Control de Nematodos - Soil Technologies Corporation

EFICIENCIA DE PRODUCTOS ORGÁNICOS EN LA REDUCCIÓN DE LA POBLACIÓN DE
Meloidogyne sp. EN ROSAS (Rosae sp).
Ing. Agr. JOSÉ LUIS LÓPEZ MORETA
INVESTIGADOR
I.
ÍNTRODUCCION
El surgimiento de la floricultura en el Ecuador se inició a partir de 1985, con inversiones de seis empresas que en
conjunto disponían de un área no mayor a las 30 hectáreas, que para entonces produjeron un ingreso de 530 000
dólares (27).
En 1990 el Ecuador exportó 7 682 037 kilogramos de flores naturales, obteniendo ventas por US Dólares 18 790
299 FOB. En 1992, estas fueron de aproximadamente 8 762 559 kilogramos y los ingresos de las mismas fueron
de US Dólares 19 406 517 FOB. Las cifras fueron ascendentes para los años de 1993 y 1994; así, mientras en
1993 se exportaron flores naturales por una cantidad de 15 845 217 kilogramos, con los que se obtuvo US
Dólares 37 964 260 FOB, en 1994 las cifras aumentaron reveladoramente a 35 352 413 kilogramos en
exportaciones e ingresos por US Dólares 54 776 956 FOB (27).
La superficie dedicada al cultivo de rosas en el país se ha incrementado de 131. 40 hectáreas que se
contabilizaban en 1990, a más de 1000 hectáreas en el 2002, de las cuales a la provincia de Pichincha le
corresponde el 69 % y a Cotopaxi el 31 %.
La diversificación del cultivo de flores, fue posible gracias a la situación geográfica del Ecuador, ya que tiene
condiciones climáticas y de luminosidad, para ofrecer flores de calidad (23). Las flores ecuatorianas son
actualmente las más apreciadas en el ámbito mundial, por su gran variedad, magnífica belleza y calidad
insuperable, que pueden atribuirse a sus ventajas naturales (26).
Uno de los principales obstáculos para la obtención de flores de alta calidad son los problemas fitosanitarios; los
cuales, hacen que las plantas no respondan a la fertilización, riego y podas, presentando una clara clorosis,
raquitismo, falta de vigor y una baja productividad. Además, incide en estas limitaciones el ataque del
"Nemátodo del nudo de la raíz" (Meloidogyne spp) (26), aunque existen otros agentes patógenos que afectan al
sistema radicular en especies florícolas que se cultivan en la sierra ecuatoriana, como: Fusarium, Pythium,
Rhizoctonia, etc. (50).
El difícil control del "Nemátodo del nudo de la raíz", Meloidogyne spp. mediante el uso de productos químicos,
muchos de ellos sumamente tóxicos y de alta peligrosidad tanto para la salud humana como para la actividad
biológica del suelo y del medio ambiente en general, está motivando a los floricultores a buscar alternativas
tecnológicas de control, que al mismo tiempo que reduzcan los niveles de daño de esta enfermedad, no sean
agentes contaminantes y tiendan a rebajar los costos de control (27). La legislación de todos los países
especialmente a los que se exportan productos agrícolas ecuatorianos, es cada vez más exigente en cuestión de
daños al medio ambiente y de toxicidad de los insumos fitosanitarios que se utilizan.
El ataque de nemátodos en el cultivo de rosa, es capaz de bajar su productividad hasta en un 70%, disminuyendo
además la calidad de la flor, tanto en el largo del tallo, como en el tamaño del botón (26).
Además al utilizar productos de origen químico sean estos fumigantes o no fumigantes, el tiempo de reingreso a
los invernaderos es demasiado prolongado, lo que lleva a un alargue en los procesos del cultivo, tanto para la
cosecha normal, como para las labores culturales. Por el contrario, al utilizar productos de origen orgánico, con
estos no se tiene un período de reingreso alto, no emanan un olor peligroso para las personas de campo y no se
necesita normas de prevención muy exigentes.
Por las razones antes expuestas, se propuso la siguiente investigación para obtener nuevas alternativas
tecnológicas que permitan reducir las poblaciones de Meloidogyne sp. y cuyos objetivos fueron los siguientes:
A.
General.
Determinar la dosis de aplicación más adecuada para los distintos productos de origen orgánico en la
reducción de la población de nemátodos Meloidogyne sp.
2
B.
Específicos.
1.
Evaluar la eficiencia de productos orgánicos, en el control de Meloidogyne sp. en el cultivo de rosa (Rosae
sp.).
2.
Evaluar la reducción de la población de los "Nemátodos del nudo de la raíz" Meloidogyne sp. en el cultivo
de rosas, frente a la aplicación de tres productos de origen orgánico.
3.
Realizar el análisis económico de los tratamientos en estudio.
II.
REVISIÓN DE LITERATURA
En nuestro país es muy escasa la información disponible sobre el ataque de nemátodos a los cultivos florícolas.
Apenas se tiene datos de algunos géneros y poblaciones que se hallan presentes en algunas zonas productoras.
Por esto, es necesario investigar más al respecto; ya que, constituyen un problema de evidentes consecuencias,
(15). A pesar de contar con tan poca información en el país, se sabe que los nemátodos constituyen un problema
que no se puede obviar, sobre todo porque ya se han hecho evidentes sus consecuencias, atacando seriamente
varios cultivos de flores, aunque podrían ser todos los cultivos florícolas existentes pero no se puede contar con
toda la información, (16).
Los nemátodos son organismos multicelulares, casi todos microscópicos, clasificados dentro del reino animal,
que puede ser parásitos de plantas, de animales y del hombre, aunque la mayoría son de vida libre; es decir, que
no causan daño ni a las plantas ni a los animales. En general, tienen la forma de un gusano delgado, de sección
circular y varían de tamaño según su hábitat alimenticio, (6).
El "Nemátodo del nudo de la raíz" (Meloidogyne spp.), debido a su distribución mundial, y al extenso grupo de
hospederos, su interacción con otros agentes como hongos y bacterias, hacen que sea considerado entre los
agentes causales de las mayores pérdidas económicas en el mundo (40).
A. CICLO DE VIDA.
El ciclo biológico de los nemátodos así como de la mayor parte de parásitos de las plantas, son simples y directos
(10). En las especies bisexuales, el macho fecunda a la hembra y está produce huevos que deposita en el suelo. El
huevo unicelular sufre una serie de divisiones que dan lugar a la formación de una larva en su primera fase. En
las especies que se han estudiado detenidamente, la primera muda tiene lugar en el huevo y la larva de la segunda
fase emerge del huevo. El nemátodo frecuentemente permanece en la segunda fase hasta que encuentra una
fuente de alimento, por lo general la raíz de una planta viva. Después de iniciada su actividad atraviesa por otras
tres mudas, entre la tercera y cuarta muda empiezan a desarrollarse los órganos sexuales y a la cuarta muda el
nemátodo se convierte en adulto maduro. Aunque las hembras siguen alimentándose después de la cuarta muda,
existen pruebas que los machos de ciertas especies no se alimentan una vez que han llegado a la fase adulta, (43).
Los huevos del género Meloidogyne sp se depositan en ootecas y se desarrollan desde la fase monocelular a la
fase postlarvaria. Las larvas permanecen en esta segunda fase hasta que penetran en una raíz, situándose por
encima de su extremidad. Permanecen de un modo sedentario en la raíz, crecen y mudan dos veces más,
convirtiéndose en larvas de la cuarta fase. Antes de la cuarta muda, el macho se hace más alargado y delgado,
después de esta muda abandona la raíz a través del suelo. Las hembras permanecen en la raíz y si están del todo
implantadas en está, depositan los huevos en una ooteca en la raíz. Sin embargo, con mucha frecuencia la vulva
de la hembra de Meloidogyne sp. queda expuesta en la superficie de la raíz y la masa de huevos se forma fuera.
En condiciones óptimas, el tiempo que transcurre desde la formación del huevo hasta la conversión en hembra
productora de huevos puede ser tres o cuatro semanas. Si las condiciones no son óptimas es posible que este
período sea más del doble, (43).
El desarrollo del huevo comienza breves horas después de la oviposición, resultando en 2, 4, 8, ó más células
hasta que se ve una larva completamente formada, con un estilete enrollado en la membrana del huevo (44).
Durante el proceso embriogénico, se produce dentro del huevo un estado inicial de larva, que es el primer estadío
larval. Poco después, ocurre la primera muda y produce un estado de larva secundario, la cual corta con su
estilete la cáscara del huevo, para migrar e invadir las células epidérmicas de las raíces, (6).
3
Las larvas (J2) recién incubadas, que se encuentran libres en los suelos, son pequeños gusanos delgados, de 0.4 a
0.5 mm de longitud, que se hallan en el segundo estado larvario, habiendo mudado una vez mientras estaban aún
dentro del huevo. Estas larvas (J2), pueden entrar a casi cualquier parte de un vegetal que se encuentre en
contacto con el suelo húmedo, una vez dentro, se mueven hacia el periciclo, (10).
Las larvas (J2), se mueven principalmente entre las células no diferenciadas de la raíz y finalmente, se colocan
con sus cabezas en el cilindro central en desarrollo, cerca de la región de elongación celular y con sus cuerpos en
la corteza. Con sus estiletes, perforan las paredes de las células e inyectan secreciones de sus glándulas
esofágicas; estas secreciones causan un agrandamiento de las células en el cilindro vascular y aumentan la
proporción de la división celular en el periciclo, (44).
Durante su período de alimentación, inducen a la formación de tres a seis células gigantes (Síncitos), formadas
por un agrandamiento de las células (hipertrofia), a la posible disolución de paredes celulares, a un
agrandamiento de núcleo y a cambios en la composición de los contenidos celulares; al mismo tiempo, hay una
intensa multiplicación de células vegetales (hiperplasia) alrededor de la cabeza de la larva, (3).
Estas larvas (J2), son parásitos sedentarios y una vez que se alojan dentro de los tejidos de la planta, no se
mueven ni cambian de posición. A medida que la larva se alimenta, comienza a engrosarse y a perder su
apariencia vermiforme, adoptando la forma ovalada, con un grosor aproximadamente de la mitad de su longitud,
(29).
Al completar la segunda y tercera muda en la hembra, demostradas por las dos cutículas desprendidas, el estilete
y el bulbo medio son regenerados, se forman el útero, la vagina y el patrón perineal se hace visible; en cambio en
los machos después de la segunda y tercera muda el estilete no es visible, el bulbo esofágico medio se ha
degenerado y sólo la gónada se ha alargado, luego ocurre una rápida metamorfosis, (44).
Las hembras sufren las mismas mudas que el macho y casi al mismo tiempo, presentando un cambio abrupto en
su forma puesto que la hembra continúa su desarrollo y adopta la forma de una pera o algunas veces de una
esfera, aunque siempre conserva sobresaliente la región del cuello. Si la planta es un huésped adecuado y si el
clima es favorable, las hembras comienzan a depositar huevos después de 20 a 30 días de haber penetrado como
larvas (J2). Las hembras secretan a través de su vulva una sustancia gelatinosa y enseguida depositan los huevos
sobre la misma, manteniéndolos unidos y formando una cubierta protectora (10).
Al incubar la larva puede:
• escapar hacia tierra en busca de nuevas raíces.
• permanecer y desarrollarse en la misma raíz o en otra estructura donde se hayan producido, (10).
La velocidad de desarrollo de los nemátodos, se ve influida por diferentes factores como: la temperatura, la
aptitud de las plantas que sirven como huéspedes a una especie determinada de nemátodo y así mismo, al vigor
de la planta que se refleja en los nutrimentos disponibles (10).
Se encontró que el período necesario para que las hembras alcancen su madurez y depositen huevos, aumenta en
forma substancial cuando las plantas se desarrollan en un medio deficiente en potasio (10). En general, el ciclo de
vida de Meloidogyne spp. va de 30 a 50 días, dependiendo la duración de la humedad y del huésped, (6).
B. ECOLOGÍA.
EISENBACK (14), señala que Meloidogyne spp. , está presente donde el promedio anual de temperatura es del
rango de 18 a 30°C, con el mayor número de poblaciones. Se observa que a temperaturas que fluctúan entre 27.5
a 30°C las hembras se desarrollan de la etapa de larva a la etapa de deposición de huevos en unos 17 días, a 24°C
en 21 a 30 días, a 20°C en 31 días y a 15.4°C en 57 días. A temperaturas inferiores a 15.4 °C o superiores a 33.5
°C las hembras no llegan a alcanzar su madurez (10).
Casi todos los nemátodos parásitos de plantas se tornan inactivos a una gama de temperaturas bajas entre 5 a
15°C. La gama óptima es de 15 a 30°C y de nuevo se vuelven inactivos a una gama de alta temperatura como de
30 a 40°C. Las temperaturas fuera de estos límites pueden ser fatales, existiendo poca información sobre
temperaturas constantes o alternadas, (29).
4
Con respecto a la influencia de la temperatura en las distintas especies de Meloidogyne WALLACE (52), halló
que Meloidogyne hapla y otras especies de climas fríos tienen necesidades mínimas, óptimas y máximas para
incubación , movilidad, invasión de raíces, crecimiento, reproducción y supervivencia más bajos que
Meloidogyne incógnita, Meloidogyne javanica y Meloidogyne arenaría las cuales ocurren en climas más cálidos
(44).
Cuando se trata de suelos ligeros o muy porosos, los nemátodos penetran hasta 20 cm de profundidad, el
desarrollo de las larvas (J2) depende mucho de la temperatura. Se necesita para el desarrollo de una generación
entre 25 días a 27°C y de 87 días a una temperatura de 16.5°C, (33).
La temperatura, humedad y aireación del suelo afectan a la supervivencia y al movimiento de los nemátodos en el
suelo. Estos se encuentran con mayor abundancia en la capa del suelo comprendida entre 0 y 15 cm. de
profundidad, aunque cabe mencionar que su distribución en los suelos cultivados es irregular y es mayor en torno
a las raíces de las plantas susceptibles, a las que en ocasiones siguen hasta profundidades considerables de 30 a
150 cm o más. Los nemátodos, se mueven con mayor rapidez en el suelo, cuando los poros de esté están llenos de
una película delgada de agua y además de su movimiento propio, se distribuyen con gran facilidad a través de
todo lo que se mueve y pueda llevar partículas de suelo, (1).
Si los suelos se vuelven muy secos, las larvas (J2) mueren, pero si sobreviven hasta comienzos de la temporada
lluviosa, las larvas (J2) pueden emerger e infectar las plantas, (12).
En general, se cree que los nemátodos siempre están activos en los suelos que tienen un contenido de humedad de
40 a 60% de capacidad de campo, (29).
Las larvas(J2) emergen rápidamente y se mueven con libertad a través de los poros del suelo, cuando hay
suficiente agua para formar películas delgadas de agua sobre las partículas del suelo, (52).
El movimiento es imposible si los espacios porosos son tan pequeños que les impidan a los nemátodos deslizarse
a través de ellos y la movilidad es aparentemente máxima cuando la proporción entre el diámetro de la partícula
sobre la longitud del nemátodo es alrededor de 1: 3, (52).
C.
SINTOMATOLOGÍA.
Los nemátodos que atacan a los rosales lo hacen solo en la raíz, no habiéndose encontrado ningún nemátodo
hasta el momento en hojas o tallos. En el sistema radicular pueden observarse abultamientos en las raíces y en
las raicillas jóvenes causadas por Meloidogyne sp. afectando la parte aérea de forma indirecta causando clorosis y
falta de productividad, (26).
EINSENBACK (14), menciona que los síntomas en la parte aérea de las plantas infectadas con nemátodos
agalladores, son similares a aquellos causados por otros patógenos de la raíz y/o por condiciones ambientales que
restringen el flujo de agua o de nutrientes.
Síntomas tales como reducción de crecimiento, clorosis del follaje, susceptibilidad al marchitamiento y
producción reducida de frutos, son los más comunes, sin embargo los síntomas más característicos de la infección
por nemátodos agalladores se presentan en las raíces, las cuales presentan en nudos, agallas y ramificación
excesiva de la raíz, (1).
Además de la formación de nódulos y células gigantes, las especies de Meloidogyne spp. tienen otros efectos
importantes en las raíces de las plantas, tales como el acortamiento de las mismos en comparación con raíces
sanas, así como la reducción de raíces laterales y menos pelos radiculares; lo cual acarrea una disminución de la
eficiencia radicular debido a la deformación en las raíces y su ineficiencia causa paralización del crecimiento,
marchitez en climas secos y otros síntomas propios de la deficiencia de agua y nutrientes, aún cuando éstas
abunden en el suelo, (44).
El ataque del nemátodo Meloidogyne sp. en el cultivo de rosa presenta los siguientes síntomas, (30).
1.
Síntomas Aéreos:
•
Raquitismo de las plantas.
•
Clorosis parecida a deficiencia de nutrientes.
•
Distorsión, clorosis y/o necrosis de las hojas.
5
•
•
•
•
•
2.
•
•
•
Tallos débiles que no soportan su propio peso.
Hojas pequeñas.
Caída de hojas.
Falta de brotación (yemas duras).
Yemas arrosetadas.
Síntomas en las raíces.
Presencia de nudos.
Raicillas con puntos ensanchados.
Proliferación de raicillas en corona amanera de escobilla.
Según GONZÁLEZ (20), la mayoría de los nemátodos fitoparásitos atacan la raíz u otros órganos subterráneos.
Pocas enfermedades causadas por nemátodos pueden identificarse en base a los síntomas subterráneos
únicamente.
Los siguientes síntomas pueden presentarse ya sea solos o en combinación, (33).
a.
Agallas o nódulos radicales.
Estas malformaciones que varían desde leves ensanchamientos hasta nudos de varios centímetros de diámetro, se
deben a hipertrofias e hiperplasias, causadas principalmente por Meloidogyne sp, (33).
b.
Ramificación excesiva de las raíces.
Estos síntomas pueden ser ocasionados por la muerte de la parte terminal de las raíces o por desbalances
hormonales. El tamaño y forma de las nudosidades dependen del número de nemátodos atacantes, del lugar de su
crecimiento y de la especie de planta. Sobre las raíces, su tamaño varía entre el de un grano de cáñamo y el
tamaño de una nuez. En especies de rosa estas son muy pequeñas. Algunas son fusiformes y delgadas, habiendo
otras mas tuberosas, cortas y rechonchas. La porción de raíz que se halla por debajo de las agallas y las agallas
mismas, terminan por morir y podrirse, las plantas se vuelven enfermizas y seguidamente mueren mostrando con
frecuencia síntomas de falta de nutrientes, (33).
Parece ser que la mayoría de los daños son ocasionados por una secreción de saliva que el nemátodo inyecta en la
planta mientras se alimenta de ella. Algunas especies de nemátodos se alimentan con gran rapidez, perforan la
pared celular, inyectan saliva en la célula, succionan parte de los contenidos celulares y se mueven en el interior
de ella al cabo de unos cuantos segundos. Sin embargo, otras especies se alimentan con menos rapidez y pueden
permanecer en el mismo punto de entrada a la célula durante varias horas o días, (33).
c.
Inhibición del crecimiento.
Los nemátodos que parásitan las raíces provocan una inhibición inespecífica del crecimiento de las partes aéreas
de la planta, (9).
El daño de Meloidogyne sp. , consiste en desintegrar las paredes de las células gigantes, cada agalla contiene de 3
a 6 células gigantes. Estas células presionan los tejidos conductores impidiendo el transporte de substancias. La
hinchazón también se debe al aumento de la cantidad y volumen de las células cercanas a las gigantes, (43).
