, medidas de manejo de hato infectado, pruebas de laboratorio que confirmen la presencia de estas enfermedades, uso apropiado de biológicos, entre otras, para poder disminuir estos problemas reproductivos. En estudios recientes se estimó que un aborto cuesta en promedio $12,000.00 pesos por año por vaca de primer parto y mientras más edad tiene el animal más cuesta este problema. ANTECEDENTES El control y prevención de enfermedades que provocan fallas reproductivas en ganado lechero, son necesarias para tener una mayor eficacia en la reproducción bovina de lechería familiar, en el caso de este tipo de explotaciones se carece de estas medidas ya que provienen de una lechería tradicional en donde nunca se han llevado a cabo estas actividades porque o no se cuenta con la información debida, se desconoce el tipo de biológicos que se deben utilizar o simplemente se establece que todo está bien con el manejo sanitario de los hatos. En México se sabe que las enfermedades virales como IBR, DVB, las bacterianas, Leptospira y Brucela, y la parasitaria Neospora, son las principales entidades nosológicas que provocan trastornos reproductivos en el ganado lechero. Para las cuatro primeras enfermedades existen en el mercado, biológicos que previenen estas enfermedades o pueden controlarlas para evitar estas fallas reproductivas. A continuación se describe cada una de ellas. Virus de Rinotraqueitis Infecciosa Bovina (IBR). Este es un herpesvirus bovino (BHV-1), y es un patógeno importante en el ganado, este virus causa la Rinotraqueitis Infecciosa Bovina y sus manifestaciones son principalmente nasales (rinotraqueitis), ocular (conjuntivitis) y genital (vulvovaginitis). La enfermedad puede ocurrir en forma crónica o aguda y puede provocar enfermedades bacterianas secundarias en animales (1, 2). Forma respiratoria. Se observan signos respiratorios, inapetencia, baja en la producción láctea y fiebre. El curso puede ser variable de 7 a 10 días, puede presentarse el aborto de 4 a 5 semanas después de la infección. Puede causar entre el 1 y 3% de mortalidad. Forma genital. Se presenta un vulvovaginitis pustular infecciosa, elevación de la cola, micción constante, edema, exudado sanguinolento y pústulas en la vulva, ligera elevación de la temperatura y baja en la producción de leche. Forma conjuntival. Los signos de esta forma es la inflamación de la conjuntiva palpebral edema bajo la conjuntiva, membrana necrótica en la conjuntiva, exudado ocular, exudado nasal serosoy después exudado mucopurulento, córnea opaca y queratitis secundaria a la conjuntivitis. Aborto. Se presenta un síndrome respiratorio uno o dos meses antes del aborto, o cuando se utilizan vacunas vivas. El feto es expulsado entre las 24 a 36 horas después de su muerte. Se presenta placentitis y el feto muestra autolisis, hepatitis focal necrosante y hemorragia en la corteza renal. La fertilidad de la vaca abortada no se ve afectada en gestaciones posteriores. Forma encefálica. En becerras menores de 6 meses se presenta ataxia, convulsiones, muerte con espasmos espistotonos, de curso rápido y fatal. El virus de IBR infecta a las vacas a través del tracto respiratorio o genital, la forma respiratoria es mediante aerosoles o descargas vaginales infectadas debido al hábito que tienen los animales de lamer las descargas de vacas infectadas. La forma genital es generalmente venéreo, y al utilizar guantes o instrumentos contaminadas. Prevención. Vacunación con virus vivo modificado. Puede producir ligeros trastornos respiratorios y los anticuerpos se presentan de 10 a 14 días después de la aplicación, si se presenta un brote posterior los animales se enferman de forma menos severa, no previene la infección latente en tracto vaginal, ennvacas gestantes ocasiona el aborto. Vacunación intranasal, en becerras responden con títulos más elevados que con la vacuna viva atenuada y esta respuestas inmune ocurre entre las 40 y 72 horas después de la aplicación. Diarrea Viral Bovina. El virus de la diarrea viral bovina (DVB), pertenece al género Pestivirus de las familia Flaviridae, son envueltos esféricos, se componen de una cadena simple de ácido ribonucleico (RNA). Por sus efectos en