SUPLEMENTACIÓN CON 6-BENCILAMINOPURINA EN Physalis sp

Suplementación con 6-bencilaminopurina en Physalis sp: interacción
con fertilizantes y efecto sobre la estructura de la planta
Cerri, A.; Longoni, P.; Divo de Sesar, M.; Vilella, F.
Cátedra de Producción Vegetal, Facultad de Agronomía, Universidad de Buenos Aires, Av.
San Martin 4453, Buenos Aires.
E-mail: cerriana@agro.uba.ar
Introducción
El género Physalis pertenece a la familia Solanaceae e incluye hierbas anuales y
perennes que se cultivan tanto por su valor decorativo como por sus frutos. Physalis
ixocarpa Brot. var Purple de Milpa es nativa de Méjico y de América Central. Se cultiva en
su región de origen, en la India y en el Sur de Africa y de EEUU. Muy vistoso por sus frutos
de color violeta y sus hermosas flores amarillas, los frutos se consumen asados o fritos y
son utilizados como ingrediente en la elaboración de salsas o en dulces (Echeverría
Ocampo, 1996).
Por la arquitectura de la planta, puede ser ampliamente usada en parques y
jardines, ya que por la turgencia de sus tallos puede conducirse como enredadera o como
cubre suelos. La aparición de la primera flor se registra en el último nudo del vástago principal,
el cual después se bifurca en un sistema de ramificación simpodial (Strasburger et al., 1997),
que le confiere a las plantas una estructura abierta y simétrica. El desarrollo de las
ramificaciones inferiores se inicia a partir de las yemas axilares del vástago principal (Jeuffroy,
1997). Las hojas y los tallos son glabros. Después de la fertilización el cáliz es persistente y
crece junto con el fruto. Cuando estos son inmaduros, el cáliz toma el aspecto de una
pequeña linterna china. Al alcanzar la madurez sus frutos tienen 4 a 5 cm de diámetro y
llenan completamente el espacio dentro de las brácteas que los cubren (Dimitri, 1985).
Las citoquininas no son utilizadas habitualmente en esta especie, ya que ramifica
fácilmente. Pero este regulador de crecimiento no sólo participa en la diferenciación de yemas
sino también en la de cloroplastos. Incrementando la síntesis de clorofilas, la tasa fotosintética
y, por lo tanto, indirectamente la expansión foliar y retrasando la senescencia (Divo de Sesar,
2005).
El objetivo de este trabajo fue evaluar el efecto de la suplementación con citoquinina y/o
fertilizantes en el crecimiento y morfología de Physalis ixocarpa Brot. var Purple de Milpa.
Materiales y métodos
El ensayo se realizó en el invernáculo de la Cátedra de Producción Vegetal,
Facultad de Agronomía, Universidad de Buenos Aires. En el mes de enero se inició un
ensayo con semillas de P. ixocarpa Brot. var. Purple de Milpa, origen Méjico. Para la
germinación se sembraron en un almácigo con un sustrato de tierra:turba:perlita (v:v:v). Al
aparecer la 2ª hoja verdadera se repicaron a bandejas alveoladas de 72 celdas.
Posteriormente, se transplantaron a macetas de 4000 cm3 altas con un sustrato compuesto
por tierra, resaca, perlita, vermiculita y turba rubia (5:2:2:0,5:0,5;v:v). El pH inicial de la
mezcla fue 6,60, la conductividad 150 μS y los sólidos disueltos 75 ppm, extracto de
dilución 2:1. El 1º de febrero se realizó un ensayo factorial con dos repeticiones, las
plántulas se distribuyeron en bloques al azar y se aplicaron los siguientes tratamientos:
Testigo (T); Citoquininas (Ck); Fertilizantes (F); Citoquininas y Fertilizantes (CkF). La
fertilización se realizó en forma quincenal con 3 g/l de Nitrofoska® Elite, Compo®, (12:10:20;
N:P.K, con S, Ca, Mg y micronutrientes). El tratamiento de Ck consistió en la aplicación
quincenal de 6-bencilaminopurina (BAP) (5mg/ l, 10 ml/pl). Periódicamente, se realizaron las
mediciones correspondientes. Las variables analizadas fueron: peso seco, área foliar, peso
específico de la hoja, clorofilas.
