Subido por José Fernando Ochoa Alvarado

cybanol,+158-163

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Scientia et Technica Año XXV, Vol. 25, No. 01, marzo de 2020. Universidad Tecnológica de Pereira. ISSN 0122-1701 y ISSN-e: 2344-7214
158
TEICHMANN prueba confirmativa para
identificación de sangre en manchas
TEICHMANN confirmative test for blood identification in stains
N. Castillo-Rodríguez
Abstract— The analysis of blood identification in dry spots is
carried out using the Teichmann crystallographic method as a
basis to the colorimetric orientation tests in the expert work of
the Forensic Biology laboratories of the National Institute of
Legal Medicine and Forensic Sciences To determine by
Teichmann's crystallographic method its sensitivity, specificity,
positive predictive value, negative predictive value, limit of
detection, concordance index and Kappa index according to the
different conditions of temperature, support and medium in
which they are located. 100 samples of dry spots are taken to be
analyzed double-blind, in different substrates using the
Teichmann confirmatory method for blood identification,
following the adequate biosecurity measures by the Forensic
Biology Laboratory. The statistical quality values obtained in
sensitivity were 96,22%, 100% Specificity, 100% Positive
Predictive Value, 96,87% Predictive Negative Value, 1/100
Detection Limit, 100% Concordance Index and a Kappa Index.
of 1. Through the data obtained, the effectiveness of Teichmann's
crystallographic method as a confirmatory test in support of
presumptive methods of orientation in the identification of blood
in spots is made manifest.
Index Terms— Confirmatory, Crystallization, Specificity,
Forensic, Hemochromogen, Blood.
Resumen—Se realiza el análisis de identificación de sangre en
manchas secas utilizando el método cristalográfico de Teichmann
como fundamento a las pruebas colorimétricas de orientación en
la labor pericial de los laboratorios de Biología Forenses del
Instituto Nacional de Medicina Legal y Ciencias Forenses.
Determinar por el método cristalográfico de Teichmann su
sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo, valor
predictivo negativo, límite de detección, índice de concordancia e
índice de Kappa según las distintas condiciones de temperatura,
soporte y medio en el cual se encuentren. Se toman 100 muestras
de manchas secas para ser analizadas a doble ciego, en diferentes
sustratos utilizando el método confirmativo de Teichmann para
identificación de sangre, siguiendo las medidas de bioseguridad
adecuadas por el laboratorio de biología Forense. Los valores
estadísticos de calidad arrojados en sensibilidad fueron de
96,22%, Especificidad 100%, Valor Predictivo Positivo 100%,
Valor Predictivo Negativo 96,87%, Limite de Detección de 1/100,
Índice de Concordancia del 100% y un índice de Kappa de 1. Por
Este manuscrito fue enviado el 08 de julio de 2019 y aceptado el 13 de
marzo de 2020.
N. Castillo-Rodríguez, Docente del Departamento de Física de la
Universidad Tecnológica de Pereira (nancycastillo@utp.edu.co).
S. Martinez-Garcia, docente en la Facultad de Ingenierías en el Programa
de Ingeniería Física de la Universidad Tecnológica de Pereira.
(smartinez@utp.edu.co)
; S. Martinez-Garcia
medio de los datos obtenidos se pone en manifiesto la efectividad
del método cristalográfico de Teichmann
Palabras claves— Confirmativa, Cristalización, Especificidad,
Forense, Sangre, Sensibilidad.
