Tercer Congreso virtual de Ciencias Morfológicas. Tercera Jornada Científica de la Cátedra Santiago Ramón y Cajal. EFECTOS DE LA RESPUESTA INMUNE A LA VACUNA TERAPÉUTICA NASVAC SOBRE LA ESTRUCTURA HISTOLÓGICA DEL HÍGADO DE RATONES TRANSGÉNICOS HBSAG (+). Autores: *Dra. Janet Cueto González, **Dr. Julio César Aguilar Rubido, ***Dr. Andrés Dovale Borjas, ****MSc. Sonia Rafaela Sánchez González. daryjanet@infomed.sld.cu * Dra. en Medicina. Especialista de 1er grado en Histología, instructora del Departamento de Histología, Facultad de Ciencias Médicas Victoria de Girón, Universidad Médica de La Habana, Cuba. ** LIc. Julio César Aguilar Rubido. Lic. en Bioquímica. Dr.C. Investigador Titular Centro de Ingeniería Genética y Biotecnología. La Habana, Cuba. julio.aguilar@cigb.edu.cu *** Dr. Andrés Dovale Borjas. Ave 17 Núm 19402 entre 194 y 198, Siboney, Playa. La Habana, Cuba. adovale@infomed.sld.cu Dr. en Medicina. Profesor consultante y Titular. Departamento de Histología, Facultad de Ciencias Médicas Victoria de Girón, Universidad Médica de la Habana, Cuba. **** Lic. Sonia Rafaela Sánchez González. Calle Línea núm.602, entre calle C y calle B. apto. 2. Vedado, Plaza de la Revolución, La Habana, Cuba. Teléfono 78362298. sonia.sanchez@infomed.sld.cu 1 Licenciada en Ciencias Biológicas. MSc. Profesora Auxiliar, Departamento de Histología, Facultad de Ciencias Médicas Victoria de Girón, Universidad Médica de la Habana, Cuba. RESUMEN La infección por el virus de la hepatitis B (VHB) constituye un problema de salud pública mundial. Es necesaria la búsqueda de nuevas alternativas terapéuticas y entre ellas está la inmunoterapia. Se desarrolló un candidato vacunal terapéutico (NASVAC)basado en una formulación de los antígenos recombinantes de la superficie del virus de la hepatitis B (HBsAg) y de la cápsida del virus (HBcAg) que se administra por vía nasal (IN) y subcutánea (SC). En el presente trabajo se caracterizó el efecto de la respuesta inmune inducida por este candidato vacunal sobre la estructura histológica del hígado de ratones BALB/c transgénicos al HBsAg. Se emplearon 23 animales de seis a ocho meses y de ambos sexos, organizados en tres grupos: un grupo experimental, que recibió una transferencia de células del bazo de ratones Balb/C previamente tratados con el candidato vacunal, el control tratado con células del bazo de ratones no inmunizados y un grupo control de ratones no tratados. En el hígado se observaron signos leves de inflamación en las zonas periportales, no se detectaron cambios necróticos, ni fibróticos. La morfometría mostró diferencias significativas para el grupo experimental con respecto al grupo no tratado en las variables área nuclear y área celular como resultado del efecto de la transferencia adoptiva de células estimuladas. Los resultados del presente estudio permiten concluir que la transferencia adoptiva de células inmunes a los antígenos del Virus de la hepatitis B no produjo daños hepáticos de ratones transgénicos en las condiciones estudiadas. Palabras claves: Virus de la hepatitis B (VHB),Cirrosis Hepática (CH), Candidato vacunal terapéutico (CVT), Antígeno de superficie del virus de la hepatitis B (HBsAg), Antígeno de la nucleocápsida (HBcAg). 