CD16 (SP175) - Menarini Diagnostics

CD16 (SP175)
Rabbit Monoclonal Antibody
Identificación del Producto
N.º de ref.
45612
45613
45634
Descripción
CD16 0,1 R (SP175)
CD16 1 R (SP175)
CD16 RTU R (SP175)
Definiciones De Los Símbolos
P
listo para usar
C
concentrado
A
ascitis
E
suero
S
sobrenadante
DIL
DOC#
DIS
rango de dilución del concentrado
documento número
distribuido por
Uso Previsto
Este anticuerpo está destinado para uso
diagnóstico in vitro (IVD).
Anticuerpo CD16 está previsto para que
laboratorios
cualificados
identifiquen,
mediante microscopia óptica, la presencia
de antígenos asociados en cortes de tejidos
embebidos en parafina y fijados con
formol utilizando métodos de pruebas IHC
(inmunohistoquímica). El uso de este anticuerpo
está indicado, después de un diagnóstico
diferencial clínico de enfermedades, como
ayuda en la identificación de linfoma de células
T y linfoma de células NK, dentro del contexto
de paneles de anticuerpos, el historial clínico
del paciente y otras pruebas de diagnóstico
evaluadas por un patólogo cualificado.
Resumen Y Explicación
El CD16 es un biomarcador asociado con los
monocitos y las células “asesinas naturales”
(NK) de linaje linfoide.1 Las características
inmunohistoquímicas del CD16 son útiles para
el diagnóstico diferencial del linfoma hepatoesplénico de células T gamma-delta y la
leucemia linfocítica granular grande de células
T gamma-delta de otros linfomas periféricos
de células T, como los linfomas de células T
gamma-delta de mucosa y cutáneos.2-4 Se ha
observado que el 58% de los linfomas hepatoesplénicos de células T gamma-delta expresan
el CD16, y el 86% de los casos de leucemia
linfocítica granular grande de células T gammadelta inmunorreaccionan al CD16.2-3 Los
linfomas de células T gamma-delta de mucosa
y cutáneos no suelen expresar el antígeno
CD16.4 Se puede observar una reducción
significativa en el número de granulocitos
que expresan el CD16 en la leucemia
mielomonocítica crónica en comparación con
la leucemia mieloide crónica y las biopsias de
médula ósea de control, tal vez relacionada
con la disgranulopoyesis.5 Las características
inmunohistoquímicas de las biopsias de
médula ósea pueden ser útiles en casos de
leucemia mielomonocítica crónica ya que
permiten identificar la expansión monocítica y
la disgranulopoyesis gracias al CD16.5
Principios Y Procedimientos
El anticuerpo primario indicado puede
utilizarse como anticuerpo primario para la
tinción inmunohistoquímica de cortes de tejido
fijado con formol y embebido en parafina. En
general, la tinción inmunohistoquímica junto
con el sistema de detección con estreptavidinabiotina permite la visualización de antígenos
a través de la aplicación secuencial de un
anticuerpo específico (anticuerpo primario) al
antígeno, un anticuerpo secundario (anticuerpo
de unión) al anticuerpo primario, un complejo
enzimático y un sustrato cromogénico con
etapas de lavado intermedias. Alternativamente
se puede utilizar un sistema de detección
polimérico sin biotina. La activación enzimática
del cromógeno da lugar a un producto de
reacción visible en el sitio del antígeno. La
muestra puede entonces contrateñirse y
aplicarse un cubreportaobjetos. Los resultados
se interpretan utilizando un microscopio
óptico y ayuda en el diagnóstico diferencial de
los procesos patofisiológicos que pueden estar
asociados o no a un antígeno en particular.
Los productos prediluídos están diluido
óptimamente para utilizarse con una amplia
variedad de kits de detección que ofrecen
otros fabricantes.
DIS A.Menarini Diagnostics S.r.l.