Resumo—Realiza-se a análise de identificação de sangue em
manchas secas utilizando o método cristalográfico de Teichmann
como base aos testes colorimétricos de orientação no trabalho
pericial dos laboratórios de Biología Forense do Instituto
Nacional de Medicina Legal e Ciências Forenses. Estabelecer
através do método de cristalografía de Teichmann a sua
sensibilidade, especificidade, valor preditivo positivo, valor
preditivo negativo, límite de detecção, índice de concordância e
índice de Kappa dependendo das diferentes condições de
temperatura, suporte e meio no qual se encontrem. Levam- se
100 amostras de manchas secas para serem analisadas com dupla
ocultação, em diferentes substratos utilizando o método
confermativo de Teichmann para identificação de sangue,
seguindo as medidas de biossegurança adequadas pelo
laboratório de biologia Forense. Os valores estatísticos de
qualidade jogados em sensibilidade foram de 96,22%,
especificidade 100%, valor preditivo positivo 100%, valor
preditivo negativo 96,87%, límite de deteção de 1/100, índice de
concordância do 100% e um índice de de Kappa de 1. Através
dos dados obtidos se põe em manifesto eficácia do método
cristalográfico de Teichmann.
Palavras-chave—
Confirmativo,
Cristalização,
Especificidade, Forense, Sangue, Sensibilidade.
I. INTRODUCIÓN
U
de los fluidos que con mayor frecuencia llega a los
laboratorios de Biología forense de los Institutos de
medicina legal y ciencias forenses de nuestro país, es la
sangre, la cual reviste gran importancia en el esclarecimiento
de numerosas investigaciones delictivas y judiciales [1] [2].
NO
Las manchas de sangre presentan aspectos muy diferentes,
según sean recientes o antiguas, si la mancha es fresca su color
es rojo vivo, pero pierde muy rápidamente esta característica y
se oscurece progresivamente, llegando con el tiempo a
presentar una coloración marrón negruzca cuando es un poco
vieja. Estas diferencias de coloración corresponden a las
modificaciones que sufre la hemoglobina encontrada en los
glóbulos rojos de la sangre, al entrar en contacto con el aire
durante su transformación lenta en hematina [3].
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Scientia et Technica Año XXV, Vol. 25, No. 01, marzo de 2020. Universidad Tecnológica de Pereira
Los métodos más utilizados en el estudio de las manchas de
sangre son las pruebas colorimétricas de orientación
presuntiva, siendo estas de gran sensibilidad, pero pueden
llegar a ser poco específicas, lo que con lleva a complementar
los resultados con técnicas cristalográficas cuya especificidad
complementan la sensibilidad de las pruebas de orientación
[4].
Otto Funke (1851) Fisiólogo Alemán publicó una serie de
artículos en los que describía el crecimiento de los cristales de
hemoglobina mediante la dilución sucesiva de glóbulos rojos
con un disolvente (agua pura, alcohol o éter), seguida de la
evaporación lenta del disolvente de la solución [5].
Kolliker (1853) encontró cristales de hemocromógeno en
sangre de perro, pez y pitón siendo solubles en álcali, en ácido
acético y nítrico siendo idénticos a los propuestos por Funke
[6].
Van Deen (1861) diseñó un método que consistía en definir
la existencia de peroxidasas en la muestra a estudiar,
promoviendo la oxidación de la tintura de guayaco por acción
del oxígeno [7].
Teichmann (1853) identificó la aparición de Cristales de
forma rómbica cuando la sangre fuese tratada con Ácido
acético glacial y cloruro de sodio como prueba de la identidad
de sangre.
Sutherland (1907) considero una prueba positiva de los
cristales de Teichmann, como una prueba segura de la
presencia de sangre en la tinción sospecha de estudio u
análisis [5].
Masaeo Takayama, 1912 realizó la identificación de sangre
en manchas secas utilizando piridina, glucosa e hidróxido de
sodio, la combinación de estos reactivos dio como resultado la
formación de cristales de hemocromógeno [4].
El método cristalográfico de Teichmann se basa en la
descomposición de la hemoglobina por acción del calor, dando
lugar a la formación de la hematina, la cual, en presencia de
una solución de ácido acético glacial, se combina con el cloro
de la sal para formar cloruro de hematina, quien
posteriormente se cristaliza por enfriamiento [8].
