zeolitas de oaxaca: caracteristicas

SECRETARIA DE AGRICULTURA, GANADERIA, DESARROLLO RURAL, PESCA Y
ALIMENTACIÓN
Secretario
C. Javier Bernardo Usabiaga Arroyo
Subsecretario de Agricultura y Ganadería
Ing. Francisco López Tostado
Subsecretario de Desarrollo Rural
Ing. Antonio Ruíz García
INSTITUTO NACIONAL DE INVESTIGACIONES FORESTALES, AGRÍCOLAS Y
PECUARIAS
Director General
Dr. Jesús Moncada de la Fuente
Coordinador General de Investigación y Desarrollo
Dr. Ramón A. Martínez Parra
Director General de Investigación Agrícola
Dr. Sebastián Acosta Nuñez
Director General de Investigación Pecuaria
Dr. Carlos Vega y Murguía
Director General de Investigación Forestal
Dr. Hugo Ramírez Maldonado
CENTRO DE INVESTIGACIÓN REGIONAL PACIFICO SUR
Director Regional
Dr. Héctor M. Cortinas Escobar
Director de Investigación
Dr. Pedro Cadena Iñiguez
Director de Coordinación y Vinculación en Oaxaca
MC. Juan F. Castellanos Bolaños
ZEOLITAS DE OAXACA: CARACTERISTICAS
MINERALOGICAS Y MORFOLOGICAS
Dr. Miguel A. Cano García
Campo Experimental Valles Centrales de Oaxaca, CIRPAS-INIFAP
MC. Carlos Arredondo Velásquez
Campo Experimental Valles Centrales de Oaxaca, CIRPAS-INIFAP
(Hasta Agosto de 2003)
Portada: Imagen de microscopio de barrido de electrones mostrando cristales de clinoptilolita con
una ampliación de 2,500 veces. El ancho de la imagen representa aproximadamente 28.2 um en la
muestra.
Contraportada: Catedral de la ciudad de Oaxaca, construida con material que contiene zeolitas.
Secretaría de Agricultura. Ganadería, Desarrollo Rural, Pesca y Alimentación
Instituto Nacional de Investigaciones Forestales, Agrícolas y Pecuarias
Centro de Investigación Regional Pacífico Sur
Campo Experimental Valles Centrales de Oaxaca
Oaxaca, Oax., México. Octubre 2004
ZEOLITAS DE OAXACA: CARACTERISTICAS
MINERALOGICAS Y MORFOLOGICAS
Publicación Técnica No 1, Octubre 2004
Campo Experimental Valles Centrales de Oaxaca
Melchor Ocampo No. 7. Santo Domingo, Barrio Bajo. Etla. Oaxaca.
Tel y Fax (951) 521 5502
Correo electrónico: cano.miguel@inifap.gob.mx
La información contenida en esta publicación es producto de un proyecto de investigación
financiado por el Consejo Nacional de Ciencia y Tecnología (CONACYT) y por la
Fundación PRODUCE Oaxaca, A.C.
La cita correcta de esta publicación es: Cano García M. A. y C. Arredondo Velásquez. 2004.
Zeolitas de Oaxaca: características mineralógicas y morfológicas. INIFAP. CIRPAS. Campo
Experimental Valles Centrales de Oaxaca. Publicación Técnica No. 1. Oaxaca, Oaxaca. 63p.
CONTENIDO
Pag.
I. INTRODUCCIÓN .......................................................................................................................................1
1.1. COMPOSICIÓN QUÍMICA Y ESTRUCTURA DE LAS ZEOLITAS. ..............................................................................2
1.2. APLICACIONES DE LAS ZEOLITAS ...................................................................................................................3
1.3. APLICACIONES DE ZEOLITAS EN LA AGRICULTURA ..........................................................................................4
II. MATERIALES Y METODOS. ........................................................................................................................7
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN....................................................................................................................11
3.1. MINERALOGÍA ............................................................................................................................................11
3.1.1. Muestras con zeolitas .........................................................................................................................12
3.1.2. Muestras sin zeolitas. .........................................................................................................................16
3.2. MORFOLOGÍA DE LAS ZEOLITAS. ..................................................................................................................18
3.3. MUESTRAS CON PROPIEDADES PARA USARSE COMO MEJORADORES DEL SUELO. .............................................28
VII. CONCLUSIÓNES .......................................................................................................................................30
LITERATURA CITADA ....................................................................................................................................31
ANEXO 1. PATRONES DE RAYOS-X DE LAS MUESTRAS ANALIZADAS ...............................................33
ANEXO 2. DATOS DE ESPACIAMIENTO E INTENSIDAD DE LAS MUESTRAS ANALIZADAS............54
INDICE DE CUADROS
Pag.
Cuadro 1. Localización de lo sitios y características físicas de las muestras. ...............................9
Cuadro 2. Grupos principales de acuerdo a mineral dominante en la muestra. .......................12
Cuadro 3. Intensidad (cps) de los picos característicos de las muestras con clinoptilolita.....12
Cuadro 4. Intensidad de los picos característicos de las muestras conteniendo
principalmente clinoptilolita y cuarzo. .........................................................................................13
Cuadro 5, intensidad (cps) de los picos característicos de las muestras que contienen
feldespatos, cuarzo y mica ................................................................................................................17
Cuadro 6. Intensidad relativa EDX para cristales tabulares de clinoptilolita y fibras. ..........28
Cuadro 7. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las
muestras (Sm) 1, 2 y 3........................................................................................................................55
Cuadro 8. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las
muestras (Sm) 4, 5 y 6........................................................................................................................56
Cuadro 9. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las
muestras (Sm) 7, 8 y 9........................................................................................................................57
Cuadro 10. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las
muestras (Sm) 10, 11, 12, 13 y 14. ..................................................................................................58
Cuadro 11. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las
muestras (Sm) 15, 16, 17, 18 y 19. ..................................................................................................60
Cuadro 12. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las
muestras (Sm) 20, 21, y 22................................................................................................................62
Cuadro 13. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las
muestras (Sm) 23, 24, 25 y 26 ..........................................................................................................63
INDICE DE FIGURAS
Pag.
Figura 1. Localización de los sitios de muestreo en el estado de Oaxaca. ......................................8
Figura 2. Difractómetro utilizado para el análisis de rayos-x .........................................................10
Figura 3. Microscopio de electrones utilizado para el análisis de las muestras .........................11
Figura 4. Patrón de rayos-x de la muestra 7 (valores de espaciamiento en Å)...........................14
Figura 5. Patrón de rayos-x de la muestra 6 (valores de espaciamiento en Å)...........................15
Figura 6. Crecimiento de clinoptilolita en poros de la muestra 10. (El valor después de la
“X” muestra las veces que se amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia
en micras (um) en la imagen) ..........................................................................................................19
Figura 7. Clinoptilolita tabular (a) y prismatica (b) y fibras en sus caras (c) en la muestra
10. (El valor después de la “X” muestra las veces que se amplificó la imagen; la línea
punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen) ...................................................20
Figura 8. Fibras de mordenita (?) sobre cristales de clinoptilolita (a) y crecimiento radial de
clinoptilolita (b y c) en la muestra 10. (El valor después de la “X” muestra las veces
que se amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um) en la
image .......................................................................................................................................................22
Figura 9. Crecimiento radial (a) y morfología tabular (b) de clinoptilolita en la muestra 14.
(El valor después de la “X” muestra las veces que se amplificó la imagen; la línea
punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen ....................................................23
Figura 10. Esférulas de cristales menores que clinoptilolita presentes en la muestra 7. (El
valor después de la “X” muestra las veces que se amplificó la imagen; la línea
punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen ....................................................24
Figura 11. Magnificación de esférulas (a) y fibras (b) en la muestra 7. (El valor después de
la “X” muestra las veces que se amplificó la imagen; la línea punteada indica la
distancia en micras (um) en la imagen .........................................................................................25
Figura 12. Arcillas tipo clorita en la muestra 8. . (El valor después de la “X” muestra las
veces que se amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um)
en la imagen ..........................................................................................................................................26
Figura 13. Arcillas tipo clorita y cristales de clinoptilolita en la muestra 8. . (El valor
después de la “X” muestra las veces que se amplificó la imagen; la línea punteada
indica la distancia en micras (um) en la imagen .......................................................................27
Figura 14. Patrón de rayos-x de la muestra 10 (valores de espaciamiento en Å) ......................34
Figura 15. Patrón de rayos-x de la muestra 25 (valores de espaciamiento en Å) ......................35
Figura 16. Patrón de rayos-x de la muestra 14 (valores de espaciamiento en Å) ......................36
Figura 17. Patrón de rayos-x de la muestra 8 (valores de espaciamiento en Å) ........................37
Figura 18. Patrón de rayos-x de la muestra 15 (valores de espaciamiento en Å) ......................38
Figura 19. Patrón de rayos-x de la muestra 9 (valores de espaciamiento en Å) ........................39
Figura 20. Patrón de rayos-x de la muestra 13 (valores de espaciamiento en Å) ......................40
Figura 21. Patrón de rayos-x de la muestra 24 (valores de espaciamiento en Å) ......................41
Figura 22. Patrón de rayos-x de la muestra 26 (valores de espaciamiento en Å) ......................42
Figura 23. Patrón de rayos-x de la muestra 22 (valores de espaciamiento en Å) ......................43
Figura 24. Patrón de rayos-x de la muestra 1 (valores de espaciamiento en Å) ........................44
Figura 25. Patrón de rayos-x de la muestra 2 (valores de espaciamiento en Å) ........................45
Figura 26. Patrón de rayos-x de la muestra 3 (valores de espaciamiento en Å) ........................46
Figura 27. Patrón de rayos-x de la muestra 4 (valores de espaciamiento en Å) ........................47
Figura 28. Patrón de rayos-x de la muestra 5 (valores de espaciamiento en Å) ........................48
Figura 29. Patrón de rayos-x de la muestra 21 (valores de espaciamiento en Å) ......................49
Figura 30. Patrón de rayos-x de la muestra 18 (valores de espaciamiento en Å) ......................50
Figura 31. Patrón de rayos-x de la muestra 19 (valores de espaciamiento en Å) ......................51
Figura 32. Patrón de rayos-x de la muestra 20 (valores de espaciamiento en Å) ......................52
Figura 33. Patrón de rayos-x de las muestras 11, 12, 16, 17 y 23 (valores de espaciamiento
en Å) ........................................................................................................................................................53
ZEOLITAS DE OAXACA: CARACTERISTICAS MINERALOGICAS Y
MORFOLOGICAS
Miguel A. Cano García1
Carlos Arredondo Velasquez2
I. INTRODUCCIÓN
Las zeolitas son un grupo de minerales con características únicas que las hacen materiales muy
importantes en aplicaciones industriales y agrícolas. La industria ha encontrado en estos
minerales, usos muy valiosos debido a propiedades como: volumen vacío, hidratación, densidad,
estabilidad de la estructura cristalina, intercambio catiónico, diámetro de canales y
comportamiento catalítico. Este importante papel fue alcanzado por estos minerales hasta unos
200 años después de su descubrimiento por Cronsted en 1756 quien los nombro “zeolitas” (del
griego que significa piedras hirvientes) por que estos minerales parecían hervir cuando se
sometían a calentamiento con el mechero (Higgins, 1994). No fue sino hasta el descubrimiento de
su aplicación como filtros moleculares en los 1920’s cuando la industria le prestó un gran interés
a las zeolitas principalmente como prototipos de productos sintéticos. Las zeolitas naturales
empezaron a ser estudiadas con mas detalle después del descubrimiento de depósitos
sedimentarios extensivos a finales de los 1950’s.
Aunque la importancia económica de las zeolitas ha estado relacionada principalmente a usos
industriales como entidades catalíticas y filtros moleculares, la agricultura también ha tomado
ventaja de sus propiedades usándolas como acondicionadores de suelo y suplementos
alimenticios en animales. Sin embargo, es necesario hacer mas investigación en usos específicos
y disponibilidad de la zeolita. En países desarrollados la utilización de estos minerales ha estado
ligada principalmente a la industria, reflejando la disponibilidad de la tecnología necesaria para
procesarla. En países en desarrollo, la explotación de zeolitas se enfoca mas a usos agrícolas y
depende fuertemente en la existencia de grandes depósitos con concentraciones altas de zeolitas y
con el potencial para una explotación minera rentable. Por esta razón, es muy importante
identificar adecuadamente y caracterizar depósitos zeoliticos de importancia económica
localizados en países en desarrollo.
