Guia de Laboratorio 2 AGUAS SERVIDAS

CI 51I - CALIDAD DEL AGUA-MICROBIOLOGÍA.
11/09/2002
LABORATORIO 2. AGUAS SERVIDAS
GRUPO 1.
CARACTERIZACIÓN DE ORGANISMOS DE LA UNIDAD BIOLÓGICA Y EFICIENCIA DE
REMOCIÓN MICROBIOLÓGICA. BIOFILTROS
Muestra 1. Afluente
Muestra 2. Efluente biofiltro (sed. 2ario)
Muestra 3. Efluente clorado
Muestra 4. Biofilm medio de soporte (grava)
Dosis de cloro agregado a M3.
pH:
pH:
pH:
Tiempo de contacto:
Tagua:
T agua:
T° agua:
Hora rec.
Hora rec.
Hora rec.
Cloro residual:
TRABAJO PRÁCTICO
a)
Muestra 4. Observación bajo lupa y microscopio. Identificación (algas, protozoos, hongos,
otros) y estimación de los organismos. (+) escaso; (++) regular; (+++) abundante.
b)
Muestras 1,2,y3 : Determinación de NMP de coliformes fecales por la técnica del A-1. sg.
NCh 2313/23 Of. 95, INN.
Diluciones a inocular:
c)
M1: 10-3 a 10-6
M2: 10-2 a 10-5
M3: 10 a 10-2
Muestras 1, 2 y 3 : Determinación de Colifagos MS2 (demostrativo) (V. Lorca)
PRECAUCIONES: Ser cuidadoso en el manejo de las muestras y material biológico. Usar guantes y
mascarilla; no sacar las muestras del recipiente plástico; usar propipeta para inocular las muestras.
Lavarse bien las manos y desinfectar después de finalizado el trabajo. Desinfectar mesón.
INFORME
1. Introducción y objetivos del Laboratorio
2. Metodología. Fundamento de los métodos
3. Resultados del análisis microscópico indicando, tipos de organismos encontrados, su rol y el
grado de tratamiento alcanzado.
4. Resultados de indicadores fecales (coliformes y fagos). Eficiencia del tratamiento; relacionar
eficiencia esperada con encontrada. Comentarios sobre desinfección del efluente.
5. Comentarios sobre la concentración de cloro agregado y cloro residual en el efluente
6. Comentarios sobre factibilidad de reuso del efluente.
7. Otros comentarios personales
8. Bibliografía consultada.
CI 51I.- CALIDAD DEL AGUA-MICROBIOLOGÍA. LABORATORIO 2.
11/09/2002
GRUPO 3.
CARACTERIZACIÓN DE ORGANISMOS DE LA UNIDAD BIOLÓGICA Y EFICIENCIA DE
REMOCIÓN BACTERIOLÓGICA LAGUNAS DE ESTABILIZACIÓN.
Muestra 1. Afluente
pH:
Tagua:
T°aire:
Hora rec.:
Muestra 2. Efluente 2ario
pH:
T agua:
Hora rec.
Muestra 3. Efluente clorado
pH:
Tagua :
Hora rec.
Dosis de cloro agregado M3.
Tiempo de contacto:
Cloro residual :
TRABAJO PRÁCTICO
a)
Muestra 2. Observación microscópica, identificación de organismos y determinación
cuantitativa del fitoplancton (ALGAS) expresados en organismos/L.
b)
Muestras 1, 2 y 3: Determinación de NMP de coliformes fecales por la técnica del A-1. sg.
NCh 2313/23 Of. 95, INN.
Diluciones a inocular:
c)
M1: 10-3 a 10-6
M2: 10-2 a 10-5
M3: 10 a 10-2
Colifagos (Demostrativo) M 1, M2 y M3. (V. Lorca).
PRECAUCIONES: Ser cuidadoso en el manejo de las muestras y material biológico. Usar guantes y
mascarilla; no sacar las muestras del recipiente plástico; usar propipeta para inocular las muestras.
Lavarse bien las manos y desinfectar después de finalizado el trabajo. Desinfectar mesón.
INFORME
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
8.
Introducción y objetivos del Laboratorio
Metodología. Fundamento de los métodos
Resultados del análisis microscópico, indicando:
Tipos organismos encontrados en la laguna; relación con los parámetros físico-químicos del
agua y comentarios sobre las algas y su rol en el proceso.
Resultados microbiológicos (CF y fagos); eficiencia de las unidades; relacionar eficiencia
esperada con encontrada, sin considerar cloración.
En base a eficiencia bacteriológica total (sin considerar cloración), calcular el período de
retención del agua en el sistema. (k : 0,7/d).
Comentarios sobre factibilidad de reuso del efluente.
Otros comentarios personales
Bibliografía consultada (revisar informe CEPIS, F. Yanez; Libro J. Romero).