El fundamento químico de la prueba da origen a los cristales a
partir de una hidrolisis acida, seguida de la oxidación de Fe+2
a Fe+3 de la hemina, formando cristales romboédricos de
hemina o clorato de ferriprotoporfirina [2].
Hematina + Ácido Acético + 𝐶𝑙 → Clorato Fe
Ferriprotoporfirinica (cristales de Hemina).
En la fig.1 se evidencia la estructura molecular del Clorato
Ferriprotoporfirinica.
Fig.1 Estructura molecular del Clorato Ferriprotoporfirinica.
Los colores obtenidos en la reacción de confirmación de
sangre en manchas en este método, pueden ser leves o intensos
dependiendo de las condiciones de la prueba, la cantidad de la
sustancia presente y la presencia de agentes reaccionantes [9].
El resultado de esta prueba se debe hacer por comparación
de la sustancia desconocida con una sustancia de referencia o
control bajo las mismas condiciones de temperatura, humedad
y medio ambiente [10].
Los reactivos empleados en la preparación del Reactivo de
Teichmann se realizaron siguiendo los procesos de
bioseguridad establecidos por el Laboratorio de Biología del
instituto Nacional de Medicina Legal y Ciencias Forenses
[11].
Numerosos trabajos se han realizado en la investigación
forenses de manchas de sangre [12] [13] [14] [15], las cuales
con llevan a un continuo mejoramiento en pruebas de certeza
para el aporte en los dictámenes del perito forense.
II. MATERIALES Y METODOS
A. Materiales
Algodón esterilizado, telas de varios colores, papel filtro,
gradilla para tubos, pinzas metálicas de punta delgada,
mechero de alcohol, laminas portaobjetos, laminas
cubreobjetos, cajas de Petri (materiales para la preparación de
las muestras); vasos de precipitación 100ml, probeta de 10ml,
tubos de eppendorf de 1,5ml, caja pesa sustancias, puntas
desechables para pipetas automáticas, espátula delgada,
frascos para almacenamiento de reactivos color ámbar, pipetas
automáticas, tubos de ensayo, guantes, tapabocas, bolsas de
papel pequeñas, bolsas plásticas
y probeta graduada
(materiales en la preparación de reactivos).
B. Equipos Utilizados
Cámara de extracción de gases, nevera (5ºC +/- 3ºC),
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destilador de agua, cronometro, balanza analítica,
microscopio, horno con recirculación de aire, pipetas
semiautomáticas con embolo. (Rango de 10ul, 200ul, 1000ul),
termohigrómetro, vortex.
C. Reactivos utilizados
Hidróxido de sodio de pureza 99,9%, Ácido acético glaciar
de pureza 100%, Agua destilada.
D. Método
En el análisis se utilizaron manchas de sangre secas en
distintos sustratos, el método de estudio es una prueba
confirmativa cristalográfica usando las medidas de
bioseguridad adecuadas por el laboratorio de Biología forense.
E. Población de estudio
Se Tomaron 100 muestras entre manchas de sangre, puras y
diluidas, extractos de productos vegetales, productos químicos
y fluidos biológicos de origen humano, para su estudio con
ordenamiento cruzado (muestras ya elaboradas, donde un
analista asigna un código numérico a cada muestra y lo
consigna en un listado, consecutivamente las muestras pasan a
un segundo analista que las codifica por segunda vez y al
finalizar se comparan los resultados obtenidos).
F. Muestras
En la Tabla I se observa la población de las muestras para su
TABLA I
POBLACIÓN DE LAS MUESTRAS
Origen
Muestra
Tipo
Sangre en
mancha
Sangre
Sangre
Fluidos
corporales
humanos
(biológicos)
Productos
Vegetales
Productos y
Reactivos
químicos
Inhibidores
Sangre humana
Sangre animal
diluciones
de la sangre
liquida
Animales,
animal
domestico
Humano
Verduras, frutas
Plantas
Jugo de limón
Soda caustica
Ácido acético
Hidróxido de sodio
hipoclorito
G. Criterios de selección de muestras
Como control positivo se utilizó sangre humana y como
control negativo agua salina de concentración 0,85%, se
obtuvieron muestras de sangre de animal doméstico y
animales salvaje adoptando las medidas de salubridad
pertinentes. Se seleccionaron fluidos corporales de origen
humano con el propósito de poder identificar algún tipo de
reacción con el método analítico en estudio y de esta manera
llegar así a identificar las posibles interferencias. Los
productos vegetales, sus derivados y los productos químicos
fueron utilizados por su coloración similar a la de la sangre.