Las hembras de las especies de Meloidogyne spp. , se alimentan del citoplasma de las células gigantes, este tiene
una textura granular que va aumentando en densidad a medida que la célula madura y contiene muchas
mitocondrias y componentes celulares comunes como; cuerpos de golgi, proplástidos y una gran cantidad de
retículo endoplasmático. El citoplasma de la célula gigante, tiene diez veces más proteína que el citoplasma de
una célula normal y también trazas de carbohidratos y grasas, (44).
El mantenimiento de las células gigantes parece depender de un continuo estímulo generado por el nemátodo,
(44).
6
d.
Formación anormal de raíces laterales.
Los nemátodos pueden estimular a las raíces jóvenes a la formación reforzada de ramificaciones laterales. Puesto
que éstas por su parte vuelven a ser atacadas, por ello todo el sistema radicular se expande de una forma reticular,
(9).
D.
MÉTODOS PARA EL CONTROL DE NEMÁTODOS.
En la actualidad se dispone de varios métodos eficaces para controlar a los nemátodos aunque ciertos factores,
tales como los costos y los tipos de cultivo, limitan su aplicabilidad en determinados casos. Se emplea cuatro
tipos generales de métodos de control. El control con compuestos químicos, control biológico, control mediante
métodos de cultivo y control mediante la incorporación de materia orgánica, cultivos trampa y productos
orgánicos, (4).
1.
Control Químico.
El control químico es preferible dejarlo como última alternativa y siempre en forma integral. Los nemátodos son
sorprendentemente resistentes a muchas substancias químicas y esta resistencia obedece, cuando menos en parte,
a la impermeabilidad de la cutícula y a la cubierta protectora del huevo (10).
Los productos químicos, son particularmente eficaces contra los nemátodos del tallo y de las hojas, más
vulnerables y también se emplean ampliamente contra los que invaden cultivos costosos en los invernaderos,
donde el valor de este cultivo es suficientemente alto para justificar el costo de dosis masivas de nematicidas, que
frecuentemente se requieren para un control eficaz de la enfermedad, (10).
Los nemátodos están cubiertos de una cutícula impermeable, que los protege, por tal razón los nematicidas
eficaces deben penetrar la cutícula lipofílica, (43).
La cutícula se compone de un complejo de varias proteínas que incluyen colágenos, fibroides, elastoides,
queratoides y cuando menos en algunos casos, lípidos. El cascarón mismo del huevo es quitinoide y se dice que
es relativamente permeable. La membrana vitelina se compone de una cera relacionada químicamente con las de
las abejas, siendo la barrera principal para que la substancia química penetre en el huevo, (10).
Las propiedades que permiten a una substancia química penetrar a través de la cutícula deben tender a aumentar
su eficacia nematicida, tales propiedades pueden no ser necesarias. Las substancias químicas pueden entrar a
través de las aberturas naturales del cuerpo, de las cuales la penetración por la boca puede ser la más mortal. El
huevo no tiene aberturas naturales, lo cual puede justificar que esta etapa del ciclo de vida sea resistente a las
substancias químicas, (10).
Poco después de la aplicación de un fitotóxico, la substancia química debe eliminarse rápidamente de las tierras
una vez cumplido su papel o debe perder su fitotoxicidad mediante una descomposición química. Por lo tanto, es
relativamente corto el intervalo durante el cual la substancia química mata los nemátodos. Una vez que ha
terminado este período, la población residual de los nemátodos se encuentra en libertad de propagarse de nuevo,
lo que a veces sucede con una rapidez desconcertante. Un material que se retiene en el suelo y que continúa su
acción nematicida puede retardar o prevenir la propagación después de la aplicación, (10).
Con el empleo de los nematicidas se trata de proteger a las plantas de los ataques de nemátodos y de mejorar su
crecimiento y rendimiento. Esto presupone la destrucción de suficientes nemátodos para que sus ataques no
constituyan un importante factor limitador en el crecimiento o rendimiento. Las dosis mínimas de aplicación son
las cantidades de ingrediente activo que se usan comercialmente para luchar contra los nemátodos para suelos
franco arenosos, los suelos arcillosos exigen a menudo un aumento del 50%, aproximadamente el doble de la
dosis mínima. Al calcular la dosis de aplicación se debe tener en cuenta que casi todos los preparados contienen
diluyentes, (43).
Para poder lograr un control eficaz de nemátodos, el producto químico se deberá distribuir bien en el suelo y
tener una razonable permanencia por su acción nematicida, los productos químicos tales como el dicloropropeno
o dibromuro de etileno, que liberan gases tóxicos lentamente son por tanto particularmente eficaces, (8).
7
El control químico puede lograrse por medio del tratamiento del suelo mediante el empleo de fumigantes, que son
compuestos con suficientemente volatilidad como para penetrar a través de las capas superiores del suelo, donde
se encuentran la mayoría de los insectos y de los nemátodos, (8).
El bromuro de metilo, que es altamente volátil, para la esterilización del suelo en los invernaderos, es demasiado
volátil para el tratamiento general del suelo. La eficacia de la fumigación del suelo contra los nemátodos depende
de diversos factores, siendo los más importantes el tipo de suelo, las condiciones de humedad y de temperatura.
Es necesario un suelo caliente para que el tóxico volátil pueda dispersarse eficazmente a través de la capa del
suelo. Aun puede ayudar a la dispersión un suelo fino, bien trabajado, con razonable humedad. Diferentes tipos
de suelo pueden variar considerablemente en su capacidad de absorber los fumigantes, por lo que los suelos ricos
en materia orgánica desactivan una proporción muy alta del tóxico, de manera que el control de nemátodos no es
satisfactorio, mientras que en suelos arenosos se dan mejores resultados, el D-D aplicado en dosis de 60 gal/acre
controla nemátodos de los cítricos, pero en suelos arcillosos se requieren 250 gal/acre para obtener un efecto
comparable, (8).
La fumigación del suelo es una operación costosa, con materiales volátiles como los mencionados, el producto
químico es inyectado en el suelo siguiendo un diseño en forma de rejilla con espacios de 30 cm y después el
suelo casi siempre necesita ser sellado para evitar la fuga del material, (8).
Las capas más bajas del suelo no son alcanzadas por el fumigante, por lo que estas áreas que no se han tratado
ocasionan eventualmente una recolonización del suelo esterilizado, tanto por organismos dañinos como
benéficos. Esta situación pudiera resultar en un incremento transitorio de algunas especies de plagas, pero
afortunadamente los hongos benéficos saprofíticos son las especies presentes más resistentes y de esta forma
generalmente reinfestan primero al suelo tratado y ocasionan posteriormente cierto retraso en la dispersión de
este parásito, (8).
El Basamid puede aplicarse al suelo como granulado en proporciones de 40-50 gramos por metro cuadrado para
el control de nemátodos del suelo. El Fenamifós o Nemacur, es activo contra los nemátodos cuando se hace
aplicación total al suelo, a proporciones de 5-20 kg/ha, con o sin incorporación al suelo, tiene la desventaja de
tener un alto grado de toxicidad para mamíferos, DL 50(oral) para ratas de 17 mg/kg, (8).
Los nematicidas comerciales volátiles son haluros saturados o insaturados, como el bromuro de metilo, el
dibromuro de etileno, la cloropicrina, el Nemagón y su actividad depende probablemente de la reacción con un
sitio nucleofilico, como grupos OH, SH o Nh2 en un sistema enzimático vital del nemátodo, (8).
Los organofosforados y los carbamatos son incorporados en el suelo en proporciones de 2-10 kg/ha en
comparación con los 150-1150 kg/ha que se requiere para el control de nemátodos con los haluros alifáticos
volátiles. El carbamato de N-metilo carbofurán es un nematicida del suelo eficaz en tratamientos totales a dosis
de 6-10 kg/ha, tiene una vida residual muy corta, los carbamatos de oxima, aldicarb y de oximilo tienen una alta
toxicidad para mamíferos. los nematicidas organofosforados y carbamatos, penetran directamente la cutícula e
inhiben la (acetil) colinesterasa y producen efectos narcóticos y cambios en el movimiento, desorientación o
parálisis, otros efectos como detención o reducción de la eclosión de huevos, reducción del movimiento, retardo
en procesos de muda de la cutícula y cambios en la alimentación y reproducción, son atributos a estos dos de
nematicidas, (8).
También existen nematicidas no fumigantes y que se presentan en nuevas formulaciones como: gránulos, polvos
y líquidos y que han desplazado a los fumigantes, en el mercado existe variedad de compuestos organofosforados
y carbamatos, como mocap, oxamil, aldicarb, carbofurán y fenamifos, entre otros; existen de contacto y
sistémicos, (3).
ROBALINO y JIJÓN (37), utilizaron Vapam 400 litros/ha, Vydate líquido 4.5 litros/ha, Furadan 10 kg/ha,
Terracur 10 kg/ha y Vydate L granular 10 kg/ha y se obtuvo una alta mortalidad del segundo estado larvario de
Meloidogyne sp. en tomate en el suelo, siendo estas las siguientes: 81.71%, 78.03%, 75.17% y 65.60%
respectivamente. Comparando el efecto de los cinco nematicidas en el control de Meloidogyne sp. se encontraró
una disminución en su nivel poblacional (segundo estado larvario) hasta los 180 días, posiblemente esto se debe a
la acción tóxica de los nematicidas, demostrando además que existen diferencias en el modo de actuar de cada
nematicida. El Vydate L, reprime en menor forma la formación de hembras en el sistema radicular, además solo
hasta los 180 días existe un control efectivo en todos los productos, luego su eficacia es negativa a los 240 días.
8
Furadan (Carbofuran) en la dosis de 200 kg/ha, como producto comercial obtuvo una represión de hembras del
52.10% , (37).
Según ROBALINO y JIJON (37), el nivel poblacional de tolerancia es de 40 larvas por 100 cm3 de suelo para
tomate, puesto que el índice de incremento de población es de 1.5 veces su población inicial.
TAYLOR (43), indica que la multiplicación de los nemátodos en el sistema radícular después de emplear
nematicidas, ofrece condiciones ideales para la multiplicación de los nemátodos que sobrevivan en el suelo, a
causa de esto cuando suba la temporada vegetativa, la población de nemátodos puede ser suficiente para
constituir un factor limitante en el próximo cultivo.
Los productos químicos, cuya desventaja radican en su toxicidad para los animales y el hombre, deben ser usados
selectivamente para que el daño a organismos benéficos del suelo, como las bacterias nitrificadoras y las
micorrizas, sea mínimo, (3).
2.
Control Biológico.
Los enemigos naturales de los nemátodos que existen en todos los suelos agrícolas destruyen una gran parte de
tales nemátodos fitoparásitos. Al parecer, si las condiciones ecológicas del suelo son favorables, los enemigos de
los nemátodos por lo general surgen naturalmente; si las condiciones son desfavorables los organismos
incorporados no prosperan, (43).
LABAN y PANIZO (25), señalan que el hongo Paecilomyces lilacinus parásita principalmente en huevos y
hembras adultas de Meloidogyne spp. , reduciendo de 80 a 90 % la población, pero que tiene inconvenientes de su
producción, costos y aplicación.
EGUIGUREN (13), en un experimento sobre control biológico de Meloidogyne incognita con el hongo
Paecilomyces lilacinus, indica que el índice de nodulación varió de acuerdo al nivel poblacional del nemátodo y
densidad de Paecilomyces lilacinus, observándose menores índices a mayor cantidad del hongo. El resultado para
población final dió una alta significación para dosis y niveles poblacionales, y significación para la interacción,
observándose claramente que a mayor densidad de Paecilomyces lilacinus existe menos población del nemátodo.
Paecilomyces lilacinus es un parásito de los huevos de Meloidogyne incognita y Nacobbus. Los mejores
resultados se lograron con poblaciones nematológicas altas, lo que sugiere que el hongo necesita suficientes
huevos de los nemátodos para su mantención.
El hongo, Paecilomyces lilacinus Thom. Samsom. penetra los huevos del nemátodo destruyendo el embrión y
también ataca a las hembras en desarrollo y se multiplica dentro de ellos, produciéndoles la muerte. Hasta ahora,
el hongo ha sido muy efectivo en el control de Meloidogyne incognita, (el nemátodo del nudo de la raíz), pero se
están realizando pruebas para determinar su posible uso en el control de otros nemátodos (24).
GUEVARA et al (21), al realizar una investigación en tomate de árbol encontró que a los seis meses del
transplante, se presentaron diferencias altamente significativas para altura de planta, destacándose los
tratamientos en los que se utilizó Paecilomyces lilacinus.
El hongo Paecilomyces lilacinus sobrevive por lo menos un año en el suelo. Realizando una investigación
adicional se podrá obtener más información sobre los efectos prolongados del tratamiento con el hongo y sobre
la supervivencia del mismo en el suelo. Este hongo se desarrolla a temperaturas altas de 20 a 30°C y en una
amplia gama de niveles de acidez del suelo, de modo que pudiera ser un factor importante bajo condiciones de
climas tropicales, donde los nemátodos del nudo de la raíz son comunes, (24).
SAYRE (41), indica que hay dos tipos de hongos que matan nemátodos: los hongos atrapadores que capturan
nemátodos por medio de redes y nudos adhesivos, adheridos a las redes de sus hifas por ramas laterales cortas y
anillos hifales, algunos de los que se contraen para capturar a los nemátodos que tratan de pasar a través de ellos,
algunos de los más conocidos son Arthobrotys, con anillos contráctiles y redes adhesivas, Dactylella con nudos
y argollas adhesivas.
Por otra parte, hay hongos parásitos endozoicos que infectan las especies de Meloidogyne sp. y a otros nemátodos
fitoparásitos; además se afirma que un "tubellarion" (pequeño gusano plano) se alimenta de nemátodos y otros
animales microscópicos. (41).
9
MANKAU (28), indica que las esporas del hongo Bacillus penetrans, parásitan las larvas de Meloidogyne sp y
también a veces son encontradas hembras que contienen grandes números de esporas.
TRIVIÑO (47), indica que otra forma de control del nemátodo del nódulo de la raíz Meloidogyne sp, es la
utilización de la bacteria Pausteria penetrans thorne, Sayre y Starr, puesto que para su reproducción es
necesario un temperatura alta y la presencia del nemátodo, ya que necesita de siete esporas adheridas a la
cutícula del nemátodo (segundo estado larval) previo al ingreso de éste a las raíces de la planta que ataca,
posteriormente se produce la germinación de la espora sobre la cutícula del nemátodo formando micro-colonias
que proliferan en el interior de las hembras, produciéndose de uno a dos millones de esporas, lo que impide que
el nemátodo produzca huevos, dando como resultado reducción de las poblaciones. Si por el contrario, se
adhieren más de 15 esporas por nemátodo, esté se inmoviliza y muere antes de ingresar a la planta.
En Ecuador, en forma natural, la densidad poblacional de Pausteria en los campos donde se ha encontrado es
muy baja. Comúnmente se ha observado una espora por nemátodo y con menor frecuencia tres o cuatro,
solamente en la provincia de Esmeraldas se ha cuantificado hasta 10 esporas por nemátodo. La baja población de
la bacteria en forma natural ha hecho que el control no sea evidente, por lo que es necesario el manejo de los
cultivos favorables para el incremento de las esporas y la incorporación artificial de éstas. Estos cultivos pueden
ser: tomate, berenjena, pimiento, fríjol y soya. (47).
3.
Incorporación de Materia Orgánica.
La materia orgánica puede cambiar al ambiente del suelo, en tal forma que estimule a los hongos y organismos
predatores de nemátodos, además la materia orgánica en descomposición puede producir sustancias directamente
tóxicas a los nemátodos, o la abundancia de materia orgánica puede causar un gran incremento en la población de
nemátodos de vida libre que están alimentando de bacterias, seguido por un incremento de enemigos de
nemátodos que atacan tanto a los de vida libre como a las especies parásitas, (18).
PEET (34), indica que un alto contenido de materia orgánica protege a las plantas contra los nemátodos, por que
el suelo aumenta su capacidad de retener humedad o incrementa la actividad natural de microorganismos
biológicos y la competencia con nemátodos presentes en el suelo.
a.
Humus de Lombriz.
La capacidad que tiene el humus es aumentar la disponibilidad de nutrientes como calcio, potasio, magnesio,
siendo esta una característica del humus. El humus tal como una arcilla, actúa como un ácido y puede reaccionar
frente a los minerales del suelo para extraer sus bases. La capacidad que tiene el humus ácido para efectuar esta
transferencia es por el intercambio de las bases que son retenidas en forma débil y pueden ser absorbidas por las
plantas, esta capacidad de movilizar nutrientes es una de las propiedades más relevantes de los coloides húmicos.
Por otra parte, la micela orgánica es amorfa y es susceptible al ataque de los microorganismos, (11).
El humus de lombriz posee un pH neutro, por lo cual crea un medio desfavorable para la proliferación de ciertos
parásitos en los cultivos. Es inodoro y aunque se dosifique en exceso, no perjudica a las plantas más jóvenes y
delicadas. Al ser un producto estable puede permanecer almacenado mucho tiempo sin sufrir alteraciones (9).
Según TOCAIN (45), el humus desempeña tres importantes papeles en el suelo:
•
Biológico: La materia orgánica es ante todo el soporte alimenticio de la fauna y microflora del suelo, cuya
actividad es indispensable para mejorar o mantener la fertilidad.
•
Químico - Nutricional: La descomposición total de la materia orgánica libera elementos minerales presentes
en los residuos vegetales o animales (N - P - K - Mg - S).
•
Físico:
La presencia de un complejo arcillo - húmico estable, permite mantener una buena estructura,
principalmente en suelos arcillosos. En suelos limosos y arenosos el humus hasta cierto punto puede
reemplazar a la arcilla.
10
La materia orgánica actúa sobre los microorganismos saprófitos y sobre los nemátodos fitopatógenos de la
siguiente manera:
1.
Efectos sobre los Microorganismos Saprófitos.
En general el número de bacterias aumenta en las primeras etapas de la descomposición. Los hongos predominan
en las etapas posteriores o durante la descomposición de los materiales orgánicos resistentes, (5,32).
2.
Efecto sobre los Nemátodos Fitopatógenos.
En cierto número de casos, se han asociado las enmiendas orgánicas con la disminución de la población de
nemátodos. Los estudios realizados con este fin establecen que podría deberse a los efectos directos de los
productos de descomposición, tales como los alcaloides y los ácidos grasos volátiles y efectos indirectos, donde
los nemátodos que se alimentan de microbios que descomponen la materia orgánica aumentan en número y lo
mismo sucede con sus enemigos, estos últimos son hongos parásitos, (5,32).
Según REVELO (36), mediante la incorporación de materia orgánica al suelo, se logra disminuir poblaciones de
Meloidogyne sp., debido especialmente a que éstas permiten la multiplicación de enemigos naturales del
nemátodo como: hongos, nemátodos predatores, nemátodos saprófitos y parásitos internos; ya que, en su proceso
de descomposición se producen substancias letales como: gas sulfídrico, ácidos volátiles (butírico, propiónico),
etc.
TORRES (46), señala que gracias a los oligomentos que contiene los estiércoles como cobre, boro, manganeso,
hierro, zinc, etc. pueden favorecer el crecimiento y como consecuencia la resistencia de la planta.
Meloidogyne incógnita, se controló parcialmente incorporando al suelo 2.5 toneladas por hectárea de estiércol de
vacuno. Se reporta además que tanto en semilleros como en la plantación definitiva de tomate, el estiércol de
vacuno redujo en un 32% la infestación de Meloidogyne incógnita, el de equino en un 50% y mantillo vegetal en
un 52%, (36).