1. Investigador del Campo Experimental Valles Centrales de Oaxaca. CIRPAS. INIFAP.
2. Investigador del Campo Experimental Valles Centrales de Oaxaca hasta agosto de 2003.
La documentación sobre la existencia de depósitos zeoliticos de importancia comercial es escasa
en México. Mumpton (1973) es el autor de lo que el definió como la primera ocurrencia
documentada de zeolitas en rocas sedimentarias de México. Después de este escrito, solamente
unos cuantos estudios se han reportado adicionalmente.
En este trabajo se presentan los resultados de análisis de rayos-x sobre muestras colectadas en
tobas volcánicas del estado de Oaxaca y las características de morfología de las zeolitas presentes
en una de las muestras con altas concentraciones de zeolita. Se consideró importante agregar una
revisión de literatura sobre características mineralógicas de zeolitas, principalmente sobre
clinoptilolita y sus aplicaciones, debido a que la mayor parte de los reportes se encuentran en
revistas científicas a las que difícilmente se tiene acceso en regiones del país donde no se cuenta
con bibliotecas importantes. Se agregan además como anexos, los patrones de rayos-x de todas
las muestras analizadas y los valores de espaciamiento de los picos presentes en los patrones con
el objeto de que sirvan como material de referencia a investigadores y estudiantes interesados en
el tema.
1.1. Composición química y estructura de las zeolitas.
La unidad básica de minerales de silicatos es el tetraedro de silicio que consiste en un ión Si4+
rodeado por cuatro iones O2- formando el tetraedro SiO4 (Schulze, 1989). En zeolitas, todos los
O’s de cada tetraedro están ligados a tetraedros adyacentes produciendo una estructura
tridimensional. Los iones de aluminio, debido a que tienen tamaño similar a los iones de silicio,
parcialmente lo sustituyen en el tetraedro y por esta razón, las zeolitas y otros minerales de
arcillas se definen como aluminosilicatos. Por otro lado, esta sustitución produce una deficiencia
en cargas positivas que son balanceadas con cationes monovalentes y divalentes, principalmente
Na+, K+ y Ca2+.
Aunque son parte de los tectosilicatos (estructura tridimensional) al cual pertenecen también el
cuarzo y feldespatos, las zeolitas presentan un rango completamente diferente de propiedades.
Esta diferencia impactante puede percibirse mejor cuando se comparan sus densidades. De
acuerdo a Ming y Mumpton (1989) la densidad del cuarzo y feldespatos fluctúa entre 2.6 y 2.7
2
Mg m-3, mientras que la densidad de las zeolitas varía de 2.1 a 2.2 Mg m-3. Esta baja densidad
significa que las zeolitas tienen grandes cantidades de volumen vacío, lo cual es principalmente
responsable de sus propiedades particulares de hidratación-deshidratación.
El factor principal que ocasiona estas diferencias es la estructura. La unidad constituyente
primaria en la estructura de las zeolitas son tetraedros de SiO4 y AlO4, que se conectan dentro de
formas geométricas sencillas llamadas unidades constituyentes secundarias (UCS). La forma en
que estas UCS se arreglan entre ellas producen estructuras cristalinas con propiedades físicas y
químicas particulares (Gottardi y Galli, 1985). De acuerdo a Holmes (1994) zeolitas con
composición química similar presentan características físicas y químicas únicas debido a
diferencias en la estructura.
1.2. Aplicaciones de las zeolitas
Entendiendo
la forma en que sus características particulares pueden aprovecharse
comercialmente, se ha logrado el descubrimiento de varias aplicaciones de zeolitas. Sus usos
principales están en la industria como filtros moleculares y catalizadores. Estos usos han sido casi
exclusivos de zeolitas sintéticas porque éstas son fabricadas con las propiedades deseadas para
una aplicación específica. Adicionalmente, las zeolitas sintéticas no tienen los diversos cationes
presentes en sus contrapartes naturales que podrían contaminar los productos finales. Una
faujasita sintética es esencial como un catalizador de gasolina y la zeolita sintética A es usada en
detergentes en lugar de fosfatos que podrían producir deterioros biológicos en lagos (Tschernich,
1992).
Sin embargo, la importancia de las zeolitas naturales se incrementa gradualmente, como lo
indican las cifras reportadas por Holmes (1994) acerca de la producción anual de
aproximadamente un millón de toneladas en el mundo. Japón es frecuentemente citado como el
primer país en hacer un uso masivo de las zeolitas y también como un líder en su explotación.
Una revisión extensiva de estas aplicaciones es ofrecida por Torri (1978) quién reporto que hasta
4,000 ton de este mineral son usadas mensualmente como aditivos en papel. Otras 1,400 ton
3
mensuales se utilizan en alimentación de peces, suplementos dietéticos en animales, mejoradores
de suelos y otros usos industriales.
1.3. Aplicaciones de zeolitas en la agricultura
Las aplicaciones de zeolitas naturales con fines agrícolas están creciendo debido a una variedad
de factores dentro de los que destacan la disponibilidad de depósitos económicamente rentables,
el incremento de reportes científicos sobre su utilización y la preocupación acerca de riesgos
ambientales. De acuerdo a lo anterior, Ming y Mumpton (1989) reportaron las siguientes
aplicaciones de zeolitas en la agricultura:
¾ Liberación lenta de fertilizantes y/o almacén de K+ en el suelo.
¾ Trampas para iones de metales pesados en suelos.
¾ Suplemento dietético en nutrición animal.
¾ Tratamiento de malos olores y retención de nutrientes en estiércol.
¾ Secuestro de metales pesados en nutrición animal.
¾ Prevención de enfermedades intestinales en animales jóvenes.
El uso de zeolitas como mejoradores de suelos ha sido confinado casi exclusivamente al uso de
clinoptilolita. Esta aplicación proviene de la alta afinidad de clinoptilolita por NH4+, y de su
liberación subsecuente del NH4+. Aunque no hay una fórmula única para clinoptilolita debido a
que la proporción de los cationes en la relación Si/Al varia ligeramente, Ming y Mumpton (1989)
presentan la fórmula siguiente:
(Na3 K3) (Al6 Si30 O72) • 24H2O
En esta fórmula, Na+ y K+ están presentes en cantidades iguales, pero algunas clinoptilolitas
pueden tener mas Na+ o K+ pudiendo producir efectos diferentes de los esperados.
En una revisión detallada de zeolitas en agricultura, una de las aplicaciones mas citadas fue la
relacionada con la selectividad y afinidad de clinoptilolita por NH4+. Tomando ventaja de esta
4
propiedad, la clinoptilolita absorbería el NH4+, evitando su transformación a formas no
disponibles para las plantas (Mumpton, 1983). La mayoría de los fertilizantes nitrogenados son
compuestos que liberan iones NH4+ o NO3-. En el caso de NH4+, este ión es muy susceptible de
convertirse al ión NH3, principalmente en suelos alcalinos (porque la conversión requiere altas
concentraciones de iones OH- y perderse por volatilización. El ión NH4+ también puede ser
absorbido en lugares intercambiables de la matriz del suelo o convertirse rápidamente en el ión
NO3- mediante el proceso de nitrificación. La pérdida por percolación del ión NO3 - es frecuente
en suelos sujetos a irrigación o a lluvias fuertes. De acuerdo a lo anterior, la condición mas
deseable del ión NH4+ es la de su absorción en lugares intercambiables de la matriz del suelo
antes de perderse por volatilización o convertirse en el ión NO3- con el riesgo de percolarse a
zonas más abajo de la explorada por las raíces de las plantas. En este proceso la clinoptilolita
puede jugar un papel muy importante absorbiendo el ión NH4+ en sus posiciones intercambiables,
evitando su conversión a NH3 o NO3- y liberándolo posteriormente a una menor velocidad que
permita a las plantas utilizarlo. Este efecto seria particularmente efectivo en suelos con textura
gruesa, que por su baja capacidad de intercambio catiónico, no son capaces de retener el ión
NH4+ en su matriz.
Pirela et al (1983) exploraron esta característica mejoradora del nitrógeno en varios cultivos
usando material con cerca de 60% de clinoptilolita que contenía principalmente Na+. Se probaron
diferentes dosis de clinoptilolita que variaron entre 0.5 y 32 ton ha-1 en sorgo, rábano, maíz,
remolacha azucarera y pepino, concluyendo que la clinoptilolita no había tenido efecto en el
rendimiento de los cultivos excepto por una respuesta negativa en rendimiento de maíz que fue
sugerido como debido al efecto de liberación de Na+ de la clinoptilolita en cantidades toxicas
para el cultivo.
Este efecto adverso de clinoptilolita fue también reportado por Nishita et al (1968) cuando
probaron clinoptilolita para reducir la absorción de Sr90 por plantas de frijol en suelos
contaminados. Aunque clinoptilolita redujo significativamente la toma de este elemento por el
cultivo, una reducción en rendimiento acompaño a este efecto. La reducción en rendimiento fue
atribuida a la liberación de Na+ por la clinoptilolita que tenia una alta cantidad intercambiable de
este cation. Weber et al (1983b) también expresaron esta preocupación acerca de la contribución
de Na+ en cantidades toxicas por clinoptilolita. De acuerdo a ellos, 32 ton métricas de una
5
clinoptilolita con alto contenido de este cation en sus posiciones intercambiables, agregaría
aproximadamente 670 kg de Na+ en una superficie de una hectárea.
En otro experimento, Lewis et al (1983) encontraron que clinoptilolita mezclada con amonio
redujo la fijación de NH4+ de illita y vermiculita presentes en un suelo de textura media y
redujeron las pérdidas por precolación de nitrato en un suelo de textura gruesa. Estos autores
también probaron clinoptilolita + urea y no obtuvieron ningún efecto en el suelo de textura
media. Sin embargo, este tratamiento eliminó la toxicidad de urea en el suelo grueso
aparentemente absorbiendo NH4+ y eliminando la toxicidad de NH3 o NO2-. Estos efectos se
reflejaron en incrementos significantes de área foliar, peso seco y toma de nitrógeno en rábanos.
La clinoptilolita como una fuente de K+ para plantas fue probada por Hersey et al (1980) con
crisantemos en macetas. Se encontró que los rendimientos de plantas abastecidas con una dosis
de K+ aportada por clinoptilolita, no fueron diferentes de aquellas que obtuvieron la misma
cantidad de K+ de una solución de KNO3.
En una revisión acerca de usos en agronomía y horticultura de zeolitas, Barbarick y Pirela (1983)
encontraron una tendencia general de incrementos nulos de rendimiento con la aplicación de
zeolitas. De acuerdo a estos autores, se requieren altas dosis de aplicación de clinoptilolita para
incrementar significativamente el rendimiento de plantas especialmente en suelos de textura fina
a media, debido a sus propiedades de alta capacidad de intercambio catiónico (CIC). Sin embargo
usar dosis altas de clinoptilolita podría no ser económicamente rentable (Weber et al, 1983a).
Aun si la zeolita costara 10 dólares por tonelada, una dosis de 135 ton ha-1 tendría un costo
prohibitivo dependiendo del cultivo. Con base en la literatura revisada acerca de la clinoptilolita
como mejorador de suelos, es claro que cualquier investigación que pretenda tener éxito debe
considerar al menos los siguientes aspectos.
¾ Tener una determinación exacta de la clase de zeolita presente en el material fuente
¾ Tener una determinación semicuantitativa de la proporción de clinoptilolita en el material
fuente
¾ Tener una determinación de si es Na+ o K+ el cation predominante en la clinoptilolita.
6
Otro aspecto a considerar es la textura y mineralogía de los suelos expuestos a aplicaciones de
clinoptilolita. En suelos de textura fina probablemente fracasarán los intentos de producir efectos
positivos con la aplicación de clinoptilolita debido a que las arcillas presentes en ese suelo
compiten con la zeolita en absorción de los iones. Lo mismo podría ser cierto en otros suelos con
altos valores de CIC.
II. MATERIALES Y METODOS.
Se colectaron 26 muestras de diferentes lugares del centro y noreste de Oaxaca (Figura 1) usando
como criterio la similitud de los materiales de toba con aquellos existentes en el sitio descrito por
Mumpton (1973), además de que fueran sitios en explotación (principalmente como materiales de
construcción) y de fácil acceso. La mayoría de las muestras se colectaron en canteras cercanas al
sitio de Mumpton en el Distrito Político de Etla y el resto se colectó en los Distritos de Tlacolula,
Nochixtlan, Coixtlahuaca y Oaxaca. El cuadro 1 presenta información acerca de la localización y
características físicas de las muestras.
Las muestras fueron molidas y tamizadas a través de una malla de 60 mesh para separar la
fracción mineral con diámetro menor a 0.25 mm (arena fina y mas fino). Después de esto, las
muestras se montaron en portamuestras para analizarlas como polvo aleatorizado en un
difractometro Philips-Norelco operado a 40 kV y 20 mA, con radiación Cu KΣ filtrado con Ni
(Figura 2). Las muestras fueron sometidas a rayos x en el rango de 2 a 60 grados 2θ, en el
Laboratorio de Geociencias de la Universidad “Texas Tech University” en Lubbock, Texas.