2 INTRODUCCIÓN La hepatitis viral es la infección del hígado por virus hepatotropos 1,2.Cada año mueren alrededor de 780,000 personas debido a la hepatitis B (HB) con mayor prevalencia de la enfermedad en África subsahariana y Asia oriental3y alrededor de 350 millones son portadores crónicos4-7lo que estáasociado al desarrollo de cirrosis (CH) y cáncer hepático2,3, 6-8. El conocimiento de la historia natural de la infección por el VHB es fundamental para establecer estrategias de prevención y tratamiento eficaces 5 .El objetivo principal de todo tratamiento en una enfermedad infecciosa es la erradicación del agente causal para evitar el daño y las complicaciones que éste produce en el organismo. En la actualidad con las terapias existentes este objetivo solo se logra en una pequeña proporción de pacientes9. En Cuba, en las últimas décadas, después de un programa masivo de vacunación a los menores de 5 años y a la población de riesgo, no se han reportado casos de HB aguda en menores de 5 años y la incidencia de Hepatitis B fue de 3,5 por 100000 habitantes en el 201410. Las vacunas salvan alrededor de 10 millones de vidas cada año4. La vacuna específica anti-hepatitis B ofrece posibilidades de ser utilizada para prevenir la enfermedad11. El Centro de Investigaciones Genéticas y Biotecnología (CIGB) obtuvo la proteína recombinante Antígeno de superficie de la Hepatitis B (HBsAg), este antígeno forma parte de la vacuna cubana anti-Hepatitis B que se utiliza desde la década del 9012. En este centro, a partir de los antígenos recombinantes de la superficie y de la nucleocápsida del virus se obtuvo un CVT que se administra por las vías nasal y subcutánea6,13. Esta formulación presenta características inmunológicas favorables, entre ellas podemos mencionar su capacidad para inducir una fuerte respuesta inmune humoral y celular contra el virus de la Hepatitis B13. El objetivo del presente trabajo es caracterizarel efecto de la respuesta inmune inducida por elcandidato vacunal terapéutico (CVT) NASVAC sobre la estructura histológica del hígado de ratones BALB/c transgénicos al HBsAg. 3 MATERIAL Y MÉTODOS Se realizó un estudio prospectivo y descriptivo utilizando como biomodelo ratones BALB/c transgénicos en el CIGB y el Instituto de Ciencias Básicas y Preclínicas “Victoria de Girón”, en el periodo comprendido entre el año 2008 y 2012. Se emplearon 23 animales de ambos sexos y de 6 a8 meses de edad procedentes del bioterio del CIGB, caracterizados por la expresión estable del HBsAg en sangre y en diferentes tejidos como el hígado14,15. El grupo experimental fue tratado con células de bazo obtenidas de ratones BALB/c no transgénicos, previamente inmunizados con el candidato vacunal terapéutico NASVAC en experimentos de transferencia adoptiva de inmunidad celular. El grupo control tratado con células del bazo de ratones no inmunizados y un grupo control de ratones no tratados. Como animales donantes se emplearon los ratones Balb/c no transgénicos de 8 a 10 semanas de vida, con un fondo genético idéntico respecto a los animales receptores. Durante el tratamiento, todos los animales se mantuvieron en iguales condiciones ambientales e higiénicas. Inmunógenos La formulación del NASVAC se produjo en el CIGB. Esta formulación posee una concentración de 0.1 mg/mil del HBsAg y HBcAg, respectivamente. Esta formulación es estéril y apirogénica. Se administró a los ratones por las vías IN y SC de forma simultánea. Cada bulbo contiene 50 microgramos de cada antígeno en 500 microlitros13, 16. Para la transferencia adoptiva se emplearon células del bazo obtenidas de los ratones BALB/c previamente inmunizados con el CVT. Estos ratones fueron inoculados con una dosis de 5 microgramos de HBsAg y 5 microgramos de HBcAg que están formulados en una preparación que contiene igual cantidad de ambos antígenos en PBS a una concentración de 0.1 mg/ml de cada antígeno. Se administraron 50 micro litros de la formulación por las vías ya descritas. Las dosis se administraron en las semanas 0 y 2 en una sola ocasión Adicionalmente se administró una dosis de refuerzo. A las dos semanas de la última inoculación se practicó la eutanasia y se extrajeron los órganos objeto de estudio para su posterior procesamiento. Esquema de inmunización 4 Grupo experimental: Los ratones fueron inoculados en una sola ocasión por vía IP con una dosis única de 50x106 células de bazo inmune obtenidas por el procedimiento ya descrito. Grupo control tratado: Los animales fueron inoculados con células de bazo de ratones BALB/c no transgénicos y no inmunizados con el CVT. Se les administró igual esquema de tratamiento que a los animales del grupo experimental. Grupo control no tratado: Animales a los que no se les inoculó ningún fármaco. Obtención de la muestra A las 8 semanas de la transferencia adoptiva, a todos los ratones se les practicó la eutanasia por dislocación cervical. Se les extrajo el hígado para ser procesado y obtener los cortes histológicos que se colorearon con la técnica de Hematoxilina y Eosina. Las láminas histológicas fueron estudiadas en un microscopio Optech con objetivos de 10x, 40x y 100x y se tomaron fotomicrografías digitales con el objetivo de 10x y 40x. Estudio microscópico Para el estudio histológico del hígado se valoraron los parámetros histopatológicos de inflamación y fibrosis. Operacionalización de variables17. Inflamación: Se valoró de acuerdo a la presencia de leucocitos en el tejido hepático: Ausente (0): Ninguna célula de la inflamación Escasa (X): Aisladas células de la inflamación Focal (XX): Numerosas células inflamatorias localizadas en un área determinada Inflamación difusa (XXX): Presencia de células de la inflamación en un área extensa del parénquima. Fibrosis: Se evaluaron por la presencia de tejido conectivo fibroso y se estableció la siguiente escala convencional: Ausente (0): Ningún signo de fibrosis Escasa (X): Aumento del tejido conectivo de los tractos portales Moderada (XX): Fibrosis focal del parénquima y/o aumento marcado del tejido conectivo de los tractos portales 5 Intensa (XXX): Formación de los extensos septos fibrosos con desorganización de su arquitectura lobulillar. Estudio morfométrico microscópico Se midieron 50 o más hepatocitos en cada zona del lobulillo hepático la periportal, intermedia y centrolobulillar, para determinar el área de los núcleos y el área citoplasmática correspondientes y la relación entre ellas. Se digitalizaron las imágenes en un equipo óptico y digital combinado: microscopio OPTECH con objetivos 40x tubo de proyección Canon B-52 y una cámara digital modelo Canon PowerChot G11 con lente 10x. Se digitalizó una imagen con objetivo 40x que abarcó toda el área a medir, consideramos una línea recta imaginaria entre la zona portal y la vena centro lobulillar se dividió en tres partes iguales, la zona periportal (PP), intermedia (IM) y centro lobulillar (CL). El diámetro mayor y menor de los núcleos y la altura y ancho de las células se midieron según el programa ImageTool 3 (IT3)18, datos que fueron utilizados para calcular el área. Presupuestos matemáticos El núcleo tiene forma ovalada. Los hepatocitos tienen aspecto elíptico según el plano de corte por lo que se le aplicó la misma fórmula. El área se calculó aplicando la fórmula matemática: A =(a/4+b/4)2 π a = diámetro mayor b = diámetro menor. La relación núcleo/citoplasma se obtuvo aplicando la fórmula de relación o índice nucleoplasmático descrita por De Robertis modificándola para el área: Relación= área nuclear/ área celular –área nuclear Análisis de los Datos Utilizamos el paquete estadístico Statistica 8.Los datos fueron forma aleatoria de los diferentes grupos de seleccionados de ratones. Se confeccionarondistribuciones de frecuencias absolutas y porcentuales univariadas y sus representaciones gráficas. Se utilizó test no paramétricos como resultado del análisis de normalidad específico en las muestras evaluadas 6 RESULTADOS Evaluación de los signos de inflamación:El histopatológicos de inflamación y fibrosis en estudio de los