Via Sette Santi, 3
50131 Firenze
Italy
DOC# MEN11631000
ES Rev. 0,0
Cell Marque Corporation
6600 Sierra College Blvd
Rocklin
California 95677
USA
EMERGO EUROPE
Molenstraat 15, 2513 BH
The Hague
NL
CD16 (SP175)
Rabbit Monoclonal Antibody
Materiales Y Métodos
9. Olla de presión eléctrica para el paso del tratamiento previo del
tejido
Vea la etiqueta del producto para información específica sobre el lote
acerca de lo siguiente:
10. Sistema de detección y cromógeno
1.
12. Hematoxilina u otra contratinción
11. Soluciones de lavado
Concentración de anticuerpos de inmunoglobulina
2. Detalles de la fuente
13. Diluyentes de anticuerpo
14. Bloque de peróxido para usar con HRP
Reactivos Suministrados
15. Bloque de avidina-biotina
16. Reactivo de control negativo
Prediluído El producto de anticuerpo primario indicado contiene reactivo
listo para usar.
17. Medio de montaje
18.Cubreobjetos
El rango de concentración de inmunoglobulina prediluida para este
producto es 2,5-5,0 µg/ml.
19. Microscopio óptico (40-400x)
Conservación Y Manipulación
Concentrado El producto de anticuerpo primario indicado contiene
reactivo concentrado.
Almacenar a 2-8°C. No congelar.
Los formatos prediluido y concentrado de este anticuerpo están diluidos
en Amortiguador Tris, pH 7,3-7,7, con un 1% de BSA y <0,1% de azida de
sodio.
Para garantizar la dispensación adecuada del reactivo y la estabilidad
del anticuerpo, tras cada utilización se debe volver a poner el tapón y
almacenar el frasco inmediatamente en la nevera, en posición vertical.
El rango de concentración de inmunoglobulina concentrada para este
producto es 65-125 µg/ml.
Todos los reactivos de anticuerpo tienen una fecha de caducidad. El
reactivo es estable hasta la fecha indicada en la etiqueta siempre que
se almacene correctamente. No usar el reactivo después de la fecha de
caducidad para el método de almacenamiento descrito.
El rango de dilución útil recomendado para el producto concentrado es de
1:25-1:100 y se puede encontrar en la etiqueta del producto.
No hay signos definitivos que indiquen la inestabilidad de este producto,
por lo que los controles positivos y negativos deben analizarse
simultáneamente con muestras desconocidas. Póngase en contacto con
el servicio de atención al cliente de A.Menarini Diagnostics si encuentra
algún indicio sospechoso de inestabilidad del reactivo.
Isotipo: IgG
Reconstitución, mezcla, dilución y titulación
El anticuerpo prediluído está listo para usar y optimizado para la tinción. No
se requiere su reconstitución, mezcla, dilución ni titulación. El anticuerpo
concentrado está optimizado para diluirlo en el rango de dilución.
Extracción Y Preparación De La Muestra Para Su Análisis
Cuando se utiliza el procedimiento habitual, los tejidos fijados en formol
en tampón neutro y embebidos en parafina resultan adecuados para
el uso con este anticuerpo primario. El fijador de tejido recomendado
es formalina tamponada neutral 10%. Pueden tener lugar resultados
variables como consecuencia de una fijación prolongada o procesos
especiales tales como la descalcificación en la preparación de la médula
ósea.
El usuario deberá comprobar la dilución práctica del producto concentrado.
Las diferencias en el procesamiento del tejido y en los procedimientos
técnicos en el laboratorio pueden producir una variabilidad significativa en
los resultados y requerir consecuentemente el uso regular de controles.
(Consulte la sección Procedimientos de control de calidad)
Materiales Y Reactivos Necesarios No Suministrados
Cada sección debe cortarse con el grosor apropiado (aproximadamente
3 µm) y colocarse en un portaobjetos de vidrio con carga positiva. Los
portaobjetos que contienen el corte de tejido pueden secarse durante al
menos 2 horas (pero no más de 24 horas) en un horno a una temperatura
de 58-60 °C ± 5 °C.
