METABOLISMO DEL NITRÓGENO Y DEL AZUFRE Familia del gl utamato. Además de ser el sustrato para la síntesis de glutamina, el glutamato es el precursor de otros aminoácidos que poseen esqueletos carbonados de 5 átomos de carbono. Estos son la prolina y la arginina. Esta última posee un átomo de carbono más, pero que no forma parte de su esqueleto carbonado, sino más bien del grupo guanidinio. Este carbono tiene un estado de oxidación equivalente al del CO2 o del ácido carbónico. O HO Cδ Cγ H2 O H2 C OH Cβ H Cα HO NH 2 L-Glutámico O H2 Cβ H C OH Cα H 2C γ C δ NH H2 L-Prolina C OH Ácido Carbónico NH H2 N NH O C N H H2 Cδ Cγ H2 O OH H2 H C Cβ Cα NH 2 H 2N NH 2 Guanidinio O H2 N C O C OH Carbamato H2 N C O P Carbamil-fosfato L-Arginina Si observamos los carbonos del esqueleto carbonado del glutamato, y los de la arginina y de la prolina, vemos que tanto el carbono carboxílico como los carbonos α, β y γ están sin cambiar en los tres aminoácidos. Sólo el carbono δ, ha sufrido modificaciones. Pasa de un estado de carbono carboxílico en el glutamato hasta un estado de carbono alcohólico (en realidad amino, pero es lo mismo) en los dos aminoácidos prolina y arginina. En la prolina finalmente el grupo final se cicla, probablemente por deshidratación) reaccionando con el grupo amino α. En la arginina, se incorpora sobre el grupo final un carbamato para formar el guanidinio. De esta manera para la síntesis de estos dos aminoácidos el carbono δ del glutamato, tiene que ser reducido y luego aminado para generar el precursor de los mismos. Para la conversión del grupo carboxilo del carbono δ del glutamato en aldehido, en primer lugar se lo fosforila con el ATP, y luego se efectúa la reducción del carbonil-fosfato por el NADH o por el NADPH, análogamente a la reducción del 3-fosfoglicerato a gliceraldehído-3-fosfato en la gluconeogénesis. En la prolina, la reacción de ciclación es probable que se realice en la etapa de aldehido con la formación de una base de Schiff (es la reacción de deshidratación entre un ceto y un amino, generando un doble enlace C=N). Este enlace luego deberá ser reducido. El producto final de esta secuencia, la L-prolina, es un inhibidor alostérico de la primera etapa de reacción. En la arginina la aminación del carbono δ probablemente se realice al estado de ceto por medio de enzimas transaminasas (que veremos en la sección siguiente), de manera que el grupo carboxilo también debe reducirse sólo hasta la etapa de aldehido en este caso. Además, para evitar la reacción de ciclación espontánea en algunos organismos se incluye una etapa previa de protección del amino α del precursor de la arginina. O C HO C H2 O Acetil-CoA H2 OH C C H C O CoA-SH C HO C H2 NH2 O H2 C OH H C C NH C O N-acetil-Glutamato CH3 Glutamato ATP ATP Quinasa ADP O O P C O ADP C H2 H2 C OH C H C CO2 + H 2O O O P C O C H2 NH2 NADPH + H+ H2 C OH C H C NH C NADPH + H + Deshidrogenasa Pi NADP+ O H C C H2 NADP+ O H2 C OH C H C H C H2 NH2 H2 C H2O O H2 C H C OH C C N H Deshidro genasa H2C ATP ADP NH C O O CH3 HO C H2O OH O H2 C H C OH C P glutamina O OH H2 H2 H C C C C C H2N NH H2 C O Carbonil-fosfato Carbamil Fosfato Sintasa O O H2N C OH Carbamato Hidrolasa O glutamato P CH3 NADP+ C Transaminasa glutamato NADPH + H + OH Ácido Carbónico O H2 C OH C H C O C C HO Pi glutamina Deshidratasa O O CH3 O CH3 H2 C H2N C H2 C NH H2 OH H2 H C C C ADP NH2 Ornitina O H2N L-Prolina ATP C O P Carbamil-fosfato Carbamil-Transferasa P O H2 N H2 C C N H C H2 O OH H2 C C H C NH2 Citrulina Aspartato Transaminasa Fumarato NH H2N H2 C C N H O OH H2 H C C C C NH2 H2 L-Arginina La ornitina es el precursor de la arginina en muchas especies. Aunque en los mamiferos la ornitina puede ser convertida en arginina durante el funcionamiento del ciclo de la urea, la arginina es tan rápidamente escindida por la arginasa