parámetros el hígado mostraron que la transferencia de células de bazo de ratones Balb/c previamente inmunizados con el CVT NASVAC no produjo inflamación en las zonas intermedia, ni centro lobulillar del lobulillo hepático, no así en la zona peri portal donde se observaron células inflamatorias que infiltran el parénquima del órgano de los animales del grupo experimental esto queda resumido en la tabla 1. Tabla 1: Evaluación de signos de inflamación Grupos Zonaperiportal Zonaintermedia Zonacentrolobulillar Experimental Focal ausente Ausente Control tratado Escasa ausente Ausente Control no tratado Ausente ausente Ausente Evaluación de la fibrosis y necrosis: Al evaluar el índice de fibrosis y necrosis referido en la tabla 2, no se encontró la presencia de tejido a cicatrizar ni signos de necrosis en ninguna de las zonas estudiadas, esto se puede corroborar en las fotomicrografías (figura 1), donde pudimos comparar cada uno de los grupos estudiados. Tabla 2. Evaluación de la fibrosis y la necrosis Zona Zona Zona periportal intermedia centrolobulillar Experimental Ausente ausente Ausente Control tratado Ausente ausente Ausente Control no tratado Ausente ausente Ausente Grupos 7 Figura 1: Fotomicrografías de la zona PP del lobulillo hepático. Coloración H/E 400X. Grupo control no tratado Control tratado Grupo experimental Alteraciones de la estructura lobulillar: Tampoco se constató congestión, dilatación de los sinusoides, ni alteraciones de la estructura lobulillar del órgano (figura 2). Figura 2: Fotomicrografía del tejido hepático.Coloración H/E 100X Evaluación de la homogeneidad citoplasmática: Observamos la presencia de vacuolas claras e irregulares en el citoplasma de las células de las tres zonas del lobulillo hepático. Los hepatocitos mostraron un citoplasma con basófilia moderada y aspecto vacuolado de forma irregular (figura 3). 8 Figura 3: Fotomicrografía del parénquima hepático. Grupo experimental. Coloración H/E 400X. DISCUSIÓN La erradicación del virus es imposible con las drogas aprobadas en la actualidad debido a la existencia de reservorios extra hepáticos del VHB19, 20. La integración del ADN viral al ADN del hospedero y la presencia de ADN circular cerrado covalentemente (cccDNA) en los núcleos de los hepatocitos forma templetes transcripcionales durante la replicación del VHB sin necesidad de que ocurra la reinfección. Los agentes antivirales actuales poseen poco efecto inhibitorio sobre el cccDNA, lo cual conduce a una alta tasa de recaída virológica al descontinuar el tratamiento19. Los antígenos recombinantes HBsAg y HBcAg empleados en el desarrollo de la formulaciónvacunal en estudio inducen una fuerte respuesta inmune humoral y celular contra el virus de la Hepatitis B 20,21. El conocimiento actual en el campo de la vacunación terapéutica para la HVC sugiera la inclusión de otros antígenos además del HBsAg y del uso de nuevas vías de administración20. En los pacientes infectados por el VHB se observan cambios morfológicos en el hígado descritos como inflamación, necrosis, degeneración y fibrosis22-24. Se interpreta la inflamación como un mecanismo de defensa aunque en la zona periportal la respuesta inflamatoria puede ser mayor, a la degeneración como la tumefacción y el edema en los hepatocitos. La fibrosis es la transformación del tejido parenquimatoso del órgano que conlleva un aumento del tejido conectivo y a 9 la perdida de la compleja cito arquitectura del hígado como ocurre en la CH en respuesta a agresiones tóxicas22,23. La inflamación observada no está asociada a manifestaciones de necrosis a diferencia de lo reportado por otros investigadores 25. Esto sugiere que el infiltrado inflamatorio puede deberse a la respuesta local que provocó el inmunógeno. No se