1 GUIA ITINERARIO FORMATIVO ANALISIS CLINICOS 1. Objetivos generales y específicos 1.1 Objetivos generales 1.1.1 Adquirir los conocimientos relativos a la fase pre-analítica con el fin de asegurar que todos los procesos previos llevados a cabo antes de su análisis se realizan en condiciones óptimas. 1.1.2 Conocer los métodos analíticos y el instrumental disponible en cada una de las secciones del laboratorio, y adquirir el dominio en la realización de análisis bioquímicos de forma manual y automatizada. 1.1.3 Obtener los conocimientos teóricos básicos y aplicados relacionados con el trabajo de cada área mediante rotaciones programadas en cada una de sus unidades. 1.1.4 Adquirir la capacidad de desarrollar un nuevo método analítico. 1.1.5 Adquirir la destreza en el manejo de la microscopía de luz ordinaria, contraste de fases e inmunofluorescencia. 1.1.6 Saber evaluar la calidad analítica de los resultados obtenidos. 1.1.7 Conocer la utilidad diagnóstica y pronostica de las diferentes magnitudes bioquímicas y familiarizarse con la validación facultativa. 1.1.8 Conocimiento de los Sistemas Informáticos del Laboratorio (SIL). 1.2 Objetivos específicos 1.2.1 Pre-analítica 1.2.1.1 1.2.1.2 1.2.1.3 1.2.1.4 1.2.1.5 1.2.1.6 1.2.1.7 1.2.1.8 1.2.1.9 Manejo de la petición electrónica. Conocimiento de la cartera de servicios del laboratorio Conocimiento de las condiciones pre-analíticas generales, con un conocimiento exhaustivo del Manual de Recogida de Muestras. Conocimiento de las instrucciones que debe seguir el paciente para la correcta obtención de muestras a nivel general y en condiciones especiales. Conocimiento del tipo de contenedor necesario, aditivo y conservante según el caso necesario para las muestras. Conocimientos sobre manipulación, conservación distribución y transporte de muestras primarias y secundarias. Conocer a fondo los sistemas de pre-tratamiento de las muestras y en las ocasiones que se utilizan Conocimientos sobre los criterios de preparación de alícuotas y sistemas de alicuotación. Identificación y trazabilidad de muestras Conocimiento de los criterios de rechazo de muestras, casos y sus excepciones. 2 1.2.1.10 1.2.1.11 1.2.1.12 1.2.1.13 1.2.1.14 Conocimiento de las incidencias que puedan afectar a los reultados (ayuno, medicación y otros) Saber ejecutar una petición y registro de peticiones analíticas. Obtención de especímenes (muestras primarias) Conocimiento del tipo de muestra y cantidad necesaria para cada determinación. Gestión de incidencias y relación con las unidades analíticas y externas- 1.2.2 Fase analítica 1.2.2.1 Manejo de reactivos y especímenes 1.2.2.2 Conocimiento de los reactivos utilizados para cada técnica, pureza, hidratación e información de seguridad 1.2.2.3 Conocimiento de la puesta a punto de los equipos. 1.2.2.4 Conocimiento de los sistemas de destilación y purificación del agua en el laboratorio. 1.2.2.5 Conocimiento y manejo del material volumétrico. Calibración de pipetas. Preparación de disoluciones. 1.2.2.6 Manejo de balanzas 1.2.2.7 Manejo y conocimiento de la recepción por tubo neumático 1.2.2.8 Conocimiento y manejo de las diferente centrífugas 1.2.2.9 Robotización 1.2.2.10 Resolución de problemas técnicos 1.2.2.11 Normativas de seguridad y autoprotección 1.2.2.12 Conocimiento de gestión de residuos 1.2.3 Fase post-analítica 1.2.3.1 Conocimiento profundo de posibles contaminaciones e interferencias que afecten a los resultados analíticos. 1.2.3.2 Adquisición de la capacidad para la validación de resultados y su interpretación. 1.2.3.3 Conocimiento de tipos de archivo de datos correspondientes a resultados analíticos y confidencialidad de los mismos. 1.2.3.4 Demandar recibir e interpretar la información que necesite. 1.2.3.5 Trasmitir información a los facultativos peticionarios. 1.2.3.6 Derivar adecuadamente las cuestiones que no pueda resolver. 1.2.4 Control y gestión de la calidad 1.2.4.1 Conocimiento del tipo de controles internos para cada técnica y reglas de aceptación y rechazo de los mismos 1.2.4.2 Conocimiento de indicadores de control interno 1.2.4.3 Conocimiento de los programas de control externo e interpretación 1.2.5 Informática. SIL del laboratorio 1.2.5.1 Sistemas de petición analítica: manual, lectores de tarjetas, escáner. 