los cultivos celulares se dividen en citopáticos (CP) y no citopáticos (NCP). Los primeros ocasionan vacuolización y muerte celular. Se dice que hay variaciones en cuanto a virulencia, ya que algunos animales pueden estar infectados pero no presentan síntomas o tener desenlaces fatales. Esta enfermedad tiene una distribución mundial con una tendencia endémica en la mayoría de las poblaciones bovinas, ya que se ha demostrado que existen de un 0.5% al 2% de animales persistentemente infectados y entre 60% a 80% de animales con anticuerpos. La principal fuente de infección y reservorios del virus son los bovinos, estos eliminan el virus en secreciones nasal, saliva, orina, materia fecal, lágrimas semen y leche. La transmisión puede ser (A) vertical. Ocurre en la placenta (transplacentaria) en hembras susceptibles infectadas durante la preñez si el feto es infectado con un virus NCP desarrollara una infección persistente. (B) Horizontal, el contacto directo con animales persistentemente infectados especialmente nariz – nariz es el modo más eficiente de transmisión en condiciones naturales. El semen de toros persistentemente infectados también es una fuente de infección y transmisión. Manifestaciones clínicas. El virus DVB depende del tipo de cepa, edad, estado inmune del huésped, factores de estrés además de otros agentes patógenos. DVB aguda. Es una infección post natal aguda, e severidad variable en bovinos seronegativos e inmunocompetentes. Infección subclinica. Se presenta fiebre descarga ocular y nasal. Se presenta con alta morbilidad y baja mortalidad. Se desarrollan anticuerpos neutralizantes al día 14 a 28 después de la infección. Complejo diarrea neonaltal bovina. Cuando no existe transferencia pasiva de anticuerpos, el virus participa con un efecto inmunodepresivo y ocurren infecciones con otros enteropatógenos. Infección aguda severa. Se asocia con virus de lata patogenicidad, caracterizada por fiebre elevada, signos respiratorios, diarrea, tormenta de abortos, caída en la producción de leche y muerte súbita. Hay un aumento en la movilidad y mortalidad. Trastornos reproductivos. Infección aguda altera la función ovárica y reduce la fertilidad, ocasionan un retraso en el desarrollo de los folículos pre ovulatorios durante dos ciclos estrales consecutivos. DVB durante la preñez, se divide en cuatro períodos en base a sus manifestaciones. Etapa embrionaria (0 a 45 días) ocasiona muerte embrionaria y repetición de servicios. De (45 a 125 días de gestación) se produce muere fetal con momificación o aborto. Puede resultar de animales persistentemente infectados. De 175 días en adelante, las infecciones en este período resultan en el nacimiento de animales seropositivos normales o débiles y los abortos son ocasionales. Vacunación. En poblaciones bovinas con alta prevalencia de la enfermedad, donde no es posible mantener un hato cerrado o con estrictas medidas de bioseguridad las medidas de control debe ser por medio de la vacunación en vacas y becerras. La vacunación por si sola no elimina el virus del hato y la finalidad es proveer protección contra infecciones transplacentarias que den origen a becerras persistentemente infectadas. Leptospira La leptospirosis es causada por bacterias patógenas del género Leptospira, es una zoonosis dispersa a través del mundo. Se dividen en 23 serogrupos y más de 250 serovariedades. El diagnóstico, identificación y clasificación de Leptospira spp, son importantes en los sistemas de vigilancia epidemiológica, ya que en el mundo, se estima que la incidencia de la enfermedad en humanos es de 3000 por cada 100000 habitantes. En humanos el reconocimiento clínico de la enfermedad es difícil, porque la leptospirosis puede afectar diferentes órganos y sistemas, resultando una amplia variedad de presentaciones clínicas, por lo que la leptospirosis puede confundirse con influenza, meningitis aséptica, encefalitis, dengue, hepatitis o gastroenteritis. El tiempo de diagnóstico de la leptospirosis es esencial, porque requiere de un tratamiento específico y tan pronto como sea posible, para observar resultados favorables en el paciente. Por otra parte la leptospirosis en animales principalmente