Ralstonia solanacearum Raza 3 biovar 2 Ralstonia solanacearum Raza 3 biovar 2 • • • • • • Introducción Hospedantes Síntomas Transmisión Detección Control Introduction • Ralstonia solanacearum Raza 3 biovar 2 es una bacteria que causa las siguientes enfermedades: – Pudrición marrón y marchitez bacteriana de la papa – Marchitez sureña del geranio – Marchitez bacteriana del tomate y otras solanáceas • Este patógeno está considerado como un miembro de la lista de agentes seleccionados de bioterrorismo agrícola. Other Ralstonia solanacearum Races and Biovars Raza Rango de hospedantes Distribución geográfica Biovar 1 Amplio Asia, Australia, Americas 3,4 1 2 Banana Otras Musa spp. Caribe, Brasil Filipinas 1 3 Papa, algunas otras solanáceas, geranio; Mundial, excepto US y Canadáa 2 4 Gengibre Asia 3,4 5 Frutillas China 5 (Daughtrey, 2003 Reprinted, with slight modification, from Denny and Hayward, 2001) Ralstonia solanacearum. •It is important to note that there are other races and biovars of Ralstonia solanacearum. •Only R. solanacearum Race 3 biovar 2 is on the select agent list. •Race 1 can infect hundreds of different plant species in 50 families and Race 1 biovar 1 is endemic in the Southern United States where it is commonly found on tomato, tobacco and other crops. •Races 2, 4, and 5 occur outside the U.S. in warm regions and are not considered a threat due to their poor cold-temperature tolerance. •Race 3 is commonly found through out the world except in the U.S. and Canada. •The race/biovar of most concern to the U.S. is Race 3 biovar 2, because of its ability to cause damage to potato, tomato, eggplant and geraniums in cooler climates than Race 1. •The potato industries in both the United States and Canada are concerned with potential introduction of Race 3 because potato crops in other temperate countries have experienced serious disease problems due to the cold temperature tolerance of Race 3. Global Distribution • Las pérdidas alrededor del mundo por la marchitez bacteriana de la papa son más de $950 millones por año (Allen 2003). • La resurgencia de R. solanacearum Raza 3 biovar 2 se han presentado en todo Europa en los últimos años. • Esta resurgencia se debe a la importación de material vegetal infectado de lugares donde la enfermedad está de tiempo establecida (Janse 1996). Photo H.D. Thurston, Cornell University, http://www.tropagfieldtrip.cornell.edu/docthurston/Thumbs%20%20Brown%20Rot/Brown%20Rot.html Hospedantes • Los hospedantes de Ralstonia solanacearum Raza 3 biovar 2 incluyen varias solanáceas: – papa – tomate – Berengena Photo H.D. Thurston, Cornell University, http://www.tropagfieldtrip.cornell.edu/docthurston/Thumbs%20%20Brown%20Rot/Brown%20Rot.html • El geranio (Pelargonium spp.) puede también servir coomo hospèdante. Signos y síntomas en plantas de papa Follaje • Enanismo • Amarillamiento • Marchitez, inicialmente limitada al ápice de la planta. Tallo • Lesiones vasculares • Colapso de plantas jóvenes • Exudados bacterianos Photos H. David Thurston, Cornell University, http://www.tropagfieldtrip.cornell.edu/docthurston/Thumbs%20%20Brown%20Rot/Brown%20Rot.html Signos y síntomas en tubérculos de papa •Lesiones en el anillo vascular •Exudado bacteriano, el cual en estados posteriores puede Bacterial Ooze emerger de los “ojos” y “yemas”. Photo Plant Protection Service Archives, Netherlands, www.forestryimages.org Photo Central Science Laboratory, Harpenden Archives, British Crown, United Kingdom, www.forestryimages.org Signos y síntomas en plantas de tomate • Marchitez • Lesiones vasculares • Exudación bacteriana Photos Clemson University - USDA Cooperative Extension Slide Series, www.forestryimages.org Vascular Vascular Discoloration Discoloration Síntomas en geranio • Amarillamiento, marchitex y necrosis de hojas inferiores • Lesiones vasculares y necrosis del tallo. • Pudrición marrón de raíces Photos Margery Daughtrey, Cornell University, www.pdis.org Signos