1.2.5.2 Middleware: sistemas de transmisión de la información. 3 2. Cronograma de rotaciones y competencias a adquirir por rotación. 2.1 R1 2.1.1 Laboratorio de urgencias. 8 meses 2.1.1.1 Competencias a adquirir en el laboratorio de urgencias: 2.1.1.1.1 Conocer la fisiopatología, manipulación y análisis de líquidos biológicos 2.1.1.1.2 Métodos analíticos y tecnológicos de pruebas urgentes, 2.1.1.1.3 Manejo del sistema informático (SIL) de urgencias, 2.1.1.1.4 Validación y emisión de informes de analíticas urgentes. 2.1.1.1.5 Manejo y control de gasometrías en el laboratorio y “point of care”. 2.1.1.1.6 Análisis microscópico de orinas urgentes 2.1.1.1.7 Estudio de drogas de abuso en orina 2.1.1.1.8 Manejo e interpretación de parámetros de sepsis. 2.1.1.1.9 El resumen de los objetivos a conseguir en esta primera rotación es que el residente se forme en todos los aspectos relativos a la realización de guardias. Deberá conocer las patologías más frecuentes que son susceptibles de solicitudes urgentes y familiarizarse con las peticiones de Servicios hospitalarios como Intensivos, Reanimación y Urgencias ya que son los que más demandan análisis al laboratorio de urgencias. 2.1.2 Preanalítica, técnicas manuales y citología de orinas. 4 meses 2.1.2.1 Competencias a adquirir en el area de preanalítica y técnicas manuales 2.1.2.1.1 Análisis de orinas, citoquímica, citología. 2.1.2.1.2 Destreza en el manejo del microscopio óptico y lectura automática del sedimento urinario. . Recuento de elementos formes. 2.1.2.1.3 Análisis de heces: detección de sangre, digestión etc. 2.1.2.1.4 Saber realizar la validación técnica y fisiopatológica en orinas. 2.1.2.1.5 Rotación por el área de extracciones del hospital donde conocerá la estructura y funcionamiento de la misma, recepción de volantes, y conocimiento general de la parte administrativa del laboratorio. 2.1.2.1.6 Organización del flujo de trabajo. 2.1.2.1.7 Recepción de neveras de centros periféricos y distribución por áreas. 2.1.2.1.8 Conocimiento de los requisitos para el envío a los laboratorios externos 2.1.2.1.9 Conocimiento de todo lo referente a contenedores, aditivos, proporciones etc necesarias para que el análisis de cada técnica sea la adecuada. 2.1.2.1.10 Conocimiento de todo el conjunto de instrucciones que deben seguirse en la solicitud de análisis, preparación del paciente, obtención de muestras y traslado al laboratorio sean adecuadas. 4 2.1.2.1.11 Comunicación y relación con las diferentes áreas del laborsatorio y las unidades externas 2.2 R2 2.2.1 Laboratorio área core. 6 meses 2.2.1.1 Competencias a adquirir en el laboratorio área core 2.2.1.1.1 Rotación por bioquímica general, hormonas, marcadores tumorales y hematimetría. 2.2.1.1.1.1 Conocer los métodos analíticos y el instrumental disponibles en la sección y adquirir el dominio en la determinación de pruebas de bioquímica general, hormonas. 2.2.1.1.1.2 Obtener los conocimientos teóricos básicos y aplicados relacionados con el trabajo que se realiza en esta área: fisiopatología de la función renal, fisiopatología de la función renal, cinética de enzimas, metabolismo del hierro etc. 2.2.1.1.1.3 Cuantificación de vitaminas y su importancia en estados carenciales 2.2.1.1.1.4 Bases teóricas de la instrumentación automatizada. de los métodos aplicados a la determinación de hormonas con especial atención a los basados en quimioluminiscencia. 2.2.1.1.1.5 Conocimiento técnico de las cadenas de análisis y sistemas de alicuotación. 2.2.1.1.1.6 Conocer la utilidad diagnóstica o pronostica de perfiles hormonales y familiarizarse con la validación facultativa. 2.2.1.1.1.7 Conocimiento e interpretación de marcadores tumorales. 2.2.1.1.1.8 Saber evaluar la calidad analítica de los resultados obtenidos 2.2.1.1.1.9 Obtener los conocimientos teóricos básicos y aplicados relacionados con la Hematología básica. 2.2.1.1.1.10 Bioquímica de la anemia. Hemocromatosis. Fisiopatología de la serie roja. Protocolo de actuación en anemias. 2.2.1.1.1.11 Fisiopatología de la serie blanca. Leucemias 2.2.1.1.1.12 Fisiopatología de las plaquetas 2.2.1.1.1.13 Adquirir la destreza en la realización del estudio microscópico e interpretación de un frotis de sangre periférica. 