No hay indicaciones de que los huevos de nemátodos puedan mantenerse viables después de pasar por el sistema
digestivo de los animales, (3).
b.
Gallinaza.
Este abono orgánico está formado por las deyecciones de las excreciones avícolas, su principal aporte es fósforo.
Al igual que ocurre con la paja, si no se aplica con cierto grado de descomposición, el proceso se lleva a cabo a
expensas del nitrógeno del suelo. Se utiliza en la preparación de compost especial para horticultura y floricultura,
(3).
Para un posible control de nemátodos con gallinaza se requiere un proceso de descomposición mayor para
facilitar que en la materia orgánica se produzcan substancias letales como gas sulfídrico y ácidos volátiles, (16).
c.
Melaza.
La melaza queda como residuo de la cristalización del azúcar, es un jarabe denso, viscoso, de color amarillo
obscuro, marrón claro o marrón obscuro, casi negro según donde provenga. Contiene un 85% de materias secas,
un 40 a 60% de los cuales es azúcar. La melaza se utiliza para la producción de alcohol, de levaduras y para la
preparación de forrajes mezclados añadiéndose a los alimentos secos tales como el salvado o la pulpa seca y
también como "fertilizante", (31).
La melaza constituye una de las fuentes de carbohidratos más utilizados por su contenido de azúcares solubles
que promueven un rápido desarrollo de las bacterias. La acción principal es como adherente, pero también tiene
carácter neutralizador, (46).
La melaza de caña de azúcar contiene 50 a 58% de azúcares digestibles, constituidos principalmente por 37% de
sacarosa, 14% de glucosa y 7% de levulosa, que le da un sabor dulce. En la melaza, el potasio representa el 50%
del contenido mineral; en cuanto a otros nutrientes, la melaza de la caña de azúcar contiene niveles muy bajos de
11
proteína bruta de 2% a 3.4%, cenizas del 6 a 12%, azúcares totales 47% y energía metabolizable de 1.83 a 2.00
Mcal/kg (49).
YÉPEZ (54), indica que el aumento de la presión osmótica mediante el añadido al suelo de ciertas substancias
como la sacarosa ha sido comprobada como bastante efectiva para disminuir poblaciones de nemátodos del suelo.
4.
Productos Orgánicos.
a.
Compuestos a Base de Neem.
WENDT (53), manifiesta que el Neem (Azadirachta indica) pertenece a la familia de las meliáceas, es un árbol
siempre verde y con un crecimiento rápido, la planta madura alcanza de 7-20 m de altura y posee una atrayente
copa globosa de 5 a 10 m de diámetro que produce frutos del tamaño del café. En la semilla, se encuentra la
"azadiractina" y otras sustancias químicas que actúan como repelentes, alterando la metamorfosis, inhibiendo el
crecimiento y reduciendo la fecundidad. Estas sustancias no tienen ninguna toxicidad contra el ser humano o
animales de sangre caliente. Ya en 1927 se descubrió que el Neem no fue atacado durante una invasión de
langostas en la India. Desde ese tiempo se realizaron muchas investigaciones, resultando que el Neem tiene la
capacidad de controlar más de 100 insectos plagas, ácaros y nemátodos. El Neem no tiene efecto de contacto, por
eso, ni mata directamente a las plagas ni a los insectos benéficos. Las semillas contienen un promedio de 2 a 4
mg de azadirachtina por gramo de semilla fresca. En el Ecuador el promedio es de 3.2 mg / gramo, además
contienen: Meliantrol, Salanina, Nimbidin, Nimbin. Las substancias insecticidas se les obtiene haciendo varios
extractos de las semillas en torta de Neem, y con menor frecuencia, en el aceite. Los ingredientes activos son
poco solubles en agua, pero con una buena solubilidad en solventes orgánicos como alcoholes. La torta de Neem,
residuo de la producción del aceite, se puede incorporar al suelo o hacer un extracto acuoso de ella, ya que
contiene las substancias activas casi completas. Además contiene N. P. Ca y Mg como los estiércoles, mejora los
suelos, protege los cultivos contra nemátodos y termitas e inhibe la nitrificación, (7).
El producto biológico Neem-X cuyo ingrediente activo es la Azadiractina extraída del árbol de Neem, es un
producto que funciona como insecticida a 1ml/litro y como nematicida a 2-4 ml/litro con intervalos de 1 a 3
meses, tiene una acción translaminar no es tóxico o biotóxico atacando al estado de muda del nemátodo, no es
ovicida, el Neem-X mata un 70% de la población mientras que un nematicida químico un 80%, (21).
b.
Compuestos a base de Extractos Vegetales.
El producto biológico Nemastroy cuyo ingrediente activo es la combinación de los extractos del ají en un 0.42 %
y del aceite esencial de mostaza 3.70 %, forman un pesticida repelente, teniendo características de matar al
contacto y mantiene una acción repelente con la mayoría de los nemátodos e insectos. Es un insecticida a dosis de
0.8 ml/litro y actúa como nematicida a dosis de 1.5 a 2.5 ml/litro con intervalos de 21 días a 3 meses, (39).
c.
Compuestos a base de Pseudomona cepacia.
El producto biológico Intercept cuyo ingrediente activo es la bacteria Pseudomonas cepacia (type wisconsin), es
un biofungicida a dosis menores de 0.4 ml/litro y nematicida a dosis de 0.5 a 1.2 ml/litro con intervalos de 1 a 3
meses, es un concentrado microbiológico natural que mejora la salud y el vigor de las plantas a través de la
simbiosis de sus rizobacterias con las raíces, las razas de bacterias contenidas en Intercept crecen naturalmente en
las raíces de las plantas tratadas aumentando su vigor y resistencia al daño creado por los nemátodos en su
sistema radicular, no es tóxico para las personas, plantas ni animales, no es contaminante y es totalmente seguro
para el medio ambiente, (42).
Utilizando Intercept en dosis de 1.0 ml/ litro ayuda a mantener bajas las poblaciones de nemátodos, SANCHEZ
(39), en un experimento en la respuesta del banano a la aplicación de nematicidas naturales, sugiere una
aplicación de Intercept a dosis altas de 1.00 cc / litro, por que aumento su rendimiento, por el vigor encontrado en
sus raíces.
5.
Cultivos Trampa.
AGRIOS (1), afirma que se ha logrado el control experimental de los nemátodos entresembrando en los cultivos
trampa como caléndula (Calendula officinales L.), que son tóxicas a esos patógenos o plantas atrapadoras de
nemátodos tales como Hesperis en el caso de la remolacha azucarera y crotalaria para el nemátodo del nudo de la
12
raíz. Los cultivos trampa atraen a los nemátodos y los alejan de las plantas de cultivo susceptible y aunque los
nemátodos penetran en dichos cultivos no pueden desarrollarse en ellos.
La resistencia que tienen las plantas al ataque de nemátodos se los identifica como una reacción hipersensible que
se refleja en una rápida necrosis de los tejidos de la planta que rodea al nemátodo o sintetizando substancias
fenólicas en altas concentraciones que matan nemátodos como lo hacen los espárragos, al emitir glucosa
nematicida o como también se ha identificado en Marigold con su Alpha terthiely, (51).
Algunos tipos de plantas, como es el caso del espárrago y la flor de muerto Marigold o Tágetes, son antagónicos
a los nemátodos, debido a que liberan ciertas substancias en el suelo, las cuales son tóxicas para varios nemátodos
fitoparásitos y cuando se intercalan con cultivos susceptibles a estos patógenos, reducen el número de nemátodos
del suelo y de las raíces de las plantas de esos cultivos, desafortunadamente ningún tipo de planta antagónica o
cultivo trampa ha dado un grado de control suficiente sobre las enfermedades de las plantas para compensar los
gastos que se han hecho, (1).
6.
Variedades Resistentes.
CHRISTIE (10), señala que en muchas variedades de rosas se observan, con frecuencia, las vesículas de los
nódulos radiculares cuando han crecido sobre sus propias raíces. Los pies de injerto que se utilizan con mayor
frecuencia en la producción de arbustos comerciales de rosales son: Rosa multiflora y Rosa manetti. Estas
variedades mostraron más resistencia al nódulo radicular. La especie Rosa blanda utilizada en crías para mejorar
los pies de injerto, presentaron un alto grado de resistencia.
Ciertos clones de Rosa indica major y Rosa manetti resultan menos infectadas por Pratylenchus vulnus y por
ciertas poblaciones de Meloidogyne hapla, (17).
III.
A.
MATERIALES Y MÉTODOS.
CARACTERÍSTICAS DEL ÁREA EXPERIMENTAL.
1.
Ubicación
Provincia:
Cantón:
Ciudad:
Sector:
Sitio:
Altitud:
Longitud Oeste:
Longitud Sur:
2.
Pichincha
Mejía
Machachi
La Avanzada
Empresa Panorama Roses S.A.
2895 m.s.n.m
78º 34’ 11”
0º 21’ 41”
Características climáticas de la zona. ∗∗
Topografía:
Pendiente:
Profundidad de la capa arable:
Textura:
pH del suelo:
Contenido de materia orgánica:
Temperatura ambiental máxima:
Temperatura ambiental mínima:
Humedad ambiental relativa máxima:
Humedad ambiental relativa mínima:
Clima:
∗
plana
3%
>1m
Franco - Arenoso
7.0
2–4%
24°C
2°C
100%
30%
Templado – Frío
Estación Meteorológica de la empresa Panorama Roses S. A.
13
3.
Características climáticas de los invernaderos.
Característica
Temperatura promedio día
Temperatura promedio noche
Temperatura promedio
Humedad relativa promedio día
Humedad relativa promedio noche
Humedad relativa promedio
4.
Características del suelo.
a.
Características del suelo.
Textura:
Franco arenoso
pH:
5.9
Conductividad eléctrica: 2.4 mmhos/c
b.
Análisis de suelo.∗∗
Este se presenta en el cuadro 1.
Cuadro 1
Análisis de suelo, tomado al inicio del ensayo, Machachi - Pichincha 2002.
pH
NH4
NO3
P
Zn
Cu
Fe
Mn
B
b=
m=
s=
a=
e=
5.
Español
17.4 ºC
12.9 ºC
15.1 ºC
73 %
86 %
79 %
7.80
la
0.01 ppm b
0.60 ppm b
0.01 ppm b
2.60 ppm b
0.02 ppm b
3.20 ppm e
1.20 ppm e
Cl
K
Ca
Mg
Na
CO3
HCO3
C.E
0.38 ppm b
S
bajo
medio
suficiente
alto
exceso
0.20
0.18
0.33
1.26
1.20
0.01
1.58
0.28
meq/l
meq/l
meq/l
meq/l
meq/l
meq/l
meq/l
mmho
37.30 ppm
ac=
lac=
pn=
lai=
al=
b
b
b
m
m
b
m
b
e
ácido
ligeramente ácido
prácticamente neutro
ligeramente alcalino
alcalino
Análisis nemátologico.
Para éste análisis las muestras fueron tomadas en cinco sitios en donde se ubicó el ensayo. Los
datos están expresados en número de larvas en 100 g de suelo.
Cuadro 2
Género
Meloidogyne
Pratylenchus
Saprofitos
∗
Análisis nematológico de la población inicial de nemátodos
Machachi - Pichincha 2002.
Sitios de ubicación dentro del ensayo
1/5
2/5
3/5
4/5
140
40
360
160
40
60
80
320
260
Laboratorio de Investigaciones Agrícolas Agrobiolab.
en rosa (Rosae sp.)
5/5
240
220
180
14
B.
MATERIALES USADOS EN EL EXPERIMENTO.
1. Invernadero
-1467 plantas de rosa, variedad Tropical amazone cuyo patrón es Natal Brier.
-Invernadero Español con cortinas abatibles (automático – semicontrolado).
-Tijeras.
-Guantes de cuero.
-Barreno.
-Líneas de goteo.
-Rótulos de identificación.
-Productos biológicos.
-Ají más mostaza (Nemastroy).
-Extracto del árbol de neem (Neem-x).
-Bacterias Pseudomona cepacia (Intercep).
-Piolas, estacas.
-Libro de campo.
2. Laboratorio.
-Balanza de precisión de 0.01 gramos y una capacidad de 2 610 gramos.
-Probeta de capacidad de 1000 ml
-Tamices de 38 y 25 micras.
-Servilletas.
-Etiquetas adhesivas.
-Microscopio de disección.
-Hipoclorito de sodio al 5%.
-Plato cuenta larvas.
-Escalas para cuantificar el número de nemátodos.
-Fundas para recolectar muestras.
-Libro de campo.
3. Oficina.
-Cámara fotográfica.
-Rótulos.
-Materiales de gabinete.
-Análisis nemátologico del suelo.
C.
FACTORES EN ESTUDIO.
Reducir la población de Meloidogyne sp. en el cultivo de rosas con la aplicación de tres productos de origen
orgánico.
f1= 30 días
FRECUENCIA
f2= 60 días
f3= 90 días
PRODUCTOS
DOSIS∗∗
∗
p1= Pseudomona cepacia (Intercept)
p2= Extracto del árbol de neem (Neem-X)
p3= Extracto de ají más mostaza (Nemastroy)
d1= Mínima recomendada (-25%)
d2= Comercial
d3= Máxima recomendada (+25%)
El detalle de estas se especifica en las páginas 36 y 37 de este documento.
15
D.
INTERACCIONES.
A continuación se detalla las interacciones que resultan de combinar todos y cada uno de los niveles de
los tres factores motivo de estudio, para la reducción de la población de Meloidogyne sp.
Cuadro 3
t1
t2
t3
t4
t5
t6
t7
t8
t9
t10
t11
t12
t13
t14
t15
t16
t17
t18
t19
t20
t21
t22
t23
t24
t25
t26
t27
t28
t29
t30
E.
f1p1d1
f1p1d2
f1p1d3
f1p2d1
f1p2d2
f1p2d3
f1p3d1
f1p3d2
f1p3d3
Testigo
f2p1d1
f2p1d2
f2p1d3
f2p2d1
f2p2d2
f2p2d3
f2p3d1
f2p3d2
f2p3d3
Testigo
f3p1d1
f3p1d2
f3p1d3
f3p2d1
f3p2d2
f3p2d3
f3p3d1
f3p3d2
f3p3d3
Testigo
Interacciones usadas en la evaluación de la eficiencia de productos orgánicos para el
control de nemátodos en el cultivo de rosas (Rosae sp). Machachi - Pichincha 2002.
30 días (f1)Pseudomona cepacia (p1) Mínima recomendada (d1)
30 días (f1)Pseudomona cepacia (p1) Comercial (d2)
30 días (f1)Pseudomona cepacia (p1) Máxima recomendada (d3)
30 días (f1)Extracto del árbol de neem (p2) Mínima recomendada (d1)
30 días (f1)Extracto del árbol de neem (p2) Comercial (d2)
30 días (f1)Extracto del árbol de neem (p2) Máxima recomendada (d3)
30 días (f1)Extracto de ají más mostaza (p3) Mínima recomendada (d1)
30 días (f1)Extracto de ají más mostaza(p3) Comercial (d2)
30 días (f1)Extracto de ají más mostaza (p3) Máxima recomendada (d3)
45 días, Mocap gel ( producto organófosforado), dosis comercial
60 días (f2)Pseudomona cepacia (p1) Mínima recomendada (d1)
60 días (f2)Pseudomona cepacia (p1) Comercial (d2)
60 días (f2)Pseudomona cepacia (p1) Máxima recomendada (d3)
60 días (f2)Extracto del árbol de neem (p2) Mínima recomendada (d1)
60 días (f2)Extracto del árbol de neem (p2) Comercial (d2)
60 días (f2)Extracto del árbol de neem (p2) Máxima recomendada (d3)
60 días (f2)Extracto de ají más mostaza (p3) Mínima recomendada (d1)
60 días (f2)Extracto de ají más mostaza (p3) Comercial (d2)
60 días (f2)Extracto de ají más mostaza (p3) Máxima recomendada (d3)
45 días, Mocap gel ( producto organófosforado), dosis comercial
90 días (f3)Pseudomona cepacia (p1) Mínima recomendada (d1)
90 días (f3)Pseudomona cepacia (p1) Comercial (d2)
90 días (f3)Pseudomona cepacia (p1) Máxima recomendada (d3)
90 días (f3)Extracto del árbol de neem (p2) Mínima recomendada (d1)
90 días (f3)Extracto del árbol de neem (p2) Comercial (d2)
90 días (f3)Extracto del árbol de neem (p2) Máxima recomendada (d3)
90 días (f3)Extracto de ají más mostaza (p3) Mínima recomendada (d1)
90 días (f3)Extracto de ají más mostaza (p3) Comercial (d2)
90 días (f3)Extracto de ají más mostaza (p3) Máxima recomendada (d3)
45 días, Mocap gel ( producto organófosforado), dosis comercial
UNIDAD EXPERIMENTAL.
La unidad experimental estuvo constituida de la siguiente manera:
1.
2.
•
•
•
•
•
•
Forma rectangular, 12.75 m x 15.20 m.
Tamaño, 194 m2
Superficie parcela grande, 19 m2
Superficie subparcela, 1.69 x 1.25 m = 2.11 m2
Superficie subparcela neta, 0.46 x 1.25 m = 0.58 m2
Número total de plantas del ensayo 1564
Número de plantas por subparcela, 18.
Número de plantas por subparcela neta, 4
16
F.
MÉTODOS Y VARIABLES EN ESTUDIO.
1.
Porcentaje de reducción de la población.
Se evaluará sobre la base de la siguiente fórmula (14):
p=
p=
pf=
pi=
(1-pf/pi) x 100
porcentaje de reducción de la población.
Población final.
Población inicial.
Los datos de está variable se obtendrán analizando muestras de suelo del ensayo.
La población inicial se determinó después de 28 días de haberlo infestado. Para procesar las muestras de suelo, se
utilizó el método de Cobb (44), anexo 1, realizando las lecturas correspondientes en 10 ml de solución agua nemátodos.
2.
Parámetros de calidad.
Se establecerán como parámetros de calidad: largo del tallo, diámetro del botón, ancho del botón, los cuales son
considerados para la clasificación de un tallo de exportación y estos serán expresados en centímetros, con la
ayuda de un calibrador y flexómetro.
Se cosecharon los tallos de acuerdo al punto de corte establecido para la variedad Tropical amazone. Para obtener
una alta uniformidad en la cosecha, se efectúo un “pinch” o poda de producción, cortando a partir de la segunda
yema en tallos delgados y a partir de la tercera o cuarta yema en tallos gruesos; en los básales, el "pinch" se
realizó a 30-40 cm de altura.
a.
Largo del tallo.
Los tallos se midieron desde el tallo del piso anterior (que corresponde al inicio de la nueva brotación) hasta el
inicio del botón. Se clasificaron los tallos en delgados y torcidos, tanto para mercado nacional como para el de
exportación.
b.
Diámetro del botón.
Para obtener los datos de esta variable se midió el largo del botón, utilizando un calibrador para obtener mayor
exactitud. Se midió solo las rosas que estaban de acuerdo al punto de corte establecido para la variedad por la
finca, el mismo que debe tener una apertura de 2 a 3 mm.
c.
Ancho del botón.
Se utilizó un calibrador y se midió el ancho del botón, midiendo únicamente las rosas que estaban de acuerdo al
punto de corte establecido para la variedad por la finca, el mismo que debe tener una apertura de 2 a 3 mm.
3.
Número de larvas en 100 gramos de suelo.