H. Sustratos y elaboración de sustratos
Se utilizaron sustratos como: tela garza por su característica
absorbente y la no presencia de porosidad alguna, papel filtro,
dacron, seda, nylon, jean, lino y franela, todos ellos de
diferente color. La preparación de sustratos o mancha seca se
llevó acabo; seccionando fragmentos de 0,5cm x 0,5 cm se le
adicionaron cuarenta microlitros 40ul del fluido a indagar, se
pasó a secar en cabina de flujo laminar a temperatura ambiente
por un tiempo de tres 3 horas, posteriormente se almaceno en
bolsas de papel, se marcó y se rotulo en bolsa plástica, para
dejar en nevera a temperatura de -25ºC +/- 5ºC.
I. Elaboración de Extractos
Cantidad
17
8
16
Se tomó el vestigio de la mancha preparada de 0,5cm x0,5 cm
dentro de un tubo debidamente marcado, se adicionaron 100ul
de solución salina 0,85%, a continuación, se tapó y se pasó a
mezclar en el vortex por un tiempo de 30s a velocidad de
1500rpm (revoluciones por minuto). El almacenamiento se
llevó a cabo a temperatura de 5ºC +/- 3ºC en nevera por 24
horas [16].
J. Elaboración de Diluciones
En la Tabla II se indican las diluciones de sangre humana en
TABLA II
DILUCIÓN DE SANGRE EN MANCHA
leche materna, saliva,
sudor, orina, semen
humano, materia fecal
humana
detergente polvo,
detergente líquido,
hipoclorito, lugol,
isodine, marcador rojo,
salsa de tomate,
tiocianato de cobalto,
vino rojo
estudio.
12
Dilución
27
1:10
1:20
1:40
Químico
14
1:80
1:100
Sustrato
Papel
filtro
Papel
filtro
Papel
filtro
Papel
filtro
Papel
filtro
Volumen de la
dilución (ul)
10ul extracto de
mancha
50ul de dilución
1:10
50ul de dilución
1:20
50ul de dilución
1:40
10ul extracto de
mancha
Más
Solución salina
0.85% (ul)
+
90ul
+
50ul
+
50ul
+
50ul
+
990ul
mancha, desde 1:10 hasta 1:100 procedente de un extracto de
0,5cm x 0,5 cm con 20ul de solución salina 0,85% y fueron
realizadas de la siguiente manera.
Químico
6
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En la tabla III se presentan las diluciones en sangre liquida
realizadas a partir de sangre total anti-coagulada con citrato de
sodio.