Los siguientes reactivos y materiales pueden ser necesarios para la tinción,
pero no se incluyen con el anticuerpo primario:
1. Tejido de control positivo y negativo
2. Portaobjetos para microscopio con carga positiva
3. Horno de secado capaz de mantener una temperatura de 58-60°C
± 5°C
Advertencias Y Precauciones
4. Cubetas o baños de tinción
1. Adopte las precauciones adecuadas cuando se manipulen los
reactivos. Usar guantes y batas de laboratorio desechables cuando se
manipulen materiales potencialmente carcinógenos o tóxicos (como
xileno).
5. Cronómetro
6. Xileno o sustituto de xileno
7. Alcohol reactivo o etanol
8.
Agua desionizada o destilada
2
MEN Template #0.2
CD16 (SP175)
Rabbit Monoclonal Antibody
2. Evite el contacto de los reactivos con los ojos y las membranas
mucosas. Si se produce el contacto con áreas sensibles, lávese con
agua abundante.
3.
5. Aplique el reactivo de detección durante el número de minutos
recomendado por el fabricante, enjuague.
6. Aplique una cantidad abundante de cromógeno e incube durante
1-10 minutos; enjuague.
Las muestras del paciente y todos los materiales en contacto con
ellas deben tratarse como si fuesen materiales potencialmente
infecciosos y desecharse con las precauciones adecuadas. Nunca
pipetear con la boca.
4.
Evitar la contaminación microbiana de los reactivos, ya que podrían
producirse resultados incorrectos.
5.
El usuario debe validar los tiempos y temperaturas de incubación.
6.
Los reactivos prediluidos listos para usar están diluidos óptimamente
por lo que una dilución adicional podría producir la pérdida de tinción
del antígeno.
7.
Los reactivos concentrados pueden diluirse óptimamente en base
a la determinación del usuario. El usuario deberá validar igualmente
tanto la compatibilidad como el efecto en la estabilidad de cualquier
disolvente utilizado que no esté recomendado específicamente en
este documento.
7.
Procedimientos De Control De Calidad
Control de tejido positivo
Cada vez que se realice el procedimiento de tinción, debe procesarse
un control positivo del tejido. Este tejido puede contener células o
componentes del tejido de tinción positiva y negativa y servir como tejido
de control positivo y negativo. Los tejidos de control deben ser muestras
frescas de autopsia, biopsia o cirugía preparadas o fijadas con la mayor
brevedad con un proceso idéntico al de los cortes en estudio. El uso de
un corte de tejido fijado o procesado de forma diferente a la muestra en
estudio servirá para el control de todos los reactivos y pasos del método
excepto la fijación y el procesamiento del tejido.
8. Este producto no se clasifica como sustancia peligrosa cuando se
usa según las instrucciones. El reactivo tiene como conservante
menos de un 0,1% de azida de sodio, y no cumple los criterios
del reglamento europeo de Registro, evaluación, autorización y
restricción de sustancias químicas (REACH) de sustancia peligrosa a
la concentración indicada.
9.
Un tejido con una tinción positiva débil es más adecuado para un control
de calidad óptimo y para detectar niveles pequeños de degradación del
reactivo. El control de tejido positivo para el anticuerpo primario indicado
puede incluir lo siguiente:
El usuario debe validar cualquier condición de almacenamiento que
no sea una de las especificadas en el prospecto.
Control de tejido positivo
10. El disolvente puede incluir albúmina de suero bovino y el
sobrenadante puede contener suero bovino. Los productos que
contienen suero fetal bovino y los productos que contienen albúmina
de suero bovino se compran a los proveedores comerciales. Los
certificados de origen de la fuente animal utilizada en estos productos
obran en el archivo de Cell Marque. Los certificados aseguran que las
fuentes bovinas provienen de países con riesgo mínimo de BSE y
relacionan como fuentes de bovinos EE. UU. y Canadá.