Las muestras en el difractómetro son sometidas a radiación de rayos-x mientras varía su ángulo
en relación con la fuente de radiación. Las arcillas son cristales con átomos arreglados en un
patrón que se repite periódicamente en forma tridimensional. Cuando los rayos-x impactan un
átomo, su energía es dispersada en todas direcciones pero cuando en un ángulo determinado los
rayos chocan con un arreglo de átomos, cada uno de ellos dispersa la energía y el difractómetro
registra el número de colisiones por segundo (cps) o intensidad. El producto del difractómetro es
una gráfica que en el eje de las abcisas presenta el ángulo de rotación de la muestra en grados (θ)
y en el eje de las ordenadas la intensidad en cps.
7
Figura 1. Localización de los sitios de muestreo en el estado de Oaxaca.
8
Cuadro 1. Localización de los sitios y características físicas de las muestras.
# Distrito
Municipio
Paraje
Color
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
Púrpura
Blanco
Púrpura
Rojo
Púrpura
Verde claro
Blanco
Amarillo
Verde claro
Azul-Verde
Púrpura
Blanco
Verde
Verde oscuro
Verde Jade
Rosa
Blanco
Melón
Verde oscuro
Rosa
Blanco
Verde claro
Blanco
Verde
Azul-Verde
Blanco
Tlacolula
Tlacolula
Tlacolula
Tlacolula
Tlacolula
Etla
Etla
Etla
Etla
Etla
Etla
Etla
Etla
Etla
Etla
Etla
Etla
Nochixtlan
Nochixtlan
Nochixtlan
Nochixtlan
Coixtlahuaca
Coixtlahuaca
Oaxaca
Etla
Etla
Mitla
Mitla
Mitla
Xaaga, Mitla
Union Zapata, Mitla
Magdalena, Apasco
Magdalena, Apasco
Magdalena, Apasco
San Lazaro
Reyes Etla
Suchilquitongo
Suchilquitongo
Soledad
Reyes
Tlaltinango
Huitzo
Huitzo
Yanhuitlan
Yanhuitlan
Yanhuitlan
San M. Coyotepec
San Fco Teopan
Magdalena Jicotlan
Oaxaca
Reyes Etla
Reyes Etla
Banco de piedra
Banco de piedra
Banco de piedra
La loma
Falda del cerro
Las crucesitas
Las crucesitas
Peña larga
La cantera
Crucero San Juan
Yutandehui
Yutandehui
Las canteras
La peña del tambor
La concha
La cantera
La cantera
Tooxi
Cerro de las canicas
Cerro yuxacino
Supercarretera
Cerro ent. al pueblo
Cerro de la ordeña
Cd. de las canteras
Crucero San Juan
Crucero San Juan
El espaciamiento (d) al que ocurre cada pico de intensidad es calculado posteriormente mediante
la ecuación de Bragss que es la siguiente:
d = 1.5418 / 2senθ
donde:
d = Angstroms (Å)
1 Å = 10-8 cm
Con los valores del espaciamiento d y la intensidad de los picos, se utilizan las tarjetas del comité
sobre estándares de difracción de muestras en polvo o Joint Committee on Powder Difraction
Standars (JCPDS) para la identificación de los minerales presentes en las muestras.
9
Figura 2. Difractómetro utilizado para el análisis de rayos-x
De acuerdo a la información generada por difracción de rayos-x se seleccionaron las muestras 7,
8, 10 y 14 por sus altos contenidos de zeolita para analizar sus características mediante el uso de
microscopio de electrones o Scanning Electrón Microscope (SEM). Se utilizó un microscopio
Hitachi S-570 (Figura 3) y se realizaron magnificaciones entre 150x y 10,000x. Para el análisis
en SEM, fragmentos de toba recién cortados con diámetros menores a 5 mm se cubrieron con una
película de 200 Å de espesor, de aleación de oro/paladio La muestra 10 se sometió a además al
análisis de Energía Dispersiva de Electrones ó Electrón Dispersive X-ray (EDX) con un
microscopio de transmisión de electrones JEM-100C que cuenta con un microanalizador
KEVEX, con el objeto de estimar semi-cuantitativamente la composición elemental de la
clinoptilolita presente. El análisis de SEM se realizó en el laboratorio de microscopía de
electrones del Departamento de Biología y el análisis de EDX en el Laboratorio de Geociencias,
ambos de la Universidad “Texas Tech University” en Lubbock, Texas.
10
Figura 3. Microscopio de electrones utilizado para el análisis de las muestras
III. RESULTADOS Y DISCUSIÓN.
3.1. Mineralogía
Los resultados obtenidos se organizaron en grupos de acuerdo a los minerales dominantes en
cada muestra (cuadro 2). Es importante mencionar que las muestras 10 y 25 son del mismo sitio
descrito por Mumpton aunque colectadas en diferentes fechas. En el cuadro 2 se muestra que 12
de las 26 muestras analizadas contienen zeolitas, específicamente clinoptilolita. En cuatro de
estas 12 muestras, la clinoptilolita representa la fracción dominante de porque otros minerales
aparecieron solamente en pequeñas proporciones en el patrón de rayos-x. Las tres siguientes
muestras tienen analcima aunque no en concentración o cristalinidad suficiente para ser
fácilmente identificadas. El resto de las muestras contiene principalmente feldespatos y micas
aunque una de ellas registra predominantemente dolomita y calcita. Información acerca de θ,
espaciamiento (d) e intensidad (cps) se presenta en detalle en los anexos 1 y 2 para todas las
muestras.
11
Cuadro 2. Grupos principales de acuerdo a mineral dominante en la muestra.
Grupo
Número de muestra
Clinoptilolita
7
10
25
14
Clinoptilolita/cuarzo
6
8
9
13
15
Clinoptilolita/feldespatos
22
Feldespatos/cuarzo/mica
1
2
3
4
5
Dolomita
21
Analcima
18
19
20
Poco cristalino
11
12
16
17
23
24
-
26
-
3.1.1. Muestras con zeolitas
Como se estableció anteriormente, la clinoptilolita es la zeolita presente estas muestras. Este
mineral se caracteriza por su pico más fuerte a 3.97 Å, y tres picos característicos más a 8.99,
3.91 y 2.97 Å. El cuadro 3 muestra la intensidad de los picos a los valores de d característicos de
clinoptilolita. El pico a 3.91 Å en las muestras, es encubierto por el pico a 3.97 Å.
Cuadro 3. Intensidad (cps) de los picos característicos de las muestras con clinoptilolita.
Espaciamiento del pico característico (Å)
Muestra
Otro mineral
3.97
8.99
2.97
7
1620
790
980
10
1460
840
900
6
1360
640
814
Cuarzo
25
1068
1302
840
15
1220
800
820
Cuarzo
8
1220
680
840
Cuarzo
9
1200
480
720
Cuarzo
14
1200
480
700
26
780
960
420
Feldspatos
13
960
300
640
Cuarzo
22
680
350
420
Feldspatos
24
400
450
440
Cuarzo /feldspatos
Clinoptilolita. Las muestras 7, 10, 25 y 14 contienen predominantemente clinoptilolita de acuerdo
al análisis de rayos-x. El patrón obtenido para la muestra 7, se presenta en la Figura 4 y los
patrones para las otras muestras (10, 25 y 14) se presentan en el anexo 1. En la Figura 4 se
observa que los picos a 8.86, 3.94 y 2.96 Å, evidencian la presencia de clinoptilolita. La mayoría
de los picos corresponden a clinoptilolita excepto por aquellos a 9.94, 3.34, 2.66, 4.51 y 3.69 Å.
12
Los primeros tres picos corresponden a biotita y los otros son impurezas no identificadas.
Aunque no se detecto fácilmente, el tercer pico característico de clinoptilolita reportado por las
tarjetas de la JCPDS (3.91 Å) esta presente en la mitad derecha del pico de 3.94 Å.
Clinoptilolita/cuarzo. Las muestras en este grupo tienen varias diferencias entre ellas. De hecho
se pueden hacer subgrupos con características similares. Por ejemplo las muestras 6, 8 y 15
tienen patrones muy similares y lo mismo ocurre con las muestras 9 y 13. Los patrones de las
muestras 24 y 26 tienen muchas diferencias y no pueden ser agrupados satisfactoriamente en
ninguno de los subgrupos anteriores. La Figura 5 corresponde al patrón de rayos-x de la muestra
6 y los patrones de las otras muestras en éste grupo (8, 15, 9, 13, 24 y 26) se presentan en el
anexo 1. La intensidad de los picos localizados en lugares característicos de clinoptilolita y
cuarzo, se indica en el cuadro 4. Las muestras 6, 8, 15 y 9 tienen intensidades similares en el pico
más fuerte de clinoptilolita; las muestras 13 y 26 tienen menores intensidades y la muestra 24
presenta la intensidad más débil.
Cuadro 4. Intensidad de los picos característicos de las muestras conteniendo principalmente
clinoptilolita y cuarzo.
Clinoptilolita
Cuarzo
Muestra
3.97
8.99
2.97
3.34
4.26
1.82
6
1360
640
840
1240
280
360
8
1220
680
840
2000
400
500
15
1220
700
820
1520
320
420
9
1200
480
720
1200
320
280
13
960
420
640
720
380
340
24
400
460
460
3700
800
760
26
680
700
340
13
14
Figura 4. Patrón de rayos-x de la muestra 7 (valores de espaciamiento en Å)
15
Figura 5. Patrón de rayos-x de la muestra 6 (valores de espaciamiento en Å)
Para cuarzo la muestra 24 tiene la intensidad más alta en el pico de 3.34 Å, seguida por las
muestras 8 y 15. Las muestras 6 y 9 tienen menores intensidades, y las muestras 13 y 14
presentan los valores mas bajos. De acuerdo a intensidad, la muestra 24 tiene el contenido más
alto de cuarzo, seguida por las muestras 8 y 15
Clinoptilolita/feldespatos/cuarzo. En la muestra 22 los feldespatos son los principales
constituyentes seguidos por clinoptilolita. Los picos mas fuertes a 3.17 y 3.19 Å, son indicativos
de la presencia del feldespato de calcio anortita. La evidencia de clinoptilolita son los picos a
3.96, 8.88 y 2.97 Å. El cuarzo también está presente en cantidades menores como se indica por
los picos a 3.33, 4.21 y 1.79 Å. El pico a 3.45 Å no pudo ser identificado. El patrón de rayos-x
para esta muestra se presenta en el anexo 1.
3.1.2. Muestras sin zeolitas.
Feldespatos/cuarzo/mica. Las muestras agrupadas en esta categoría son 1, 2, 3, 4 y 5 (Los
patrones de rayos-x se muestran en el anexo 1). La presencia de anortita (feldespato de calcio) es
indicada por los picos mas fuertes a 3.19 y 3.18 Å que ocurren en la muestra 1. Para las muestras
3, 4 y 5 solamente el pico a 3.19 Å es visible probablemente debido a que por su alta intensidad
se traslapa con el pico de 3.18 Å. En el caso de la muestra 2 este pico es aparentemente muy débil
para ser visible. El pico a 4.04 Å también es bastante evidente aunque con menor intensidad en
las muestras 2 y 4.
La ortoclasa (feldespato de potasio), también parece estar presente como se indica por el pico
fuerte a 3.31 Å y otros picos menores a 4.22, 3.46, 2.99, 2.90 y 2.77 Å. Aparentemente su pico
más fuerte a 3.31 Å se traslapa con el pico mas fuerte de cuarzo a 3.34 Å. La mica margarita
también podría estar presente como se evidencia por el pico que aparece en las muestras, en
diferentes posiciones alrededor de 9.7 y 9.8 Å como se aprecia en sus patrones de rayos-x en el
anexo 1. De acuerdo a esto, el pico a 3.18 Å en las muestras pudiera ser el pico más fuerte para
margarita seguido por los picos a 1.91 y 2.51 Å.
16
En la muestra 1 se observa un pico fuerte a 2.9 Å de espaciamiento d que corresponde a ortoclasa
y que es muy débil en las otras muestras. Los picos a 3.10-3.12 Å no pudieron ser identificados.
El cuadro 5 muestra la intensidad de los picos principales en las muestras 1, 2, 3, 4, y 5. De
acuerdo a este cuadro la anortita presentó las intensidades mas altas seguida por ortoclas,a lo que
significa una dominancia clara de feldespato en las muestras. El pico de cuarzo a 3.34 Å es de
menor intensidad que el de ortoclasa a 3.31 Å y por esta razón sus valores no están presentes en
el cuadro. Esta es la misma situación para el pico de margarita a 3.2 Å que fue encubierto por el
pico de anortita a 3.19 Å.