IV. RESULTADOS Y DISCUCIÓN
Utilizando la matriz de confusión, en la tabla IV se observan
los datos obtenidos en la prueba de Teichmann
III. METODOLOGÍA
Para el estudio de las 100 muestras con clasificación
cruzada se realiza un corrido por cada 10 muestras, teniendo
como control positivo sangre humana y como control
negativo ácido acético glacial, se toma una lámina portaobjeto
y se adiciona 10ul de la muestra o extracto a estudiar, se pasa
a secar al horno por un tiempo de 6 +/- 2 minutos a
temperatura de 60ºC, seguidamente se coloca en cámara de
extracción y se adiciona 10ul más de la muestra en estudio ,
se pasa a secar nuevamente la muestra al horno por segunda
vez en un tiempo de 5 +/- 2 minutos a 60°C, se deja en
cámara de extracción y se adiciona 20ul de ácido acético
glaciar puro, se realiza un pequeño contacto de la muestra con
un cubreobjeto y se deja caer lentamente sobre ella,
Dilución
1:10
1:20
1:40
1:80
1:100
1:160
1:200
Volumen de la dilución
Solución salina
Más
(ul)
0.85% (ul)
10ul sangre
+
90ul
50ul de dilución 1:10
+
50ul
50ul de dilución 1:20
+
50ul
50ul de dilución 1:40
+
50ul
10ul sangre
+
990ul
50ul de dilución 1:80
+
50ul
TABLA III
500ulDILUCIÓN
de diluciónEN
1:100
SANGRE+LIQUIDA 500ul
obteniendo de esta manera su cubrimiento total, se utiliza un
mechero de alcohol y automáticamente se toma con una pinza
metálica el portaobjeto calentando con suavidad, hasta
obtener la formación de burbujas de gas en el líquido situado
debajo del cubreobjetos, indicando de esta manera que el
ácido acético
ha llegado al punto de ebullición,
posteriormente se deja la muestra enfriar por un tiempo de 5
+/- 1 minutos y se adiciona por capilaridad 20ul de ácido
acético glacial para ser observada en el microscopio con el
objetivo de 10X y en seguida en 40X obteniendo las lecturas
correspondientes.
A. Lectura de Resultados
Positivo: Formación de cristales de hemina, coloración
chocolate oscuro y en forma de pequeñas placas rómbicas que
varían de tamaño de 5 +/- 10 um (micrómetros).
Negativo: Ausencia de estos cristales.
El análisis cualitativo y sus atributos numéricos alcanzados en
sensibilidad, especificidad, valor predictivo positivo, valor
predictivo negativo, índice de concordancia e índice de kappa
según la matriz de confusión fueron adquiridos siguiendo el
protocolo de análisis de datos estadísticos [17], también se
mantuvieron presentes las normas de bioseguridad y limpieza
del material manipulado por el laboratorio de biología forense.
TABLA IV
PRUEBA DE TEICHMANN
PRUEBA
RESULTADOS
MUESTRAS
POSITIVAS
MUESTRAS
NEGATIVAS
POSITIVO
39
0
NEGATIVO
2
59
Teichmann
En la Tabla V, se presentan los datos obtenidos en el
método de Teichmann
TABLA V
RESULTADOS ESTADÍSTICOS DE TEICHMANN
Variable
Método de Teichmann
Sensibilidad
96,22%
Especificidad
100%
Valor Predictivo positivo
100%
Valor Predictivo Negativo
Límite de Detección
Índice de Concordancia
Índice de Kappa
96,87%
1/160 (Sangre líquida)
1/40 Sangre mancha)
100%
1
La especificidad obtenida por esta técnica, nos demuestra la
capacidad para detectar como positivas aquellas muestras que
realmente poseen el evento (o analito) en estudio, como
también el grado de selectividad del método, obteniéndose un
valor significativo en el análisis forense para la determinación
de sangre.
La sensibilidad obtenida en la técnica de teichmann
representa la probabilidad de encontrar como positivo una
muestra que contenga realmente la sustancia buscada con un
valor asertivo de confiabilidad para el analista forense.
El grado de concordancia realizados por los mismos
analistas en el método de teichmann, con los mismos equipos
de medición, en el mismo laboratorio evidenciaron que la
técnica fue repetible y reproducible.
En el estudio del método de Teichmann con el propósito de
evaluar sustancias o fluidos que interfieran y lleguen a generar
resultados falsos positivos se elaboraron manchas sobre telas
de algodón en vegetales como (remolacha, repollo morado,
rábano, berenjena, pimentón, uyuco, plátano verde, tomate
chonto, zanahoria, flor de fique); frutas (ciruela, papaya,
manzana roja, mora, zapote, uva roja); productos químicos
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(detergente, hipoclorito, lugol, isodine, Tiosulfato de sodio,
óxido de hierro, benzal); otras sustancias como (salsa de
tomate, marcador rojo, esmalte rojo y vino rojo) y fluidos
biológicos humanos( leche materna, semen, heces fecales,
saliva y orina) [3].Donde en la técnica de Teichmann
sustancias como el detergente y el hipoclorito debido a la
acción inhibidora arrojan resultados falso negativos.