Los datos de está variable se obtuvieron a los 30, 60, y 90 días después de haber realizado la infestación. La
evaluación se realizó en el Laboratorio Agrobiolab, utilizando el método de Cobb (44), que se detalla en el
Anexo (1).
4.
Índice de agallamiento.
Al final del experimento se extrajeron las plantas y en cada planta se observó las nudosidades o agallas
producidas por el nemátodo, se calificó según la escala establecida por TAYLOR (43), que se detalla en el Anexo
(9).
17
5.
Análisis económico.
Se realizó un análisis de costos de aplicación por hectárea de cada tratamiento, usando el método de la Tasa
Beneficio Costo, (35).
G.
DISEÑO EXPERIMENTAL.
a.
Tipo de diseño.
Diseño de parcela dividida con un arreglo factorial en la subparcela de (3 x 3 +1).
b.
Número de repeticiones.
Se utilizaron tres repeticiones.
c.
Número de interacciones.
Se emplearon treinta interacciones.
d.
Unidad experimental.
La unidad experimental neta estuvo conformada por dos plantas de rosa de la variedad Tropical amazone la cual
tuvo las siguientes dimensiones.
•
Cuadro 4
Superficie subparcela neta, 0.46 x 1.25 m = 0.58 m2
Esquema del análisis de la varianza para evaluar productos orgánicos en la reducción
de la población de Meloidogyne sp. en Rosas (Rosae sp.) Machachi - Pichincha. 2002.
Fuentes de variación
Total
Repeticiones
Días de aplicación
Lineal
Cuadrática
Error (a)
Plaguicidas
Productos
p1 vs p2p3
p2 vs p3
Dosis
Lineal
Cuadrática
PxD
Factorial vs Adicional
A x Pl
Error (b)
e.
(A)
(Pl)
(P)
(D)
Grados de libertad
89
2
2
1
1
4
9
2
1
1
2
1
1
4
1
18
54
Análisis Funcional.
Se determinó mediante la prueba de Tukey al 5% para los factores en estudio y sus interacciones y para
comparaciones ortogonales se utilizó la prueba DMS al 5%.
H.
MÉTODOS DE MANEJO DEL EXPERIMENTO.
18
1.
Plantación.
Se utilizaron 324 plantas de dos años de edad en producción, de la variedad Tropical amazone sobre el patrón
Natal Brier.
2.
Aplicación de productos orgánicos.
a.
Neem - X
Estos productos se aplicaron cuando el nemátodo se encontró establecido, a la base de la planta y en forma de
"drench", con riego profundo, realizando cuatro aplicaciones, la primera al obtener la población inicial y las otras
tres aplicaciones a los 30, 60 y 90 días. Se aplicó a razón de 1 litro por planta a las siguientes dosis:
-
Dosis mínima = 2.00 ml/ litro.
Dosis comercial =
3.00 ml/litro.
Dosis máxima = 4.00 ml/litro.
b.
Intercept.
Estos productos se aplicaron cuando el nemátodo se encontró establecido, a la base de la planta y en forma de
"drench", con riego profundo, realizando cuatro aplicaciones, la primera al obtener la población inicial y las otras
tres aplicaciones a los 30, 60 y 90 días. Se aplicó a razón de 1 litro por planta a las siguientes dosis:
-
Dosis mínima = 0.50 ml/ litro.
Dosis comercial =
0.75 ml/litro.
Dosis máxima = 1.20 ml/litro.
c.
Nemastroy.
Estos productos se aplicaron cuando el nemátodo se encontró establecido, a la base de la planta y en forma de
"drench", con riego profundo, realizando cuatro aplicaciones, la primera al obtener la población inicial y las otras
tres aplicaciones a los 30, 60 y 90 días. Se aplicó a razón de 1 litro por planta a las siguientes dosis:
-
Dosis mínima = 1.50 ml/ litro.
Dosis comercial =
2.00 ml/litro.
Dosis máxima = 2.50 ml/litro.
3.
Aplicación de productos químicos.
El Mocap gel se aplicó cuando el nemátodo se encontró establecido en la planta, es decir cuando existió una
población de 100 larvas por 100 gramos de suelo, y se aplicó en forma de "drench", con riego profundo,
realizando cuatro aplicaciones, la primera al obtener la población inicial y las otras tres aplicaciones cada 45 días.
Se aplicó a razón de 1 litro por planta a la siguiente dosis:
-
Dosis utilizada por la finca =
4.
Infestación del sustrato.
0.80 ml/ litro.
Se efectúo colocándose 150 gramos de raíces atacadas por Meloidogyne sp. , a la base de la planta. El suelo se
humedeció previamente para una mejor distribución de los nemátodos. Se mantuvo la humedad a capacidad de
campo para garantizar la infestación.
5.
Número de plantas escogidas para análisis de los resultados.
Del número de plantas de la parcela neta solo se extrajeron dos plantas para la recolección de los datos.
19
6.
Fuentes de inóculo.
El inóculo se obtuvo de plantas de rosa atacadas por Meloidogyne sp. , debidamente identificadas, en las cuales
no se realizó ningún control por un período de cinco meses.
7.
Toma de muestras de suelo y frecuencia de muestreo.
Para realizar el contaje de larvas se obtuvo muestras de cada interacción, para lo cual se efectuaron cuatro
punciones al azar con un barreno, a una profundidad de 20 a 25 cm y a un ángulo de 45 grados; se utilizó el
método de Coob (44), (Anexo 1). Las muestras de suelo se realizaron en cada una de las unidades
experimentales, la primera después de 28 días de realizada la infestación y las siguientes a los 30, 60 y 90 días.
Se homogenizó perfectamente las submuestras (muestras de cada punción) para obtener una muestra de 500
gramos de suelo.
8.
Fertilización y riego.
Estas labores se efectuaron mediante el procedimiento normal de la finca, atendiendo los requerimientos del
cultivo para todas las áreas y que fueron las siguientes dosis:
Cuadro 5
1189.00
170.00
202.05
LITROS DE SOLUCIÓN MADRE POR DIA
RELACIÓN DE INYECCIÓN
LITROS DE RIEGO POR DIA
ELEMENTO
N
K/N
P/K
Ca
Mg
Fe
Mo
Mn
Cu
Zn
B
9.
Niveles de fertilización usada en la finca Panorama Roses en el cultivo de rosas (Rosae
sp.). Machachi - Pichincha 2002.
Fuente/Concentración/Origen
FUENTE
% I.A.
P.∗∗ S.
p.p.m.
g/l
RIEG
O
130.00 33.5
0.1995
100.00 41.0 13 0.2195
kg/Prod.
DÍA
Nitrato de Amonio 33.5% HydroAgri
NH4NO3
40.00
Nitrato de Potasio 46% K2O + 13%N
KNO3
44.00
Kemira
Fosfato Monopotasico 52%P2o5 + KH2PO4
15.00 51.0 34 0.0294
6.00
35%P205
Nitrato de Calcio HYDRO granulado
CaNO3
60.00 26.0 15 0.2308 47.00
Sulfato de Magnesio Técnico KS
MgSO4
20.00 16.0
0.1250
25.3
16% MgO
Quelato DTPA Dissolvene
Fe(Quelato)
0.50 11.0
0.0045
0.92
Molibdato de Amonio 51% Mo
MoNH4
0.13 51.0
0.0002
0.05
Sulfato de Manganeso Chino 27%
MnSO4
5.00 27.0
0.0185
3.74
MnO
Sulfato de Cobre 25% Cu
CuSO4
0.10 25.0
0.0004
0.08
Sulfato de Zinc 23% Zn
ZnSO4
0.50 23.0
0.0022
0.44
Acido Bórico 19%
H4BO3
0.50 19.0
0.0026
0.53
TOTAL kg / día
168.26
TOTAL kg / ha / mes
1364.00
SOLUCION MADRE
2000.00
Litros de agua / kg soluto
11.90
UNIDA
D
0.18
0.54
kg
1.15
kg
kg
0.42
0.32
kg
kg
kg
8.00
35.00
0.80
kg
kg
kg
1.50
0.60
0.81
Se utilizó una bomba estacionaria y las aplicaciones se realizaban basándose en los monitoreos semanales, de
acuerdo a las plagas y enfermedades presentes no solo en el ensayo sino en todo el bloque Español II.
∗
P. Corresponde al ingrediente activo principal del producto.
S. Corresponde al ingrediente activo secundario del producto.
UNIDAD
kg
kg
Controles fitosanitarios.
Basándose en los monitoreos las aplicaciones fueron las siguientes:
USD
20
Cuadro 6
PRODUCTO
COMERCIAL
Tilt 250 EC
Nimrod
Meltatox
Captan 80% Merpan
Bayleton
Mertect
Phyton 27
Rovral
Nissorum
Floramite
Miteclean
Milbeknock
Basudin
Tracer 120 SC
Regent
Evisect S
Productos químicos usados en el control de plagas en la florícola Panorama Roses en
el cultivo de rosas (Rosae sp.), Machachi - Pichincha 2002.
1.
POLVOSO: Mildiu polvoso
INGREDIENTE
MODO DE
GRUPO
ACTIVO
ACCIÓN
Propiconazol
Inhibe la síntesis de Triazole
ergosterol
Bupimirato
Inhibe la síntesis de Aminopirimidina
ergosterol
Dodemorph
Inhibe la síntesis de Morfolinas
ergosterol
Captan
Multisitio
Ptalamidas
2.
BOTRYTIS: Botrytis cinerea
Triadimefon
Inhibe
biosíntesis Triazole
ergosterol
Tiobendazole
Inhibe la biosíntesis a Benzimidazole
nivel del núcleo,
bloquea mitosis
Sulfato de Cobre
Multi sitio
Cúprico
Iprodione
Multi sitio
Dicarboxamida
3.
ACAROS: Tetranychus urticae
Hexythrazox
Inhibidor
del Carboxamidas
crecimiento
Bifenazate
Actúa
sobre
el Carbazate
sistema
nervioso
central
Pyremidifen
Regulación de Ca
Pyrimidinas
Milbemectin
Presinapsis
Fermentación
streptomyces
4.
TRIPS: Frankiniela occidentales
Diazinon
Sinapsis
Organofosforados
Spinosad
Sistema nervioso
Naturalyte
Fipronil
Presinapsis
Fenilpirazoles
Thiocyclam
Postsinapsis
Nereistoxinas
IV.
A.
CT*
DOSIS
IV
0.50cc
IV
1.00cc
IV
2.00cc
IV
1.00g
III
0.80cc
III
1.00cc
II
III
0.80cc
1.00g
IV
0.50cc
IV
1.00cc
II
III
0.30cc
0.80cc
II
III
II
III
0.80cc
0.15cc
0.06cc
1.00cc
RESULTADOS Y DISCUSIÓN.
INFESTACIÓN INICIAL DE NEMÁTODOS.
A los 28 días de efectuada la infestación con Meloidogyne sp., la población tuvo, lo que con frecuencia pasa en
muchas especies de nemátodos fitoparásitos, una distribución espacial que se describe adecuadamente por el
modelo probabilístico de la binomial negativa (FERRIS 1984), (38,55), además las poblaciones ocurren en
agregados y como característica de este tipo de distribución, la varianza estimada es mayor que el promedio. Los
datos de las poblaciones se agruparon en frecuencias para obtener la curva de distribución normal, cabe destacar
que en todo el ensayo se incorporó 180 larvas por cada interacción del ensayo.
*
CT Categoría toxicologíca del producto químico.
21
En el cuadro 7 se aprecia que todas las poblaciones de nemátodos que se inocularon fueron agrupadas, para así
obtener una distribución normal en todo el ensayo. En el gráfico 1 se observa que la mayoría de las interacciones
tuvieron una población de hasta 400 larvas por 100 gramos de suelo, considerando que éstas entran en la
distribución normal, no así el resto de interacciones, las cuales tuvieron una población mucho más alta.
Cuadro 7
Distribución de larvas de nemátodos en todas las interacciones de la evaluación, de la
eficiencia de productos orgánicos para la reducción de la población de nemátodos en
rosas. Machachi - Pichincha. 2002.
Población
(larvas/100 ml)
150 - 200
201 - 250
251 - 300
301 - 350
351 - 400
401 - 450
451 - 500
501 - 550
551 - 600
601 - 650
TOTAL
frecuencias
(#)
12
13
23
15
14
1
4
2
5
1
90
No Frecuencias
25
20
15
10
5
0
150 200
201 250
251 300
301 350
351 400
401 450
451 500
501 550
551 600
601 650
Población de nemátodos
Gráfico 1
Distribución de los nemátodos en la evaluación de la eficiencia de productos orgánicos en la
reducción de Meloidogyne sp en rosas. Machachi - Pichincha. 2002.
En el gráfico 2 se observa que la infestación inicial fue suficiente para obtener un suelo altamente infestado de
larvas de Meloidogyne sp. , como para iniciar el experimento, tomando en cuenta que la empresa Florícola
22
Panorama Roses S. A., considera que sobre las 100 larvas de nemátodos por cada 100 gramos de suelo,
constituye un nivel crítico de infestación para el caso de un cultivo de rosas. En cada interacción se aprecia que la
población de los nemátodos está por sobre el nivel crítico de la finca, por tal razón se pudo empezar con
normalidad el control, para la reducción de la población de nemátodos en rosas, con la aplicación de los
productos orgánicos.
Probablemente por la forma en que se inoculó el ensayo para efectuar el control con productos orgánicos, se
requiere mayor tiempo para el establecimiento uniforme de larvas en el suelo, puesto que la mayoría de ellas
infectaron rápidamente las raíces de las rosas para obtener así su alimento, ya que la planta es un huésped
adecuado para su ciclo de vida (10).
No larvas por 100 g de suelo
600.00
500.00
400.00
300.00
200.00
100.00
p3d3
p3d1
p2d2
p1d3
p1d1
f3
p3d3
p3d1
p2d2
p1d3
p1d1
f2
p3d3
p3d1
p2d2
p1d3
p1d1
f1
0.00
INTERACCIONES
Gráfico 2
Número de larvas por 100 gramos de suelo en las interacciones de la evaluación de la
eficiencia de productos orgánicos para la reducción de la población de nemátodos en
rosas Machachi - Pichincha. 2002.
La variación que se observa en la población inicial, gráfico 2, de número de larvas en las diferentes interacciones,
se puede deber a que las larvas de Meloidogyne sp. , no permanecen en el suelo, sino que inmediatamente entran
en contacto con la raíz, ya que es allí donde obtienen su alimento y pueden realizar su ciclo biológico. Puesto que
el nemátodo al permanecer de un modo sedentario en la raíz, no se lo encuentra presente con frecuencia en el
suelo, por esta razón se observan las diferentes distribuciones de larvas para cada interacción del ensayo tal cual
lo manifiesta ESPINOZA (16), teniendo suficiente número de larvas para realizar la evaluación con
productos orgánicos.
los
23
B.
Número de larvas de Meloidogyne sp. , en 100 gramos de suelo.
1.
Número de larvas de Meloidogyne sp. , a los 30 días.
En el gráfico 3 se aprecia que el mejor resultado lo obtuvo el producto Neem-X a la dosis comercial (p2d2) con
13.33 larvas / 100 g de suelo teniendo un mejor control por sobre el testigo el cual alcanzó una población de
106.67 larvas / 100 g de suelo, no obstante que el menor control lo realizó el producto Nemastroy a la dosis
comercial (p3d2) teniendo 300 larvas / 100 g de suelo. Esto es ocasionado por la acción translaminar del Neem-X
ya que ataca al estado de muda del nemátodo (20), además se lo asocia a la simbiosis que presentan los productos
orgánicos en la fauna benéfica del suelo para el fortalecimiento del sistema radicular (11) y por la acción
probable de la fertirrigación en la disminución de la población, especialmente las en base de nitrógeno y fósforo,
p3d3
TESTIG
O
p3d1
p3d2
p2d2
p2d3
p1d3
p2d1
350.00
300.00
250.00
200.00
150.00
100.00
50.00
0.00
p1d1
p1d2
No Larvas / 100 g de
suelo
puesto que estas inhiben ligeramente el incremento de las poblaciones de Meloidogyne spp. (47).
Interacciones
Gráfico 3
2.
Población de nemátodos en la frecuencia de 30 días en la evaluación de la eficiencia de
productos orgánicos para la reducción de la población de nemátodos en rosas.
Machachi - Pichincha. 2002.
Número de larvas de Meloidogyne sp., a los 60 días.
En el gráfico 4 se observa que la mejor respuesta se alcanza con Mocap gel, el cual corresponde al testigo de la
investigación con 73.33 larvas/100 g de suelo; lo cual se debe a la acción nematicida que presentan este producto
químico, ya que penetran directamente la cutícula del nemátodo (13). En cambio el menor control lo realizó
Intercept a la dosis máxima (p1d3) teniendo 271 larvas/100 g de suelo, esto puede deberse a que sus rizobacterias
no mantienen la simbiosis normal y adecuada con las raíces de las rosas por el mayor intervalo existente en la
aplicación del producto(2); también puede haber influido el ciclo de reproducción de Meloidogyne sp, ya que se
incrementó la población existente en el suelo; puesto que CRHISTIE (10), afirma que las hembras de
24
Meloidogyne sp., comienzan a depositar huevos después de 20 a 30 días de haber penetrado a la raíz. El resto de
tratamientos orgánicos tienen un control parecido a la primera frecuencia (30 días), ya que mantienen la
TESTIGO
p3d3
p3d2
p3d1
p2d3
p2d2
p2d1
p1d3
p1d2
300.00
240.00
180.00
120.00
60.00
0.00
p1d1
No larvas / 100
g de suelo
residualidad en el suelo y la población de los nemátodos no tienen libertad de propagarse rápidamente (15).
Interacciones
Gráfico 4
3.
Población de nemátodos en la frecuencia de 60 días en la evaluación de la eficiencia de
productos orgánicos para la reducción de la población de nemátodos en rosas.
Machachi - Pichincha. 2002.
Número de larvas de Meloidogyne sp., a los 90 días.
En el gráfico 5 se aprecia que las mejores respuestas se obtuvieron en el testigo Mocap gel, el Intercept a la dosis
comercial (p1d2), el Nemastroy a las dosis mínima (p3d1) y comercial (p3d2) con 13.33 larvas/100 gramos de
suelo cada una; lo que se puede atribuirse a dos factores para el producto químico; el primero por la acción
nematicida y el segundo por la residualidad que presenta el producto, ya que penetra directamente por la cutícula
del nemátodo actuando sobre la acetilcolinesterasa, debido a su contacto sobre las larvas en el suelo y por su
acción sistémica disminuyendo la población de nemátodos presentes en las raicillas, especialmente sobre hembras
que se encuentran en el interior de las raíces (13); mientras que el resultado de los productos orgánicos se
atribuye a la continua proliferación de la fauna benéfica del suelo así como el vigor y resistencia al sistema
radicular (42); no obstante el menor control lo realizo el producto Nemastroy
a la dosis máxima (p3d3)
obteniendo 66.67 larvas/100 g de suelo, esto puede atribuirse a que en el suelo existió una mayor concentración
del producto por lo cuál este no tuvo la misma eficiencia como en dosis menores (42); con los valores expuestos
en está frecuencia se puede decir que todos los tratamientos presentan una eficiencia aceptable en la reducción de
la población de Meloidogyne sp. en rosas, ya que todos presentan valores de larvas menores al nivel crítico de
infestación que estima la plantación Panorama Roses S.A.
80.00
60.00
40.00
TESTIGO
p3d3
p3d2
p3d1
p2d3
p2d2
p2d1
p1d3
0.00
p1d2
20.00
p1d1
No larvas /100 g de
suelo
25
Interacciones
Gráfico 5
4.