Cuadro 5, intensidad (cps) de los picos característicos de las muestras que contienen feldespatos,
cuarzo y mica
Muestra
1
2
3
4
5
Anortita
3.19
1620
1289
14600
10000
2400
4.04
1140
271
2088
250
1291
Ortoclasa
3.79
240
526
832
470
485
3.31
1560
2400
1986
2210
2054
2.90
1640
360
270
461
Cuarzo
4.22
360
1440
672
500
509
3.34
-
4.26
340
1440
672
500
509
Margarita
1.82
340
720
584
570
331
2.51
1331
672
599
400
391
3.20
-
4.40
182
409
180
194
Dolomita. La muestra 21 tiene evidencia clara de la presencia de dolomita. El pico fuerte a 2.89
Å y los picos a 2.19 y 1.79 Å son característicos de este mineral. La calcita está presente también
en menores concentraciones como se indica por los picos 3.02, 2.28 y 2.09 Å. Todos los picos
que se aprecian en el patrón de rayos-x (Anexo 1) son dolomitas o calcitas.
Analcima. Los picos de las muestras 18, 19 y 20 no pudieron identificarse satisfactoriamente. La
muestra 18 probablemente contiene analcima como se indica por los picos a 3.40, 5.54 y 2.90 Å
(Anexo 1). Esta muestra también presenta el pico característico de calcita a 3.02 Å y los picos a
2.27, 2.09 y 3.83 Å. Los picos a 3.20, 3.30 y 4.19 Å podrían representar la presencia de
microclina (feldespato de potasio) y los picos a 2.52, 3.20 y 4.41 Å es posible que indiquen la
presencia de margarita. El pico a 2.97 Å no pudo ser identificado.
17
La muestra 19 también presenta los picos para analcima (3.40, 5.55 y 2.88 Å) como puede verse
en su patrón de rayos-x en el anexo 1. La presencia de margarita es evidenciada por los picos a
2.52 y 3.2 Å. El pico no identificado a 2.97 Å nuevamente está presente. En esta muestra no hay
presencia de calcita. La muestra 20, probablemente tiene smectita/clorita como se indica por el
pico a 14.73 Å que se registra en el patrón de rayos-x en el anexo 8. Los picos a 3.18 y 2.49 Å
son signos probables de la presencia de albita o de anortita aunque se necesita más trabajo de
identificación con esta muestra. En esta muestra, si la analcima estuviera presente sería en muy
bajas cantidades.
Muestras poco cristalizadas. Las muestras 11, 12, 16, 17 y 23 se clasificaron de esta forma,
porque no produjeron buenos patrones de rayos-x como se observa en el anexo 1. Todas estas
muestras contienen clorita como se indica por el pico entre de 14.03 y 15.40 Å y todas ellas
tienen también paragonita y albita mientras que las muestras 12 y 23 también tienen illita.
3.2. Morfología de las zeolitas.
A partir del análisis de rayos-x se seleccionaron las muestras con mayores concentraciones de
zeolitas para su análisis mediante microscopio de barrido de electrones (SEM), observándose en
general la presencia de clinoptilolita en poros de las tobas seleccionadas. En las imágenes de la
muestra 10 se observa el cristal, su forma y la morfología de la clinoptilolita (Figuras 6 y 7). La
figura 6a presenta los cristales de clinoptilolita que crecieron en un poro de cerca de 250 µm en
diámetro y otros poros con clinoptilolita se aprecian en las figuras 6b y 6c. Ampliaciones
subsecuentes (figuras 7a y 7b), permiten resaltar la morfología predominantemente tabular de los
cristales de clinoptilolita y también se pueden observar fibras diseminadas en algunas de las caras
de los cristales. Las fibras mostradas en la figura 7b son similares a aquellas identificadas como
mordenita por Mumpton y Ormsby (1976). En la figura 7c también se observan cristales de
clinoptilolita prismática en la muestra.
18
19
(b)
(c)
imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen)
Figura 6. Crecimiento de clinoptilolita en poros de la muestra 10. (El valor después de la “X” muestra las veces que se amplificó la
(a)
20
(b)
(c)
veces que se amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen)
Figura 7. Clinoptilolita tabular (a) y prismatica (b) y fibras en sus caras (c) en la muestra 10. (El valor después de la “X” muestra las
(a)
De la figura 7b, la longitud del eje mas largo de los cristales de clinoptilolita puede estimarse
como de 15 a 19 µm y su espesor de cerca de 6 µm. El espesor de las fibras puede estimarse de la
figura 7c como cerca de 0.2 µm. La morfología de las fibras es evidente en la figura 8a y su
arreglo se parece a la característica de “nido de rata” de la mordenita reportada por Mumpton y
Ormsby (1976). Las figuras 8b y 8c ilustran la naturaleza radial del crecimiento de cristales
partiendo de una pared del poro.
Los cristales de clinoptilolita de la muestra 14 (Figura 9), presentan la misma morfología de los
cristales en la muestra 10. Las figuras 10 y 11 muestran algunas de las características encontradas
en la muestra 7. Esférulas formadas por cristales más pequeños que la clinoptilolita tabular se
muestran en las figuras 10a y 10b. De la figura 10b, el diámetro de las esférulas puede estimarse
como de 10 µm y el tamaño de los cristales pequeños puede estimarse como cerca de 1 µm,
basado en la figura 11a.
Morfológicamente estos cristales pequeños son similares a aquellos presentados e identificados
por Mumpton y Ormsby (1976) como la zeolita chabazita. La mordenita (?) también esta presente
en la muestra 7 como se observa en la figura 11b. En este caso las fibras parecen más como
agujas en lugar de estar entrelazadas como en la muestra 10. Mordenita en forma de agujas
también fue reportada por Mumpton y Ormsby (1976)
Los cristales de clinoptilolita estan presentes junto con una arcilla de filosilicatos probablemente
clorita o esmectita, en la muestra 8 y en la figura 12 se presenta una vista general de estas
arcillas. La ampliación del centro de la figura 12b permite apreciar cristales de clinoptilolita
aparentemente envueltos por la matriz (figura 13). Pudiera ser que los cristales que parecen
clorita, crecieron después de que la clinoptilolita se disolvió.
21
22
(b)
(c)
valor después de la “X” muestra las veces que se amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um) en la image
Figura 8. Fibras de mordenita (?) sobre cristales de clinoptilolita (a) y crecimiento radial de clinoptilolita (b y c) en la muestra 10. (El
(a)
23
(b)
las veces que se amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen
Figura 9. Crecimiento radial (a) y morfología tabular (b) de clinoptilolita en la muestra 14. (El valor después de la “X” muestra
(a)
24
(b)
veces que se amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen
Figura 10. Esférulas de cristales menores que clinoptilolita presentes en la muestra 7. (El valor después de la “X” muestra las
(a)
25
(b)
amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen
Figura 11. Magnificación de esférulas (a) y fibras (b) en la muestra 7. (El valor después de la “X” muestra las veces que se
(a)
26
(b)
línea punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen
Figura 12. Arcillas tipo clorita en la muestra 8. . (El valor después de la “X” muestra las veces que se amplificó la imagen; la
(a)
27
(b)
amplificó la imagen; la línea punteada indica la distancia en micras (um) en la imagen
Figura 13. Arcillas tipo clorita y cristales de clinoptilolita en la muestra 8. . (El valor después de la “X” muestra las veces que se
(a)
Con el objeto de obtener una estimación de la composición elemental de la zeolita tabular
(clinoptilolita) y de las fibras que aparecen sobre sus caras, la muestra 10 se sometió al análisis de
Energía Dispersiva de Electrones (EDX). Los resultados que se muestran en el cuadro 6 indican
que no hay diferencias significativas entre los dos minerales. Una posible explicación es que
debido al diámetro reducido de las fibras, los rayos-x no las hayan impactado y la información en
realidad corresponda a las placas de la clinoptilolita.
Cuadro 6. Intensidad relativa EDX para cristales tabulares de clinoptilolita y fibras.
Intensidad relativa1
Elemento
Clinoptilolita
Fibras
Mg2+
0.015
0.011
Al3+
0.192
0.180
Si4-
1.000
1.000
K+
0.087
0.090
Ca2+
0.093
0.110
Na+
inapreciable
inapreciable
1. Intensidad del elemento/Intensidad de Si
Los valores en el cuadro 6 son muy similares para los dos cristales (clinoptilolita y fibras) de tal
manera que no proporcionan un buen criterio para la identificación de las fibras. Sin embargo,
éstos números indican que los cationes presentes en la clinoptilolita, son principalmente Ca2+ y
K+ en lugar de Na+ y en consecuencia, esta clinoptilolita podría contar con buenas posibilidades
como mejorador de suelos.
3.3. Muestras con propiedades para usarse como mejoradores del suelo.
La aplicación principal de zeolitas como mejoradores de suelo es el uso de clinoptilolita para
prevenir las pérdidas de nitrógeno de fertilizantes nitrogenados aplicados al suelo. El ión NH4+ es
absorbido por esta zeolita y almacenado ahí para una liberación lenta posterior. La clinoptilolita
también puede ser activada para una absorción más eficiente de los cationes deseados. Activar la
zeolita significa remover el agua retenida en sus canales mediante la aplicación de calor y
28
después de esto, absorberá mas cationes. De acuerdo a los resultados de análisis de rayos-x, doce
de las muestras contienen clinoptilolita aunque algunas de ellas en cantidades tan reducidas que
su efecto como mejorador de suelos podría no ser suficiente. Las muestras 7, 10, 25 y 14 tienen
muy altas concentraciones de clinoptilolita y por esta razón serian las más viables para probarse
como mejoradores de suelo. Aunque con menores concentraciones de clinoptilolita, las muestras
6, 8, 9, 13 y 15 también podrían tener buenas posibilidades.
Es importante mencionar la utilidad que la clinoptilolita podría tener en lugares con problemas de
contaminación de acuíferos por nitratos (NO3-) provenientes de fertilizantes nitrogenados. Los
iones de NO3- que no son absorbidos por las plantas, pueden ser lixiviados por el agua de riego o
lluvia y depositados en cuerpos de agua subterráneos o ser arrastrados hacia corrientes
superficiales ocasionando su contaminación, principalmente en suelos con texturas gruesas. La
aplicación de zeolitas conteniendo clinoptilolita, ayudaría a reducir la cantidad de iones NO3 - en
el suelo pues absorbería los iones NH4+ antes de que ocurriera su transformación a iones NO3El fracaso o éxito de clinoptilolita como mejorador de suelos depende de diferentes factores. En
primer término, es importante considerar que en la mayoría de los casos, los cationes de sodio
predominan sobre los cationes de potasio en la clinoptilolita y de no existir una cuantificación de
su concentración, la liberación de altas cantidades de sodio durante el proceso de intercambio
catiónico, podría producir efectos negativos en algún cultivo, por la adición de la zeolita al suelo.
Otra característica importante es la textura de suelo. En suelos con texturas medias a finas, se
esperarían efectos nulos o muy reducidos con la adición de la clinoptilolita debido a que
normalmente las arcillas de estos suelos tienen valores altos de superficie especifica y de
intercambio de cationes y compiten con la zeolita en el proceso de intercambio de cationes. En
suelos con texturas gruesas se esperarían resultados más efectivos en la absorción de los iones
NH4+ con la aplicación de clinoptilolita
29
VII. CONCLUSIÓNES
1. De las muestras estudiadas el 46% contienen zeolitas
2. La clinoptilolita es la zeolita principal que está presente en las muestras estudiadas como se
evidencia por los análisis de rayos-x y microscopio de electrones.
3. Las muestras de los sitios: Las crucecitas Magdalena Apasco; Crucero San Juan Reyes Etla y
la Peña del Tambor Reyes Etla contienen altas cantidades de clinoptilolita con algo de cuarzo
y trazas de la mica biotita y tienen potencial como mejoradores de suelo.
4. La morfología de la clinoptilolita es predominantemente tabular con algunas ocurrencias
prismáticas.
5. La mordenita no se identificó en difracción de rayos-x pero las imágenes de SEM mostraron la
presencia de fibras similares a aquellas reportadas como mordenita en otros estudios
6. Análisis EDX de cristales de clinoptilolita y de fibras fueron muy similares y mostraron que en
los cristales de clinoptilolita los cationes de calcio y potasio son dominantes sobre el catión
de sodio.
7. Excepto por los sitios de Huitzo y Yutandehui, Suchilquitongo, todas las muestras de las
localidades del distrito de Etla, contienen clinoptilolita.
8. La muestra de Oaxaca (ciudad de las canteras) contiene pequeñas cantidades de clinoptilolita
asociada con cuarzo y feldespatos.