Protocolos de tinción recomendados para el anticuerpo primario indicado:
Tinción manual
1. Desparafinación, rehidratación y recuperación del epítopo; el
método preferido es el uso de las técnicas de recuperación del
epítopo inducida por el calor (HIER). El método preferido permite
la desparafinación, rehidratación y recuperación del epítopo
simultáneas. Al terminar, enjuague con 5 cambios de agua destilada
o desionizada.
Aplique el anticuerpo e incube durante 10 - 30 minutos; enjuague.
Discrepancias Inexplicables
Las discrepancias inexplicables de los controles se deben comunicar
inmediatamente al servicio de atención al cliente de A.Menarini
Diagnostics. Si los resultados del control de calidad no cumplen las
especificaciones, los resultados del paciente no son válidos. Véase la
sección Resolución de problemas de este prospecto. Identifique y corrija el
problema; a continuación, repita todo el procedimiento con las muestras
del paciente.
4. Para el sistema de detección de 2 pasos del polímero aplique el
amplificador según las instrucciones del fabricante
3
MEN Template #0.2
Citoplasmática, Membranosa
El mismo tejido utilizado para el control de tejido positivo se puede utilizar
en el control de tejido negativo. La variedad de tipos de células presentes
en la mayoría de los cortes de tejidos ofrece sitios de control negativo
internos, pero esto debe verificarlo el usuario. Los componentes que no
se tiñen deben demostrar la ausencia de tinción específica y proporcionar
una indicación de tinción de fondo no específica. Si se produce una
tinción específica en los sitios de control de tejido negativo, los resultados
obtenidos con las muestras del paciente deben considerarse no válidas.
Procedimiento Detallado
3.
Visualización
Amígdalas
Control De Tejido Negativo
Instrucciones De Uso
Si utiliza el sistema de detección HRP, coloque los portaobjetos en
un bloque de peróxido durante 10 minutos; enjuague. Si utiliza un
sistema de detección AP, omita este paso.
Tejido
Los controles de tejido positivos conocidos solo se deben usar para
monitorizar el comportamiento correcto de los tejidos procesados y los
reactivos de la prueba, y no como ayuda para establecer un diagnóstico
específico de las muestras del paciente. Si los controles positivos del
tejido no muestran una tinción positiva apropiada, los resultados de las
muestras en estudio se deben considerar no válidos.
11. Como con cualquier producto proveniente de fuentes biológicas,
deberán emplearse procedimientos de manipulación apropiados.
2.
Deshidrate y coloque el cubreobjetos.
CD16 (SP175)
Rabbit Monoclonal Antibody
identificar reacciones negativas falsas (consulte la sección Sumario de
resultados esperados). La morfología de cada muestra del tejido también
debe examinarse utilizando un corte con tinción de hematoxilina y eosina
al interpretar cualquier resultado de inmunohistoquímica. Un patólogo
cualificado debe interpretar los resultados morfológicos del paciente y sus
datos clínicos pertinentes.
Reactivo De Control Negativo
Se debe utilizar un reactivo de control negativo para cada muestra para
ayudar a interpretar los resultados. Para evaluar una tinción no específica se
utiliza un reactivo de control negativo en lugar del anticuerpo primario. Se
deberá tratar el portaobjetos con el reactivo de control negativo haciendo
coincidir las especies huéspedes del anticuerpo primario e idóneamente
con la misma concentración de IgG. El periodo de incubación para el
reactivo de control negativo deberá ser igual que el periodo de incubación
del anticuerpo primario.
Limitaciones
1. Este reactivo es “de exclusivo uso profesional”, ya que la
inmunohistoquímica es un proceso diagnóstico de varias etapas que
requiere una formación especializada en la selección de los reactivos,
tejidos, fijación y procesamiento apropiados; la preparación del
portaobjetos de inmunohistoquímica y la interpretación de los
resultados de la tinción.