para producir urea y ornitina, que su disponibilidad resulta insuficiente para la síntesis de proteínas. Por este motivo, la arginina es un aminoácido esencial para los mamíferos. La ornitina se forma, en las bacterias y en las plantas se muestra en la figura más arriba, a partir del ácido glutámico. La etapa final de esta ruta depende de la especie. En E. coli, la N-acetil-ornitina es hidrolizada para producir ornitina y ácido acético libre, mientras que en otros microorganismos y en los vegetales, la N-acetil-ornitina cede su grupo acetilo al ácido glutámico, se libera ornitina y finalmente se forma el γ-semialdehído-Nacetil-glutámico. El grupo N-acetilo impide que el semialdehído glutámico se cicle espontáneamente. Esta secuencia constituye el ciclo de la N-acetilornitina. En algunos organismos, la ornitina se produce por transaminación de distintos aminoácidos con el γ-semialdehído glutámico. La ornitina formada por estas rutas se convierte en arginina por las siguientes reacciones del ciclo de la urea, cuya descripción más completa aparecerá más adelante. Dado que muchas bacterias carecen de arginasa, esta ruta rinde una síntesis neta de arginina. Para ello, finalmente se adiciona un carbamato sobre el átomo de nitrógeno unido al carbono δ para formar el guanidinio. El carbamato, proviene de una reacción con el carbamil fosfato, el cual tiene un grupo fosfato que es un buen grupo saliente para permitir la fusión. Para la síntesis del carbamil-fosfato se consumen dos enlaces de alta energía. El dador de amino para la última transaminación es el aspartato, que se libera como fumarato cuando la reacción finaliza. Más adelante veremos el mecanismo de esta transaminación. Familia del 3-fosfoglicerato. El 3-fosfoglicerato es el precursor de tres aminoácidos, serina, cisteína y glicina. La serina es el primero que se sintetiza, y funciona como precursor de la glicina y de la cisteína. En principio, el 3-fosfoglicerato, producto intermediario en la glucólisis, es oxidado por la 3fosfoglicerato-deshidrogenasa, con la utilización de NAD+, rindiendo NADH y produciendo 3-fosfo-hidroxipiruvato. La transaminación de este último con el glutamato produce 3-fosfoserina, de la que se obtiene serina, por la acción hidrolítica de la fosfoserina-fosfatasa. Una ruta alternativa que conduce a la serina, utiliza el hidroxipiruvato (en lugar del 3-fosfo-hidroxipiruvato), procedente del D-glicerato (producto de la desfosforilación del 3-fosfo-glicerato ). La transaminación del hidroxipiruvato con la glicina o la alanina, rinde serina y glioxilato o piruvato, respectivamente: O C OH O H C OH OH H C OH CH 2OH O OH CH2O P α-cetoglutarato NADH + H+ O C H 2N C H CH2O P glutamato NAD+ C OH C O CH 2O P O C C OH O C O O OH H2N C H CH2OH O C CH2OH OH C CH2 NH2 OH C H2N C H CH3 O C C H O OH O OH C C O CH3 La glicina se puede formar a partir de la serina por la acción de la serinahidroximetil-transferasa. Esta enzima cataliza la transferencia del átomo de carbono β de la serina al tetrahidrofolato y produce el N5,N10-metilentetrahidrofolato. Esta reacción se constituye en la principal fuente de grupos de un carbono que son transportados hacia otros sustratos (por ejemplo el dUTP a partir del cual se sintetiza dTTP) por los derivados del tetrahidrofolato en la célula. 