2.2.1.1.1.14 Actuación ante el hallazgo de valores críticos. Comunicación con peticionarios. 2.2.1.1.1.15 Adquirir la capacidad de desarrollar un método analítico nuevo 2.2.2 Laboratorio de Bioquímica especial. 6 meses 2.2.2.1 Rotación área de Proteínas. 3 meses 2.2.2.1.1 Estudio de las proteínas plasmáticas, síntesis y función biológica 2.2.2.1.2 Conocimiento de los analizadores para el estudio cuantitativo de proteínas plasmáticas. Conocimiento técnico de la nefelometría. 2.2.2.1.3 Destreza en el manejo e interpretación de la electroforesis capilar 2.2.2.1.4 Realizar la separación de proteínas para electroforesis de orinas, Inmunofijación en suero y orina 2.2.2.1.5 Isoelectroenfoque de IgG en LCR (líquido céfalo raquídeo). 5 2.2.2.1.6 2.2.2.1.7 Conocimiento de los distintos patrones clínicos en suero y orina Saber interpretar los resultados de IFE (inmunofijación) e IT inmunotipado. 2.2.2.2 Rotación área de Autoinmunidad. 2 meses 2.2.2.2.1 Conocimiento de la metodología de los inmunoensayos 2.2.2.2.2 Conocimiento y destreza en microscopia de fluorescencia 2.2.2.2.3 Interpretación de los patrones de inmunofluorescencia y relación de los mismos con las diferentes enfermedades autoinmunes. 2.2.2.2.4 Conocimiento y ejecución de los algoritmos diagnósticos en base a los resultados de las pruebas obtenidas 2.2.2.2.5 Valoración cuantitativa de anticuerpos por fluoroinmunoensayo. 2.2.2.2.6 Cartera de servicios en esta área y requisitos para su ampliación en el laboratorio externo. 2.2.2.2.7 Control interno mediante inter-comparación de observadores 2.2.2.2.8 Control externo nacional y europeo (Qulity Club) e interpretación del mismo. 2.2.2.3 Rotación área de alergia. 1 mes 2.2.2.3.1 Conocer los métodos analíticos y material disponible para ejecutar las técnicas de modo manual y automatizado. 2.2.2.3.2 Conocimientos teóricos sobre bases inmunológicas de la alergia, alérgenos más frecuentes en nuestra área etc 2.2.2.3.3 Conocimiento de los algoritmos de solicitud de pruebas de alergia y la cartera de servicios 2.2.2.3.4 Realizar la adecuada interpretación de los resultados obtenidos. 2.3 R3 2.3.1 Área de monitorización fármacos y análisis de fármacos biológicos. 3 meses. 2.3.1.1 2.3.1.2 2.3.1.3 2.3.1.4 Familiarización con el trabajo de rutina con el autoanalizador DIMENSION XPAND, para la determinación de fármacos. Adquirir destreza en la monitorización de los diferentes fármacos inmunosupresores. Comunicación con el servicio de farmacia hospitalaria. Conocimientos teóricos sobre los fármacos biológicos y acticuerpos. Procesamiento de las muestras en todos los equipos de esta sección, control de la demanda y de las pruebas pendientes. 2.3.2 Área de estudio de fertilidad. 1 mes. 2.3.2.1 Evaluación macroscópica de la muestra. 2.3.2.2 Evaluación microscópica: recuento en cámara de Neubauer, morfología de espermatozoides, vitalidad y motilidad 2.3.2.3 Estudios Post-vasectomia 2.3.2.4 Conocimiento de las técnicas de inseminación artificial. 6 2.3.2.5 Conocimiento del programa de evaluación Externa de la calidad de análisis de semen. 2.3.3 Rotación Externa: XERAL-CIES VIGO. 2 meses. 2.3.3.1 El objetivo es formar al residente en técnicas de genética y biología molecular que no están disponibles en nuestra cartera de servicios y que completaran su formación en la totalidad del programa oficial de la especialidad de análisis clínicos. 2.3.4 Rotación por el servicio de hematología. 6 meses. 2.3.4.1 En el periodo de rotación por el Servicio de hematología el residente deberá aprender el manejo en profundidad de contadores celulares y coagulómetros. Se abordará el estudio de 2.3.4.2 Síndromes anémicos, poliglobulias y metabolopatías. 2.3.4.3 Mecanismos de la coagulación: fibrinólisis y trombosis 2.3.4.4 Diagnostico de laboratorio de leucemias, Sd mieloproliferativos 2.3.4.5 Estudio de linfomas. 2.3.4.6 Control por el laboratorio de la terapia oral anticoagulante 2.3.4.7 Conocimiento de grupos sanguíneos e inmunohematología. 2.3.4.8 Rotación por banco de sangre. 2.4 R4 2.4.1 Rotación por el servicio de microbiología 6 meses. 2.4.1.1 En el periodo de rotación por el servicio de microbiología el residente estudiará la metodología y fisiopatología de esta especialidad. 