Población de nemátodos en la frecuencia de 90 días en la evaluación de la eficiencia de
productos orgánicos para la reducción de la población de nemátodos en rosas.
Machachi - Pichincha. 2002.
Población final de nemátodos.
En el análisis de la varianza, cuadro 8, se encuentran diferencias altamente significativas para frecuencias,
significancia estadística para los efectos lineales y cuadráticos de las frecuencias y no significativa para
plaguicidas, productos, dosis y factorial vs. adicional. El promedio general transformado log nat. (x+1) fue de
1.54 larvas/100 gramos de suelo y el promedio general real del experimento fue de 105.31 larvas/100 g de suelo,
el coeficiente de variación (a) fue de 39.97% y el coeficiente de variación (b) fue de 49.69%, siendo altos pero
aceptables para el tipo de investigación realizada, puesto que al tratarse de organismos que se encuentran en
constante reproducción es muy complicado tener una base estable del número de larvas por 100 g de suelo para
realizar el ensayo, además los nemátodos no presentan una distribución normal y no permanecen en el suelo, sino
que inmediatamente entran en contacto con la raíz ya que es allí donde obtienen su alimento, tal cual lo
manifiesta ESPINOZA (16).
Cuadro 8
Análisis de la varianza para la población final de nemátodos, en la evaluación de la
eficiencia de productos orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp.,
en rosas Machachi - Pichincha. 2002.
FUENTES DE VARIACIÓN
TOTAL
REPETICIONES
FRECUENCIAS (F)
LINEAL
CUADRÁTICO
ERROR (a)
PLAGUICIDAS (Pl)
PRODUCTOS
p1 vs p2p3
p2 vs p3
DOSIS
GL
89
2
2
CUADRADOS MEDIOS
1
1
4
9
2
1
1
2
0.68
7.44
5.23
9.64
0.38
0.16
0.11
0.17
0.05
0.02
ns.
**
*
*
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
26
LINEAL
CUADRÁTICA
INTERACCIÓN P x D
4
FACTORIAL VS ADICIONAL 1
INTERACCIÓN F x P
18
ERROR (b)
54
1 0.00
1 0.04
0.25
0.16
0.82
0.59
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
PROMEDIO log nat (x+1) 1.54 larvas/100 gramos de suelo
PROMEDIO real
105.31 larvas/100 gramos de suelo
CV(A) %
39.97
CV(B) %
49.69
En la prueba de Tukey y DMS, cuadro 9, se aprecian los datos reales y transformados en donde existen dos
rangos en los que las frecuencias f1 (30 días) con 1.56larvas / 100 g de suelo y f2 (60 días) con 2.08 larvas / 100
g de suelo se encuentran en el primer rango y la frecuencia f3 (90 días) con 1.03 larvas / 100 g de suelo, ocupa el
segundo rango con una mejor respuesta.
Al no existir diferencias significativas para el resto de tratamientos de la subparcela, se puede apreciar las
diferencias en los promedios así: para productos el de mejor respuesta es el Neem-X con un promedio de 4.49
larvas / 100 gramos de suelo y el producto de menor eficiencia es el Nemastroy con 4.67 larvas / 100 gramos de
suelo, con datos reales de 240.00 y 376.00 larvas / 100 gramos de suelo respectivamente, puesto que los
productos usados son a partir de extractos naturales de plantas y bacterias que activan los microorganismos
presentes en el suelo (2). Se encontró diferencias no significativas entre las comparaciones de: Intercept vs.
Neem-X y Nemastroy; Neem-X vs. Nemastroy, posiblemente por ser de origen orgánico y por que estos tienen la
característica de repoblar el suelo con la ayuda de la fauna benéfica del suelo además
aumenta su vigor y
resistencia al daño creado por los nemátodos en su sistema radicular (42).
Aunque se encontró diferencias no significativas para dosis, la mínima y máxima presentan una similitud en el
número de larvas siendo esta de 1.58 y de 1.57 larvas / 100 gramos de suelo respectivamente, dando un control
bastante efectivo en las poblaciones de Meloidogyne sp., en tanto que la dosis comercial obtuvo un valor de 1.53
larvas / 100 gramos de suelo, siendo sus valores reales de 92.59, 96.22 y 140.74 larvas / 100 gramos de suelo
respectivamente, ya que se mantiene la residualidad en el suelo al finalizar las frecuencias de aplicación (15).
Si, bien no existió diferencias significativas para productos por dosis, la mejor respuesta se alcanzo con el NeemX a la dosis comercial con 1.27 larvas / 100 gramos de suelo (80.00 larvas/ 100 g de suelo como dato real) y la
menor respuesta presenta el Nemastroy a la dosis comercial con 1.71 larvas / 100 gramos de suelo (175.56 larvas/
100 g de suelo como dato real). Las demás interacciones se mantienen en un rango aceptable para la reducción de
nemátodos, esto se debe a que al no tener estos productos una acción de control sistémica (2), la población de los
nemátodos va incrementándose poco al existir una continua repoblación de la fauna benéfica del suelo ocupando
los espacios que podrían ser utilizados por los nemátodos para su repoblación inmediata y ataque a las raíces de
las rosas (42). Al comparar el factorial vs. el adicional, se obtuvo diferencias no significativas teniendo el mejor
resultado el adicional (Mocap gel) con 1.42 larvas / 100 gramos de suelo (64.44 larvas/ 100 g de suelo como dato
real), al ser un producto de contacto que actúa sobre la cutícula de los nemátodos y realiza un control de las
hembras que están en el interior de las raíces tal cual lo manifiesta EGUIGUREN (13).
27
Cuadro 9
Promedios y Tukey al 5%, para población final en la evaluación de la eficiencia de
productos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosas. Machachi –
Pichincha. 2002.
Población Final
(larvas/100g suelo)
Factor
Significado
Datos
Datos
transforma
Reales
dos
Frecuencias
f1= 30 días
1.56
a 127.41
f2= 60 días
2.08
a 164.37
f3= 90 días
1.03
ab 37.78
Productos
p1= Intercept
4.87
372.67
p2= Neem x
4.49
240.00
p3= Nemastroy
4.67
376.00
Comparaciones
CO1
p1
4.87
372.67
ortogonales
p2, p3
4.58
308.00
CO2
p2
4.49
240.00
p3
4.67
376.00
Dosis
d1= Mínima
1.58
92.59
d2= Comercial
1.53
140.74
d3= Máxima
1.57
96.22
P x D
p1d1
1.62
64.44
p1d2
1.60
466.67
p1d3
1.65
141.56
p2d1
1.61
88.89
p2d2
1.27
80.00
p2d3
1.61
71.11
p3d1
1.53
124.44
p3d2
1.71
175.56
p3d3
1.43
76.00
F x ( P x D)
f1p1d1
1.57
40.00
f1p1d2
1.99
273.33
f1p1d3
1.99
133.33
f1p2d1
1.27
106.67
f1p2d2
0.54
13.33
f1p2d3
1.21
73.33
f1p3d1
1.93
126.67
f1p3d2
2.36
300.00
f1p3d3
1.22
80.00
testigo
2.01
106.67
f2p1d1
1.97
93.33
f2p1d2
2.27
213.33
f2p1d3
2.38
271.33
f2p2d1
1.94
120.00
f2p2d2
2.12
173.33
f2p2d3
1.87
80.00
f2p3d1
2.12
233.33
f2p3d2
2.23
213.33
f2p3d3
1.81
81.33
testigo
1.36
73.33
f3p1d1
1.30
60.00
f3p1d2
0.54
13.33
f3p1d3
0.60
20.00
f3p2d1
1.61
40.00
f3p2d2
1.16
53.33
f3p2d3
1.74
60.00
f3p3d1
0.54
13.33
f3p3d2
0.54
13.33
f3p3d3
1.27
66.67
testigo
0.88
13.33
Fac. vs Adic.
Factorial
1.56
109.85
Adicional
1.42
64.44
28
Mientras que para la interacción Frecuencias por Productos, el valor obtenido es de 1.56 larvas/ 100 gramos de
suelo (109.85 larvas/ 100 g de suelo como dato real), ya que al tratarse de productos de origen orgánico estos
presentaron una respuesta aceptable en la reducción de la población final de Meloidogyne sp. en rosas.
C.
Porcentaje de reducción de la población de larvas de Meloidogyne sp.
1.
Porcentaje de reducción de la población a los 30 días.
El porcentaje de reducción de la población, sé lo cálculo comparando la población inicial obtenida a los 28 días
con la población final obtenida 30 días después y aplicando la formula de porcentaje de reducción de la población
para nemátodos propuesta por EINSENBACK (14).
En el gráfico 6 se puede apreciar que la mejor respuesta se alcanza con el producto Neem-X a la dosis comercial
(p2d2) con un 94.07%, en está frecuencia de aplicación el control con Neem-X es superior al obtenido por el
testigo Mocap gel que obtuvo un 64.40%, esto se puede atribuir a que el Neem-X ataca al nemátodo en su estado
de muda, con lo que las larvas fueron controladas eficazmente antes que ingresen a las raíces (20). En cambio que
el producto orgánico de menor respuesta fue Nemastroy a la dosis comercial (p3d2) con 45.17% debido
posiblemente a que la población de nemátodos se incremento más en una de sus interacciones y no existió el
control adecuado del producto, esto puede atribuirse a que en esa interacción existió mayor número de hembras
en capacidad de reproducción con lo que aumento considerablemente la población y consecuentemente el menor
control, tal cuál lo manifiesta CHRISTIE (10).
En el anexo (8), se presentan los resultados del porcentaje de reducción de la población de Meloidogyne sp. en
rosas, en el cual se han asignado valores de cero a aquellos tratamientos donde no ha existido control, si no que la
población de nemátodos ha ido aumentado.
29
100.00
80.00
60.00
Porcentaje
40.00
20.00
TESTIGO
p3d3
p3d2
p3d1
p2d3
p2d2
p2d1
p1d3
p1d2
p1d1
0.00
Interacciones
Gráfico 6
2.
Reducción de la población de nemátodos a los 30 días en la evaluación de la eficiencia
de productos orgánicos para la reducción de la población de nemátodos en rosas.
Machachi - Pichincha. 2002.
Porcentaje de reducción de la población a los 60 días.
Los porcentajes de reducción de población a los 60 días se obtienen comparando la población inicial a los 28 días
de la inoculación con la población final a los 60 días y aplicando la formula de porcentaje de reducción de la
población para nemátodos propuesta por EINSENBACK (14).
En el anexo (8), se observan los resultados del porcentaje de reducción, en el cual se han asignado valores de cero
a aquellos tratamientos donde no ha existido control, si no que la población de nemátodos ha aumentado. En el
gráfico 7, la mejor respuesta la tiene el producto Neem-X a la dosis máxima (p2d3) con un 85.99% superior al
testigo Mocap gel que obtuvo un porcentaje de 82.66% siendo este superior al control de la frecuencia 1 (30
días), posiblemente está respuesta se debe a la acción sistémica del producto químico.
En está frecuencia se encuentran valores de cero, posiblemente se debe a varios factores como: que la
repoblación de la fauna benéfica del suelo no es tan eficiente como a los 30 días; a que la residualidad de los
productos orgánicos se disminuye a los 60 días debido a la humedad del suelo, pH y temperatura lo que permite
aumentar la población de los nemátodos en algunas interacciones y por que las hembras de Meloidogyne sp.
empiezan a ovipositar después de 30
días de haber penetrado a la raíz tal cual lo manifiesta CHRISTIE (10), siendo este el principal motivo para que la
eficiencia en el porcentaje de reducción de la población de nemátodos no haya sido favorable para los productos
orgánicos.
30
100.00
80.00
60.00
Porcentaje
40.00
G
3.
p3d3
p3d2
p3d1
p2d3
p2d2
p2d1
p1d3
p1d2
p1d1
0.00
TESTIGO
20.00
Interacciones
r
á
Grafico 7
Reducción de la población de nemátodos a los 60 días en la
evaluación de la eficiencia de productos orgánicos para la reducción de la población de
nemátodos en rosas. Machachi - Pichincha. 2002.
Porcentaje de reducción de la población a los 90 días.
Los porcentajes de reducción de población a los 90 días se obtienen comparando la población inicial a los 28 días
de la inoculación con la población final a los 90 días y aplicando la formula de porcentaje de reducción de la
población para nemátodos propuesta por EINSENBACK (14).
En el gráfico 8, para 90 días la mejor respuesta es para el testigo Mocap gel que tiene un porcentaje de 96.23%,
posiblemente es por la acción sistémica del producto, por que logro controlar eficientemente las poblaciones de
nemátodos tanto en el suelo como en las raíces, controlando hembras y evitando la oviposición de las mismas con
lo que aumento su eficiencia disminuyendo la población de los nemátodos en el suelo (13).
Entre los productos orgánicos el de mejor respuesta es Nemastroy a su dosis comercial (p3d2) con un porcentaje
de 95.83% y el producto orgánico de menor control fue el producto Neem-X a la dosis máxima (p2d3) con un
porcentaje de 62.36%, manteniéndose en un nivel parecido al de la frecuencia 1 de 30 días, ya que no pudo
controlar eficientemente la oviposición y se produjo una baja en su residualidad, consecuentemente en su control
a la muda del nemátodo, tal cual lo manifiesta GONZÁLEZ (20).
31
100.00
80.00
60.00
Porcentaje
40.00
20.00
TESTIGO
p3d3
p3d2
p3d1
p2d3
p2d2
p2d1
p1d3
p1d2
p1d1
0.00
Interacciones
G
G
r
Gráfico 8
Reducción de la población de nemátodos a los 90 días en la evaluación de la eficiencia
de productos orgánicos para la reducción de la población de nemátodos en rosas. Machachi - Pichincha.
2002. .
D.
Parámetros de calidad.
1.
Largo del tallo.
En el análisis de la varianza, cuadro 10, se encuentran diferencias no significativas para frecuencias, plaguicidas,
productos, dosis y para el factorial. El coeficiente de variación (a) fue de 7.22% y el coeficiente de variación (b)
fue de 7.91%, siendo aceptables para el tipo de investigación realizada y avalizan los datos obtenidos en la
investigación, además el promedio general del experimento fue de 55.72 cm.
Cuadro 10
Análisis de la varianza para largo de tallo, en la evaluación de la eficiencia de
productos orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp., en rosas.
Machachi - Pichincha. 2002.
FUENTES DE VARIACIÓN
TOTAL
REPETICIONES
FRECUENCIAS (F)
LINEAL
CUADRÁTICO
ERROR (a)
PLAGUICIDAS (Pl)
PRODUCTOS
p1 vs p2p3
p2 vs p3
GL
89
2
2
CUADRADOS MEDIOS
1
1
4
9
2
1
1
30.06
12.23
22.66
1.80
16.20
28.06
11.27
22.18
0.36
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
32
DOSIS
2
LINEAL
CUADRÁTICA
INTERACCIÓN P x D
FACTORIAL VS ADICIONAL
INTERACCIÓN F x P
ERROR (b)
PROMEDIO
CV(A)%
CV(B)%
4
1
18
54
15.11
1 2.16
1 28.06
49.79
0.57
21.78
19.40
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
55.72 cm
7.22
7.91
En el cuadro 11, para frecuencias se observa que la mejor respuesta la alcanzó la frecuencia f1 (30 días) con un
largo de tallo de 56.38 cm. y la menor respuesta fue para la frecuencia f3 (90 días) con un largo del tallo de 54.92
cm. Si bien existieron diferencias no significativas en productos, se puede apreciar que el producto de mejor
respuesta en largo del tallo es Intercept con 56.43 cm., esto puede deberse a que este producto activa la
microfauna del suelo y estimula el desarrollo radicular de la planta lo que ayuda a aprovechar todos los nutrientes
del suelo y así disimular el ataque de nemátodos presente en su sistema radicular, lo que concuerda con lo
manifestado por SÁNCHEZ (39), este valor es superior al del testigo Mocap gel que obtuvo un largo de tallo de
55.96 cm resultando comprensible, ya que la acción del producto químico se basa principalmente en atacar al
nemátodo ingresando por su cutícula y más no en favorecer una proliferación de raicillas o de activar los
microorganismos benéficos del suelo (13).
Para dosis cuadro 11, la mejor respuesta se alcanzó con la dosis máxima con 56.31 cm y el menor resultado lo
obtuvo la dosis comercial con 54.86 cm. Para el factorial productos por dosis, la mejor respuesta fue para el
producto Intercept a su dosis máxima (p1d3) con una respuesta de 59.79 cm y el producto de menor respuesta es
Neem-X a su dosis máxima (p2d3) con una respuesta de 53.49 cm. Los resultados encontrados no tienen mayor
diferencia entre cada tratamiento posiblemente a varios factores; entre ellos se puede deber a los productos
usados como: Intercept (Pseudomona cepacia), Neem-X (Extracto del árbol de neem), Nemastroy (Extracto de
ají más mostaza) y Mocap gel; por la fertilización efectuada en todo el ensayo y por el tipo de patrón, Natal
Brier sobre el cual estaba injertado la variedad de rosa (Tropical amazone) utilizada en el experimento, además
los nemátodos que atacan a los rosales lo hacen exclusivamente a la raíz, formando nódulos, células gigantes y
escobillas, no habiéndose encontrado hasta el momento ningún nemátodo en hojas y tallos (24).
En el gráfico 9 se puede apreciar la distribución de los largos de tallos en todas las interacciones teniendo como la
mejor respuesta al producto Intercept (Pseudomona cepacia) en la frecuencia 1 (30días) a la dosis máxima
(f1p1d3) con un largo de tallo de 63.58 cm. , mucho más que los testigos (Mocap gel) para cada frecuencia, el
producto de menor respuesta es Nemastroy (Extracto de ají más mostaza) en la frecuencia 3 (90 días) a la dosis
mínima (f3p3d1) con un largo de tallo de 49.93 cm. , además se puede distinguir que los mejores resultados
fueron obtenidos en la frecuencia 1 de 30 días, lo que resulta comprensible ya que al ser productos de origen
orgánico y al ayudar a repoblar la fauna benéfica del suelo estos estimulan el sistema radicular de la planta
brindándole mayor energía para que produzca tallos de mejor calidad y largo (grado) expresado en centímetros
(2).
33
Cuadro 11
Promedios para largo de tallo en la evaluación de la eficiencia de productos en la
reducción de la población de Meloidogyne sp. El rosas. Machachi – Pichincha. 2002.
Factor
Frecuencias
Productos
Comparaciones
ortogonales
Dosis
P x D
F x (P x D)
Fac. vs Adic.
Largo del Tallo
(cm)
Significado
f1= 30 días
f2= 60 días
f3= 90 días
p1= Intercept
p2= Neem x
p3= Nemastroy
CO1
p1
p2, p3
CO2
p2
p3
d1= Mínima
d2= Comercial
d3= Máxima
p1d1
p1d2
p1d3
p2d1
p2d2
p2d3
p3d1
p3d2
p3d3
f1p1d1
f1p1d2
f1p1d3
f1p2d1
f1p2d2
f1p2d3
f1p3d1
f1p3d2
f1p3d3
testigo
f2p1d1
f2p1d2
f2p1d3
f2p2d1
f2p2d2
f2p2d3
f2p3d1
f2p3d2
f2p3d3
testigo
f3p1d1
f3p1d2
f3p1d3
f3p2d1
f3p2d2
f3p2d3
f3p3d1
f3p3d2
f3p3d3
testigo
Factorial
Adicional
56.38
55.77
54.92
56.43
55.24
55.40
56.43
55.32
55.24
55.40
55.91
54.86
56.31
55.67
53.83
59.79
57.10
55.13
53.49
54.95
55.61
55.64
56.39
50.97
63.58
58.80
56.96
51.01
59.64
54.62
55.50
54.85
55.48
55.23
59.59
55.70
51.78
57.22
55.27
55.14
56.49
57.27
55.16
55.29
56.20
56.80
56.66
52.22
49.93
57.08
54.94
55.75
55.69
55.96
34
70
cm de tallos en rosa
60
50
40
30
20
10
p3d3
p3d1
p2d2
p1d3
p1d1
f3
p3d3
p3d1
p2d2
p1d3
p1d1
f2
p3d3
p3d1
p2d2
p1d3
p1d1
f1
0
INTERACCIONES
Gráfico 9
2.