encontró signos de necrosis ni fibrosis, esto corresponde al 100% de los ratones estudiados. El CVT NASVAC no produjo inflamación en las zonas intermedia, ni centro lobulillar del lobulillo hepático, no así en la zona peri portal donde se observaron células inflamatorias que infiltran el parénquima del órgano de los animales del grupo experimental, es posible considerar que está zona recibe una gran irrigación sanguínea y es la primera que se pone en contacto con los medicamentos que circulan por la sangre, en cada área los hepatocitos presentan una batería enzimática diferente. Un factor importante a evaluar es la presencia de lesiones no específicas como los cuerpos acidófilos o células apoptóticas cuya aparición puede deberse a causas tóxicas o inmunitarias y la degeneración balonizante (necrosis lítica) provocada por casi cualquier tipo de agresión. Estas lesiones pueden ser focales (diseminadas por todo el parénquima), zonales, submasivas o masivas25,26. Otro signo a evaluar es la presencia de lesiones necro inflamatorias en los conductillos biliares. Estos cambios pueden ser utilizados para la evaluación de la efectividad de los diferentes tratamientos y de la enfermedad25. El interferón alfa y los antivirales producen disminución de la actividad necroinflamatoria pero no existen evidencias de que estos controlen la evolución de la fibrosis, por tanto no reducen el riesgo de cirrosis hepática 27. En este trabajo se constató la ausencia de fibrosis después del tratamiento aplicado, siendo un factor importante para el control de la progresión hacia la cirrosis hepática en estos pacientes. Se observó un aspecto normal en los componentes estructurales histológicos de los hígados de la totalidad de los animales estudiados, no se encontró degeneración de los hepatocitos, puesto que no se evidenció retención de material acidófilo en las células. La presencia de vacuolas claras e irregulares en el citoplasma de las células de las tres zonas del lobulillo hepático se interpreta que está en correspondencia con 10 depósitos de glucógeno. Después de una ingestión de alimentos se puede observar glucógeno depositado en los hepatocitos fundamentalmente en la zona PP y a medida que aumenta la digestión las inclusiones se distribuyen en las restantes zonas del lobulillo hepático hasta quedar todas cargadas de estos gránulos. Se considera que de cuatro a cinco horas después de la toma del alimento la cantidad de glucógeno en los hepatocitos aumenta y su máximo lo alcanza al cabo de 10- 12 horas 28 Se constató la presencia de núcleos grandes y eucromáticos en la mayoría de las células, algunas binucleadas y abundantes con núcleos poliploides en todas las áreas del lobulillo hepático, lo que se corresponde al aumento de la actividad metabólica del órgano. En condiciones normales el 25% de las células son binucleadas y entre el 40 y el 60 % son poliploides29. Se conoce que los hepatocitos en su ciclo de vida se desplazan hacia la vena central que es la zona menos irrigada y a medida que esto ocurre los signos de muerte celular se van haciendo más evidentes hasta que mueren30. Esto se corresponde con los resultados encontrados de aisladas y escasas células con signos de apoptosis, localizadas en su mayoría hacia la zona centro-lobulillar. Se realizó un estudio morfométrico del órgano donde se encontró diferencia significativa en el área nuclear, el área citoplasmática y la relación núcleo/citoplasma en las tres zonas del lobulillo hepático. Los valores medios de las áreas son mayores en el grupo experimental y en la zona periportal, estos van disminuyendo hacia la zona centro lobulillar, lo que se explica por la diferencia de irrigación y función de cada una. CONCLUSIONES La transferencia a ratones transgénicos