Para las pesadas se utilizó una balanza analítica Mettler H80 (Precisión 0,0001g). El
material se secó en estufa a 75 ºC hasta peso constante. Las clorofilas se cuantificaron con
el Minolta Spad 502 Meter, contrastando los valores con la curva de regresión
correspondiente. El área foliar se midió con un areafoliómetro marca Licor. Los datos se
analizaron de acuerdo a un modelo de análisis de varianza para dos factores, en un diseño
completamente aleatorio y se utilizó el software estadístico Infostat®.
Resultados y discusión
Las respuestas encontradas se observan en las Tablas 1 a 4. Desde el inicio del
ensayo se observó una alta heterogeneidad en las plantas de los diferentes tratamientos.
Esta especie que necesita gran cantidad de agua a lo largo de su ciclo ya que sus raíces
son muy superficiales. Por lo tanto, aunque se realizaban dos riegos diarios, en los días de
gran demanda ambiental las plantas manifestaban signos de estrés hídrico. Ello implica que
los nuevos ensayos deberían realizarse, a campo o en macetas de mayor tamaño.
Si bien, en las mediciones realizadas en fechas tempranas las mejores respuestas se
advierten en los tratamientos F o CkF, hacia el final del ciclo las ventajas se encontraron en
los tratamientos con Ck o CkF (Tabla 1). Uno de los efectos de las citoquininas es el retraso
de la senescencia (Divo de Sesar, 2005).
En la Tabla 2 se observa la variación en los contenidos de clorofilas en dos
momentos diferentes del ciclo del cultivo. Nuevamente, en la primera cuantificación se
obtuvieron mejores resultados en las plantas tratadas, pero en fecha tardía, estos se
corresponden con el tratamiento diferencial con Ck y F. Si bien en F o Ck la caída es menor,
ambos están limitados por la falta del otro elemento. Como ya se mencionó las Ck participan
en la diferenciación de cloroplastos.
Tabla 1. Peso seco de planta entera (gramos planta-1) de cada tratamiento
(letras distintas dentro de filas implican diferencias significativas).
Peso seco de planta entera (gramos planta-1)
Fecha
T
F
CkF
CK
b
a
ab
10/02/06
8,9
14,3
13,6
8,2 b
b
a
b
18/02/06 12,5
20,9
15,4
13,2b
02/03/06
4,5c
18b
22,7a
23,6a
Tabla 2. Contenido de clorofilas (mg/cm2) , en dos momentos del ciclo del
cultivo (letras distintas dentro de filas implican diferencias significativas).
Contenido de clorofilas (mg/cm2)
Fecha
T
F
CkF
02/03/03
4,3b
4,6ab
5,4a
29/03/06
3,2b
3,9b
4,7a
CK
4,7ab
3,9b
Al analizar la evolución del área foliar (Tabla 3) se observa claramente la interacción
entre F y Ck, particularmente en las fechas tardías. La tendencia de los datos es un fiel
reflejo del contenido de clorofilas. (Tabla 2). Podría postularse que con mayores contenidos
de clorofilas, aumenta la tasa fotosintética y, como consecuencia, un balance de carbono
favorable permite una mayor expansión y duración foliar (FCk), mientras que en F o Ck se
manifiesta la falta del nutrientes o reguladores de crecimiento. Asimismo, se evaluó la
distribución de las ramificaciones, cuantificando el área foliar de las ramificaciones del
vástago principal, ramificaciones superiores e inferiores (Tabla 4). Las citoquininas, al
estimular el desarrollo y desinhibición de yemas, participan en la pérdida de dominancia
apical. De este modo se observa que en el Testigo no hay ramificaciones inferiores y
nuevamente se observa la interacción entre F y Ck, que se prolonga a través del tiempo.