9. La muestra de San francisco Teopan Coixtlahuaca, contiene pequeñas cantidades de
clinoptilolita asociada con feldespatos.
10. En ninguna de las muestras del área de Mitla se detectó clinoptilolita.
11. Las muestras de Yanhuitlán contienen pequeñas cantidades de analcima, asociada con altas
cantidades de feldespatos y mica.
12. La muestra de San Mateo Coyotepec Nochixtlán, tiene altas concentraciones de dolomita y
menores proporciones de calcita.
30
LITERATURA CITADA
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32
ANEXO 1. Patrones de rayos-x de las muestras analizadas
33
34
Figura 14. Patrón de rayos-x de la muestra 10 (valores de espaciamiento en Å)
35
Figura 15. Patrón de rayos-x de la muestra 25 (valores de espaciamiento en Å)
36
Figura 16. Patrón de rayos-x de la muestra 14 (valores de espaciamiento en Å)
37
Figura 17. Patrón de rayos-x de la muestra 8 (valores de espaciamiento en Å)
38
Figura 18. Patrón de rayos-x de la muestra 15 (valores de espaciamiento en Å)
39
Figura 19. Patrón de rayos-x de la muestra 9 (valores de espaciamiento en Å)
40
Figura 20. Patrón de rayos-x de la muestra 13 (valores de espaciamiento en Å)
41
Figura 21. Patrón de rayos-x de la muestra 24 (valores de espaciamiento en Å)
42
Figura 22. Patrón de rayos-x de la muestra 26 (valores de espaciamiento en Å)
43
Figura 23. Patrón de rayos-x de la muestra 22 (valores de espaciamiento en Å)
44
Figura 24. Patrón de rayos-x de la muestra 1 (valores de espaciamiento en Å)
45
Figura 25. Patrón de rayos-x de la muestra 2 (valores de espaciamiento en Å)
46
Figura 26. Patrón de rayos-x de la muestra 3 (valores de espaciamiento en Å)
47
Figura 27. Patrón de rayos-x de la muestra 4 (valores de espaciamiento en Å)
48
Figura 28. Patrón de rayos-x de la muestra 5 (valores de espaciamiento en Å)
49
Figura 29. Patrón de rayos-x de la muestra 21 (valores de espaciamiento en Å)
50
Figura 30. Patrón de rayos-x de la muestra 18 (valores de espaciamiento en Å)
51
Figura 31. Patrón de rayos-x de la muestra 19 (valores de espaciamiento en Å)
52
Figura 32. Patrón de rayos-x de la muestra 20 (valores de espaciamiento en Å)
53
Figura 33. Patrón de rayos-x de las muestras 11, 12, 16, 17 y 23 (valores de espaciamiento en Å)
ANEXO 2. Datos de espaciamiento e intensidad de las muestras analizadas
54
Cuadro 7. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 1, 2 y 3.
Sm
Pk
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
θ (°)
3.09
4.56
7.00
7.58
8.99
10.00
10.58
11.11
11.41
11.58
11.91
12.00
12.33
12.70
13.00
13.20
13.47
14.00
14.04
14.30
15.00
15.40
15.87
16.16
16.29
16.98
17.21
17.51
17.90
18.12
18.39
18.68
18.99
19.21
19.51
19.80
20.91
21.38
21.71
22.50
22.80
23.10
23.76
24.36
25.18
25.57
26.30
26.77
27.56
28.30
28.65
29.69
d (Å)
I(cps)
I/Ii
Sm
Pk
14.30
9.70
6.33
5.84
4.93
4.44
4.20
4.00
3.90
3.84
3.74
3.71
3.61
3.51
3.43
3.38
3.31
3.19
3.18
3.12
2.98
2.90
2.82
2.77
2.75
2.64
2.61
2.56
2.51
2.48
2.44
2.41
2.37
2.34
2.31
2.28
2.16
2.11
2.08
2.01
1.99
1.96
1.91
1.87
1.81
1.79
1.74
1.71
1.67
1.63
1.61
1.56
240
740
180
140
140
180
340
1140
200
180
430
490
352
152
300
186
1560
1614
1480
720
320
1626
506
200
208
162
168
500
1320
412
240
184
176
140
150
252
268
246
240
180
260
308
200
172
346
560
212
300
240
190
194
180
14.8
45.5
11.1
8.6
8.6
11.1
20.9
70.1
12.3
11.1
26.4
30.1
21.6
9.3
18.5
11.4
95.9
99.3
91.0
44.3
19.7
100.0
31.1
12.3
12.8
10.0
10.3
30.8
81.2
25.3
14.8
11.3
10.8
8.6
9.2
15.5
16.5
15.1
14.8
11.1
16.0
18.9
12.3
10.6
21.3
34.4
13.0
18.5
14.8
11.7
11.9
11.1
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
2
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
θ (°)
4.52
6.96
7.64
9.00
10.60
11.08
11.38
11.51
11.90
12.33
12.98
13.49
14.02
14.20
14.85
15.36
15.81
16.29
16.95
17.48
17.81
18.03
18.09
18.34
18.41
18.95
19.60
20.29
20.90
21.22
21.28
21.38
21.68
22.00
22.40
22.92
23.62
24.36
24.41
24.90
24.97
25.11
25.42
25.85
26.21
26.74
27.50
27.75
28.25
28.75
29.08
29.50
d (Å)
I(cps)
I/Ii
Sm
Pk
9.78
6.36
5.80
4.93
4.19
4.01
3.91
3.86
3.74
3.61
3.43
3.30
3.18
3.14
3.01
2.91
2.83
2.75
2.64
2.57
2.52
2.49
2.48
2.45
2.44
2.37
2.30
2.22
2.16
2.13
2.12
2.11
2.09
2.06
2.02
1.98
1.92
1.87
1.87
1.83
1.83
1.82
1.80
1.77
1.75
1.71
1.67
1.66
1.63
1.60
1.59
1.57
576
220
140
140
786
268
172
214
520
306
286
2375
1275
2370
930
300
260
174
124
260
664
332
354
324
370
182
326
180
240
770
790
1160
354
140
240
290
220
574
574
426
340
600
652
720
160
186
260
224
182
170
170
152
24.3
9.3
5.9
5.9
33.1
11.3
7.2
9.0
21.9
12.9
12.0
100.0
53.7
99.8
39.2
12.6
10.9
7.3
5.2
10.9
28.0
14.0
14.9
13.6
15.6
7.7
13.7
7.6
10.1
32.4
33.3
48.8
14.9
5.9
10.1
12.2
9.3
24.2
24.2
17.9
14.3
25.3
27.5
30.3
6.7
7.8
10.9
9.4
7.7
7.2
7.2
6.4
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
3
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
59
60
Sm=Muestra; Pk= Pico; I/Ii=Intensidad relativa; Ii=Intensidad del pico mas alto.
55
θ (°)
3.17
4.55
7.10
7.70
9.00
9.53
10.00
10.57
10.63
11.10
11.90
11.95
12.03
12.32
12.99
13.03
13.50
14.04
14.41
15.03
15.86
16.06
16.32
17.03
17.20
17.54
17.84
18.27
18.70
18.80
18.95
19.26
19.98
20.33
20.37
20.90
21.25
21.52
21.80
22.10
22.36
22.80
23.11
23.69
24.34
24.50
24.70
25.00
25.15
25.50
25.60
25.75
26.20
26.80
27.55
27.91
28.78
29.69
30.04
30.46
d (Å)
I(cps)
I/Ii
13.94
9.72
6.24
5.75
4.93
4.66
4.44
4.20
4.18
4.00
3.74
3.72
3.70
3.61
3.43
3.42
3.30
3.18
3.10
2.97
2.82
2.79
2.74
2.63
2.61
2.56
2.52
2.46
2.40
2.39
2.37
2.34
2.26
2.22
2.21
2.16
2.13
2.10
2.08
2.05
2.03
1.99
1.96
1.92
1.87
1.86
1.84
1.82
1.81
1.79
1.78
1.77
1.75
1.71
1.67
1.65
1.60
1.56
1.54
1.52
240
480
300
260
130
128
192
314
340
972
386
412
760
240
300
300
926
6800
1060
340
1130
170
182
156
160
288
280
386
350
360
206
180
560
180
180
260
4600
300
200
160
240
260
174
200
208
180
170
208
270
440
344
352
192
200
264
204
574
178
300
609
3.5
7.1
4.4
3.8
1.9
1.9
2.8
4.6
5.0
14.3
5.7
6.1
11.2
3.5
4.4
4.4
13.6
100.0
15.6
5.0
16.6
2.5
2.7
2.3
2.4
4.2
4.1
5.7
5.1
5.3
3.0
2.6
8.2
2.6
2.6
3.8
67.6
4.4
2.9
2.4
3.5
3.8
2.6
2.9
3.1
2.6
2.5
3.1
4.0
6.5
5.1
5.2
2.8
2.9
3.9
3.0
8.4
2.6
4.4
9.0
Cuadro 8. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 4, 5 y 6.
Pk θ (°)
d (Å) I(cps)
5
1
3.13 14.12
200
5
2
4.51
9.80
860
5
3
7.00
6.33
188
5
4
7.63
5.81
146
5
5
8.96
4.95
134
5
6
9.05
4.90
112
5
7 10.00 4.44
168
5
8 10.50 4.23
440
5
9 10.60 4.19
360
5
10 11.07 4.02
1120
5
11 11.39 3.90
220
5
12 11.56 3.85
206
5
13 11.86 3.75
420
5
14 12.34 3.61
264
5
15 12.70 3.51
140
5
16 12.98 3.43
308
5
17 13.46 3.31
1780
5
18 14.00 3.19
2080
5
19 14.80 3.02
300
5
20 15.00 2.98
300
5
21 15.39 2.90
400
5
22 15.81 2.83
200
5
23 16.24 2.76
180
5
24 16.70 2.68
128
5
25 16.94 2.65
160
5
26 17.44 2.57
280
5
27 17.89 2.51
340
5
28 18.04 2.49
520
5
29 18.37 2.45
220
5
30 18.70 2.40
180
5
31 18.97 2.37
200
5
32 19.11 2.35
160
5
33 19.80 2.28
190
5
34 19.86 2.27
190
5
35 20.85 2.17
240
5
36 21.07 2.14
214
5
37 21.20 2.13
580
5
38 21.43 2.11
330
5
39 21.59 2.10
380
5
40 22.05 2.05
150
5
41 22.39 2.02
300
5
42 22.70 2.00
292
5
43 23.00 1.97
1998
5
44 23.57 1.93
236
5
45 23.65 1.92
234
5
46 24.07 1.89
140
5
47 24.31 1.87
452
5
48 24.78 1.84
186
5
49 25.00 1.82
286
5
50 25.10 1.82
300
5
51 25.50 1.79
372
5
52 25.71 1.78
720
5
53 25.80 1.77
572
5
54 26.25 1.74
180
5
55 26.32 1.74
196
5
56 26.74 1.71
170
5
57 27.06 1.69
194
5
58 27.23 1.68
266
5
59 27.52 1.67
258
5
60 28.28 1.63
192
5
61 29.02 1.59
230
5
62 29.35 1.57
280
5
63 29.44 1.57
280
5
64 29.55 1.56
234
5
65 29.67 1.56
230
5
66 30.02 1.54
570
Sm=Muestra; Pk= Pico; I/Ii=Intensidad relativa; Ii=Intensidad del pico mas alto.