5 10 serina + tetrahidrofolato à glicina + N -N -metilen-tetrahidrofolato Dado que esta reacción es reversible, constituye también una ruta para la biosíntesis de la serina. El grupo prostético de la enzima es el fosfato de piridoxal y el cosubstrato es la coenzima ácido fólico. En el hígado de los vertebrados, la glicina se puede formar a partir del dióxido de carbono y del amoniaco por la acción de la glicina-sintetasa. Esta enzima, dependiente del fosfato de piridoxal, cataliza la siguiente reacción reversible: 5 10 + + CO2 + NH3 + N ,N -metilen-tetrahidrofolato + NADH + H à glicina + tetrahidrofolato + NAD El azufre orgánico de la cisteína (y de la metionina) tiene su origen biológico en formas inorgánicas varias, tales como S04-2, S203-2, SH2 o incluso azufre elemental, el cual pueden oxidar ciertas bacterias a sulfato. La fuente principal termina siendo el S04-2. Varios microorganismos y plantas pueden efectuar la reducción enzimática del sulfato y del tiosulfato a SH2, que puede convertirse después en el grupo tiol de la cisteína, por las siguientes reacciones L-Serina + acetil-CoA à O-acetilserina + CoA O-Acetilserina + SH2 à cisteína + acetato + H20 La serina primero reacciona con el acetil-CoA en una reacción catalizada por la serína-acetil-transferasa con el objetivo de incorporar un buen grupo saliente para la reacción siguiente. Finalmente, la cisteína-sintasa, una enzima dependiente del fosfato de piridoxal, cataliza la incorporación del S a partir del SH2. La suma de reacciones implica que el sistema está acoplando la hidrólisis del enlace de alta energía del acetil-CoA para incorporar el azufre de la cisteína. Otros organismos acoplan la reacción de hidrólisis del ATP a esta síntesis en lugar del acetil-CoA. Además, en algunos microorganismos se ha encontrado otra reacción para la utilización del SH2 , catalizada por la enzima cisteina-γ-liasa (también dependiente del fosfato de piridoxal), que puede actuar formando cistationina o cisteína. Piruvato + NH3 + SH2 à cisteína + H20 En los mamíferos, la cisteína es un aminoácido no esencial, pero que se forma a partir de la metionina, que es esencial, y de la serina, que no lo es. De esta manera la fuente de átomos de azufre en los mamíferos es la metionina. La ruta metabólica implica que el átomo de azufre de la metionina es transferido pasando a sustituir al átomo de oxígeno del hidroxilo de la serina, con lo que ésta se convierte en cisteína. Este proceso es frecuentemente denominado transulfuración. En la primera etapa de esta secuencia, la metionina pierde el grupo metilo de su átomo de azufre convirtiéndose en homocisteína. Esta transformación, que tiene efecto en tres o más etapas, requiere en primer lugar ATP para convertir la metionina en una forma activada, la S-adenosilmetionina, según una reacción excepcional en la que el grupo adenosilo del ATP resulta transferido a la metionina. Metionina + ATP à S-adenosilmetionina + PPi + Pi La S-adenosilmetionina es un importante agente de metilación biológico. Su grupo metilo, que está ligado mediante un enlace sulfonio caracterizado por su elevada energía, puede ser donado a un gran número de distintos aceptores de grupos metilo en presencia de la enzima adecuada, liberando S-adenosilhomocisteína como producto de la desmetilación. Después, la S-adenosilhomocisteína experimenta una hidrólisis rindiendo homocisteína libre. En la segunda etapa de la síntesis de la cisteína, la homocisteína reacciona con la serina produciendo cistationina, gracias a la acción catalítica de la cistationina-β-sintasa: Homocisteina + serina à cistationina + H20 En la etapa final, la cistationina-γ-liasa, que es un enzima dependiente del fosfato de piridoxal, cataliza la escisión de la cistationina liberando cisteína, con formación secundaria de α-oxobutirato y NH3. Cistationina + H2 O à α-cetobutirato + NH3 + cisteína O O C OH NH2 OH O OH H2N C H CH2 CH2 S HO P P O OH O + N P O CH2 O HO CH3 H2N C H CH2 N N OH C NH2 CH2 + S CH2 O CH3 N OH HO metionina N N N HO P OH O N OH S-Adenosil-metionina Reacciones de metilación -CH 3 O C O OH H2N C H CH2 CH2 SH + N CH2 O N N NH2 CH2 S CH2 O N N N N N H2O homocisteína HO O OH H2N C H CH2 NH2 OH C C OH HO OH S-Adenosil-homocisteína OH H2N C H CH2OH OH OH O C C H2N C H H2N C H CH2 CH2 O C H2 cistationina S H2O O C OH C O CH2 O + + NH4 + CH3 