Esta tendencia es casi similar en las ramificaciones superiores, aunque aparecen vástagos
en el tratamiento Testigo. Como era de esperar, el menor desarrollo, en los tratamientos Ck,
se observa en el vástago principal. Debemos recordar que el área foliar es una
consecuencia del número de hojas, por la superficie de las mismas; y el número es una
consecuencia del número de nudos y/o de ramificaciones.
Tabla 3. Área Foliar por planta (cm2 planta-1) de cada tratamiento (letras
distintas dentro de filas implican diferencias significativas).
Área Foliar total por planta (cm 2 planta-1)
Fecha
T
F
CkF
CK
10/02/06 1180b
2221b
2146a
1253b
18/02/06 1327b
2030ab
2706a
1580b
02/03/06 1500 b
2800 b
4454 a
1495 b
El peso específico de la hoja fue significativamente mayor en los tratamientos con
menor área foliar: T (4,3 mg/cm2), para el vástago principal en mediciones tempranas; en
los F y CkF se observaron valores intermedios y para las fechas tardías, el efecto del BAP
sobre la senescencia se manifiesta logrando valores mayores (3,2 mg/cm2).
Tabla 4. Área Foliar de: ramificaciones inferiores, superiores y del vástago
principal (cm2 planta-1) de cada tratamiento letras distintas dentro
de filas implican diferencias significativas.
Área Foliar de ramificaciones inferiores (cm 2 pl-1)
Fecha
T
F
CkF
CK
c
a
a
10/02/06
0
491
400
214 b
b
b
a
18/02/06
0
298
1224
374 b
02/03/06
0b
470 b
1586 a
447 b
Área Foliar de ramificaciones superiores (cm 2 pl-1)
10/02/06
783
1292
1118
481
a
a
18/02/06 1030 b
1629
1126
708 b
b
a
a
02/03/06 1314
1848
2489
1003 b
2
-1
Área Foliar del vástago principal (cm pl )
10/02/06
397
662
628
559
18/02/06
296
244
356
498
b
a
a
02/03/06
187
483
379
48,5 b
Conclusiones
La suplementación con citoquininas y fertilizantes permitió obtener plantas más
grandes. Si bien, en CkF y CK se alcanzó el máximo tamaño de las plantas, fue en CkF
dónde se obtuvo la máxima partición hacia las ramificaciones inferiores y duración del área
foliar en el vástago principal, reflejando el efecto que tuvo el tratamiento sobre el contenido
de clorofilas. En Ck, la limitación por nutrientes aceleró partición de asimilados y como
consecuencia, la senescencia, de las hojas del vástago principal.
Bibliografia
Dimitri M.J.. 1985. Las Angiospermas. En: Dimitri M.J y E.N. Orfila. Tratado de Morfología y Sistemática
Vegetal. 1er edición. Editorial ACME SACI. Buenos Aires, Argentina. 489 pp.
Divo de Sesar, M. (2005) Integración de estudios fisiológicos, histológicos y bioquímicos realizados
durante el enraizamiento, rustificación y crecimiento posterior de especies de interés agronómico
suplementadas con citoquininas. Tesis Doctoral 22 2pp.
Echeverría Ocampo, A. 1996. El Campesino. Chile. Octubre: 34-35
Jeuffroy M.H y B. Ney. 1997. Crop physiology and productivity. Field Crop Research 53: 3-16.
Strasburger E., Noll F., Schenck H. y A.F.W. Schimper. 1997. Morfología y anatomía de las plantas
vasculares. En: Tratado de Botánica . 8va Edición Castellana. Editorial Omega. Barcelona. España.
1068 pp.