2.4.1.2 Conocimiento de los distintos tipos de soportes para la toma de muestras y medios de cultivo necesarios para cada una. 2.4.1.3 Estudio de marcadores serológicos para el diagnóstico de hepatitis, sida, toxoplasmosis etc. 2.4.1.4 Sistemas de aislamientos en medios de cultivos selectivos e identificación de microorganismos a través del sistema Microscan. 2.4.1.5 Conocimiento en las distintas tinciones utilizadas en microbiología 2.4.1.6 Conocer los microorganismos implicados en patologías respiratorias, y técnicas necesarias para aislar micobacterias y otros patógenos. 2.4.1.7 En biología molecular aplicará las técnicas de reacción en cadena de la polimerasa al diagnóstico de enfermedades. 2.4.1.8 Hemocultivos: conocimiento en profundidad del sistema BACTE/alert. 2.4.1.9 Conocer los distintos antibióticos y los antibiogramas aplicados. 2.4.2 Rotación Externa: CNIO-Madrid.Biología molecular 3 meses. 2.4.2.1 El objetivo es formar al residente en técnicas de genética y biología molecular que no están disponibles en nuestra cartera de servicios y 7 que completaran su formación en la totalidad del programa oficial de la especialidad de análisis clínicos. 2.4.3 Área de cromatografía (HPLC) Bioquímica especial. 1 mes 2.4.3.1 Familiarización y trabajo de rutina con el analizador de cromatografía HPLC de hemoglobina glicada y HPLC Agilent. 2.4.3.2 Conocimiento en cromatografía de alta resolución. 2.4.3.3 Estudio de interferencias. Guías clínicas de la diabetes. 2.4.3.4 Cromatografía de orinas de 24 horas: determinación de catecolaminas, metanefrinas, y sus metabolitos. Guías clínicas. 2.4.4 Gestión de la calidad 2 meses 2.4.4.1 Conocimiento de la metodología de la calidad total 2.4.4.2 Sistemas de gestión de la calidad 2.4.4.3 La norma ISO 9001:2008 2.4.4.4 La norma ISO 15189:2007 2.4.4.5 Certificación y acreditación de los laboratorios Clínicos. 2.4.4.6 Conocimiento de la elaboración de la documentación necesaria para la certificación de un laboratorio clínico. 2.4.4.7 Registros de calidad 2.4.4.8 Mantenimiento de sistemas de control de calidad. 2.4.4.9 Auditorias de calidad 2.4.4.10 Diferenciar las diferentes normas de calidad en los laboratorios. 3. Programación de atención continuada/guardias 3.1 Guardias de presencia física en el laboratorio : desde el primer año se realizaran 5 guardias mensuales distribuidas en 4 guardias en días lectivos y 1 guardias en día festivo. Estas guardias serán de presencia física y se realizaran siempre en el laboratorio de urgencias. No pueden coincidir estas guardias con las del facultativo en cuya sección esté rotando. 3.2 Guardias en otros servicios: La realización de guardias durante las rotaciones externas compete a cada hospital en el que se realice dicha rotación ofertarlas. 4. Programación de las sesiones clínicas y bibliográficas en las que participará el residente 4.1 Cursos de formación transversal 4.1.1 Participará en los cursos comunes con el resto de los residentes relacionados con su especialidad: RCP, bioética, entrevista clínica, búsqueda bibliográfica y gestión. 4.2 Sesiones clínicas semanales 4.2.1 Todas las semanas el residente participará como ponente u oyente en las sesiones clínicas programadas en el laboratorio. 8 4.2.2 El residente tiene la obligación de adquirir los conocimientos teóricos necesarios para cada rotación según especifica el plan de la especialidad, los responsables de cada sección le indicarán y enseñaran a localizar la bibliografía necesaria. 4.3 Sesiones hospitalarias generales 4.3.1 Es obligatorio que el residente participe en todas las sesiones clínicas que programa la comisión de docencia del hospital, y será ponente cuando por calendario le corresponda. 4.3.2 A lo largo de la especialidad el residente deberá realizar cursos de formación que se consideren oportunos por parte de la unidad docente. 5. - Actividades de investigación para los residentes 5.1 El residente será miembro de las sociedades científicas de la especialidad SEQC, AEFA, AEBM. 5.2 5.3 5.4 5.5 Cursos anuales de formación continuada de dichas sociedades Participación en congresos nacionales e internacionales. Presentación de comunicaciones y poster a congresos. El residente participará en la publicación en alguna revista de la especialidad de algún estudio o caso clínico