HBsAg(+) de células de bazo de ratones Balb/c previamente inmunizados con el candidato vacunal terapéutico NASVAC no produjo inflamación en las zonas intermedia, ni centrolobulillar del lobulillo hepático. La transferencia de células inmunes provocó un infiltrado focal de células inflamatorias en la zona periportal del parénquima hepático en los ratones 11 transgénicos, sin embargo, este infiltrado no estuvo asociado a signos de necrosis, fibrosis ni degeneración celular. El estudio de las variables morfométricas del hígado demuestra el aumento del área nuclear y celular de los hepatocitos de las tres zonas del lobulillo hepático del grupo que recibió células inmunes con respecto al grupo no tratado sin afectar la relación área núcleo /área citoplasma. Los resultados obtenidos con el CVT NASVAC permiten considerarlo una posible alternativa terapéutica. REFERENCIAS BIBLIOGRÁFICAS 1- Krugman S, Giles JP, Hammond J. Infectious hepatitis. Evidence for two distinctive clinical, epidemiological and immunological types of infection. JAMA 1967; 200: 365-73. 2- Cirión Martínez GR; Herrera Pérez MA. Hepatitis viral. Editorial Ciencias Médicas (Ecimed), La Habana 2012.ISBN978-959-212-769-2.cap 3 pp 36-61 3- OMS/ Hepatitis B. nota descriptiva No. 204, Julio 2015. Disponible en: http://www.who.int. Revisado septiembre de 2015. 4- Organización Mundial de la Salud (OMS), vacunas. Enfermedades, Enfermedades infecciosas, Enfermedades transmisibles, Gastroenterología | Etiquetas: cáncer de hígado, cinco virus principales: hepatitis A-B-C-D-E, Tomado del Boletín de Prensa Latina Copyright 2015; Agencia Informativa Latinoamericana Prensa Latina S.A. julio 23 / 2015. 5- Cortés L.; Domínguez M.; Simón M.A. Hepatitis B. Asociación Española de Gastroenterología. .cap 53 pp 769-786. Disponible en: www.aegastro.es/sites/default/files/archivos/ayudas.../53_Hepatitis_B.pd 6- Aguilar JC, Aguiar J, Pentón E, Guillen G, Muzio V, et al. Demostración de la seguridad, inmunogenicidad y eficacia del candidato vacunal terapéutico HeberNasvac y nuevos aportes a la caracterización de las poblaciones de pacientes con Hepatitis B Crónica. CIGB 2015. www.revistaccuba.cu/index.php/acc/article/view/451/37. Disponible Revisado 12 en: de junio 2016. 12 7- Uberos Fernández J. Nuevas vacunas terapéuticas en hepatitis B crónica. 2013. Disponible en: http://www.spao.es/documentos/novedades/pdf- novedad-11.pdf. Revisado enero de 2014 8- Ministerio de Sanidad, Servicios Sociales e Igualdad. Informe de utilidad terapéutica de las vacunas frente al virus de la hepatitis B. fecha de elaboración del informe 10 de diciembre de 2013. Disponible en: www.aemps.gob.es/medicamentosUsoHumano/vacunas/infoUtilTerapeutica/ docs/info-util-terap-hepatitis-B.pdf 9- Yuen MF, Lai CL. Treatment of chronic hepatitis B: Evolution over two decades. J Gastroenterol Hepatol 2011;26 (Suppl 1):138-43 10- Anuario Estadístico de Salud 2015. Disponible en http://www.infomed.sld.cu). Revisado el 18 de marzo de 2016. 11- Begué RE. Uso de plantas para la producción de vacunas y otros productos inmunobiológicos. 2006 Disponible en www.sisbib.unmsm.edu.pe/bvrevistas/speit/2006_n2/pdf/a02.pdf. Revisado el 14 de marzo de 2011. 12- Porras Delia N. y cols. Determinación del potencial irritante de un candidato vacunal nasal que combina al antígeno de superficie del virus de la hepatitis B con el antígeno de la nucleocápsida. Biotecnología Aplicada 2004; 21: 143-147. 13- Aguilar JC. Efecto adyuvante de los antígenos de la superficie y la nucleocápsida del virus de la hepatitis B y su utilidad en el desarrollo de candidatos vacunales. Tesis de opción al grado científico Doctor en Ciencias Biológicas. Centro de Ingeniería Genética y Biotecnología. Ciudad de la Habana 2007. 