Largo de tallos en la evaluación de la eficiencia de productos orgánicos para la
reducción de la población de nemátodos en rosas. Machachi - Pichincha. 2002.
Diámetro del botón.
En el análisis de la varianza, cuadro 12, se encontró diferencias no significativas para las frecuencias, plaguicidas,
productos, dosis, para interacciones productos x dosis y frecuencias x plaguicidas. Solo se encontró diferencias
significativas para el polinomio ortogonal lineal de las frecuencias y para el factorial (productos x dosis vs. el
adicional). El coeficiente de variación (a) fue de 4.88 % y el coeficiente de variación (b) fue de 2.38 %, siendo
aceptables para el tipo de investigación realizada y avalizan los datos obtenidos en la investigación, además el
promedio general del experimento fue de 5.52 cm.
35
Cuadro 12
Análisis de la varianza para el diámetro del botón, en la evaluación de la eficiencia de
productos orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. , en rosas.
Machachi - Pichincha. 2002.
FUENTES DE VARIACIÓN
TOTAL
REPETICIONES
FRECUENCIAS (F)
LINEAL
CUADRÁTICO
ERROR (a)
PLAGUICIDAS (Pl)
PRODUCTOS
p1 vs p2p3
p2 vs p3
DOSIS
LINEAL
CUADRÁTICA
INTERACCIÓN P x D
FACTORIAL VS ADICIONAL
INTERACCIÓN F x P
ERROR (b)
PROMEDIO
CV(A) %
CV(B) %
GL
89
2
2
CUADRADOS MEDIOS
1
1
4
9
2
1
1
2
1
1
4
1
18
54
0.00
0.18
0.33
0.03
0.07
0.03
0.04
0.02
0.06
0.02
0.03
0.00
0.02
0.07
0.02
0.02
ns.
ns.
*
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
*
ns.
5.52 cm
4.88
2.38
En el cuadro 13, se observa que en frecuencias, el mejor resultado fue para f1 (30 días) con un diámetro para el
botón de 5.58 cm. , en tanto qué la f3 (90 días) obtuvo un valor de 5.42 cm para diámetro del botón. Entre los
productos el de mejor respuesta fue para Nemastroy con 5.54 cm y el de menor respuesta es para el producto
Neem-X con 5.47 cm para diámetro del botón.
Para la interacción, productos x dosis, la mejor respuesta fue para el producto Nemastroy a la dosis máxima
(p3d3) con 5.60 cm y el de menor resultado para Neem-X a la dosis mínima (p2d1) con 5.44 cm, siendo estos dos
valores inferiores al testigo Mocap gel que obtuvo 5.61 cm, valores que no tienen mayor diferencia y que se
puede considerar que los productos de origen orgánico están al mismo nivel que un producto químico y en
algunos casos ser superior, además que estos ayudan a la proliferación de la fauna benéfica en el suelo y
aumentan el vigor en las plantas (42); los datos obtenidos responden al tipo de patrón en el que está injertada la
variedad utilizada en el experimento, no existiendo una marcada diferencia entre cada tratamiento.
36
Cuadro 13
Promedios y DMS 5% para diámetro del botón en la evaluación de la eficiencia de
productos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosas. Machachi –
Pichincha. 2002.
Factor
Frecuencias
Productos
Comparaciones
ortogonales
Dosis
P x D
F x (P x D)
Fac. vs Adic.
Significado
f1= 30 días
f2= 60 días
f3= 90 días
p1= Intercept
p2= Neem x
p3= Nemastroy
CO1
p1
p2, p3
CO2
p2
p3
d1= Mínima
d2= Comercial
d3= Máxima
p1d1
p1d2
p1d3
p2d1
p2d2
p2d3
p3d1
p3d2
p3d3
f1p1d1
f1p1d2
f1p1d3
f1p2d1
f1p2d2
f1p2d3
f1p3d1
f1p3d2
f1p3d3
testigo
f2p1d1
f2p1d2
f2p1d3
f2p2d1
f2p2d2
f2p2d3
f2p3d1
f2p3d2
f2p3d3
testigo
f3p1d1
f3p1d2
f3p1d3
f3p2d1
f3p2d2
f3p2d3
f3p3d1
f3p3d2
f3p3d3
testigo
Factorial
Adicional
Diámetro del Botón
(cm)
5.58
5.53
5.42
5.53
5.47
5.54
5.53
5.50
5.47
5.54
5.48
5.52
5.53
5.54
5.54
5.51
5.44
5.48
5.48
5.47
5.54
5.60
5.61
5.66
5.46
5.51
5.61
5.55
5.58
5.59
5.68
5.59
5.51
5.50
5.67
5.58
5.45
5.56
5.43
5.51
5.61
5.68
5.51
5.46
5.41
5.24
5.39
5.35
5.39
5.52
5.51
5.56
5.51 a
5.61 a
37
3.
Ancho del botón.
En el análisis de la varianza, cuadro 14, se encuentran diferencias altamente significativas; para plaguicidas, para
la interacción productos x dosis y diferencias no significativas para las frecuencias, productos, dosis y las
interacciones frecuencias x plaguicidas. El coeficiente de variación (a) fue de 4.15 % y el coeficiente de variación
(b) fue de 3.68 %, siendo aceptables para el tipo de investigación realizada y que avalizan los datos obtenidos en
la investigación, además el promedio general del experimento fue de 2.83 cm.
Cuadro 14
Análisis de la varianza para el ancho del botón, en la evaluación de la eficiencia de
productos orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp., en rosas.
Machachi - Pichincha. 2002.
FUENTES DE VARIACIÓN
TOTAL
REPETICIONES
FRECUENCIAS (F)
LINEAL
CUADRÁTICO
ERROR (a)
PLAGUICIDAS (Pl)
PRODUCTOS
p1 vs p2p3
p2 vs p3
DOSIS
LINEAL
CUADRÁTICA
INTERACCIÓN P x D
FACTORIAL VS ADICIONAL
INTERACCIÓN F x P
ERROR (b)
PROMEDIO
CV(A)%
CV(B)%
GL
89
2
2
CUADRADOS MEDIOS
1
1
4
9
2
1
1
2
1
1
4
1
18
54
0.00
0.00
0.00
0.01
0.01
0.02
0.02
0.03
0.01
0.00
0.01
0.00
0.02
0.01
0.00
0.01
ns.
ns.
ns.
ns.
**
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
ns.
**
ns.
ns.
2.83 cm
4.15
3.68
En el cuadro 15, para frecuencias y productos, se observa que la mejor respuesta en frecuencias es para f2 (60
días) con un promedio de 2.85 cm. y la frecuencia de menor respuesta es f1 (30 días) con un promedio de 2.82
cm. ; entre los productos el de mejor resultado para el ancho del botón es para el producto Intercept (Pseudomona
cepacia) con 2.86 cm. , mientras que compartiendo la menor respuesta están los productos Neem-X (Extracto del
árbol de neem) y Mocap gel con 2.81 cm., datos que aseguran que la población de Meloidogyne sp. no influyen
sobre el ancho del botón, posiblemente a que los productos orgánicos dieron vigor a la planta para que exista un
mejor comportamiento varietal, demostrándose en los promedios obtenidos en cada tratamiento.
Al encontrarse alta significación estadística para el factorial productos x dosis, se obtuvieron dos rangos de
significación, ubicándose en el primer rango a ocho interacciones así: p3d1, p1d1, p1d2, p1d3, p2d2, p2d3, p3d2,
38
p3d3 con los siguientes promedios respectivamente, 2.90, 2.87, 2.86, 2.86, 2.85, 2.81, 2.81, 2.80 cm. y
ubicándose en el otro rango a p2d1 con un promedio de 2.76 cm. ,teniendo como mejor producto a Nemastroy a
su dosis mínima (p3d1).
La no significancia estadística encontrada en el factorial frecuencias x productos x dosis se debe principalmente
según ESPINOZA (16), a que los productos orgánicos ayudan a dar vigor a la planta y a repoblar la fauna del
suelo, mientras que los productos químicos mantienen a la población por debajo de los niveles críticos para el
cultivo, razón por la cual la población de Meloidogyne sp. , no influyo sobre el ancho del botón, demostrándose
en los promedios del cuadro 15, teniendo que el mejor resultado es para el producto Neem-X a la dosis comercial
en la frecuencia de 60 días (f2p2d2) con un promedio de 2.94 cm, superior al testigo de la finca (Mocap gel), el
cuál obtuvo un promedio de 2.81 cm.
En el gráfico 10, para ancho de los botones de rosa se puede apreciar el comportamiento de todas las
interacciones, evidenciándose la buena respuesta de los productos llamados alternativos de origen orgánico en
comparación con los tratamientos tradicionales de origen químico, peligrosos para la salud humana y
convirtiéndose en contaminantes de la naturaleza.
39
Cuadro 15
Promedios y Tukey al 5% para ancho del botón en la evaluación de la eficiencia de
productos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosas. Machachi –
Pichincha. 2002.
Factor
Frecuencias
Productos
Comparaciones
ortogonales
Dosis
P x D
F x ( P x D)
Fac. vs Adic.
Ancho del Botón
(cm)
Significado
f1= 30 días
f2= 60 días
f3= 90 días
p1= Intercept
p2= Neem x
p3= Nemastroy
CO1
p1
p2, p3
CO2
p2
p3
d1= Mínima
d2= Comercial
d3= Máxima
p1d1
p1d2
p1d3
p2d1
p2d2
p2d3
p3d1
p3d2
p3d3
f1p1d1
f1p1d2
f1p1d3
f1p2d1
f1p2d2
f1p2d3
f1p3d1
f1p3d2
f1p3d3
testigo
f2p1d1
f2p1d2
f2p1d3
f2p2d1
f2p2d2
f2p2d3
f2p3d1
f2p3d2
f2p3d3
testigo
f3p1d1
f3p1d2
f3p1d3
f3p2d1
f3p2d2
f3p2d3
f3p3d1
f3p3d2
f3p3d3
testigo
Factorial
Adicional
2.82
2.85
2.84
2.86
2.81
2.84
2.86
2.83
2.81
2.84
2.85
2.84
2.82
2.87
2.86
2.86
2.76
2.85
2.81
2.90
2.81
2.80
2.89
2.81
2.85
2.76
2.78
2.78
2.87
2.84
2.81
2.83
2.89
2.88
2.85
2.73
2.94
2.87
2.92
2.81
2.78
2.80
2.83
2.88
2.89
2.80
2.84
2.79
2.92
2.77
2.81
2.80
2.84
2.81
a
a
a
b
a
a
a
a
a
40
p3d3
p3d1
p2d2
p1d3
p1d1
f3
p3d3
p3d1
p2d2
p1d3
p1d1
f2
p3d3
p3d1
p2d2
1
p1d3
2
p1d1
f1
ancho de los botones en rosa
en cm.
3
INTERACCIONES
Gráfico 10
E.
Ancho de los botones en la evaluación de la eficiencia de productos orgánicos para la
reducción de la población de nemátodos en rosas. Machachi - Pichincha. 2002.
Índice de agallamiento.
En el análisis de la varianza, cuadro 16, se encuentran diferencias altamente significativas para plaguicidas,
productos, comparaciones ortogonales de productos, dosis, su polinomio lineal, la interacción productos x dosis,
la interacción factorial vs. el adicional; además se encontró diferencias no significativas para frecuencias con sus
polinomios ortogonales lineal y cuadrático y para el factorial frecuencias x plaguicidas. El coeficiente de
variación (a) fue de 4.84 % y el coeficiente de variación (b) fue de 7.20 %, siendo aceptables para el tipo de
investigación realizada y que avalizan a los datos obtenidos en la investigación, además el promedio general
transformado con arcoseno fue de 33.58 % y el promedio general real del experimento fue de 30.87 %.
Cuadro 16
Análisis de la varianza para el índice de agallamiento, en la evaluación de la eficiencia
de productos orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp., en rosas
Machachi - Pichincha 2002.
FUENTES DE VARIACIÓN
TOTAL
REPETICIONES
FRECUENCIAS (F)
LINEAL
CUADRÁTICO
ERROR (a)
PLAGUICIDAS (Pl)
PRODUCTOS
p1 vs p2p3
p2 vs p3
DOSIS
GL
89
2
2
CUADRADOS MEDIOS
1
1
4
9
2
1
1
2
8.94
17.52
29.62
5.42
2.64
168.77
141.67
101.44
181.90
287.22
ns.
ns.
ns.
ns.
**
**
**
**
**
41
LINEAL
CUADRÁTICA
INTERACCIÓN P x D
FACTORIAL VS ADICIONAL
INTERACCIÓN F x P
ERROR (b)
PROMEDIO arcoseno
PROMEDIO real
CV(A) %
CV(B) %
4
1
18
54
1 546.07
1 28.38
110.58
218.81
8.84
5.84
**
*
**
**
ns.
33.58 %
30.87 %
4.84
7.20
En el cuadro 17, para productos se obtuvieron dos rangos de significancia, compartiendo el primer rango los
productos Intercept (Pseudomona cepacia) y Neem-X (Extracto del árbol de neem) con 35.68 % y 35.14 %
respectivamente, el producto Nemastroy (Extracto de ají más mostaza) se encuentra en el otro rango teniendo la
mejor respuesta con un 31.47 %, mientras que el testigo Mocap gel tuvo un 28.90 % siendo este el mejor
resultado, posiblemente a la acción sistémica del producto al controlar a las hembras de Meloidogyne sp., cuando
estas están en el interior de las raíces (13), los datos obtenidos avalizan la información del número de larvas en la
población final, puesto que se verifica el buen control para que no se incremente la población de nemátodos en el
suelo y tener un menor agallamiento en las raíces.
Además se encontraron diferencias altamente significativas para comparaciones ortogonales de los productos; la
primera comparación obtuvo dos rangos de significación así, p1 vs. p2p3 (Intercept vs. Neem-X, Nemastroy) se
ubicó en el primer rango y la comparación p2 vs. p3 (Neem-X vs. Nemastroy) ocupo el segundo rango
obteniendo un 35.68 % y 33.31 % respectivamente, del mismo modo en la comparación ortogonal dos p2 vs. p3
(Neem-X vs. Nemastroy) se encontró dos rangos de significación, el producto Neem-X ocupa el primer rango con
35.14 % y el Nemastroy con un mejor control está en el otro rango con un 31.47 %.
Para la interacción productos x dosis, se obtuvieron cuatro rangos de significación entre las nueve interacciones;
ubicándose en el primer rango a las interacciones: p1d1, p1d2, p2d1, p2d3, p3d1, con un promedio de, 38.84%,
38.13%, 36.63%, 35.99%, 37.63% respectivamente; en el segundo rango se encuentra a p2d2 con un promedio
de 32.81%; en el tercer rango se ubica la interacción p1d3 con un promedio de 30.08% y ubicándose en el último
rango las interacciones p3d2 y p3d3 con 28.84% y 27.94% respectivamente, teniendo de este modo el mejor
resultado al producto Nemastroy a la dosis máxima (p3d3) con 27.94% y el producto de menor resultado es para
Intercept a la dosis mínima (p1d1) con 38.84 %.
Para el factorial vs. adicional, cuadro 17, se puede apreciar que existen dos rangos de significación los que
indican que el mejor resultado fue para el adicional el cuál corresponde al testigo Mocap gel con un 28.90 % y
para el factorial se tuvo una respuesta de 34.10% para el índice de agallamiento, esto se debe principalmente a
que el producto químico tiene una acción sistémica el cual ataca a las hembras en el interior de las raíces con lo
que se evita un mayor daño y proliferación tanto de nemátodos como de agallas en las mismas tal cuál lo
manifiesta CHRISTIE y EGUIGUREN (10,13).
42
Cuadro 17
Promedios y Tukey al 5% para índice de agallamiento en la evaluación de la eficiencia
de productos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosas. Machachi –
Pichincha. 2002.
Factor
Frecuencias
Productos
Comparaciones
ortogonales
Dosis
P x D
F x Px D
Fac. vs Adic.
Significado
f1= 30 días
f2= 60 días
f3= 90 días
p1= Intercept
p2= Neem x
p3= Nemastroy
CO1
p1
p2, p3
CO2
p2
p3
d1= Mínima
d2= Comercial
d3= Máxima
p1d1
p1d2
p1d3
p2d1
p2d2
p2d3
p3d1
p3d2
p3d3
f1p1d1
f1p1d2
f1p1d3
f1p2d1
f1p2d2
f1p2d3
f1p3d1
f1p3d2
f1p3d3
testigo
f2p1d1
f2p1d2
f2p1d3
f2p2d1
f2p2d2
f2p2d3
f2p3d1
f2p3d2
f2p3d3
testigo
f3p1d1
f3p1d2
f3p1d3
f3p2d1
f3p2d2
f3p2d3
f3p3d1
f3p3d2
f3p3d3
testigo
Factorial
Adicional
Índice de Agallamiento
(%)
33.72
33.54
35.04
35.68
a
35.14
a
31.47
b
35.68
a
33.31
b
35.14
a
31.47
b
37.70
a
33.26
b
31.34
c
38.84
a
38.13
a
30.08
c
36.63
a
32.81
b
35.99
a
37.63
a
28.84
d
27.94
d
39.60
39.83
29.39
35.27
31.08
36.49
36.81
28.30
26.68
27.05
38.10
35.52
28.25
37.52
34.14
34.98
37.99
25.81
29.54
30.48
38.80
39.04
32.60
37.09
33.22
36.51
38.09
32.42
27.60
29.18
34.10
a
28.90
b
43
F.
Análisis económico.
El análisis económico de los tratamientos en estudio, se calculó basándose en los precios de venta de cada
producto, según los valores establecidos en el mercado para el año que concluyo el ensayo (2002). De acuerdo a
los volúmenes de aplicación utilizados en la empresa Panorama Roses S.A., se obtuvo el costo por hectárea de
cada producto utilizado, expresados en el siguiente cuadro.
Cuadro 18.
Para costos fijos y variables en la evaluación de la eficiencia de productos orgánicos en
la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosas. Machachi - Pichincha. 2002.