Interpretación De Los Resultados
El procedimiento de inmunotinción causa la precipitación de un
producto de reacción coloreado en los sitios del antígeno localizados
por el anticuerpo primario. Consulte en el prospecto correspondiente
del sistema de detección las reacciones de color esperadas. Un patólogo
cualificado experimentado en procedimientos de inmunohistoquímica
debe evaluar los controles de tejido positivos y negativos antes de
interpretar los resultados.
2.
Para uso exclusivo de laboratorio.
3.
Para diagnóstico in vitro.
4. La tinción de los tejidos depende de la manipulación y el
procesamiento de los mismos antes de la tinción. Una fijación,
congelación, descongelación, lavado, secado, calentado o corte
inadecuados o la contaminación con otros tejidos o líquidos puede
producir artefactos, bloqueo del anticuerpo o resultados falsos
negativos. Los resultados inconsistentes pueden ser consecuencia
de las variaciones en los métodos de fijación y embebido, así como
de irregularidades inherentes dentro del tejido.
Control De Tejido Positivo
El control de tejido positivo teñido debe examinarse primero para
determinar que todos los reactivos funcionan adecuadamente. La
presencia de un producto de reacción con el color adecuado dentro
de las células diana es indicativa de una reactividad positiva. Consulte
en el prospecto del sistema de detección utilizado las reacciones de
color esperadas. Según sea la duración de la incubación y la potencia
de la hematoxilina empleada, la contratinción dará como resultado
una coloración azul de pálida a oscura de los núcleos celulares. Una
contratinción excesiva o incompleta puede comprometer la interpretación
adecuada de los resultados. Si los controles de tejidos positivos no
muestran una tinción positiva apropiada, los resultados de las muestras
en estudio se deben considerar no válidos.
5. Una contratinción excesiva o incompleta puede comprometer la
interpretación adecuada de los resultados.
6.
Control De Tejido Negativo
El control de tejido negativo debe examinarse después del control de
tejido positivo para verificar la marcación específica del antígeno diana por
el anticuerpo primario. La ausencia de tinción específica en el control de
tejido negativo confirma la ausencia de reactividad cruzada del anticuerpo
con las células o los componentes celulares. Si se produce una tinción
específica en el control de tejido negativo, los resultados obtenidos con
la muestra del paciente se consideran no válidos. La tinción no específica,
si la hay, tendrá un aspecto difuso. También se puede observar una ligera
tinción específica esporádica del tejido conjuntivo en cortes de tejidos que
no estén fijados óptimamente. Para la interpretación de los resultados
de la tinción deben usarse células intactas. Las células necróticas o
degeneradas muestran una tinción no específica.
7. Los anticuerpos y reactivos listos para usar se ofrecen en una
dilución óptima para usarse como se indica. Cualquier desviación
de los procedimientos recomendados del método puede invalidar
los resultados esperados. Se deben utilizar y documentar los
controles apropiados. Los usuarios deben asumir en cualquier caso la
responsabilidad de la interpretación de los resultados del paciente.
8.
Los productos se entregan concentrados para que el usuario pueda
diluirlos después de forma óptima para usarlos según determine
empleando siempre unas técnicas de validación adecuadas. Los
usuarios deben validar el uso de cualquier disolvente que no se
recomiende en este documento. Una vez que el anticuerpo primario
haya sido validado como adecuado para usar, cualquier desviación
de los procedimientos de prueba recomendados puede invalidar
los resultados esperados. Se deben utilizar y documentar los
controles apropiados. Los usuarios deben asumir en cualquier caso la
responsabilidad de la interpretación de los resultados del paciente.
9.
Este producto no está diseñado para utilizarlo en citometría de flujo.