Sm
Pk
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
4
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
θ (°)
3.07
4.52
6.26
6.83
6.97
7.65
8.99
10.00
10.29
10.53
11.10
11.40
11.56
11.87
12.15
12.30
12.93
13.40
13.97
14.96
15.00
15.30
15.47
15.82
16.10
16.29
16.94
17.50
17.82
18.04
18.06
18.32
18.38
18.66
18.99
19.25
19.80
20.20
20.90
21.21
21.55
22.09
22.40
22.83
23.77
24.35
24.70
25.14
25.44
25.54
25.80
26.28
26.70
27.50
28.38
28.75
30.05
d (Å)
I(cps)
I/Ii
14.39
9.78
7.07
6.48
6.35
5.79
4.93
4.44
4.32
4.22
4.00
3.90
3.85
3.75
3.66
3.62
3.45
3.33
3.19
2.99
2.98
2.92
2.89
2.83
2.78
2.75
2.65
2.56
2.52
2.49
2.49
2.45
2.44
2.41
2.37
2.34
2.28
2.23
2.16
2.13
2.10
2.05
2.02
1.99
1.91
1.87
1.84
1.81
1.79
1.79
1.77
1.74
1.72
1.67
1.62
1.60
1.54
226
686
146
148
308
140
126
180
166
500
252
196
280
470
220
392
330
2200
9940
440
394
286
270
230
140
200
140
320
394
350
362
308
328
176
200
180
300
260
260
840
330
150
176
260
340
194
220
570
360
430
252
164
164
460
210
500
586
2.3
6.9
1.5
1.5
3.1
1.4
1.3
1.8
1.7
5.0
2.5
2.0
2.8
4.7
2.2
3.9
3.3
22.1
100.0
4.4
4.0
2.9
2.7
2.3
1.4
2.0
1.4
3.2
4.0
3.5
3.6
3.1
3.3
1.8
2.0
1.8
3.0
2.6
2.6
8.5
3.3
1.5
1.8
2.6
3.4
2.0
2.2
5.7
3.6
4.3
2.5
1.6
1.6
4.6
2.1
5.0
5.9
Sm
56
I/Ii
Sm
Pk
9.6
41.3
9.0
7.0
6.4
5.4
8.1
21.2
17.3
53.8
10.6
9.9
20.2
12.7
6.7
14.8
85.6
100.0
14.4
14.4
19.2
9.6
8.7
6.2
7.7
13.5
16.3
25.0
10.6
8.7
9.6
7.7
9.1
9.1
11.5
10.3
27.9
15.9
18.3
7.2
14.4
14.0
96.1
11.3
11.3
6.7
21.7
8.9
13.8
14.4
17.9
34.6
27.5
8.7
9.4
8.2
9.3
12.8
12.4
9.2
11.1
13.5
13.5
11.3
11.1
27.4
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
6
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
59
60
θ (°)
4.50
5.00
5.66
6.59
6.70
7.50
8.54
8.74
9.61
9.88
10.29
10.50
11.26
11.94
12.08
12.60
12.76
12.90
13.10
13.18
13.37
13.90
14.12
14.30
14.59
15.05
15.12
15.50
16.05
16.45
16.83
17.49
17.60
17.80
17.84
18.33
18.56
18.93
19.17
19.80
20.47
21.20
21.70
22.04
22.35
22.44
22.92
23.21
23.50
24.66
25.03
25.50
25.89
26.14
26.50
27.12
27.64
28.50
28.93
29.98
d (Å)
I(cps)
I/Ii
9.83
8.85
7.82
6.72
6.61
5.91
5.19
5.07
4.62
4.49
4.32
4.23
3.95
3.73
3.68
3.53
3.49
3.45
3.40
3.38
3.33
3.21
3.16
3.12
3.06
2.97
2.96
2.88
2.79
2.72
2.66
2.57
2.55
2.52
2.52
2.45
2.42
2.38
2.35
2.28
2.20
2.13
2.08
2.05
2.03
2.02
1.98
1.96
1.93
1.85
1.82
1.79
1.77
1.75
1.73
1.69
1.66
1.62
1.59
1.54
160
640
310
220
190
140
234
360
340
180
214
280
1360
792
228
326
212
350
640
600
1248
300
590
470
370
830
814
200
580
374
226
226
260
384
388
330
364
194
204
240
168
240
240
190
306
274
220
300
220
180
264
220
290
240
230
272
252
210
240
280
11.8
47.1
22.8
16.2
14.0
10.3
17.2
26.5
25.0
13.2
15.7
20.6
100.0
58.2
16.8
24.0
15.6
25.7
47.1
44.1
91.8
22.1
43.4
34.6
27.2
61.0
59.9
14.7
42.6
27.5
16.6
16.6
19.1
28.2
28.5
24.3
26.8
14.3
15.0
17.6
12.4
17.6
17.6
14.0
22.5
20.1
16.2
22.1
16.2
13.2
19.4
16.2
21.3
17.6
16.9
20.0
18.5
15.4
17.6
20.6
Cuadro 9. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 7, 8 y 9.
Pk θ (°)
d (Å) I(cps)
I/Ii
Sm Pk θ (°)
d (Å) I(cps)
7
1
4.47
9.89
260
16.0
8
1
4.54
9.74
180
7
2
4.97
8.90
790
48.8
8
2
5.03
8.79
680
7
3
5.61
7.89
430
26.5
8
3
5.69
7.78
360
7
4
6.53
6.78
260
16.0
8
4
6.61
6.70
200
7
5
6.69
6.62
220
13.6
8
5
7.56
5.86
160
7
6
7.49
5.91
160
9.9
8
6
8.57
5.17
220
7
7
7.95
5.57
140
8.6
8
7
8.75
5.07
360
7
8
8.28
5.35
160
9.9
8
8
9.62
4.61
280
7
9
8.50
5.22
300
18.5
8
9
10.30 4.31
180
7
10 8.70
5.10
420
25.9
8
10 10.54 4.21
420
7
11 9.55
4.65
360
22.2
8
11 11.31 3.93
1220
7
12 10.24 4.34
240
14.8
8
12 11.84 3.76
260
7
13 10.49 4.23
180
11.1
8
13 12.13 3.67
200
7
14 11.24 3.96
1620 100.0 8
14 12.63 3.53
340
7
15 11.47 3.88
1000
61.7
8
15 13.00 3.43
220
7
16 11.60 3.83
300
18.5
8
16 13.14 3.39
600
7
17 11.91 3.74
260
16.0
8
17 13.43 3.32
1998
7
18 12.04 3.70
280
17.3
8
18 13.92 3.20
320
7
19 12.55 3.55
380
23.5
8
19 14.23 3.14
840
7
20 12.87 3.46
360
22.2
8
20 14.38 3.10
360
7
21 13.03 3.42
760
46.9
8
21 14.62 3.05
340
7
22 13.19 3.38
600
37.0
8
22 15.12 2.96
840
7
23 13.33 3.34
460
28.4
8
23 16.10 2.78
540
7
24 13.40 3.33
540
33.3
8
24 16.50 2.71
380
7
25 14.10 3.16
740
45.7
8
25 16.87 2.66
200
7
26 14.25 3.13
440
27.2
8
26 17.80 2.52
240
7
27 14.30 3.12
460
28.4
8
27 18.40 2.44
380
7
28 14.55 3.07
420
25.9
8
28 18.67 2.41
360
7
29 15.03 2.97
980
60.5
8
29 19.20 2.34
180
7
30 15.47 2.89
200
12.3
8
30 19.88 2.27
280
7
31 16.02 2.79
740
45.7
8
31 20.24 2.23
220
7
32 16.40 2.73
420
25.9
8
32 20.90 2.16
200
7
33 16.76 2.67
240
14.8
8
33 29.34 1.57
280
7
34 17.57 2.55
260
16.0
8
34 21.73 2.08
220
7
35 17.77 2.53
300
18.5
8
35 22.07 2.05
200
7
36 18.50 2.43
400
24.7
8
36 22.60 2.01
240
7
37 19.20 2.34
300
18.5
8
37 23.00 1.97
220
7
38 19.84 2.27
200
12.3
8
38 23.26 1.95
260
7
39 20.70 2.18
200
12.3
8
39 23.56 1.93
240
7
40 21.35 2.12
240
14.8
8
40 25.17 1.81
300
7
41 21.60 2.09
280
17.3
8
41 25.50 1.79
260
7
42 22.00 2.06
220
13.6
8
42 25.92 1.76
280
7
43 22.32 2.03
340
21.0
8
43 26.23 1.74
240
7
44 22.90 1.98
200
12.3
8
44 26.58 1.72
220
7
45 23.17 1.96
300
18.5
8
45 27.23 1.68
240
7
46 23.40 1.94
240
14.8
8
46 27.50 1.67
220
7
47 24.58 1.85
200
12.3
8
47 27.68 1.66
240
7
48 25.00 1.82
260
16.0
8
48 28.30 1.63
200
7
49 25.74 1.78
300
18.5
8
49 28.58 1.61
200
7
50 25.87 1.77
320
19.8
8
50 29.04 1.59
240
7
51 26.10 1.75
280
17.3
8
51 29.70 1.56
200
7
52 27.10 1.69
300
18.5
8
52 30.04 1.54
200
7
53 27.17 1.69
300
18.5
7
54 27.58 1.67
240
14.8
7
55 27.84 1.65
240
14.8
7
56 28.50 1.62
220
13.6
7
57 28.94 1.59
280
17.3
7
58 29.60 1.56
200
12.3
Sm=Muestra; Pk= Pico; I/Ii=Intensidad relativa; Ii=Intensidad del pico mas alto.
Sm
57
I/Ii
9.0
34.0
18.0
10.0
8.0
11.0
18.0
14.0
9.0
21.0
61.1
13.0
10.0
17.0
11.0
30.0
100.0
16.0
42.0
18.0
17.0
42.0
27.0
19.0
10.0
12.0
19.0
18.0
9.0
14.0
11.0
10.0
14.0
11.0
10.0
12.0
11.0
13.0
12.0
15.0
13.0
14.0
12.0
11.0
12.0
11.0
12.0
10.0
10.0
12.0
10.0
10.0
Sm Pk
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
9
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
θ (°)
4.54
5.00
5.65
6.60
7.56
8.04
8.22
9.60
9.90
10.29
10.53
11.03
11.29
11.81
12.04
12.31
12.60
12.96
13.10
13.49
13.92
14.14
14.37
14.59
15.11
15.49
16.08
16.50
16.90
17.31
17.53
17.83
18.09
18.60
19.25
20.91
21.57
22.39
22.60
23.24
23.58
24.70
25.18
25.50
25.91
27.20
27.63
28.27
28.59
28.97
29.60
d (Å)
I(cps)
I/Ii
9.74
8.85
7.83
6.71
5.86
5.51
5.39
4.62
4.48
4.32
4.22
4.03
3.94
3.77
3.70
3.62
3.53
3.44
3.40
3.30
3.20
3.16
3.11
3.06
2.96
2.89
2.78
2.71
2.65
2.59
2.56
2.52
2.48
2.42
2.34
2.16
2.10
2.02
2.01
1.95
1.93
1.84
1.81
1.79
1.76
1.69
1.66
1.63
1.61
1.59
1.56
330
480
286
200
140
240
320
260
200
240
310
560
1200
240
220
240
280
370
490
780
440
480
340
340
720
240
480
290
210
230
320
420
320
330
200
220
640
300
260
270
230
180
200
280
260
260
210
220
240
240
190
27.5
40.0
23.8
16.7
11.7
20.0
26.7
21.7
16.7
20.0
25.8
46.7
100.0
20.0
18.3
20.0
23.3
30.8
40.8
65.0
36.7
40.0
28.3
28.3
60.0
20.0
40.0
24.2
17.5
19.2
26.7
35.0
26.7
27.5
16.7
18.3
53.3
25.0
21.7
22.5
19.2
15.0
16.7
23.3
21.7
21.7
17.5
18.3
20.0
20.0
15.8
Cuadro 10. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 10, 11, 12,
13 y 14.