en bovinos, causa serias pérdidas económicas debido a problemas como abortos, mortinatos, nacimientos prematuros, infertilidad, además de disminución en la producción de leche y carne. El bovino actúa como hospedero de mantenimiento de esta bacteria. En los animales enfermos crónicos, las leptospiras persisten en el riñón y en el tracto genital tanto del macho como de la hembra, por lo que de estos sitios se excreta la bacteria a través de la orina, productos abortados y posiblemente semen. Por lo antes mencionado, el diagnóstico de la leptospirosis se debe basar en pruebas serológicas y detección de la bacteria en orina de animales infectados, pero a través de pruebas que sean de mayor confianza y rápidas, además de mostrar a la enfermedad tanto en individuos como en el grupo. El diagnóstico de la leptospirosis en el laboratorio se basa en exámenes microscópicos, bacteriológicos y serológicos, sin embargo para observar leptospiras en microscopio de campo oscuro se requiere de microorganismos intactos y viables, además de personal capacitado para la observación e identificación de las bacterias. Por lo que hace a esta prueba poco confiable y sensible. El método de aislamiento es laborioso consume demasiado tiempo, es inconsistente y requiere de muestras frescas en donde se encuentren leptospiras vivas. La prueba de aglutinación microscópica (AM) es el método de referencia para el diagnóstico serológico de la leptospirosis, esta técnica es específica pero laboriosa, requiere bacterias vivas de recién cultivo por lo que se necesita resembrar la batería de antígenos por lo menos cada 15 días y su interpretación es en la mayoría de las veces sugestiva. Los títulos de aglutinación en AM, no proveen información a cerca de la condición de portador y diseminador de leptospiras en animales asintomáticos. Técnicas moleculares como la reacción en cadena de la polimerasa (PCR) que se basa en la amplificación de DNA de leptospira, es usado hoy en día como un diagnóstico que confirma la infección en humanos y animales. Brucellosis. La brucellosis bovina, es causada por brucella abortus y se caracteriza por la aparición de abortos en el último tercio de la gestación, reducción de la producción de leche. Además de ser un riesgo de salud pública. Es una zoonosis importante en el mundo, y en algunos países se ha controlado en base a la vacunación y sacrificio de animales infectados, aunque no es fácil la completa erradicación y por lo tanto una alternativa es el manejo del hato infectado. Patogenia. La infección de brucelosis ocurre por inhalación o ingestión de organismos vía nasal, oral. Las bacterias son transportadas vía linfática en donde se multiplica y distribuye a nódulos linfáticos, baso, hígado, medula ósea, glándula mamaria y órganos sexuales. Debido a las manifestaciones patológicas de brucela en humanos como meningitis, endocarditis y artritis, B, melitnesis, B, abortus y B. suis , son clasificadas como de bioseguridad nivel 3. El cultivo bacteriológico y las pruebas de aglutinación serológica son los métodos de diagnóstico que más se emplean a nivel mundial tanto en humanos como en animales. Históricamente la brucela no tratada causa el 2% de defunciones en humanos, por lo que la erradicación de la brucelosis en humanos es crucial primero la erradicación en los animales domésticos. Vacunación. Se ha demostrado que la vacunación con cepas vivas es mejor que vacunar con cepas muertas. Tanto la cepa 19 como RV51 tienen la misma protección, lo importante es la protección que estas vacunas puedan conferir en el animal. Neospora. La neosporosis es causada por un parásito denominado Neospora caninum, y este parásito es una de las causas de aborto y enfermedad congénita en los bovinos a nivel mundial. A diferencia de otras infecciones que causan abortos en ganado bovino, las vacunas proveen una inmunidad que podría detener brotes o prevenir futuroa abortos. En el caso de vacunas para N. caninum, no existe alguna que pueda prevenir la infección, ya que se desconoce la respuesta inmune de protección y el blanco de los antígenos,. Un grado de protección para neosporosis en la transmisión transplacental es a través de la infección natural. Ya que en forma experimental se ha demostrado que bovinos infectados con N. caninum antes de la gestación y desafiados con traquizoitos, a la mitad de la gestación, desarrollaron suficiente inmunidad parta proteger contra la transmisión vertical. En brotes dentro de hatos hay evidencia de una inmunidad que protege de: 1) vacas con N. caninum crónica, demostrada por ELISA, tuvieron menos abortos, que las vacas con infección aguda. 