14- Castro FO. Expresión del gen del antígeno de superficie del virus de la hepatitis B en órganos de ratones transgénicos. Interferón Biotecnol 1989; 6:251-257. 15- García Catillo E, González Ramírez VE, González Griego A, Salgado Borges A, Fernández A, et al. Correlación del ADN y del antígeno de superficie del virus de la hepatitis B en tejidos de animales transgénicos. Rev Cubana Invest Biomed 2000; 19 (1): 8-9. 13 16- Aguilar Rubido JC, Lobaina Mato Y, Hernández Inguanzo D, Trujillo Pérez H, Freyre Almeida FM, et al. Formulation of hepatitis b virus antigens for cellular stimulation followed by therapeutic immunization. Fecha de la publicación 6 de diciembre de 2012. No. 20120308615. Disponible en: scielo.sld.cu/pdf/aci/v23n2/aci07212.pd. Revisado marzo 2014. 17- Malherbe Pérez JT. Efectos del consumo de etanol e inoculación de vacuna Heberbiovac-Hb sobre el sistema inmune y el hígado de ratas adolescentes machos. Trabajo para optar por el título de especialista de primer grado en Histología. Universidad de Ciencias Médicas de La Habana. 2003. 18- Wilcor CD. and col. UTHSCA. Image Tool for Windows. Version 3.00 (IT3). University of Texas, Health Science Center in San Antonio. Copyright 1996-2002. Disponible en: http://ddsdx.uthscsa.edu/dig/itdesc.html. Revisado el 14 de marzo de 2010. 19- Romero Gisela. Hepatitis B. Revista de la Sociedad Venezolana de Gastroenterología. 2008; 62 (1). 20- Lobaina Mato Y. Co- administración intranasal-parenteral de un candidato vacunal, que combina a los antígenos de superficie y nucleocápsida del virus de hepatitis B, como estrategia terapéutica para el tratamiento de la hepatitis B crónica. Tesis presentada en opción al grado de Doctor en ciencia Biológicas. Centro de Ingeniería Genética y Biotecnología, División de Vacunas, La Habana, 2015. 21- Aguilar JC and col. Immunotherapy for chronic hepatitis B using HBsAg-based vaccine formulations: from commercial vaccines to NASVAC (Review). Hepatitis B Department, Biomedical Research Unit, Center for Genetic Engineering and Biotechnology. Havana, Cuba, 2011. Disponible en : https://www.researchgate.net/.../272379135 22- Alexander J. et al. Enfermedades Infecciosas. Patología estructural y funcional de Robbins y Cotran. 7ma ed. Madrid: Elsevier: 2007. Cap. 8, p. 347-348. 14 23- Cirión Martínez GR; Herrera Pérez MA. Hepatitis viral. Editorial Ciencias Médicas (Ecimed), La Habana 2012.ISBN978-959-212-769-2. Cap 2pp 1035. 24- Serra Desfilis MA. Virus de la hepatitis B. disponible en : https://www.seimc.org/contenidos/ccs/revisionestematicas/viromicromol/VH Brev.pdf 25- Gra. B. y col. Utilidad de nuevas variables histológicas en la valoración de la actividad necroinflamatoria y en el pronóstico de las hepatitis crónicas por virus B y C. Hepatología 2006. Sociedad Cubana de Patología. Editorial CIMEQ: 89 – 112. 26- Keeffe EB, Dieterich DT, Han SB. A treatment algorithm for the management of chronic hepatitis B virus infection in the United States: 2008 update. Clin Gastroenterol Hepatol. In preparation. 27- Vilar Gómez E. Tratamiento de la hepatitis Crónica B. Monoterapia o tratamiento combinado. Hepatología 2006. Sociedad Cubana de Patología. Editorial CIMEQ: 45 – 56 28- Metabolismo de los glúcidos. Cap IV pp 31-48. Disponible en : www.smu.org.uy/publicaciones/libros/historicos/dm/cap4.pd 29- Junqueira LC. Carneiro J. Histología Básica. 6ta edición. Editorial MASSON,S.A. Barcelona. Cap. 15. 2005. 30- Leyva Elizabeth, Rios Nancy, Rodríguez Lourdes, Díaz P. Comportamiento del volumen nuclear y del infiltrado inflamatorio en las hepatitis virales y crónicas. Hospital “V.I. Lenin” Holguín. 2001. Correos Científicos Médicos de Holguín 2003; 7 (3). Disponible en www.cocmed.sld.cu/no73/n73ori4.htm Revisado el 6 de junio de 2011 15