Pk θ (°) d (Å) I(cps)
I/Ii
Sm Pk θ (°) d (Å) I(cps)
10
1
4.45
9.94
260
17.8 11
1
2.89 15.29
230
10
2
4.99
8.86
840
57.5 11
2
10.00 4.44
300
10
3
5.62
7.87
420
28.8 11
3
11.62 3.83
354
10
4
6.57
6.74
260
17.8 11
4
14.00 3.19
420
10
5
7.51
5.90
160
11.0 11
5
17.70 2.54
252
10
6
7.93
5.59
140
9.6
10
7
8.01
5.53
130
8.9
12
1
2.96 14.93
220
10
8
8.49
5.22
260
17.8 12
2
4.53
9.76
176
10
9
8.71
5.09
440
30.1 12
3
10.03 4.43
312
10 10 9.58
4.63
360
24.7 12
4
11.64 3.82
380
10 11 9.84
4.51
190
13.0 12
5
13.40 3.33
400
10 12 10.24 4.34
260
17.8 12
6
13.46 3.31
390
10 13 11.27 3.94
1460 100.0 12
7
15.32 2.92
300
10 14 11.97 3.72
240
16.4 12
8
15.42 2.90
296
10 15 12.07 3.69
248
17.0 12
9
17.31 2.59
250
10 16 12.53 3.55
346
23.7 12 10 17.02 2.63
254
10 17 12.57 3.54
340
23.3
10 18 12.88 3.46
340
23.3 13
1
4.57
9.68
220
10 19 13.06 3.41
690
47.3 13
2
5.07
8.72
430
10 20 13.09 3.40
700
47.9 13
3
5.69
7.78
250
10 21 13.19 3.38
600
41.1 13
4
6.61
6.70
190
10 22 13.34 3.34
550
37.7 13
5
6.90
6.42
190
10 23 13.44 3.32
460
31.5 13
6
7.55
5.87
148
10 24 13.96 3.20
340
23.3 13
7
8.60
5.16
210
10 25 14.13 3.16
640
43.8 13
8
8.80
5.04
300
10 26 14.33 3.11
440
30.1 13
9
9.65
4.60
230
10 27 14.38 3.10
440
30.1 13 10
9.95
4.46
210
10 28 14.56 3.07
420
28.8 13 11 10.34 4.30
210
10 29 14.59 3.06
940
64.4 13 12 10.59 4.19
380
10 30 15.09 2.96
900
61.6 13 13 11.10 4.00
600
10 31 15.14 2.95
200
13.7 13 14 11.15 3.99
580
10 32 15.55 2.88
200
13.7 13 15 11.31 3.93
960
10 33 16.08 2.78
660
45.2 13 16 11.89 3.74
420
10 34 16.10 2.78
660
45.2 13 17 12.11 3.67
200
10 35 16.43 2.73
400
27.4 13 18 12.34 3.61
190
10 36 16.50 2.71
400
27.4 13 19 12.40 3.59
200
10 37 16.83 2.66
260
17.8 13 20 12.65 3.52
280
10 38 17.17 2.61
160
11.0 13 21 12.97 3.43
500
10 39 17.82 2.52
300
20.5 13 22 13.05 3.41
420
10 40 17.90 2.51
280
19.2 13 23 13.11 3.40
480
10 41 17.93 2.50
280
19.2 13 24 13.22 3.37
420
10 42 18.11 2.48
280
19.2 13 25 13.50 3.30
720
10 43 18.50 2.43
380
26.0 13 26 13.61 3.28
480
10 44 18.60 2.42
390
26.7 13 27 13.95 3.20
660
10 45 18.9
2.38
220
15.1 13 28 14.16 3.15
460
10 46 19.13 2.35
220
15.1 13 29 14.38 3.10
320
10 47 19.24 2.34
250
17.1 13 30 14.59 3.06
300
10 48 19.29 2.33
250
17.1 13 31 15.13 2.95
640
10 49 19.85 2.27
190
13.0 13 32 15.46 2.89
280
10 50 19.96 2.26
190
13.0 13 33 15.55 2.88
286
10 51 20.67 2.18
180
12.3 13 34 16.09 2.78
400
10 52 21.28 2.12
220
15.1 13 35 16.48 2.72
260
10 53 21.73 2.08
250
17.1 13 36 16.82 2.66
200
10 54 22.11 2.05
220
15.1 13 37 17.49 2.57
330
10 55 22.50 2.01
270
18.5 13 38 17.86 2.51
320
10 56 23.18 1.96
260
17.8 13 39 18.11 2.48
300
10 57 23.21 1.96
330
22.6 13 40 18.43 2.44
260
10 58 23.24 1.95
330
22.6 13 41 18.58 2.42
314
10 59 23.44 1.94
240
16.4 13 42 18.91 2.38
220
10 60 23.54 1.93
240
16.4 13 43 19.24 2.34
190
Sm=Muestra; Pk= Pico; I/Ii=Intensidad relativa; Ii=Intensidad del pico mas alto.
Sm
58
I/Ii
54.8
71.4
84.3
100.0
60.0
55.0
44.0
78.0
95.0
100.0
97.5
75.0
74.0
62.5
63.5
22.9
44.8
26.0
19.8
19.8
15.4
21.9
31.3
24.0
21.9
21.9
39.6
62.5
60.4
100.0
43.8
20.8
19.8
20.8
29.2
52.1
43.8
50.0
43.8
75.0
50.0
68.8
47.9
33.3
31.3
66.7
29.2
29.8
41.7
27.1
20.8
34.4
33.3
31.3
27.1
32.7
22.9
19.8
Sm Pk
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
59
60
θ (°)
3.31
4.52
5.01
5.67
6.62
6.78
7.04
7.67
8.55
8.74
9.60
9.91
10.26
10.57
11.10
11.28
11.80
12.35
12.61
12.91
13.06
13.10
13.21
13.43
13.46
13.91
14.12
14.32
14.53
14.60
15.01
15.05
15.50
16.05
16.43
16.79
16.85
17.47
17.60
17.82
18.06
18.11
18.57
18.89
20.81
21.40
21.68
22.00
22.09
22.48
22.57
22.78
23.20
23.52
23.59
24.22
24.32
24.68
25.01
25.41
d (Å)
I(cps)
I/Ii
13.35
9.78
8.83
7.80
6.69
6.53
6.29
5.78
5.19
5.07
4.62
4.48
4.33
4.20
4.00
3.94
3.77
3.60
3.53
3.45
3.41
3.40
3.37
3.32
3.31
3.21
3.16
3.12
3.07
3.06
2.98
2.97
2.88
2.79
2.73
2.67
2.66
2.57
2.55
2.52
2.49
2.48
2.42
2.38
2.17
2.11
2.09
2.06
2.05
2.02
2.01
1.99
1.96
1.93
1.93
1.88
1.87
1.85
1.82
1.80
170
240
480
272
214
230
160
154
220
310
260
230
220
290
610
1200
300
260
292
540
540
540
480
640
640
540
630
360
340
340
660
700
320
500
310
220
220
300
300
340
320
330
352
240
210
240
206
210
220
250
260
248
300
248
248
208
212
186
200
280
14.2
20.0
40.0
22.7
17.8
19.2
13.3
12.8
18.3
25.8
21.7
19.2
18.3
24.2
50.8
100.0
25.0
21.7
24.3
45.0
45.0
45.0
40.0
53.3
53.3
45.0
52.5
30.0
28.3
28.3
55.0
58.3
26.7
41.7
25.8
18.3
18.3
25.0
25.0
28.3
26.7
27.5
29.3
20.0
17.5
20.0
17.2
17.5
18.3
20.8
21.7
20.7
25.0
20.7
20.7
17.3
17.7
15.5
16.7
23.3
Cuadro 10. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 10, 11, 12,
13 y 14 (Cont…)
Pk
θ (°) d (Å) I(cps)
13 44 20.84 2.17
240
13 45 21.44 2.11
240
13 46 21.72 2.08
200
13 47 22.35 2.03
340
13 48 22.50 2.01
280
13 49 23.00 1.97
200
13 50 23.20 1.96
280
13 51 23.56 1.93
240
13 52 24.01 1.89
140
13 53 24.30 1.87
180
13 54 24.70 1.84
180
13 55 25.50 1.79
340
13 56 25.55 1.79
320
13 57 25.85 1.77
240
13 58 27.10 1.69
220
13 59 27.70 1.66
200
13 60 27.92 1.65
200
13 61 28.24 1.63
200
13 62 28.57 1.61
240
13 63 29.00 1.59
220
13 64 29.68 1.56
180
13 65 30.11 1.54
220
Sm=Muestra; Pk= Pico; I/Ii=Intensidad relativa; Ii=Intensidad del pico mas alto.
Sm
Pk
10
10
10
10
10
10
10
10
10
10
10
10
10
10
10
61
62
63
64
65
66
67
68
69
70
71
72
73
74
75
θ (°)
24.28
24.63
25.09
25.50
25.60
25.80
25.92
26.00
26.56
27.18
27.68
28.54
28.58
29.01
29.06
d (Å)
I(cps)
I/Ii
1.87
1.85
1.82
1.79
1.78
1.77
1.76
1.76
1.72
1.69
1.66
1.61
1.61
1.59
1.59
180
200
280
210
214
280
310
300
240
300
248
228
228
270
266
12.3
13.7
19.2
14.4
14.7
19.2
21.2
20.5
16.4
20.5
17.0
15.6
15.6
18.5
18.2
Sm
59
I/Ii
Sm Pk
25.0
25.0
20.8
35.4
29.2
20.8
29.2
25.0
14.6
18.8
18.8
35.4
33.3
25.0
22.9
20.8
20.8
20.8
25.0
22.9
18.8
22.9
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
14
61
62
63
64
65
66
67
68
69
70
71
72
θ (°)
25.48
25.52
25.83
26.14
27.12
27.69
27.90
28.55
28.98
29.05
29.62
29.96
d (Å)
I(cps)
I/Ii
1.79
1.79
1.77
1.75
1.69
1.66
1.65
1.61
1.59
1.59
1.56
1.54
300
290
260
220
260
234
220
240
250
250
208
208
25.0
24.2
21.7
18.3
21.7
19.5
18.3
20.0
20.8
20.8
17.3
17.3
Cuadro 11. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 15, 16, 17,
18 y 19.
Pk θ (°)
d (Å) I(cps)
I/Ii
Sm Pk θ (°)
d (Å) I(cps)
15
1
4.51
9.80
220
14.2 16
1
3.07 14.39
180
15
2
5.01
8.83
800
51.6 16
2
9.99
4.44
300
15
3
5.67
7.80
360
23.2 16
3
11.61 3.83
380
15
4
6.60
6.71
240
15.5 16
4
13.50 3.30
340
15
5
6.83
6.48
200
12.9 16
5
14.03 3.18
640
15
6
7.55
5.87
160
10.3 16
6
14.16 3.15
380
15
7
7.97
5.56
120
7.7
16
7
14.80 3.02
320
15
8
8.54
5.19
210
13.5 16
8
14.90 3.00
320
15
9
8.74
5.07
360
23.2 16
9
15.20 2.94
300
15 10 9.60
4.62
320
20.6 16 10 17.47 2.57
260
15
11 9.90
4.48
220
14.2
15 12 10.26 4.33
260
16.8 17
1
2.87 15.40
160
15 13 10.48 4.24
320
20.6 17
2
4.27 10.35
120
15 14 11.27 3.94
1220
78.7 17
3
10.00 4.44
280
15 15 11.42 3.89
740
47.7 17
4
13.50 3.30
340
15 16 11.61 3.83
260
16.8 17
5
13.92 3.20
400
15 17 11.91 3.74
220
14.2 17
6
17.89 2.51
260
15 18 12.00 3.71
220
14.2 17
7
18.66 2.41
240
15
19 12.06 3.69
220
14.2
15 20 12.34 3.61
210
13.5 18
1
4.94
8.95
160
15 21 12.57 3.54
320
20.6 18
2
8.00
5.54
460
15 22 12.90 3.45
340
21.9 18
3
9.23
4.81
160
15 23 13.10 3.40
660
42.6 18
4
9.57
4.64
120
15 24 13.37 3.33
1520
98.1 18
5
10.06 4.41
160
15 25 13.41 3.32
1550 100.0 18
6
10.60 4.19
200
15 26 13.94 3.20
340
21.9 18
7
11.02 4.03
180
15 27 14.14 3.16
780
50.3 18
8
11.33 3.92
140
15 28 14.36 3.11
400
25.8 18
9
11.61 3.83
180
15 29 14.40 3.10
360
23.2 18 10 11.83 3.76
220
15 30 14.57 3.06
440
28.4 18 11 12.26 3.63
180
15 31 15.09 2.96
820
52.9 18 12 13.10 3.40
520
15 32 15.13 2.95
800
51.6 18 13 13.51 3.30
300
15 33 15.51 2.88
220
14.2 18 14 13.93 3.20
400
15 34 16.07 2.78
580
37.4 18 15 14.81 3.02
1720
15 35 16.42 2.73
380
24.5 18 16 15.04 2.97
880
15 36 16.82 2.66
230
14.8 18 17 15.39 2.90
560
15 37 17.28 2.60
200
12.9 18 18 15.52 2.88
360
15 38 17.48 2.57
280
18.1 18 19 16.09 2.78
180
15 39 17.51 2.56
280
18.1 18 20 16.26 2.75
160
15 40 17.79 2.52
280
18.1 18 21 16.73 2.68
360
15 41 18.36 2.45
360
23.2 18 22 17.61 2.55
360
15 42 18.43 2.44
380
24.5 18 23 17.80 2.52
500
15 43 18.54 2.42
360
23.2 18 24 17.94 2.50
480
15 44 18.90 2.38
240
15.5 18 25 18.00 2.49
480
15 45 19.19 2.35
220
14.2 18 26 18.33 2.45
220
15 46 19.77 2.28
280
18.1 18 27 18.66 2.41
200
15 47 20.00 2.25
200
12.9 18 28 19.86 2.27
240
15 48 20.10 2.24
200
12.9 18 29 20.40 2.21
260
15 49 21.20 2.13
280
18.1 18 30 20.57 2.19
200
15 50 21.36 2.12
240
15.5 18 31 20.91 2.16
160
15 51 21.69 2.09
240
15.5 18 32 21.32 2.12
280
15 52 21.79 2.08
230
14.8 18 33 21.67 2.09
260
15 53 22.00 2.06
200
12.9 18 34 22.34 2.03
240
15 54 22.06 2.05
200
12.9 18 35 22.55 2.01
260
15 55 22.30 2.03
200
12.9 18 36 23.12 1.96
160
15 56 22.50 2.01
260
16.8 18 37 23.61 1.92
180
15 57 22.93 1.98
240
15.5 18 38 23.98 1.90
360
15 58 23.21 1.96
300
19.4 18 39 24.40 1.87
300
15 59 23.25 1.95
300
19.4 18 40 24.94 1.83
180
15 60 25.05 1.82
420
27.1 18 41 25.49 1.79
180
Sm=Muestra; Pk= Pico; I/Ii=Intensidad relativa; Ii=Intensidad del pico mas alto.