Tejido Del Paciente
Las muestras del paciente se deben examinar al final. La intensidad de
la tinción positiva se debe valorar en el contexto de cualquier tinción
de fondo del control de reactivo negativo. Como en cualquier prueba
de inmunohistoquímica, un resultado negativo significa que el antígeno
en cuestión no se ha detectado, no que el antígeno esté ausente de las
células o del tejido analizado. Un panel de anticuerpos puede ayudar a
4
MEN Template #0.2
La interpretación clínica de una tinción positiva o de su ausencia debe
evaluarse en el contexto de la historia clínica, la morfología, otros
criterios histopatológicos, así como otras pruebas diagnósticas. Este
anticuerpo está diseñado para utilizarlo en un panel de anticuerpos
si fuera pertinente. Es responsabilidad de un patólogo cualificado
familiarizarse con los anticuerpos, reactivos, paneles de diagnóstico y
métodos usados para obtener una preparación con tinción. La tinción
se debe realizar en un laboratorio certificado con la supervisión de
un anatomopatólogo responsable de la revisión de los portaobjetos
teñidos y de la verificación de la idoneidad de los controles negativos
y positivos.
CD16 (SP175)
Rabbit Monoclonal Antibody
10. Los reactivos pueden mostrar reacciones inesperadas en tejidos
no estudiados previamente. No puede excluirse completamente
la posibilidad de reacciones inesperadas, incluso en grupos de
tejidos analizados, debido a la variabilidad biológica de la expresión
del antígeno en neoplasmas u otros tejidos patológicos. Póngase
en contacto con el servicio de atención al cliente de A.Menarini
Diagnostics ante cualquier sospecha de reacción inesperada
documentada.
Estudio Normal (seguido)
Tejido
Total de
Casos
casos
Positivos probados Notas
Bazo
1
1
Macrófagos
Amígdalas
1
1
células NK, Macrófagos
Timo
0
1
11. Los tejidos de personas infectadas con el virus de la hepatitis B y
que contengan antígeno de superficie (HBsAg) pueden mostrar una
tinción no específica con peroxidasa de rábano.
Médula ósea
1
1
Pulmones
0
1
Corazón
0
1
12. Cuando se utilizan en pasos de bloqueo, los sueros normales
procedentes del mismo origen animal que los antisueros secundarios
pueden provocar resultados de falsos negativos o falsos positivos
debido al efecto de los autoanticuerpos o anticuerpos naturales.
Esófago
0
1
Estómago
0
1
Intestino delgado
0
1
Colon
0
1
13. Pueden verse resultados de falsos positivos debido a la unión de
proteínas o productos de reacción del sustrato por mecanismos no
inmunológicos. También pueden estar causados por la actividad de la
pseudoperoxidasa (eritrocitos), actividad de la peroxidasa endógena
(citocromo C) o biotina endógena (ejemplo: hígado, cerebro, mama,
riñón) dependiendo del tipo de técnica de inmunotinción empleada.
Hígado
1
1
Glándula salival
1
1
Vesícula biliar
0
1
Riñones
0
1
Vejiga
0
1
Próstata
0
2
Útero
0
1
Trompas de Falopio
0
1
Ureter
0
1
Cérvix
0
1
1. Los productos de anticuerpo prediluidos están optimizados como
productos listos para usar. Debido a la posibilidad de variaciones en
la fijación y procesado del tejido, puede ser necesario aumentar o
reducir el tiempo de incubación del anticuerpo primario en muestras
individuales.
Músculos del equeleto
0
1
Músculo liso
0
1
Piel
0
1
Nervios periféricos
1
1
Mesotelio
0
1
2. El anticuerpo, en combinación con sistemas de detección y sus
accesorios, detecta los antígenos que sobreviven al proceso habitual
de fijación con formol, procesado y corte del tejido. Los usuarios que
se desvíen de los procedimientos de prueba recomendados son
responsables, como lo serían en cualquier caso, de la interpretación y
validación de los resultados del paciente.
Grasa
1
1
Placenta
1
1
14. Como en cualquier prueba de inmunohistoquímica, un resultado
negativo significa que el antígeno no se ha detectado, no que el
antígeno esté ausente de las células o del tejido analizado.
