Canales Iónicos FSN 2016 Eleonora Katz Mecanismos involucrados en el movimiento de iones y moléculas a través de la membrana a) Difusión (simple) pasiva b) Transporte pasivo (difusión facilitada) c) Transporte activo (primario o secundario) Canales involucrados en la generación y propagación de señales eléctricas en células excitables Canales Iónicos Sensibles a estímulos específicos: Eléctricos (voltaje) Canales voltaje-dependientes Na+, K+, Ca2+, Cl- Químicos (neurotransmisores, hormonas, iones y metabolitos i.e., Ca2+, ATP, GTP) Canales ligando-dependientes ACh,GABA, Glutamato, Glicina, Serotonina, ATP, GTP, cAMP, KCa, entre otros Mecánicos (estiramiento, presión) Canales mecanoreceptores Receptores de estiramiento en el huso muscular, de presión en la piel: Corpúsculo de Paccini, Canales en los cilios de las células del oído Características de los canales iónicos: Permeabilidad selectiva: el poro abierto permite el flujo de una clase restringida de iones a favor de su gradiente electroquímico. Conductancia medida eléctrica de la facilidad con la que un medio conduce iones o electrones. Flujo a través de los canales es de alta velocidad > 106 iones/s. Es la inversa de la resistencia. 1/ohms = Siemens (ley de Ohm V = IR) cerrado abierto Gating respuesta del canal para pasar de un estado a otro Conductancia (g) Cinética de apertura (ta) Cinética de cierre (tc) Probabilidad de Apertura (Po) Algunos diagramas cinéticos Los eventos de apertura de los canales ocurren al azar , son independientes y tienen una determinada probabilidad de ocurrir, dependiendo de las condiciones del entorno. Estímulos (entorno): Vm, concentración del ligando, magnitud del estiramiento o presión, luz, etc. Selectividad Radio iónico Hidratación Radio del poro Carga Propiedades químicas La habilidad de los canales iónicos de distinguir entre las distintas especies iónicas es un aspecto fundamental de su función biológica. Por qué un canal de Ca2+ es más selectivo para el Ca2+ que para los otros cationes? 1) 2) 3) Número, tipo químico y carga de los ligandos que tapizan el poro La rigidez del poro, tamaño, simetría, accesibilidad del solvente El grado de hidratación del Ca2+ (y de los otros cationes) fuera del filtro de selectividad Para poder entender la selectividad de un dado canal para un dado ion es además necesario conocer las energías de interacción entre los iones, el agua, el poro y los movimientos de estos componentes. Para esto se necesita conocer la estructura completa del poro (cristalizar la proteina) Filtro selectivo del canal de K+: Región del canal que le da selectividad para el K+ Patch‐clamp measurements of the ion selectivity of wild‐type and E178 mutant NavMs channels Claire E Naylor et al. EMBO J. doi:10.15252/embj.201593285 ©2016 by European Molecular Biology Organization Técnicas que se utilizan para estudiar las propiedades biofísicas y funcionales de los canales iónicos Registro de canales unitarios: técnica de “Patch-clamp” Erwin Neher & Bert Sakmann (años 70-80) Neher & Sackman 1976 El empleo de herramientas matemáticas -ensambles de registros de corrientes unitarias- da estimaciones precisas de las propiedades de las corrientes macroscópicas. Corrientes de Na y de K (Trabajo de H&H 1952) Configuraciones de “Patch-clamp” Configuraciones de “Patch-clamp” I positiva = I entrante al patch Corrimiento positivo en Vcmd = hiperpolarizante Vm = RMP - Vcmd Vm = -Vcmd Vm = Vcmd Vm = Vcmd I positiva = corriente saliente Corrimiento Positivo en Vcmd = despol Vm = Vcmd PERMEACIÓN A TRAVÉS DE LOS CANALES c 58 mV Vr = log o c z i [K]o =5 mM, [K]i=150 mM 58 mV 5 mM VK = log 86 mV 150 mM +1 Ion z co (mM) ci (mM) Vr (mV) K +1 5 150 -86 Na 150 15 Cl 120 10 Ca 2 0.0001 Relación corriente-voltaje unitaria Conductancia unitaria Probabilidad de apertura (de encontrar al canal abierto) Po= to / Ttotal Tiempos de abierto y cerrado Registros de canal único (Umemiya & Berger, 1995) Modulación de la Probabilidad de apertura (Po) Patch-clamp configuración “Whole-cell” Se miden corrientes Macroscópicas Cuál es la relación entre la corriente unitaria y la macroscópica? i = g(Em –Eion) Imacroscópica = gNPo (Em –Eion) a) Conductancia macroscópica independiente del voltaje: I = (V-Vr) G G = N gpo 1000 1.0 500 Current (pA) Open Probability 0.8 0.6 0.4 -500 0.2 0.0 -100 0 -50 0 50 Voltage (mV) 100 -1000 -100 -50 0 Voltage (mV) N=200, g = 50 pS, Vr=0 50 100 b) Conductancia macroscópica dependiente