REFERENCIAS
[1] A. N. Coterhuanco, “Valoración de dos métodos colorimétricos para la
detección de sangre en manchas secas en diferentes soportes y
condiciones ambientales con fines forenses (Doctoral dissertation),”
Bolivia , 2009.
[2] G. Calabuig, Medicina Legal y Toxicologia, Barcelona: Masson, 2004.
ISBN: 9788445814154.
El valor de kappa obtenido por los dos analistas fue de 1, lo
que muestra una buena concordancia entre analistas y que no
se debió al azar; como también los valores operacionales
obtenidos fueron iguales para los dos analistas.
[3] G. J. Villanueva, Medicina Legal y Toxicologia, Barcelona,España:
V. CONCLUSIONES
[5] R. E. Gaensslen, Sourcebook in Forensic Serology, Immunology, and
En la investigación de manchas de sangre, el método
confirmativo cristalográfico de teichmann sirve como soporte
a las pruebas colorimétricas presuntivas debido a su alta
especificidad y la poca cantidad de muestra que se necesita
para realizar su marcha analítica.
Existen sustancias como el hidróxido de sodio, el
hipoclorito que puede inhibir la reacción a pesar de existir
sangre en la muestra. El Ph fuertemente alcalino dado por el
hidróxido de sodio como también el Ph acido del hipoclorito
desnaturalizan las proteínas presentes en la hemoglobina
impidiendo de esta manera la formación de cristales de
hemina.
El uso de los diferentes sustratos utilizados (tela garza, jean,
algodón, franela, lycra, lino, seda, papel filtro y dacron, todos
ellos en colores como rojo, azul, amarillo y blanco), en el
método de teichmann no infieren ni inhiben la reacción de
cristalización.
En los distintos sustratos utilizados como (algodón, franela,
jeans, lino, nylon, papel filtro, tela garza, dacrón, seda), el
método de teichmann no presento ningún tipo de interferencia
ni tampoco inhibieron las reacciones cristalográficas en el
momento del análisis.
Los datos alcanzados de sensibilidad y límite de detección
nos demuestran que la técnica queda limitada para estudio con
muestras de una dilución de 1:160.
Las técnicas se repitieron por dos analistas el mismo día y
días diferentes, demostrando que la prueba es repetible y
reproducible, además se estableció que ni la temperatura de
25ºC +/- 5ºC, ni la humedad del lugar de análisis (65ºC +/5ºC), mostraron algún efecto en el desarrollo del análisis.
La técnica presenta fortalezas como lo son el tiempo
requerido para montar la prueba y obtener resultados por cada
10 muestras es de 40 +/- 5 minutos y además se puede trabajar
directamente sobre la mancha de sangre.
Masson. ISBN: 9788445814154, 2004.
[4] C. E. A. N.K, “Manual Hyland de Inmunohematologia revisión,concisa
de principios y procedimientos,”, Angeles ,California EUA: Asistencia
editorial del Dr. Jhon W.Palmer.
Biochemistry,, Washington, DC : US Department of Justice National
Institute of Justice, 1983.
[6] R. E. Gaensslen, de Sourcebook in forensic serology, immunology, and
biochemistry, Washington, DC, US Department of Justice, National
Institute of Justice, 1983, p. 79.
[7] P. Castelló, Revisión crítica del diagnóstico de orientación en el estudio
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aportación de la Qjuímica Legal, Valencia,España : Universidad de
Valencia,Facultad de Ciencias Quimicas, 1997.