Limitaciones Específicas
Células endoteliales +
Estudio De La Enfermedad Del Tejido
Tejido
Consulte las siguientes tablas de reactividad:
Estudio Normal
Total de
Casos
casos
Positivos probados Notas
neuronas y dendritas
Total de
Casos
casos
Positivos probados Notas
Adenocarcinoma de colon
0
12
Carcinoma ductal invasivo de
mama
0
9
Leucemia mielomonocítica
aguda
2
2
Leucemia mieloide aguda
3
4
Carcinoma hepatocelular
0
3
0
3
Cerebro
1
1
Córtex adrenal
1
1
Ovarios
0
1
Tumor del estroma
gastrointestinal
Páncreas
1
1
Carcinoma de células renales
0
3
Paratiroides
1
1
Adenocarcinoma pulmonar
0
3
Pituitaria
1
1
Linfoma de células NK
3
3
Testículos
0
1
Tiroides
1
1
células C +
Pecho
1
1
Células mioepiteliales +
Este anticuerpo tiñe tejidos como está indicado en la literatura.
5
MEN Template #0.2
células endoteliales
sinusoidales
Este anticuerpo tiñe tejidos normales como está indicado en la literatura.
Sumario De Resultados Esperados
Tejido
monocitos +
CD16 (SP175)
Rabbit Monoclonal Antibody
Resolución De Problemas
1.
Si el control positivo muestra una tinción más débil de la esperada,
deben analizarse otros controles positivos realizados en la misma
tinción para determinar si se debe al anticuerpo primario o a uno de
los reactivos secundarios comunes.
2.
Si el control positivo da negativo, se deben analizar otros controles
positivos usados en la misma ejecución para determinar si se debe al
anticuerpo primario o a uno de los reactivos secundarios comunes.
Los tejidos pueden haberse recogido, fijado o desparafinado de
manera inadecuada. Deberá seguirse el procedimiento adecuado
para la recogida, la conservación y la fijación.
3.
Si se produce una tinción de fondo excesiva, pueden haber niveles
altos de biotina endógena. Se deberá incluir una etapa de bloqueo
con biotina a no ser que se esté utilizando un sistema de detección
sin biotina, en cuyo caso ninguna biotina presente sería un factor que
contribuyera a la tinción de fondo.
4. Si no se ha eliminado toda la parafina deberá repetirse el
procedimiento de desparafinación.
5.
Si los cortes de tejido lavan el portaobjetos, deben comprobarse los
mismos para garantizar que tienen carga positiva. Otras posibilidades
que podrían afectar adversamente a la adhesión del tejido incluyen
un secado insuficiente del corte de tejido en el portaobjetos antes de
la tinción o fijación en formol que no fuera neutralizado con tampón
apropiadamente. El grosor del tejido también puede ser un factor
causante.
Consulte las medidas correctoras en la sección Procedimiento detallado o
póngase en contacto con el servicio de atención al cliente de A.Menarini
Diagnostics.
Bibliografía
1
2
3
4
5
Liang X, Graham DK. Natural killer cell neoplasms. Cancer
2008;112:1425-36
Gibson SE, et al. Natural killer cell subsets and natural killer-like
T-cell populations in benign and neoplastic B-cell proliferations
vary based on clinicopathologic features. Hum Pathol.
2011;42:679-687
Cooke CB, et al. Hepatosplenic T-cell lymphoma: a distinct
clinicopathologic entity of cytotoxic gamma delta T-cell original.
Blood 1996;88:4265-4274
Arnulf B, et al. Nonhepatosplenic gamma delta T-cell lymphoma: a
subset of cytotoxic lymphomas with mucosal or skin localization.
Blood 1998;92:1723-1731
Qubaja, M, et al. The detection of CD14 and CD16 in paraffinembedded bone marrow biopsies is useful for the diagnosis of
chronic myelomonocytic leukemia. Virchows Arch 2009;454:411419
6
MEN Template #0.2