2) La neosporosis asociada a abortos no ocurre en vacas con una parasitosis crónica. 3) Solo del 5% al 10% del ganado infectado que aborta tiene un segundo aborto infectado por Neospora. Es por eso que se desarrolla protección inmune tanto en infecciones naturales como experimentales en donde se estimula una respuesta de memoria durante los períodos críticos antes o durante la gestación. Estas son estrategias que pueden limitar la neosporosis congénita. PROBLEMÁTICA. Los problemas reproductivos en la ganadería lechera familiar tienen un muchos factores que pueden desencadenarlos, principalmente la nutrición que tiene una importancia de más o menos el 70% y el restante 30% se deben a problemas físico, químicos e infecciosos. En el caso de esta demanda, los problemas infecciosos, son debido a enfermedades como IBR, DVB, leptospirosis, brucelosis y neosporosis, principalmente, siendo estas las de mayor prevalencia y que se encuentran en forma endémica en el país. La lechería familiar en México, ocupa un sitio importante en la producción de leche, en donde su desarrollo ha sido lento y sin los aportes necesarios para que este desarrollo sea importante y se vea reflejada en la economía del productor. En este nicho económico el propietario del ganado no cuenta con métodos preventivo de enfermedades infecciosas que afectan la reproducción con excepción de los que tiene un control de brucela, que invariablemente es aportado por los comités de campaña de cada estado, y muchas veces esto se limita al diagnostico sin recomendar manejo alguno para evitar que se siga dando la dispersión de la enfermedad. Esto trae como consecuencia que no se cuente con programas de aplicación de vacunas para la prevención de enfermedades reproductivas bajo un estricto calendario de vacunación, para todo esto se debe de contar con un diagnóstico de situación de los establos, ver la prevalencia de cada una de estas enfermedades, ver o tener reportes de la situación reproductiva de los animales (esta información en la mayoría de los casos de la lechería familiar no se tiene). Posterior al diagnóstico, establecer medidas de prevención a través de biológicos y manejo de hato infectado con la finalidad de disminuir las prevalencias e incrementar la producción de remplazos (becerras), leche y carne. La ganadería de lechería familiar en los municipios de Delicias, Saucillo, Meoqui y Rosales en el Estado de Chihuahua, como se mencionó con anterioridad se encuentra bajo un esquema tradicional, en donde solo se contempla la nutrición de los animales sin tomar en cuenta algunas enfermedades que afectan la reproducción del ganado. Es por esto que en esta demanda se pretende evaluar y establecer estos parámetros para iniciar los cambios y estrategias para una mejor producción de leche. JUSTIFICACION. Los productores dedicados a la ganadería familiar de leche en el estado de Chihuahua, (Delicias, Saucillo, Meoqui, Rosales) son importantes en la producción lechera del estado pero, no cuentan con programas de prevención y control de enfermedades reproductivas que ayuden a mejorar los índices productivos y reproductivos de sus hatos, así como también falta de capacitación e información sobre programas de prevención y control de estas enfermedades. MATERIAL Y METODOS. Para atender esta demanda se pretende realizar un diagnóstico de situación en los municipios antes mencionados, utilizando las siguientes herramientas. Pláticas con productores o asociaciones de productores de los municipios de Delicias, Saucillo, Meoqui y Rosales. Para conocer la problemática en el grupo o individual. Realizar diagnóstico de las enfermedades mencionadas IBR y DVB Pruebas serológicas por medio de inmuno ensayos (ELISA). Se tomarán muestras de