COSTOS FIJOS
INSUMOS
Descripción
Cantidad
NH4NO3
3600
KNO3
3960
KH2PO4
540
CaNO3
4230
H4BO3
48
Pesticidas
172
Mano de obra
800
Técnico
8
SUB TOTAL
MAQUINARIA Y EQUIPO
Motocultor
6
Bomba estacionaria
24
SUB TOTAL
OTROS
Invernadero
10 000
Unidad
kg
kg
kg
kg
litros
litros
jornal
mes
V. unitario USD
0.18
0.54
1.15
0.42
0.80
63.00
4.00
148.00
Sub total USD
648.00
2138.40
621.00
1776.60
38.40
10836.00
3200.00
1184.00
20442.40
horas
horas
10.00
7.00
60.00
168.00
228.00
m2
12.00
4286.00
Análisis suelo
1
20.00
20.00
nematológico
1
12.00
12.00
SUB TOTAL
TOTAL
4318.00
24988.40
COSTOS VARIABLES
Cantidad
Valor unitario
USD
Intercept
0.50
0.043
928.68
0.75
0.042
1373.40
1.20
0.042
2197.44
Neem-X
2.00
0.036
3139.20
3.00
0.036
4708.80
4.00
0.036
6278.40
Nemastroy
1.50
0.044
2877.60
2.00
0.044
3836.80
2.50
0.043
4687.00
Mocap gel
0.80
0.045
1569.60
* Amortización de invernadero para 7 años
En el cuadro 19, se aprecia los costos totales para todas las interacciones del experimento en donde el costo total
Unidad
litros
litros
litros
litros
litros
litros
litros
litros
litros
litros
más bajo es para los productos que fueron utilizados en una menor dosis, debido a la forma de aplicación. El
tratamiento con el producto Intercept resulta ser el más bajo, pero su control al igual que el resto de tratamientos
orgánicos presentan un resultado aceptable en los parámetros de calidad, al igual que en la reducción de la
población en donde mantiene un comportamiento aceptable. Mientras resulta ser antieconómico los productos
44
Neem-X y Nemastroy a las dosis más altas, por su alto costo, como nematicida por las dosis utilizadas y su
control analizado en todas las variables.
Cuadro 19.
Para costos totales en la evaluación de la eficiencia de productos orgánicos en la
reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosas Machachi - Pichincha 2002.
Interacciones
Costos fijos
USD
Costos Variables
USD
Costos Totales
USD
p1d1 (Intercept, dosis mínima)
24988.40
928.68
25917.08
p1d2 (Intercept, dosis comercial)
24988.40
1373.40
26361.80
p1d3 (Intercept, dosis máxima)
24988.40
2197.44
27185.84
p2d1 (Neem-X, dosis mínima)
24988.40
3139.20
28127.60
p2d2 (Neem-X, dosis comercial)
24988.40
4708.80
29697.20
p2d3 (Neem-X, dosis máxima)
24988.40
6278.40
31266.80
p3d1 (Nemastroy, dosis mínima)
24988.40
2877.60
27866.00
p3d2 (Nemastroy, dosis comercial)
24988.40
3836.80
28825.20
p3d3 (Nemastroy, dosis máxima)
24988.40
4687.00
29675.40
testigo (Mocap gel)
24988.40
1569.60
26558.00
En el cuadro 20, se aprecia la tasa de beneficio/costo propuesta por REINOSO, que el tratamiento que presenta el
mejor retorno marginal es Intercept a la dosis mínima ya que por cada dólar invertido hay un retorno de 1.64
dólares, superior al testigo químico Mocap gel que tiene un retorno de 1.48 dólares, el resto de tratamientos
orgánicos tienen una tasa de beneficio / costo aceptable para productos alternativos, ya que ninguno presenta una
perdida.
Cuadro 20.
Interacciones
p1d1(Intercept)
Para la tasa de beneficio / costo en la evaluación de la eficiencia de productos
orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosas. Machachi Pichincha. 2002.
Costo total
Rendimiento
Utilidad
Utilidad
Tasa B/C
USD/ha
tallos/ha
bruta USD
NetaUSD/ha
25917.08
244285.71
68400
42482.92
2.64
p1d2(Intercept)
p1d3(Intercept)
26361.80
27185.84
218571.43
218571.43
61200
61200
34838.20
34014.16
2.32
2.25
p2d1(Neem-X)
28127.60
226285.71
63360
35232.40
2.25
p2d2(Neem-X)
p2d3(Neem-X)
29697.20
31266.80
213428.57
244285.71
59760
68400
30062.80
37133.20
2.01
2.19
p3d1(Nemastroy)
27866.00
239142.86
66960
39094.00
2.40
p3d2(Nemastroy)
p3d3(Nemastroy)
28825.20
29675.40
248142.86
244285.71
69480
68400
40654.80
38724.60
2.41
2.30
testigo(Mocap gel)
26558.00
235285.71
65880
39322.00
2.48
45
El costo del tallo para la realización del análisis económico es de 0.28 centavos de dólar, en Marzo del 2002.
V.
CONCLUSIONES
A.
Los productos orgánicos tuvieron una respuesta favorable para el control de la población final; Neem-X
a la dosis de 3.00 ml / litro tuvo 13.33 larvas por 100 g de suelo; Intercept a la dosis de 0.50 ml / litro
tuvo una población de 40 larvas por 100 g de suelo y el Nemastroy a la dosis de 2.50 ml/litro tuvo una
población de 80.00 larvas por 100 g de suelo; el testigo químico Mocap gel, mostró mayor eficiencia al
final del período de aplicación, por la residualidad y acción sistémica del producto con 13.33 larvas por
100 gramos de suelo.
B.
La eficiencia de los productos tienen respuestas diferentes según las frecuencias de aplicación así; el
Neem-X a 3.00 ml/litro; a los 30 días tiene un 94.07 % de efectividad, a los 60 días 53.86 % y a los 90
días 81.11 %; el Nemastroy a 2.50 ml/litro tiene un comportamiento contrario ya que en los 30 días tiene
un control de 77.25 %, a los 60 días 85.72 % y a los 90 días 79.42 %; el Intercept a 0.50 ml/litro presenta
a los 30 días un control de 83.06 % a los 60 días 64.01 % y a los 90 días 83.53 %.
C.
Se pudo determinar que el mejor resultado fue para Neem-X a la dosis de 3 ml/litro en la frecuencia de
30 días ya que tuvo una población de 13.33 larvas por 100 g de suelo con un porcentaje de reducción de
94.07 %, siendo mejor que el químico Mocap gel el cual tiene una población final de 106.67 larvas por
100 g de suelo y una reducción de la población del 64.40%.
D.
En los parámetros de calidad para la flor: largo del tallo, ancho y diámetro del botón, la población de
Meloidogyne sp. no afecto; ya que todos los productos realizaron un buen control en la población.
E.
De acuerdo al análisis beneficio / costo la interacción que mayor retorno marginal presentó fue, Intercept
a la dosis de 0.50 ml/litro a 30 días (f1p1d1), por el buen control sobre la población de Meloidogyne sp.,
el segundo producto de mejor retorno marginal lo presenta el producto químico Mocap gel al realizar un
control mas eficiente al pasar de los días por su efecto residual y acción sistémica.
VI.
RECOMENDACIONES
A. De acuerdo al análisis económico se recomienda aplicar el producto Intercept a la dosis mínima, 0.50 ml
por litro, por ser el producto orgánico que presenta la mejor respuesta en este aspecto.
B. Aplicar el producto Neem-X a la dosis de 3.00 ml por litro ya que tiene un buen control sobre la
población final de nemátodos en el cultivo de rosa.
C. En la determinación de las diferentes dosis de aplicación para los productos orgánicos, se recomienda las
siguientes dosis para los distintos productos:
-
Intercept a la dosis mínima, de 0.50 ml / litro.
Neem-X a la dosis comercial, de 3.00 ml / litro.
Nemastroy a la dosis máxima, de 2.50 ml / litro.
D. En función a los resultados obtenidos y a las diferentes dosis de los productos es recomendable
establecer un programa de control para los nemátodos (Meloidogyne sp.) en el cultivo de rosas de la
siguiente manera:
-
Empezar las aplicaciones de los productos orgánicos con el producto Intercept a la dosis de 0.50
ml / litro ya que ayuda a la repoblación de la fauna benéfica del suelo, así como la propensión
del vigor a la misma.
-
A los 30 días realizar una aplicación con el producto Neem-X a la dosis de 3.00 ml / litro, ya
que este producto ataca al estado de muda del nemátodo, con lo que evitaría que las hembras
lleguen al estado adulto y ovipositen.
46
-
E.
A los 60 días aplicar el producto Nemastroy a la dosis de 2.50 ml / litro, puesto que es donde
presenta su mayor efectividad para la reducción de la población de los nemátodos.
Continuar realizando investigaciones con los productos orgánicos y alternativos, como es el caso de
Paecilomyces lilacinus, Pausteria penetrans, solos y con el uso combinado de Intercept, Neem-X,
Nemastroy y los demás productos orgánicos existentes en el mercado, para realizar un buen control y
combatir a los nemátodos que atacan a las raíces (Meloidogyne sp.) en el cultivo de rosas, de una
forma más integral.
VIII.
BIBLIOGRAFÍA
1. AGRIOS, G. 1989. Fitopatología. Trad. del Inglés por Manuel Guzmán Ortiz. México: Limusa. p. 147, 663673.
2. ATL INTERPRICES INC. s.f. Sincosin - AG y Agrispon - IPSM. Dallas (USA). 8 p.
3. BIBLIOTECA PRÁCTICA AGRÍCOLA Y GANADERA. 1989.
Barcelona (España). : Grupo Editorial Océano. p. 159.
Los fundamentos de la agricultura.
4. BIDWELL, R. Fisiología Vegetal. 1893. Trad. por Guadalupe Gerónimo Cano. México: AGT Editores. 784
p.
5. CASTILLO, R. L. y CHACON, R. A. 1983. Adaptación y rendimiento de líneas de fréjol (P haseolus
vulgaris) a seis niveles de fertilización orgánica con gallinaza en Puellaro. Tesis Ing. Agr. Quito:
Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas. p. 23-25.
6. CENTRO INTERNACIONAL DE AGRICULTURA TROPICAL.1982. Principales nemátodos que atacan al
fríjol y su control. Calí (Colombia): CIAT p. 6-7.
7. CENTRO MANABITA DE DESARROLLO COMUNITARIO. 1994. Manual técnico del Nim. Portoviejo
(Manabi): GTZ. 24 p.
8. CREMLYN, R. 1991 Plaguicidas modernos y su acción bioquímica. Trad. del inglés por Esther Baradán.
México: Limusa. p. 114.
9. CIBA-GEIGY. s.f. Manual para ensayos de campo en producción vegetal. 2a. ed. Basilea (Suiza): p. 179183.
10. CHRISTIE, J. R. 1974. Nemátodos de los vegetales su ecología y control. México: Limusa. p. 61-86.
11. DELGADO, M. A. s.f. Humus de lombriz caracterización y valor fertilizante. Santiago : Universidad de
Chile, Facultad de Ciencias Agrarias y Forestales. p. 1-5.
12. DROPKIN, V. H., MARTIN, G.C., JOHNSON, R.W. 1959. Effect of osmotic concentration on hatching of
some plant parasitic nematodes. Nematologica, 3 : 115-126.
13. EGUIGUREN, R. 1983. Avances de investigación sobre el género Meloidogyne sp. en el Ecuador. In
Reserch and Planning Conference on Root - Knot nematodes, Meloidogyne sp. Lima (Perú), Mar. 22
- 26. Proceedings. Lima (Perú), CIP. p. 66 - 90.
14. EISENBACK, J. 1991. Estudio de producción de flores para corte. Quito (Ecuador), Expoflores. p. 8.
15. ESPINOSA, L.A. 1996. Informe técnico del control de nemátodos mediante el uso de productos orgánicos
(Neem-X), Quito (Ecuador): Ecuaquímica. p. 2.
16. ESPINOSA, L. 1998. Control del Nemátodo con tratamientos biocidas y orgánicos en rosa Tesis Ing. Agr.
Quito: Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas. p. 23 - 45.
47
17. FERRER MARTI, F. y SALVADOR PALOMO, P. J. 1986. La producción de rosas en cultivo protegido.
Madrid (España): Editorial Universal Plantas. p. 258 - 261.
18. FLORES, L. 1990. Aspectos generales de los nemátodos en el cultivo de flores. IICA. Boletín Informativo de
Floricultura. No. 19. p. 1-3.
19. GERBE, V.
1981. Tu huerto biológico. Barcelona (España) : Ediciones Cedel. p. 35.
20. GONZÁLEZ, C.L. 1989. Introducción a la fitopatología. IICA. Libros y Materiales Educativos No 29. p. 6264.
21. GUEVARA, G., SANTILLAN, V., SILVA, Y. 1989. Control biológico de plagas mediante el nemátodo
entomófago Steinernema feltiae (Neoplectana carpocapsae). In. Memorias del seminario sobre
agricultura alternativa. Quito (Ecuador), Mar. 27 - 28. Fundación Natura "Proyecto Educación
Ambiental sobre Plaguicidas" p. 32 - 59.
22. HEUSSLER, P. 1991. Estudio de producción de flores de corte. Quito (Ecuador): Expoflor. p. 8
23. JARA, J. 2000. Efecto de la materia orgánica y de Paecylomices lilacinus en el control del nemátodo
Meloidogyne sp. Tesis Ing. Agr. Quito: Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias
Agrícolas. p. 17-45.
24. JATALA, P. y KALTENBACH, R. 1980. Un hongo como control biológico del nemátodo del nudo de la raíz.
Circular CIP. 8 (10): 1 - 3.
25. LABÁN, G. y PANIZO, G. 1989. Paecilonyces lilacinus. Controlador del nudo de la raíz Meloidogyne
incognita. en fréjol. Lambayaque. In Congreso Peruano de Nematología, Iquitus, (Perú), Oct. 14 15. Compendios. Iquitus, Universidad Nacional de la Amazonía Peruana. p. 47 - 49.
26. LÓPEZ, J. 1981. Cultivo del rosal en invernadero. Madrid (España) : Mundi Prensa. p. 309-313.
27. LÓPEZ, P. 1996. Rosas perfume de amor y belleza. Quito : Tecno- Agro (Ecuador). No 11: 10-12.
28. MANKAU, R. 1983. Bacillus penetrans. comb. causing a virulent disease of plamt parasitic nematodes.
Nematologica 21: 89 - 94 1975. ( Citado por Taylor, A.L y Sasser, Y. N. Biología identificación y
control de los nemátodos del nódulo de la raíz (especies de Meloidogyne). Trad. del inglés por el
C.I.P. Raligh, Carolina del Norte (USA), s.e, p. 95.
29. NATIONAL ACADEMY OF SCIENCIES. 1988. Washington (USA), Control de plagas de plantas y
animales. Trad. del inglés por Joaquín Palenzuela. México: Limusa. p. 29-30.
30. LOS NEMÁTODOS. 1995. Enemigos ocultos del rosal. Quito: Expoflores (Ecuador) No. 7: 25-27.
31. NUEVA ENCICLOPEDIA LAROUSSE. 1984. Barcelona (España) Planeta, p. 6381. v.6.
32. ORGANIZACIÓN DE LAS NACIONES UNIDAS PARA LA AGRICULTURA Y LA ALIMENTACIÓN.
1976. Materia orgánica fertilizantes. FAO, Boletín sobre Suelos No 27. p. 148 - 154.
33. PAPE, H. s.f. Plagas de las flores y plantas ornamentales. Barcelona (España): Oikos-Tau. p. 150-154.
34. PEET, M. 1996. Sustainable practices for vegetable production en the South. s. n. t.
(bridgesj@unity.ncsu.edu)
p. 1-3
35. REINOSO M. 1997. Manual de evaluación económica. Facultad de Ciencias Agrícolas, Universidad Central
del Ecuador (Apuntes de clases).
36. REVELO MORAN, J. A. 1979. Influencia de dos niveles de riego fertilización y control químico sobre la
población dinámica de Meloidogyne incógnita Chitwood en dos variedades de tomate. Tesis Ing.
Agr. Quito: Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas. 80 p.
48
37. ROBALINO, G. M. y JIJÓN, G. T. 1976. Estudio de resistencia a Meloidogyne sp. (Goeld 1887) en 10
variedades de tomate, control químico y efecto poblacional en cultivos antágonicos. Tesis Ing. Agr.
Quito, Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas. 95 p.
38. SARAH, J. L., SABATINI, C. y BOISSEAU, M. 1993. Diferencias de patogenicidad en banano (Musa sp. ,
cv. Payo), entre poblaciones de R. similis provenientes de diferentes zonas de producción del mundo.
Nematrópica 3- (23) 75 - 79
39. SÁNCHEZ M. 1999. Respuesta del banano (Musa sp.)a la aplicación de nematicidas naturales. Babahoyo.
Ecuaquímica. p. v.
40. SASSER, J.N. 1982. Root-Knot. Nematodes: Global menace to crop production. Plants Diseases. 64 (1): 3641.
41. SAYRE. W. 1983. Biotic influences in soil environment. In Zuckerman, B. M. , Mai, W. F. and Rohde, R. A.
eds. Plant Parasitic Nematodes. New York, (USA), Academic Press, s.f. v. l. pp. 235 - 236 (Citado
por Taylor, A. L. y Sasser, Y. N. Biología identificación y control de lo nemátodos del nódulo de la
raíz (especies de Meloidogyne). Traducido del ingles por el C.I.P. Raleigh, Carolina del Norte
(USA), s.e. p. 94.
42. SOIL TECHNOLOGIES CORP. 2000. Root - Knot, Insect Control Concentrate, boletín informativo sobre
productos de origen orgánico (Empresa Ecuaquímica, hojas informativas)
43. TAYLOR, A.L. 1968. Introducción a la nematología aplicada, Guía de la FAO para el estudio y combate de
los nemátodos parásitos de las plantas Roma (Italia): FAO. p. 1-29.
44. -----------y SASSER, Y. N. 1983. Biología identificación y control de los nemátodos del nódulo de la raíz
(Especies de Meloidogyne). Trad. del inglés por el C.I.P. Raleigh. Carolina del Norte: s.e. p. 1-91.
45. TOCAÍN, C. M. 1995. Respuesta del clavel standard a la aplicación de fertilizantes químicos y humus de
lombriz. Tabacundo Pichincha Nerita Flowers. Tesis Ing. Agr. Quito: Universidad Central del
Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas, p. 17 - 18.
46. TORRES, D. s.f. Métodos y tratamientos para la protección de los cultivos en agricultura biológica.
Barcelona (España), Asociación Vida Sana. p. 11, 21.
47. TRIVIÑO, G. C. 1995. Pausteria penetrans un potencial para el control biológico del nemátodo agallador de
raíces Meloidogyne sp. INIAP Estación Experimental el Boliche. Boletín divulgativo No 5 p. 37.
48. UNIVERSIDAD CENTRAL DEL ECUADOR-EXPOFLORES 1999. Enfermedades de la Floricultura
Ecuatoriana y su control. In Gallegos P. Manual técnico de Fitosanidad en floricultura. Instituto de
Postgrado, Universidad Central del Ecuador, Facultad de Ciencias Agrícolas p. 1-72
49. VALENCIA, R. 1995. Utilización de la melaza en la alimentación animal. Quito Ecuador: M.A.G., p. 19 20.
50. VELASTEGUÍ, R. 1997. Formulaciones naturales y sustancias orgánicas y minerales para controles
fitosanitarios. Quito (Ecuador): s.e. 162 p.
51. VERA ANDRADE, V. 1997. Raíces de banano sin problemas. Tecno - Agro. (Ecuador) No 3: 27 - 28
52. WALLACE, H. R. 1983. The Biology of Plant Parasitic Nematodes. New York (USA) St. Martin´s Press,
1964 pp. 62-69. (Citado por Taylor,A. L. y Sasser, Y. N. Biología identificación y control de los
nemátodos del nódulo de la raíz (especies de Meloidogyne sp.) Trad. del ingles por el C.I.P. Raleigh.
Carolina del Norte, s.e, p. 9).
53. WENDT, U. 1989. Insecticidas naturales obtenidos del árbol de Nim (Azadirachta indica A, Juss) como
alternativas para el combate de plagas en la provincia de Manabí. In. Memorias del Seminario sobre
49
Agricultura Alternativa, Quito (Ecuador), Mar. 27 - 28 1989. Quito (Ecuador), Fundación Natura,
Proyecto Educación Ambiental sobre Plaguicidas, p. 54 - 56.