en geranio Exudado bacteriano • Exudación bacteriana • Flujo bactgeriano: El tallo o peciolo cortado Photo Margery Daughtrey, Cornell University, www.pdis.org colocado en agua, produciría una nube generada por el flujo bacteriano fuera del Flujo bacteriano tejido vegetal. Photo David B. Langston, University of Georgia, www.forestryimages.org Transmisión • Suelo contaminado, agua de irrigación, agua superficial, equipo y personal. • El patógeno puede entrar a las plantas vía heridas ocasionadas por la manipulación o alimentación por nematodos. Photo Anson Eaglin, USDA-APHIS , www.forestryimages.org Transmisión Material vegetal infectado – En papa: la diseminación es a través de semilla de papa infectada. – En geranios: la diseminación es a través de el uso de esquejes infectados. Photo by Peggy Greb, USDA-ARS, http://www.ars.usda.gov/is/graphics/photo s/jan03/k10149-1.htm Detección y Diagnosis El diagnóstico a nivel de raza y biovar puede ser difícil, y frecuentemente requiere varias pruebas de diagnóstico para hacer un diagnóstico final. Cultivo de R. solanacearum sobre el medio semi-selective TZC • Aislamiento sobre medios semi-selectivos. – El uso de medios selectivos para R. solanacearum, no para raza o biovar • ELISA – Especifico para Ralstonia solanacearum, no para raza y biovar – Usada para selección inicial de grandes cantidades de material. Photo Tom Creswell, NCSU , www.forestryimages.org Detección y Diagnosis • Prueba para determinar Raza y Biovar – Prueba de utilización de carbono (usado para diferenciar biovar) – PCR a tiempo real (usada para diferenciar razas) Real-time PCR used for determination of race of R. solanacearum. (Photo Dawn DaileyO’brien, Cornell University) Control: Papa • Variedades resistentes • El control químico no es efectivo. • Eliminación de malezas solanáceas hospedantes que puedan servir como reservorios de inóculo. • Selección de tubérculos libres de la enfermedad antes de plantarlos en campo. • Rotación con cultivos no susceptibles. Malezas solanáceas pueden servir como hospedantes de R. solanacearum Raza 3 Biovar 2 y fuente de inóculo para el cultivo de papa. Photo Joel Floyd, USDA APHIS PPQ, www.forestryimages.org Control: Tomate • Químicos derivados de plantas: El Thymol ha sido usado como un fumigante de suelo pre plantación con bastante éxito (Momol 2006). • Los esfuerzos de los fitomejoradores han resultado en algunas progenies de tomate con alta resistencia pero también con cualidades indeseables como frutos pequeños (Momol 2006). Photo Keith Weller, USDA-ARS, http://www.ars.usda.gov/is/graphics/photos/dec99/k735 3-7.htm References • • • • • • • • • • • • • Allen, C. 2003. Bacterial Wilt Disease & Ralstonia solanacearum. Talk from 2003 Ralstonia Solanacearum race 3 biovar 2 Outbreak in Geraniums: A Program Review meeting held June 17 and 18, 2003 in Riverdale, MD. Daughtrey, M. 2003. New and Re-emerging Diseases in 2003. Department of Plant Pathology, Cornell University, Long Island Horticultural Research & Extension Center. Denny, T. P. and Hayward, A.C. 2001. Ralstonia, pages 151-174 in: Schaad, N. W. et al. Laboratory guide for the identification of plant pathogenic bacteria, 3rd ed. APS Press, St. Paul, 373 pp. Elphinstone, J. and Harris, R. 2002. Monitoring and control of the potato brown rot bacterium in irrigation water. British Potato Council report 190. http://www.potato.org.uk/upload/pdf/researchReports/report190.pdf. Accessed 2004 January 8. Elphinstone, J. January 2004. Personal communication. EC project number: SMT project CT97-2179. Harris, D. C. 1972. Intra-specific variation in Pseudomonas solanacearum. Pages 289-292 in: Proc. Int. Conf. Plant Pathog. Bact., 3rd. Janse, J. 1996. Potato Brown rot in western Europe – history, present occurrence and some remarks on possible origin, epidemiology and control strategies. Bulletin OEPP/EPPO 26: 679-695. Kim, S. H., Olson, R. 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