sangre sin anticoagulante al azar del 10% de los animales en hatos con problemas reproductivos. Pruebas moleculares PCR (reacción en cadena de la polimerasa). Se tomarán muestras de moco nasal y vaginal, de sangre con EDTA de animales con problemas reproductivos Leptospirosis. Serología, se tomarán muestras de sangre sin aticoagulante y se analizan por la prueba de aglutinación microscópica, contra una batería de 12 diferentes serovariedades de leptospira, para conocer contra que serovariedades se han infectado los animales. De igual modo se realizarán pruebas de PCR para el diagnóstico de leptospira en animales con problemas reproductivos para lo cual se tomarán muestras de sangre con EDTA y de orina, si es el caso se tomarán también muestras de quistes foliculares. Brucelosis En el caso de esta enfermedad se muestrearan todos los animales del hato para conocer la prevalencia de brucelosis y segregar animales positivos. Se realizaran pruebas de rosa de bengala y rivanol. En algunos casos se tomaran muestras de moco vaginal para pruebas de PCR. Neosporosis De la misma forma se tomarán muestras al azar para determinar la presencia de anticuerpos contra este parásito en los hatos, para conocer la incidencia de esta enfermedad en los hatos. Actividades de prevención. En base a los resultados de la serología aplicada a los animales muestreados se propondrán las siguientes actividades de prevención Calendarios de vacunación. Se propondrán medidas de prevención, aplicando biológicos adecuados para cada una de las enfermedades detectadas. Platicas con productores. Después de análisis de situación, se tendrán reuniones con productores para hacerles de su conocimiento, la situación reproductiva de sus hatos lecheros y que conozcan la propuesta de prevención. Para los productores que no tengan registros de producción y reproducción se le propondrán que los lleven a cabo para que conozcan cuáles son sus parámetros de producción. Se realizarán análisis de producción y reproducción antes y al final de este período, para observar y hacer notar, los beneficios de contar con medidas de prevención de enfermedades reproductivas. BIBLIOGRAFIA 1 Yates, W. D. G. (1982). A review of infectious bovine rhinotracheitis, shipping fever pneumonia and viral-bacterial synergism in respiratory disease of cattle. Canadian Journal of Comparative Medicine 46, 225±263. 2 Greig, A. S., Bannester, C. L., Mitchell, D. & Barker, C. A. V. (1958). Cultivation in tissue culture of an infectious agent from coital exanthema of cattle. Canadian Journal for Comparative Medicine 22, 119±122. 14. Enright, F. M., J. V. Walker, G. Jeffers, and B. L. Deyoe. 1984. Cellular and humoral responses of Brucella abortus-infected bovine fetuses. Am. J. Vet. Res. 45:424–430. 19. Gorham, S. L., F. M. Enright, T. G. Snider III, and E. D. Roberts. 1986. Morphologic lesions in Brucella abortus infected ovine fetuses. Vet. Pathol. 23:331–332. 32. Meador, V. P., B. L. Deyoe, and N. F. Cheville. 1989. Pathogenesis of Brucella abortus infection of the mammary gland and supramammary lymph node of the goat. Vet. Pathol. 26:357–368. 33. Cheville, N. F., S. C. Olsen, A. E. Jensen, M. G. Stevens, A. M. Florance, H. S. Houng, E. S. Drazek, R. L. Warren, T. L. Hadfield, and D. L. Hoover. 1996. Bacterial persistence and immunity in goats vaccinated with a purE deletion mutant or the parental 16M strain of Brucella melitensis. Infect. Immun. 64:2431–2439. Dubey, J. P., and D. S. Lindsay. 1996. A review of Neospora caninum and neosporosis. Vet. Parasitol. 67:1–59. 14. Davison, H. C., A. Otter, and A. J. Trees. 1999. Estimation of vertical and horizontal transmission parameters of Neospora caninum infections in dairy cattle. Int. J. Parasitol. 29:1683–1689. 41. Schares, G., M. Peters, R. Wurm, A. Barwald, and F. J. Conraths. 1998. The efficiency of vertical transmission of Neospora caninum in dairy cattle analysed by serological techniques. Vet. Parasitol. 80:87–98. 21. Innes, E. A., S. E. Wright, S. Maley, A. Rae, A. Schock, E. Kirvar, P. Bartley, C. Hamilton, I. M. Carey, and D. Buxton. 2001. Protection against vertical transmission in bovine neosporosis. Int. J. Parasitol. 31:1523–1534.