del voltaje G = N gpo(V) I = (V-Vr) G(V) 1000 1.0 500 Current (pA) Open Probability 0.8 0.6 0.4 -500 0.2 0.0 -100 0 -50 0 50 100 -1000 -100 -50 Voltage (mV) N=200, g = 50 pS, Vr=+50 mV 0 Voltage (mV) 50 100 Técnica de fijación de voltaje “voltage-clamp” Voltage Clamp con dos microelectrodos Imembrana = CdV/dt + I iónica A2 = mganancia del amplificador Oocitos de Xenopus laevis Técnica de fijación de voltaje con dos microelectrodos (corrientes macroscópicas) Ejemplo de corrientes iónicas a través de un canal ligando-dependiente medidas con la técnica de fijación de voltaje con dos microelectrodos en oocitos de Xenopus laevis Vsostén = -70 mV Una vez que se fijó el Vm de la célula al valor deseado, se aplica el ligando que se quiere estudiar y se miden las corrientes iónicas Canales dependientes de voltaje Canales activados por voltaje Estructura de los canales de Na dependientes de voltaje Estructura de los canales de K+ Estructura de los canales de Ca2+ Los Canales de Calcio y la transducción de señales 2011 Modelo de inactivación que se postula para los canales de Na+ y para algunos canales de K+ Modelo “Ball and Chain” A potenciales despolarizados la pelota es más estable en la conformación que bloquea el pasaje de iones Corrientes iónicas (macroscópicas) medidas en oocitos de Xenopus laevis (KCNQ) Figure 1. Ionic currents from neuronal KV7 channels expressed in Xenopus oocytes recorded at 18°C (A) and at 28°C (B). Currents were elicited in response to test pulses from -100 to +40 mV in 10 mV increments from and returning to an holdingpotential of -90 mV. For ionic current recordings, the external and internal solutions contained (in mM): 101 NMethy-D-Glucamine (NMG), 12 KOH, 4 Ca(OH)2 and 20 Hepes, pH 7.4 with methane sulfonic acid (MES acid), and 120 KOH, 2 EGTA and 20 Hepes, pH 7.4 with MES acid, respectively. Corrientes de “gating” Charge movement in Kv channels. a | Gating currents recorded from a cell expressing the Shaker Kv channel. Canales ligando-dependientes Ionotrópicos de ACh, Glutamato, GABA, Glicina, Serotonina ATP, cGMP, KATP, Kca, ClCa, entre otros. La ACh actúa sobre dos tipos de receptores nicotínicos ionotrópicos canales iónicos muscarínicos metabotrópicos acoplados a proteínas G Los receptores nicotínicos son proteínas oligoméricas compuestas por 5 subunidades glicosiladas que atraviesan la membrana y conforman un canal catiónico 290 KDa Mapa de densidad de proteínas Pertencen a la superfamilia de receptores activados por ligando formada por los receptores nicotínicos, GABAA, glicina y 5HT3 Estructura cuaternaria de los receptores nicotínicos Esquema basado en el receptor del órgano eléctrico de Torpedo Californica TM2 poro del canal 40-65 KDa El nAChR tiene tres estados posibles ACh 10-100 ms 100 ms-1 min C A CERRADO no conduce ABIERTO conduce D DESENSIBILIZADO no conduce y no es sensible a ser abierto por el agonista Selectividad iónica Na+, K+ y Ca2+ PNa/PK 1 PCa/PNa 0.2-20 TM2 3 anillos de aa cargados negativamente orientados hacia el poro del canal, determinantes de la selectividad iónica K+ K+ + + K K Permeabilidades relativas PK/PNa y PCa/PNa Corriente neta y potencial de membrana Entrada masiva de Na+ Despolarización Entrada de Ca2+ Segundo Mensajero Activación de otras corrientes Hiperpolarización Ca2+Ca2+ Ca2+ + Na+ 2+ Na Na+ + + Ca2+ Ca2+ Ca Na Na Subunidades Colinérgicas Nicotínicas nAChR Musculares Alpha1 (a1) Beta1 (b1) Gamma (g) Delta (d) Epsilon (e) nAChR Neuronales Alpha2 (a2) Beta2 (b2) Alpha3 (a3) Beta3 (b3) Alpha4 (a4) Beta4 (b4) Alpha5 (a5) Alpha6 (a6) Alpha9 (a9) Alpha10 (a10) Alpha7 (a7) Alpha8 (a8) Los receptores que difieren en la composición de sus subunidades presentan propiedades biofísicas, funcionales y farmacológicas diferentes Los tipos de subunidades ensambladas determinan las propiedades biofísicas, farmacológicas y fisiológicas del canal. fetal δ adulto ε Músculo fetal vs adulto (canales nativos) Oocitos abgd vs. abge(canales recombinantes) La Placa Neuromuscular de vertebrados Eventos pre y post-sinápticos a nivel de la placa neuromuscular ACHE Aidley and Stanfield Hille Sakmann & Neher Cambridge University Press Sinauer Plenumm Press Physiol Rev. 2009 Jan; 89(1): 73–120. doi: 10.1152/physrev.00015.2008 PMCID: PMC2713585 NIHMSID: NIHMS106860 Mammalian Nicotinic Acetylcholine Receptors: From Structure to Function Edson X. Albuquerque, Edna F. R. Pereira, Manickavasagom Alkondon, and Scott W. Rogers