α-cetobutirato + amonio O OH OH + OH C H2N C H CH2 SH cisteína + HO P P OH OH O La cisteína es un inhibidor alostérico de la cistationina-γ-liasa. En conjunto, la reacción global de la síntesis de la cisteína es como sigue: Metionina + ATP + aceptor de grupo metilo + H20 + serina cisteína + aceptor metilado + adenosina + α−cetobutirato + NH3 + PPi + Pi à La cistationina, es el producto intermedio clave de estas reacciones. En los mamíferos, su única función consiste en actuar como intermediario en la transferencia de S de la metionina para formar cisteína. En otros organismos, como veremos en la próxima sección, es utilizada en la dirección opuesta, o sea para transferir un átomo de S desde la molécula orgánica donde el sulfuro inorgánico es directamente incorporado, la cisteína hacia el otro aminoácido sulfurado, la metionina. La cistationina se encuentra en concentraciones bastante elevadas en el cerebro humano, si bien en los vertebrados inferiores su proporción es más baja. Los individuos que padecen de la carencia genética de cistationina-sintasa exhiben deficiencias mentales; en una de tales alteraciones genéticas, la homocisteína no utilizada, se excreta en forma de homocistina (el dímero conteniendo un puente disulfuro), estado patológico denominado homocisteinuria. En otra enfermedad genética denominada cistationuria, que implica un defecto de cistationina-γ-liasa, se excreta cistationina por la orina. Familia del aspar tato. El aspartato es sintetizado directamente desde el α-cetoácido oxalacetato por una reacción de transaminación en la que el dador de grupos amino es el glutamato. En este tipo de reacciones de transaminación un carbono α de un α-aminoácido (generalmente el glutamato) es oxidado a un α-cetoácido (generalmente el α-cetoglutarato), mientras que el carbono α de otro α-cetoácido es reducido al α-aminoácido correspondiente. H R H O Cβ Cα H NH 3 C + + O 1 H2 O O CH 2 O + N H Cβ Cα H2 O PO O C + CH 2 R O O + N CH3 H O H N H HC HC O PO R H O PO Cβ H H H O -C C α R O + H CH2 O + N CH3 H N PO O O + CH2 R O .. N CH3 b - HC PO O H2 O O PO O Cβ Cα H O C Cα N + N CH 2 α-cetoácido + piridoxamina O H O + N H CH3 H C + O H NH2 H C C H2 OH O Cβ H H H R + H C α HC H a C H + O Cβ H N HC O PO 3 Hα Cβ C H3 Base de Schiff 2 + + Hα H O H 2 R C 4 H2O + N CH3 Base de Schiff 1 α-aminoácido + piridoxal Cα H + H N H H C CH2 O H H O CH3 c Las enzimas transaminasas de este tipo, poseen como cofactor al fosfato de piridoxal unido al sitio activo de la enzima formando una base de Schiff con el grupo amino de un resto de lisina de la proteína. Inicialmente el α-aminoácido que terminará cediendo su grupo amino, desplaza la base de Schiff entre el piridoxal y la enzima y forma una base de Schiff entre el piridoxal y su grupo amino α (Reacción 1). Esta base se desprotona, se tautomeriza y se vuelve a protonar para convertirse en un isómero que contiene un doble enlace C=N entre el carbono α y el nitrógeno (reacciones 2 y 3). La hidrólisis de este compuesto libera un α-cetoácido y al cofactor en la forma de piridoxamina (reacción 4). La piridoxamina puede ahora reaccionar con otro α-cetoácido para, produciendo las transformaciones exactamente inversas a las mostradas, convertirlo en α-aminoácido y regenerar al cofactor en la forma de piridoxal. Este tipo de transaminaciones se utilizan para obtener los grupos amino α de todos los aminoácidos naturales (excepto para la treonina y la lisina) partiendo del α-cetoácido correspondiente. El aspartato es el precursor directo de la asparagina, mediante una reacción catalizada por la asparagina-sintetasa, la cual es análoga, en su mecanismo, a la glutamina-sintetasa: NH3+ aspartato + ATP à asparagina + ADP + Pi En algunos organismos puede tener efecto una ruta alternativa, según la cual, el grupo amino amídico de la