Sm
60
I/Ii
28.1
46.9
59.4
53.1
100.0
59.4
50.0
50.0
46.9
40.6
40.0
30.0
70.0
85.0
100.0
65.0
60.0
9.3
26.7
9.3
7.0
9.3
11.6
10.5
8.1
10.5
12.8
10.5
30.2
17.4
23.3
100.0
51.2
32.6
20.9
10.5
9.3
20.9
20.9
29.1
27.9
27.9
12.8
11.6
14.0
15.1
11.6
9.3
16.3
15.1
14.0
15.1
9.3
10.5
20.9
17.4
10.5
10.5
Sm Pk
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
19
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
55
56
57
58
59
60
θ (°)
3.04
7.99
9.21
10.01
10.60
11.10
11.40
11.66
11.87
12.20
12.37
12.63
12.96
13.12
13.58
13.90
14.10
14.89
15.04
15.52
16.03
16.28
16.89
17.28
17.56
17.82
18.54
18.92
19.31
19.54
19.92
20.36
20.54
20.78
20.91
21.26
21.46
21.50
21.81
22.00
22.22
22.30
22.52
23.10
23.51
23.99
24.43
24.81
25.46
26.11
26.27
26.37
26.60
26.80
27.22
27.40
27.82
28.30
28.35
28.97
d (Å)
I(cps)
I/Ii
14.54
5.55
4.82
4.44
4.19
4.00
3.90
3.81
3.75
3.65
3.60
3.53
3.44
3.40
3.28
3.21
3.16
3.00
2.97
2.88
2.79
2.75
2.65
2.60
2.56
2.52
2.42
2.38
2.33
2.30
2.26
2.22
2.20
2.17
2.16
2.13
2.11
2.10
2.07
2.06
2.04
2.03
2.01
1.96
1.93
1.90
1.86
1.84
1.79
1.75
1.74
1.74
1.72
1.71
1.69
1.68
1.65
1.63
1.62
1.59
160
180
140
120
230
140
140
120
270
140
120
120
260
880
340
500
250
180
1300
410
120
160
840
160
400
750
350
120
240
200
100
220
160
220
240
300
220
240
100
120
240
250
300
160
320
150
130
170
240
220
150
150
220
480
130
150
350
440
440
620
12.3
13.8
10.8
9.2
17.7
10.8
10.8
9.2
20.8
10.8
9.2
9.2
20.0
67.7
26.2
38.5
19.2
13.8
100.0
31.5
9.2
12.3
64.6
12.3
30.8
57.7
26.9
9.2
18.5
15.4
7.7
16.9
12.3
16.9
18.5
23.1
16.9
18.5
7.7
9.2
18.5
19.2
23.1
12.3
24.6
11.5
10.0
13.1
18.5
16.9
11.5
11.5
16.9
36.9
10.0
11.5
26.9
33.8
33.8
47.7
Cuadro 11. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 15, 16, 17, 18 y 19
(Cont….).
Sm Pk θ (°)
d (Å) I(cps)
I/Ii Sm Pk
θ (°) d (Å) I(cps) I/Ii Sm Pk θ (°) d (Å) I(cps) I/Ii
15
61 25.10
1.82
430
27.7 18 42 25.82
1.77
140
15
62 25.39
1.80
260
16.8 18 43 26.29
1.74
340
15
63 25.43
1.80
260
16.8 18 44 26.34
1.74
360
15
64 25.77
1.77
270
17.4 18 45 26.79
1.71
160
15
65 25.91
1.76
286
18.5 18 46 27.28
1.68
200
15
66 26.20
1.75
260
16.8 18 47 27.54
1.67
220
15
67 26.55
1.72
230
14.8 18 48 28.32
1.63
320
15
68 26.78
1.71
200
12.9 18 49 28.62
1.61
320
15
69 27.05
1.70
250
16.1 18 50 28.95
1.59
240
15
70 27.16
1.69
272
17.5 18 51 30.41
1.52
260
15
71 27.62
1.66
266
17.2
15
72 27.94
1.65
260
16.8
15
73 28.48
1.62
220
14.2
15
74 29.00
1.59
270
17.4
15
75 29.97
1.54
320
20.6
Sm=Muestra; Pk= Pico; I/Ii=Intensidad relativa; Ii=Intensidad del pico mas alto.
61
8.1
19.8
20.9
9.3
11.6
12.8
18.6
18.6
14.0
15.1
19
19
19
19
19
19
19
61
62
63
64
65
66
67
29.43
29.81
30.29
30.75
31.12
31.64
32.20
1.57
1.55
1.53
1.51
1.49
1.47
1.45
140
140
280
240
280
140
160
10.8
10.8
21.5
18.5
21.5
10.8
12.3
Cuadro 12. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 20, 21, y 22.
Sm
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
20
Pk θ (°)
1
1.44
2
2.39
3
3.00
4
6.43
5
9.54
6
10.02
7
11.12
8
11.50
9
11.93
10 12.34
11 12.90
12 13.13
13 13.32
14 13.64
15 13.90
16 14.01
17 14.31
18 14.89
19 15.28
20 15.89
21 16.12
22 16.64
23 17.00
24 17.67
25 18.01
26 20.27
27 21.21
28 21.34
29 21.63
30 22.88
31 23.13
32 23.60
33 24.29
34 24.34
35 24.71
36 24.93
37 25.40
38 25.82
39 26.14
40 26.68
41 30.04
d(Å)
I(cps)
I/Ii
Sm
Pk
θ (°)
d(Å)
I(cps)
I/Ii
Sm
30.68
18.49
14.73
6.88
4.65
4.43
4.00
3.87
3.73
3.61
3.45
3.39
3.35
3.27
3.21
3.18
3.12
3.00
2.93
2.82
2.78
2.69
2.64
2.54
2.49
2.23
2.13
2.12
2.09
1.98
1.96
1.93
1.87
1.87
1.84
1.83
1.80
1.77
1.75
1.72
1.54
160
260
420
140
160
360
360
240
400
350
240
220
260
200
470
960
320
280
320
250
280
160
200
360
700
200
250
250
200
180
170
170
180
270
280
300
270
220
170
220
200
16.7
27.1
43.8
14.6
16.7
37.5
37.5
25.0
41.7
36.5
25.0
22.9
27.1
20.8
49.0
100.0
33.3
29.2
33.3
26.0
29.2
16.7
20.8
37.5
72.9
20.8
26.0
26.0
20.8
18.8
17.7
17.7
18.8
28.1
29.2
31.3
28.1
22.9
17.7
22.9
20.8
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
21
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
11.05
11.60
12.04
14.78
15.49
16.68
17.63
18.03
18.69
19.16
19.79
20.57
21.66
21.89
22.48
23.67
23.90
24.40
24.62
25.19
25.50
4.02
3.83
3.70
3.02
2.89
2.69
2.55
2.49
2.41
2.35
2.28
2.19
2.09
2.07
2.02
1.92
1.90
1.87
1.85
1.81
1.79
130
110
220
760
1070
340
220
160
260
80
220
866
210
200
780
160
500
260
280
830
1110
31.0
26.2
19.8
68.5
96.4
30.6
19.8
14.4
23.4
7.2
19.8
78.0
18.9
18.0
70.2
14.4
45.0
23.4
25.2
74.8
100.0
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
22
Sm=Muestra; Pk= Pico; I/Ii=Intensidad relativa; Ii=Intensidad del pico mas alto.
62
Pk θ (°)
1
4.98
2
5.68
3
6.28
4
7.30
5
7.68
6
8.50
7
8.74
8
9.22
9
9.62
10 9.90
11 10.32
12 10.54
13 11.08
14 11.23
15 11.88
16 12.32
17 12.60
18 12.92
19 13.25
20 13.40
21 13.60
22 13.97
23 14.09
24 14.35
25 14.59
26 15.03
27 15.50
28 15.80
29 16.06
30 16.34
31 16.83
32 17.12
33 17.45
34 17.86
35 17.90
36 19.85
37 20.80
38 21.16
39 21.40
40 22.17
41 22.54
42 23.00
43 23.29
44 23.54
45 24.29
46 24.70
47 25.13
48 25.52
49 25.80
d(Å)
I(cps)
I/Ii
8.88
7.79
7.05
6.07
5.77
5.22
5.07
4.81
4.61
4.48
4.30
4.21
4.01
3.96
3.74
3.61
3.53
3.45
3.36
3.33
3.28
3.19
3.17
3.11
3.06
2.97
2.88
2.83
2.79
2.74
2.66
2.62
2.57
2.51
2.51
2.27
2.17
2.14
2.11
2.04
2.01
1.97
1.95
1.93
1.87
1.84
1.82
1.79
1.77
350
160
280
160
190
140
168
120
180
340
200
320
520
680
400
250
240
880
500
600
460
920
1840
270
240
420
390
200
260
200
180
200
360
360
360
200
260
300
260
220
260
200
250
240
260
200
240
340
230
19.0
8.7
15.2
8.7
10.3
7.6
9.1
6.5
9.8
18.5
10.9
17.4
28.3
37.0
21.7
13.6
13.0
47.8
27.2
32.6
25.0
50.0
100.0
14.7
13.0
22.8
21.2
10.9
14.1
10.9
9.8
10.9
19.6
19.6
19.6
10.9
14.1
16.3
14.1
12.0
14.1
10.9
13.6
13.0
14.1
10.9
13.0
18.5
12.5
Cuadro 13. Datos de espaciamiento (θ y d) e intensidad (I, I/Ii) para cada pico (Pk) de las muestras (Sm) 23, 24, 25 y
26
Sm Pk
23
23
23
23
23
23
23
23
23
23
23
23
23
23
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
θ (°)
3.05
9.08
10.00
10.46
10.63
10.98
11.08
11.46
13.40
14.00
14.09
14.35
17.47
17.83
d(Å)
I(cps)
I/Ii
Sm
Pk
14.49
4.89
4.44
4.25
4.18
4.05
4.01
3.88
3.33
3.19
3.17
3.11
2.57
2.52
200
220
350
350
350
420
460
440
460
440
420
350
280
300
43.5
47.8
76.1
76.1
76.1
91.3
100.0
95.7
100.0
95.7
91.3
76.1
60.9
65.2
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
25
1
2
3
4
5
6
7
8
9
10
11
12
13
14
15
16
17
18
19
20
21
22
23
24
25
26
27
28
29
30
31
32
33
34
35
36
37
38
39
40
41
42
43
44
45
46
47
48
49
50
51
52
53
54
θ (°)
4.52
5.00
5.68
6.61
6.80
8.54
8.73
9.60
9.90
10.28
10.50
11.26
11.46
11.93
12.38
12.60
12.90
13.10
13.18
13.32
13.38
13.48
13.96
14.11
14.30
14.39
14.56
14.60
14.63
15.10
15.52
16.08
16.47
16.51
16.82
17.60
17.85
17.91
18.14
18.48
18.59
19.24
19.74
22.53
23.23
23.31
24.27
25.10
25.57
25.92
27.10
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20.3
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26
26
26
26
26
26
26
26
26
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26
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16.2
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63
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20.0
18.5
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18.5
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El contenido técnico de ésta publicación fue revisado por el Comité Editorial del Centro de
Investigación Regional Pacífico Sur
Dr. Pedro Cadena Iñiguez
Dr. Eduardo R. Garrido Ramírez
M.C. Tomás Galomo Rangel
MC. Marino González Camarillo
MC. Víctor Serrano Altamirano
En el proceso editorial de la presente publicación participaron las siguientes personas:
Edición:
Fotografía, formación y diseño:
Captura:
Diseño de la portada:
Coordinación:
Supervisión:
Dr. Miguel A. Cano García
Dr. Miguel A. Cano García
C. Irma Toledo Toledo
Dr. Miguel A. Cano García
Dr. Pedro Cadena Iñiguez
Dr. Héctor M. Cortinas Escobar
Esta publicación se terminó de imprimir
en Diciembre del 2004, en los talleres de la
Imprenta Postal en Oaxaca, Oaxaca.
Su tiraje constó de 500 ejemplares
CAMPO EXPERIMENTAL VALLES CENTRALES DE OAXACA
M.C. Ernesto Bravo Mosqueda
Encargado De la Jefatura de Campo
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Mejoramiento Genético
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Entomología
Dr. Miguel A. Cano García
Recursos Naturales
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Mejoramiento Genético
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Fitopatología
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Desarrollo Rural
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Economía
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Biblioteconomía