ANEXO
ANÁLISIS MICROSCÓPICO DE FITOPLANCTON EN AGUAS
Determinación del Nº de organismos por ml
Procedimiento
Introducir la muestra, previamente homogenizada en la cámarade Sedgwick Rafter y cubrir con la
lámina cubreobjeto, evitando la presencia de burbujas de aire. Dejar reposar unos minutos.
Colocar la cámara sobre la platina del microscopio. Verificar la presencia del reticulado de Whipple
en el ocular. Escoger el objetivo adecuado (generalmente 10x o 20x), enfocar y proceder a contar
el número de organismos por campo.
Se entiende por campo el área ocupada por el cuadrado del reticulado el Whipple.
Dependiendo de la densidad de los organismos en la muestra, se cuenta como mínimo 10 campos.
Para el cálculo del número de organismos por mL se utiiza la siguiente fórmula:
C x 1000 (mm3)
Nº organismos/mL = ---------------------------------AxDxFxK
donde,
C = Nº total de organismos contados
A = área de 1 campo en mm2, que se conoce a través de la calibración del microscopio
D = profundidad de 1 campo, que en la cámara de SR equivale a 1 mm
F = Nº total de campos contados
K = factor de concentración de la muestra
Ejemplo: Se examina una muestra de agua, que fue concentrada 100 veces, bajo aumentos de
objetivo 10x y oculares 10x. Se encuentra un total de 200 organismos en 10 campos. El área de un
campo para la combinación òptica usada es 0,27 mm2
Nº org/mL = 741
CI 51I.- CALIDAD DEL AGUA-MICROBIOLOGÍA. LABORATORIO 2.
11/09/2002
GRUPO 2
CARACTERIZACIÓN DE ORGANISMOS EN LA UNIDAD BIOLÓGICA Y EFICIENCIA DE
REMOCIÓN MICROBIOLÓGICA. PLANTA DE LODOS ACTIVADOS
Muestra 1. Afluente
pH:
Tagua:
Hora rec.
Muestra 2. Efluente sedimentador 2ario
pH:
T agua:
Hora rec.
Muestra 3. Efluente clorado
pH:
T° agua
Hora rec.
Muestra 4. Licor mezclado (tanque de aireación)
TRABAJO PRÁCTICO
a)
b)
d)
Muestra 4. Observación microscópica e identificación de organismos.
Muestra 4. Determinación del Indice Volumétrico de Lodos en M4.
Muestras 1,2 y 3: Determinación del NMP de coliformes fecales por la técnica del A-1.
sg. NCh 2313/23 Of. 95, INN.
M1: 10-3 a 10-6
M2: 10-2 a10-5
M3: 10 a 10-2
Colifagos (Demostrativo) M1, M2 y M3. (V. Lorca)
Diluciones a inocular:
d)
PRECAUCIONES: Ser cuidadoso en el manejo de las muestras y material biológico. Usar guantes y
mascarilla; no sacar las muestras del recipiente plástico; usar propipeta para inocular las muestras.
Lavarse bien las manos y desinfectar después de finalizado el trabajo. Desinfectar mesón.
INFORME
1.
2.
3.
4.
5.
6.
7.
Introducción y objetivos del Laboratorio
Metodología. Fundamento de los métodos
Resultados del análisis microscópico, indicando:
Tipos organismos encontrados, su rol y grado de tratamiento alcanzado. ¿Problemas en la
generación de lodos? Interpretación del índce volumétrico de lodos encontrado. (IVL)
Resultados microbiológicos y eficiencia de las unidades; relacionar con lo esperado sg.
diseño. (CF y Fagos)
Comentarios sobre posibilidad de reuso del efluente.
Otros comentarios personales
Bibliografía consultada.
DETERMINACIÓN DEL INDICE VOLUMÉTRICO DE LODOS (SVI)
Indice Volumétrico de Lodos: Volumen en ml ocupado por 1 g del licor mezclado del
tanque de aireación después de 30 minutos de decantación.
1.
Homogenizar la muestra, pesar un 1 ml de muestra, llevar a 105°C por 1 hora, enfriar a
temperatura ambiente en un desecador, y volver a pesar. Por diferencia calcular peso
seco. Expresarlo en mg/ L de licor mezclado
2. Homogenizar la muestra , tomar 1litro, colocar en un cilindro graduado, decantar por
30 min. Pasado el tiempo, medir el volumen (en ml) ocupado por el material decantado.
Expresar como ml/L
3. Calcular el Indice de Lodo sg. :
Volumen decantado después de 30 min (ml/L) x 1000
SVI (mL/g = --------------------------------------------------------------------------Concentración de sólidos totales del licor mezclado (mg/L)
Ref. Water Supply and Pollution Control, 4th ed. Viessman & Hammer (1985), Pg. 543.