glutamina se transfiere al grupo β-carboxilo del aspartato gracias a la acción de la asparagina-sintetasa 2 (hidrolizante de la glutamina) ATP + glutamina + aspartato à glutamato + asparagina + AMP + PPi La treonina y la metionina (dos aminoácidos esenciales para el hombre) poseen un denominador común; sus esqueletos carbonados poseen cuatro átomos, que, en conjunto tienen el mismo estado de oxidación global. El precursor de estos aminoácidos es un aminoácido que posee el mismo estado de oxidación global pero tiene un oxhidrilo en su carbono γ. Este oxhidrilo debería ser intercambiado por un sulfidrilo para rendir metionina o modificada su posición para generar la treonina. El precursor mencionado se denomina homoserina (el prefijo homo- es utilizado en química orgánica para nombrar a un compuesto análogo a otro conocido con el que difiere en un metileno, -CH2-, de más). La cadena carbonada de la homoserina deriva, a su vez, del ácido aspártico, según una serie de reacciones que no se realizan en los mamíferos. La ruta para la reducción del grupo β-carboxilo del ácido aspártico a aldehído, que se efectúa vía un acilfosfato (producto intermediario), se parece a la reducción del 3-fosfoglicerato a gliceraldehido-3-fosfato, catalizada por la glicerilaldehido-3-fosfato deshidrogenasa y a la reducción recientemente mencionada, del glutamato a semialdehido glutámico. En este caso el aldehido del semialdehido aspártico termina siendo reducido a alcohol para sintetizar homoserina. En la ruta de biosíntesis de treonina, la homoserina, formada en las dos etapas reductoras es fosforilada a homoserina-fosfato, por medio de una reacción que requiere ATP. Después, la homoserina fosfato se convierte en treonina por la acción de la treonina-sintasa, que es un enzima que emplea el fosfato de piridoxal como cofactor. Esta compleja reacción, que se produce en varias etapas, tiene efecto según parece con el grupo α-amino del sustrato enlazado, como una base de Schiff, al grupo aldehído del fosfato de piridoxal del enzima. El producto final de la secuencia, la treonina, es un inhibidor de una de las tres formas de la aspartato-quinasa. HO C Quinasa O O H C CH2 C NH2 Deshidrogenasa OH P O C Aspartato NADPH + H+ O O ATP ADP H C CH2 C NH2 NADP+ OH H O C O OH H C CH2 C NH2 Pi NADPH + H+ Deshidrogenasa NADP+ O OH O C H2 C O OH C H2 C CoA-SH C H C H H CH2 C NH2 Succinil-CoA O Homoserina O Succinil transferasa OH C H C H H CH2 C ATP Quinasa ADP NH2 Cisteína OH C H C H H CH2 C Succinato NH2 OH H C C O H2 C NH2 O S OH C H C H H CH2 C H2O Fosfatasa Pi H H+ Homocisteína H2N O Treonina Cistationina-γ-liasa HO OH OH C H C H H C C H NH2 NH2 O OH C H C + H H CH2 C NH2 O P O Cisteína-γ-liasa SH OH O C H C H+ HO H2N O C C + CH2 CH2 Serincarbonio H2O NH 3 CH3-THF HO Metil transferasa Tetrahidrofolato HO O C C CH2 CH3 O S OH C H C H H CH2 C NH2 Metionina HO O O C C CH3 Piruvato Una ruta alternativa que conduce a la treonina la proporciona la serinahidroximetil-transferasa, enzima dependiente del fosfato de piridoxal, que puede catalizar la reacción: Acetaldehido + glicina à L-treonina La conversión de la homoserina en metionina se inicia con la síntesis de O-succinil-homoserina, por transferencia del grupo succinilo del succinil-CoA a la homoserina. En la reacción siguiente la cisteina aporta el azufre y desplaza al succinato de la O-succinil-homoserina, produciendo cistationina. La cistationina, a su vez, se escinde hidrolíticamente rindiendo homocisteina, y serina (o ácido pirúvico y NH3 en algunos organismos), por la acción de la cistationina-γ-liasa. La cistationina puede también experimentar una escisión al otro lado del átomo de azufre para producir cisteína por la acción de la cistationina-γ-liasa. Por ello, la cistationina puede servir de intermediario tanto en la cesión del átoo de