[8] M. H, ““The Haemochromogen Cristal Test For Blood,”,” The Britise
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el LBF Regional Occidente de Pereira,, Pereira, 2007.
[10] M. M. V. Silvia, ““Validacion del Metodo de Thevenon Roland Como
Prueba Para Detectar la Presencia de Sangre en Manchas,”,” Instituto de
Medicina Legal de Medellin, Medellin, 2002.
[11] I. N. d. M. L. y. C. Forenses, “ “DRC-GBF-T-IPR-05,”,” Pereira, 2004.
[12] J. N. Rodriguéz, ““Aportes de la hematología al campo forense: pruebas
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2016. ISSN 2346-9307.
[13] H. B. M. H. M. L. C. Vela, “Identificacion Forense de Manchas de
sangre por Abacard Hematrace.Teichman y Takayama,” de Universidad
Autonoma de Chiapas. Facultad de Ciencias Quimicas . Campus IV.
XXII Jornadascientificas, mexico,ISSN1946-5351, 2014..
[14] J. N. Rodriguez, “Aporte de la Hematologia al campo forense: pruebas
de orientacion y de certeza,” Skopen, vol. IV, nº 13,ISSN: 2346-9307,
pp. 35-37, 2016.
[15] V. G. Aubrey, “The use of Takayama Solution in the Identification of
Blood Stains,” The British Medical Journal, vol. 1, nº 3724, pp. 932933, Mayo 21,1932. DOI: 10.1136/bmj.1.
[16] I. N. d. M. Legal, “PET sobre la determinacion de la actividad de
Peroxidasas,” Instituto Nacional de Medicina Legal, Bogota, 2004.
[17] H. Manrique, “Manual de Referencia para la Validacion de Tecnicas
Analiticas.Instituto Nacional De Medicina Legal y Ciencias Forenses.,”
Medellin,Colombia, 1995.
163
Scientia et Technica Año XXV, Vol. 25, No. 01, marzo de 2020. Universidad Tecnológica de Pereira
Nancy Janet Castillo Rodríguez nació
en Cali, Colombia, en 1978. Recibió los
títulos de Tecnóloga Química, Química
Industrial Y Magister en Instrumentación
Física por la universidad Tecnológica de
Pereira (UTP), Pereira, en 1997,2008 y
2017. Actualmente Realiza sus estudios
en Maestría en Enseñanza de la Física en
la Universidad Tecnológica de Pereira,
Desde 1998 se ha desempeñado como docente en el municipio
de Pereira, Desde 2011 ha sido profesora en el Departamento
de Física, UTP, y desde 2015 es profesora transitoria de medio
tiempo. Sus intereses de investigación actuales incluyen
proceso de tratamiento digital de imágenes en el campo de la
medicina forense, identificación de fluidos biológicos en
dictámenes de carácter forense y análisis de sustancias
orgánicas. Pertenece al grupo de investigación Robótica
Aplicada de la UTP.
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-0856-0582
Sebastián Martínez García nació en
Cartago, Colombia, en 1988. Recibió los
títulos de Ingeniero Físico y Magister en
Instrumentación Física por la Universidad
Tecnológica de Pereira (UTP), Pereira, en
2011 y 2014. Actualmente realiza sus
estudios en Doctorado en Ciencias en el
área de Física en la Universidad
Tecnológica de Pereira, Desde 2012 se ha
desempeñado como docente en la Facultad de Ingenierías en el
Programa de Ingeniería Física en la UTP, siendo actualmente
profesor transitorio de medio tiempo. Sus intereses de
investigación actuales incluyen desarrollo de prototipos para la
experimentación, instrumentación, tratamiento digital de
imágenes y aprendizaje automático. Pertenece al grupo de
Investigación Diseño y Construcción de Prototipos para
Experimentos de Demostración – DICOPED de la UTP.
Paper Award in 2011.
ORCID: https://orcid.org/0000-0003-2055-5620
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