54. YÉPEZ, G. 1972. Los nemátodos enemigos de la agricultura. Maracaibo: Universidad Central de Venezuela,
Facultad de Agronomía. p. 95.
55. ZUCKERMAN, B. M., MAL, W. F., HARRISON, M. B. 1987. Fitonematología, Departament of plant
pathology Cornell University, Ithaca New York , traducido por Marbón - Mendoza (Montecillos Mexico) 1987, publicado por CATIE, Turrialba Costa Rica. p. 28, 29.
IX.
ANEXOS
ANEXO 1. Método de Cobb (44), para separación y contaje de larvas de nemátodos.
-
Desmenuzar las muestras traídas del campo, inmediatamente y extender con una espátula, sobre un
plástico.
-
Tomar 100 cm3 de suelo, de la porción extendida y colocarlo en un recipiente de 2000 cm3 de agua.
Mezclar con una espátula hasta conseguir la dispersión de las partículas de tierra y luego dejar
reposar por 120 segundos.
-
En un litro nuevamente agitar el resto de tierra y dejar reposar por 120 segundos.
-
Las partículas en suspensión, pasar por un tamiz de 25 y 38 micras, recogiendo este material en un
cedazo con una malla de 1 mm de diámetro, previamente preparado con una servilleta.
-
Colocar en un recipiente el tamiz con la suspensión agua nemátodos y dejar reposar por 24 horas.
-
El recipiente conteniendo la suspensión de nemátodos se pasa a un vaso de precipitación,
completándose con agua hasta los 200 cm3.
-
Esta suspensión de 200 cm3 se somete a remoción. Se toman 5 cm3 con una pipeta y se coloca este
volumen en un plato cuenta larvas. El agua del plato no debe tener más de 5mm de profundidad.
-
La lectura del número de larvas se realiza en el microscopio y el número de larvas leídas se multiplica
por 200 para obtener la población total de la muestra de suelo procesada.
50
ANEXO 2. Población inicial de Meloidogyne sp. a los 28 días de la inoculación para la
evaluación de la eficiencia de productos orgánicos en la reducción de la
población de Meloidogyne sp. en rosa. Machachi - Pichincha. 2002.
Frecuencias (F) Productos
f1
f2
f3
Σ(FxP
Σ(
)
I
II
III
p1d1
250.00
280.00
187.00
717.00
239.00
p1d2
200.00
220.00
250.00
670.00
223.33
p1d3
300.00
350.00
325.00
975.00
325.00
p2d1
300.00
343.00
280.00
923.00
307.67
p2d2
198.00
200.00
225.00
623.00
207.67
p2d3
190.00
180.00
200.00
570.00
190.00
p3d1
480.00
471.00
397.00
1348.00
449.33
p3d2
520.00
640.00
500.00
1660.00
553.33
p3d3
298.00
360.00
280.00
938.00
312.67
TESTIGO
302.00
300.00
298.00
900.00
300.00
ΣPG
3038.00
3344.00
2942.00
9324.00
310.80
p1d1
250.00
278.00
250.00
778.00
259.33
p1d2
300.00
320.00
360.00
980.00
326.67
p1d3
187.00
180.00
225.00
592.00
197.33
p2d1
380.00
357.00
325.00
1062.00
354.00
p2d2
380.00
370.00
380.00
1130.00
376.67
p2d3
560.00
570.00
577.00
1707.00
569.00
p3d1
298.00
300.00
325.00
923.00
307.67
p3d2
245.00
260.00
250.00
755.00
251.67
p3d3
580.00
520.00
570.00
1670.00
556.67
TESTIGO
454.00
420.00
400.00
1274.00
424.67
ΣPG
3634.00
3575.00
3662.00
10871.00
362.37
p1d1
360.00
380.00
370.00
1110.00
370.00
p1d2
280.00
270.00
300.00
850.00
283.33
p1d3
220.00
250.00
254.00
724.00
241.33
p2d1
270.00
325.00
250.00
845.00
281.67
p2d2
300.00
280.00
298.00
878.00
292.67
p2d3
174.00
154.00
160.00
488.00
162.67
p3d1
254.00
225.00
287.00
766.00
255.33
p3d2
350.00
324.00
320.00
994.00
331.33
p3d3
320.00
325.00
365.00
1010.00
336.67
PG
x(FxP)
SP
TESTIGO
325.00
345.00
362.00
1032.00
344.00
ΣPG
2853.00
2878.00
2966.00
8697.00
289.90
9525.00
9797.00
9570.00
28892.00
321.02
Σ
larvas/100g
de suelo
51
ANEXO 3. Población final de nemátodos para la evaluación de la eficiencia de productos
orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosa.
Machachi - Pichincha. 2002.
Frecuencias (F) Productos
PG
f1
f2
f3
I
II
Σ(FxP)
Σ(
III
x(FxP)
SP
p1d1
20.00
60.00
p1d2
60.00
p1d3
80.00
p2d1
p2d2
40.00
120.00
40.00
740.00
20.00
820.00
273.33
40.00
280.00
400.00
133.33
20.00
0.00
300.00
320.00
106.67
0.00
0.00
40.00
40.00
13.33
p2d3
20.00
0.00
200.00
220.00
73.33
p3d1
120.00
240.00
20.00
380.00
126.67
p3d2
560.00
80.00
260.00
900.00
300.00
p3d3
0.00
220.00
20.00
240.00
80.00
TESTIGO
60.00
140.00
120.00
320.00
106.67
ΣPG
940.00
1520.00
1300.00
3760.00
125.33
p1d1
80.00
100.00
100.00
280.00
93.33
p1d2
300.00
260.00
80.00
640.00
213.33
p1d3
180.00
480.00
154.00
814.00
271.33
p2d1
40.00
60.00
260.00
360.00
120.00
p2d2
260.00
220.00
40.00
520.00
173.33
p2d3
40.00
100.00
100.00
240.00
80.00
p3d1
400.00
280.00
20.00
700.00
233.33
p3d2
420.00
140.00
80.00
640.00
213.33
p3d3
100.00
20.00
124.00
244.00
81.33
TESTIGO
100.00
0.00
120.00
220.00
73.33
ΣPG
1920.00
1660.00
1078.00
4658.00
155.27
p1d1
100.00
0.00
80.00
180.00
60.00
p1d2
0.00
0.00
40.00
40.00
13.33
p1d3
0.00
0.00
60.00
60.00
20.00
p2d1
40.00
40.00
40.00
120.00
40.00
p2d2
20.00
140.00
0.00
160.00
53.33
p2d3
40.00
100.00
40.00
180.00
60.00
p3d1
0.00
0.00
40.00
40.00
13.33
p3d2
0.00
0.00
40.00
40.00
13.33
p3d3
40.00
160.00
0.00
200.00
66.67
0.00
20.00
20.00
40.00
13.33
TESTIGO
ΣPG
Σ
240.00
460.00
360.00
1060.00
35.33
3100.00
3640.00
2738.00
9478.00
105.31
larvas/100g
de suelo
52
ANEXO 4. Largo de tallos para la evaluación de la eficiencia de productos orgánicos en
la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosa .Machachi Pichincha. 2002.
Frecuencias
Productos
(F)
PG
SP
f1
f2
f3
I
II
Σ(FxP)
Σ(
III
x(FxP)cm
p1d1
57.99
56.73
54.43
169.16
56.39
p1d2
48.12
52.13
52.67
152.91
50.97
p1d3
70.64
63.76
56.34
190.74
63.58
p2d1
58.65
57.41
60.35
176.40
58.80
p2d2
54.11
57.11
59.65
170.87
56.96
p2d3
52.58
53.36
47.10
153.04
51.01
p3d1
62.40
57.63
58.90
178.92
59.64
p3d2
52.25
52.55
59.05
163.85
54.62
p3d3
53.51
53.64
59.36
166.50
55.50
TESTIGO
53.89
53.50
57.16
164.55
54.85
ΣPG
564.12
557.82
565.00
1686.94
56.23
p1d1
48.62
60.66
57.15
166.43
55.48
p1d2
54.18
56.65
54.85
165.68
55.23
p1d3
62.48
56.82
59.46
178.76
59.59
p2d1
59.30
57.77
50.03
167.09
55.70
p2d2
44.67
57.37
53.29
155.33
51.78
p2d3
67.11
49.13
55.43
171.67
57.22
p3d1
53.81
57.17
54.85
165.82
55.27
p3d2
56.66
51.99
56.78
165.43
55.14
p3d3
61.69
58.79
49.00
169.48
56.49
TESTIGO
56.00
55.78
60.04
171.82
57.27
ΣPG
564.52
562.13
550.87
1677.51
55.92
p1d1
55.29
53.70
56.48
165.47
55.16
p1d2
53.67
56.42
55.78
165.86
55.29
p1d3
54.61
60.33
53.66
168.61
56.20
p2d1
59.14
56.20
55.06
170.40
56.80
p2d2
60.99
54.57
54.42
169.98
56.66
p2d3
56.57
44.64
55.45
156.65
52.22
p3d1
55.74
48.89
45.16
149.79
49.93
p3d2
67.11
56.76
47.38
171.25
57.08
p3d3
55.98
54.51
54.32
164.82
54.94
TESTIGO
57.85
54.00
55.39
167.24
55.75
ΣPG
Σ
576.96
540.02
533.09
1650.07
55.00
1705.60
1659.96
1648.97
5014.52
55.72cm
53
ANEXO 5. Diámetro del botón para la evaluación de la eficiencia de productos
orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosa.
Machachi - Pichincha. 2002.
Frecuencias Productos
(F)
PG
SP
f1
f2
f3
I
II
Σ(FxP)
Σ(
III
x(FxP)cm
p1d1
5.69
5.65
5.49
16.83
5.61
p1d2
5.67
5.71
5.61
16.99
5.66
p1d3
5.70
5.20
5.47
16.37
5.46
p2d1
5.45
5.67
5.41
16.53
5.51
p2d2
5.76
5.41
5.67
16.84
5.61
p2d3
5.71
5.54
5.39
16.64
5.55
p3d1
5.53
5.61
5.60
16.74
5.58
p3d2
5.77
5.46
5.54
16.76
5.59
p3d3
5.84
5.61
5.60
17.04
5.68
TESTIGO
5.71
5.67
5.39
16.76
5.59
ΣPG
56.81
55.52
55.16
167.49
5.58
p1d1
5.19
5.74
5.62
16.54
5.51
p1d2
5.62
5.39
5.50
16.51
5.50
p1d3
5.71
5.79
5.51
17.01
5.67
p2d1
5.66
5.60
5.48
16.74
5.58
p2d2
5.49
5.47
5.39
16.35
5.45
p2d3
5.60
5.48
5.59
16.67
5.56
p3d1
5.51
5.27
5.50
16.28
5.43
p3d2
5.44
5.49
5.61
16.54
5.51
p3d3
5.54
5.73
5.56
16.82
5.61
TESTIGO
5.71
5.70
5.65
17.05
5.68
ΣPG
55.46
55.65
55.39
166.49
5.55
p1d1
5.39
5.65
5.50
16.53
5.51
p1d2
5.20
5.53
5.66
16.39
5.46
p1d3
5.12
5.59
5.54
16.24
5.41
p2d1
5.18
5.35
5.19
15.72
5.24
p2d2
5.32
5.39
5.46
16.16
5.39
p2d3
5.35
5.24
5.45
16.04
5.35
p3d1
5.21
5.55
5.42
16.18
5.39
p3d2
5.48
5.50
5.58
16.56
5.52
p3d3
5.60
5.37
5.57
16.54
5.51
TESTIGO
5.55
5.55
5.57
16.67
5.56
ΣPG
53.39
54.71
54.94
163.03
5.43
165.65
165.88
165.49
497.01
5.52
Σ
54
ANEXO 6. Ancho del botón para la evaluación de la eficiencia de productos orgánicos
en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosa. Machachi Pichincha. 2002.
Frecuencias Productos
(F)
PG
SP
f1
f2
f3
I
II
Σ(FxP)
Σ(
III
x(FxP)cm
p1d1
2.82
2.80
3.07
8.68
2.89
p1d2
2.81
2.86
2.77
8.44
2.81
p1d3
2.90
2.79
2.85
8.54
2.85
p2d1
2.78
2.70
2.79
8.27
2.76
p2d2
2.74
2.67
2.92
8.33
2.78
p2d3
2.75
2.59
3.00
8.34
2.78
p3d1
2.79
2.85
2.96
8.60
2.87
p3d2
2.83
2.79
2.91
8.52
2.84
p3d3
2.87
2.87
2.69
8.42
2.81
TESTIGO
2.89
2.84
2.78
8.50
2.83
ΣPG
28.17
27.76
28.72
84.64
2.82
p1d1
2.86
2.87
2.94
8.66
2.89
p1d2
2.85
2.88
2.93
8.65
2.88
p1d3
2.90
2.80
2.87
8.56
2.85
p2d1
2.93
2.65
2.60
8.18
2.73
p2d2
2.98
2.99
2.85
8.81
2.94
p2d3
2.81
2.89
2.91
8.60
2.87
p3d1
3.09
2.82
2.86
8.77
2.92
p3d2
2.83
2.86
2.75
8.44
2.81
p3d3
2.70
2.91
2.73
8.33
2.78
TESTIGO
2.70
2.92
2.78
8.39
2.80
ΣPG
28.62
28.57
28.20
85.39
2.85
p1d1
2.81
2.95
2.73
8.48
2.83
p1d2
2.85
3.09
2.69
8.63
2.88
p1d3
2.85
2.88
2.94
8.67
2.89
p2d1
2.86
2.82
2.73
8.41
2.80
p2d2
2.78
2.78
2.95
8.51
2.84
p2d3
2.77
2.72
2.89
8.38
2.79
p3d1
2.85
2.83
3.08
8.76
2.92
p3d2
2.80
2.83
2.70
8.32
2.77
p3d3
2.91
2.72
2.79
8.42
2.81
TESTIGO
2.75
2.81
2.85
8.41
2.80
ΣPG
28.21
28.44
28.34
84.99
2.83
85.00
84.77
85.26
255.02
2.83
Σ
55
ANEXO 7. Índice de agallamiento para la evaluación de la eficiencia de productos
orgánicos en la reducción de la población de Meloidogyne sp. en rosa
Machachi - Pichincha 2002.
Productos
f1
p1d1
40.00
36.00
46.00
122.00
40.67
p1d2
39.00
42.60
41.50
123.10
41.03
p1d3
18.90
28.70
25.00
72.60
24.20
p2d1
32.00
31.00
37.10
100.10
33.37
p2d2
30.50
20.00
29.90
80.40
26.80
p2d3
37.00
33.10
36.00
106.10
35.37
p3d1
36.00
36.10
35.60
107.70
35.90
p3d2
21.00
25.00
21.50
67.50
22.50
p3d3
21.00
20.00
19.50
60.50
20.17
TESTIGO
20.00
23.00
19.10
62.10
20.70
III
X(FxP)
295.40
295.50
311.20
902.10
30.07
p1d1
41.80
31.60
41.00
114.40
38.13
p1d2
27.10
33.50
41.00
101.60
33.87
p1d3
22.90
22.70
21.60
67.20
22.40
p2d1
38.50
40.80
32.10
111.40
37.13
p2d2
30.00
33.60
30.90
94.50
31.50
p2d3
31.00
37.10
30.60
98.70
32.90
p3d1
37.20
40.90
35.60
113.70
37.90
p3d2
19.10
15.00
23.10
57.20
19.07
p3d3
22.80
28.80
21.50
73.10
24.37
TESTIGO
25.60
27.50
24.10
77.20
25.73
ΣPG
f3
II
SP
ΣPG
f2
I
Σ(FxP)
Σ(
Frecuencias
(F)
PG
296.00
311.50
301.50
909.00
30.30
p1d1
32.50
39.50
46.00
118.00
39.33
p1d2
39.00
38.50
41.50
119.00
39.67
p1d3
28.90
28.70
29.50
87.10
29.03
p2d1
36.00
36.00
37.10
109.10
36.37
p2d2
32.00
28.20
29.90
90.10
30.03
p2d3
37.00
35.10
34.10
106.20
35.40
p3d1
37.50
36.10
40.60
114.20
38.07
p3d2
23.10
32.90
30.50
86.50
28.83
p3d3
19.10
20.00
25.50
64.60
21.53
TESTIGO
20.00
33.00
19.10
72.10
24.03
305.10
328.00
333.80
966.90
32.23
896.50
935.00
946.50
2778.00
30.87
ΣPG
Σ
56
ANEXO 8. Porcentaje de reducción de la población de nemátodos para la evaluación
de la eficiencia de productos orgánicos en la reducción de la población de
Meloidogyne sp. en rosa Machachi - Pichincha 2002.
Frecuencias
(F)
PG
Productos
f1
p1d1
92.00
p1d2
p1d3
Σ(FxP)
Σ(
III
X(FxP)
78.57
78.61
249.18
83.06
70.00
0.00
92.00
162.00
54.00
73.33
88.57
13.85
175.75
58.58
p2d1
93.33
100.00
0.00
193.33
64.44
p2d2
100.00
100.00
82.22
282.22
94.07
p2d3
89.47
100.00
0.00
189.47
63.16
p3d1
75.00
49.04
94.96
219.01
73.00
p3d2
0.00
87.50
48.00
135.50
45.17
p3d3
100.00
38.89
92.86
231.75
77.25
80.13
53.33
59.73
193.20
64.40
ΣPG
773.27
695.91
562.23
2031.41
67.71
p1d1
68.00
64.03
60.00
192.03
64.01
p1d2
0.00
18.75
77.78
96.53
32.18
p1d3
3.74
0.00
31.56
35.30
11.77
p2d1
89.47
83.19
20.00
192.67
64.22
p2d2
31.58
40.54
89.47
161.59
53.86
p2d3
92.86
82.46
82.67
257.98
85.99
p3d1
0.00
6.67
93.85
100.51
33.50
p3d2
0.00
46.15
68.00
114.15
38.05
p3d3
82.76
96.15
78.25
257.16
85.72
TESTIGO
77.97
100.00
70.00
247.97
82.66
446.39
537.94
671.57
1655.90
55.20
p1d1
72.22
100.00
78.38
250.60
83.53
p1d2
100.00
100.00
86.67
286.67
95.56
p1d3
100.00
100.00
76.38
276.38
92.13
p2d1
85.19
87.69
84.00
256.88
85.63
p2d2
93.33
50.00
100.00
243.33
81.11
p2d3
77.01
35.06
75.00
187.08
62.36
p3d1
100.00
100.00
86.06
286.06
95.35
p3d2
100.00
100.00
87.50
287.50
95.83
p3d3
87.50
50.77
100.00
238.27
79.42
100.00
94.20
94.48
288.68
96.23
915.25
817.73
868.46
2601.44
86.71
2134.91
2051.58
2102.26
6288.75
ΣPG
f3
II
SP
TESTIGO
f2
I
TESTIGO
ΣPG
Σ
69.87
larvas / 100g
de suelo
57
ANEXO 9.
Escala establecida por Taylor (43), para índice de agallamiento en raíces de rosa.
INDICE DE DAÑO
ESCALA
% DE INFESTACION
0
0
Raíces con pocas nudosidades
1
20
Raíces con muchas nudosidades pequeñas
2
40
Raíces con pocas nudosidades grandes
3
60
Raíces con muchas nudosidades
4
80
Raíces con grandes deformaciones
5
100
Raíces sin nudosidades