azufre de la cisteína a la metionina (en las plantas y bacterias), como en la transformación inversa desde la metionina a la cisteína (en los mamíferos). La metilación de la homocisteína a metionina en E. coli tiene efecto por transferencia del grupo metilo del N5-metil-tetrahidrofolato. Esta es una de las pocas reacciones en las que un derivado del tetrahidrofolato cede un grupo metilo. En determinadas circunstancias especiales, la metilcobalamina, que es una forma de vitamina B12 (ver próxima sección) en la que el carbono metílico se halla directamente unido al cobalto, es indispensable como intermediario en la transferencia del grupo metilo. Otros dadores de grupos metilo en diferentes organismos, para la biosíntesis de la metionina son la betaina y la dimetiltetina CH3 + H3C N CH3 CH2 C O OH Betaina H3C O O C OH H2 N C H H3C + CH3 S CH2 C O OH Dimetil-tetina C OH H2 N C H dimetilglicina CH2 CH2 CH2 CH2 S SH CH3 homocisteína CH3 N CH2 C O OH metionina CH3 S CH2 C O OH S-metil-tioglicolato Al igual que la S-adenosilmetionina estos compuestos poseen un grupo metilo unido a un heteroátomo cargado positivamente (amonio o sulfonio) lo que los convierte en excelentes grupos dadores ya que la eliminación del metilo produce siempre un compuesto más estable. Bi osíntesi s de aminoácidos r ami ficados. La Valina, isoleucina y leucina, tres aminoácidos que poseen grupos ramificados alifáticos R, son sintetizados directamente desde el α-cetoácido correspondiente mediante reacciones de transaminación a partir de glutamato. Los tres α-cetoácidos se sintetizan por rutas similares. Síntesis de valilna e isoleucina. Las rutas que conducen a la valina y a la isoleucina, son catalizadas por el mismo conjunto de enzimas. Estas rutas, se inician con los α-oxoácidos piruvato y α-oxobutirato, respectivamente, a los cuales se incorpora un grupo acetaldehído activo que se deriva del piruvato. Este grupo corresponde al resto de la molécula del piruvato que queda unida a la coenzima tiamina pirofosfato después de su descarboxilación. Los productos que se forman son los correspondientes α-ceto-α-hidroxiácidos. Estas sustancias experimentan una transformación doble que implica una reducción seguida por la migración de un grupo metilo o etilo entre dos carbonos adyacentes, que se intercambia por el hidrógeno unido al carbono que fue reducido. Esta enzima, denominada isomeroreductasa) posee un mecanismo Treonina desaminasa O OH C H O NH3 2 H2N CH HC OH O C O OH HO CH HC OH CH3 CH3 H2 O C O OH C OH C O CH CH2 C + C O H CH3 C S Oxobutirato N C O + Sintasa C C OH S TPP CH3 OH O Piruvato O C OH N CH3 NADP+ OH O H3 C C C C H2 OH HC OH CH3 B12 OH O HC C OH H3C CH2 C OH CH3 + C S Piruvato NADPH + H + OH O H3 C C C C O OH O H3 C C C C H2 OH C O CH3 OH O H3 C C C C H2 OH C O CH3 CO 2 OH CH3 N CH3 CH3 Treonina O C OH O H3 C C C C H2 OH OH H2 O O OH H3 C C C C O H CH3 C O CH3 O O glutamato C C H3C CH2 CH CH3 OH OH C OH α-cetoglutarato H2N CH H3C CH2 CH CH3 Isoleucina Isómero-reductasa NADPH + H + NADP+ OH O H3 C C C OH C O CH3 OH O H3 C C C OH HC OH CH3 Deshidratasa B12 OH O HC C OH CH3 C OH CH3 Transaminasa O H2O O O C C CH3 CH CH3 OH C glutamato α-cetoglutarato H N CH 2 OH CH3 CH CH3 Valina complejo, en el que intervienen radicales libres, que está íntimamente asociado a las transformaciones producidas sobre el cofactor que tiene fuertemente unido, la adenosilcobalamina o vitamina B12. Después, los productos se deshidratan y rinden los análogos α-oxo de la isoleucina y de la valina, que son finalmente aminados por transaminasas. La vitamina B12 esta formada por un anillo tetrapirrólico que coordina un átomo de Co+2, uno de los dos restantes enlaces de coordinación está ocupado por un resto de un aminoácido de la proteína, mientras que el restante enlace de coordinación tiene un sustituyente que caracteriza a una determinada actividad enzimática. En el caso de las metil-transferasas que usan B12, el sustituyente es un metilo (un carbono con un estado de oxidación análogo al del metanol) mientras que en las mutasas (como la isómero-reductasa) el sustituyente es un adenosilo, unido a la enzima por el átomo de carbono 5’ de la ribosa que perdió el oxhidrilo. El mecanismo de reacción de las enzimas mutasas que utilizan a la vitamina B 12 como cofactor está esquematizado en la figura siguiente: O CH2 Adenina C C OH N N HO 2+ Co N X H Sustrato N Proteina 1 C C X C H O H H2C C N X OH OH N + Co 5 Producto Adenina N N Proteina 2 C C H X O Adenina H 2C N OH + Co O H C H2 OH N N C C . X N N OH OH N Co N Proteina Adenina + N Proteina 4 C . C X H N C H2 O Adenina 3 OH OH N + Co N N Proteina El sustrato de la mutasa, posee una fórmula general representada por, C C H X donde X corresponde una variedad de grupos que pueden ser transferidos entre dos carbonos adyascentes. Para diferentes mutasas, X puede ser alguno de los siguientes grupos: OH, metilo, etilo, -SCoA, etc. 1. la unión del sustrato de la mutasa provoca un cambio conformacional en la proteína que favorece la ruptura simétrica del enlace entre el adenosilo y el cobalto. Cada uno de los átomos participantes en la unión gana un electrón, generando un radical libre en el carbono 5’ del adenosilo y un Co+1. 2. El radical libre del adenosilo es neutralizado captando un H (marcado en rojo en la figura; corresponde a un H+ con su electrón), del sustrato. Esto genera un metil-adenosilo y un radical libre sobre uno de los carbonos del sustrato. 3. El grupo X del sustrato, unido al carbono adyascente al que posee el radical libre, se reordena, generando un radical libre sobre la posición a la que se encontraba originalmente unido. 4. El sustrato reordenado capta el H del metil-adenosilo, regenerando el radical libre en el carbono 5’ del adenosilo, y sintetizando el producto de la reacción. 5. La liberación del producto reordenado del sitio activo, genera las condiciones para la formación del enlace entre el radical libre en el carbono 5’ del adenosilo y el átomo de Co+1. Esta última reacción, permite obtener la coenzima en su estado original. Síntesis de leucina. La formación de leucina comienza con la condensación del ácido α-oxoisovalérico, o simplemente isovalerato, que es el precursor directo de la valina con el acetil-CoA, para producir el αisopropilmalato. Esta reacción es completamente análoga a la condensación del oxalacetato con el acetil-CoA en la primera de las reacciones del ciclo de Krebs. Además, las etapas subsiguientes que convierten al isopropilmalato en el α-oxoácido precursor de la leucina, son también similares a las que transcurren desde el ácido cítrico al ácido α-oxoglutárico en el ciclo de los ácidos tricarboxílicos. En la figura siguiente se muestra la ruta mencionada, incluyendo las estructuras análogas de los compuestos del ciclo de Krebs entre paréntesis. Es importante notar que la diferencia entre el oxalacetato y el αcetoglutarato en el ciclo de Krebs es la misma (un metileno más adyacente al carbono α) que existe entre el isovalerato y el isopropil-piruvato en esta ruta. En las bacterias, la biosíntesis de la valina, de la isoleucina y de la leucina, está sometida a retroinhibición de su primera etapa, por parte de los productos finales. O OH C CH2 O HO C C OH CH3 CH HS-CoA CH3 C S-CoA O H3C C C Isovalerato OH CH3 CH CH3 O O O C O C C H2 O O H2O OH C CH O C C OH CH3 CH CH3 OH H2O C OH C H2 COO H HO C O C C H2 OH C OOH O C OH O OH C HO O C OH α-cetoglutarato H2 N CH CH2 CH3 CH O C CO2 O C Glutamato CH2 CH3 CH CH 3 CH 3 Leucina Isopropil-piruvato O OH C O O OH C C H2 C H2 C OOH O C OH C O HC C CH 3 CH OH CH3 CH O HC C CH CH OH 3 CH3 NAD+ NADH + H+ HO CH HC C H2 O C OH COO H