BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood • BD Mueller Hinton

INSTRUCCIONES DE USO –
MEDIOS EN PLACA LISTOS
PARA USAR
PA-254030.07
Rev.: April 2013
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood 
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood (150 mm) 
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep blood, Square
USO PREVISTO
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood, disponible en varios formatos de placa, se
utiliza para las pruebas de sensibilidad de difusión en disco de cepas aisladas a partir de
muestras clínicas, de Streptococcus pneumoniae y otros estreptococos, conforme a las normas
del Clinical and Laboratory Standards Institute (CLSI)1.
PRINCIPIOS Y EXPLICACION DEL PROCEDIMIENTO
Método microbiológico.
El procedimiento Bauer-Kirby se basa en la difusión en un gel de agar de sustancias
antimicrobianas que se impregnan sobre discos de papel2 .En el procedimiento de prueba, una
suspensión normalizada del organismo se extiende mediante una torunda sobre toda la
superficie del medio. A continuación, se colocan sobre la superficie del medio discos de papel
impregnados con cantidades específicas de antibiótico u otro agente microbiano, se incuba la
placa y se mide la zona de inhibición en torno a cada disco. El CLSI ha redactado una norma
de rendimiento para el procedimiento Bauer-Kirby, documento que debe consultarse para
obtener más detalles1. Se han desarrollado otras normas nacionales para las pruebas de
sensibilidad antimicrobianas según el procedimiento Bauer-Kirby. En dichas normas, las
densidades de inóculo, el método de inoculación, los tamaños de las zonas resultantes y el
modo de interpretación pueden ser diferentes de la norma de CLSI. Mientras no existan
normas comunes europeas para las pruebas de sensibilidad, se deben consultar las normas
locales nacionales si no son aplicables las directrices de CLSI.
El agar Mueller Hinton sin suplemento, aunque es adecuado para las pruebas de sensibilidad
de patógenos aerobios de rápido crecimiento, no es adecuado para organismos más exigentes
tales como Streptococcus pneumoniae. En el documento M2 del CLSI se recomienda el agar
Mueller Hinton suplementado con sangre desfibrinada de carnero al 5% y se detallan tanto los
procedimientos de calidad como los criterios de interpretación para su uso con S. pneumoniae
y otros estreptococos1.
REACTIVOS
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood
Fórmula* por litro de agua purificada
Extracto de carne bovina
2,0 g
Hidrolizado ácido de caseína
17,5
Almidón
1,5
Agar
17,0 g
Sangre de carnero desfibrinada
5%
pH 7,3 ± 0,2
* Ajustada y/o suplementada para satisfacer los criterios de rendimiento.
PRECAUCIONES
Para uso diagnóstico in vitro
. Solamente para uso profesional.
No utilizar las placas si muestran evidencia de contaminación microbiana, decoloración,
deshidratación, agrietamiento o cualquier otro signo de deterioro. La reducción excesiva de este
medio debido a la deshidratación puede causar resultados de sensibilidad falsos.
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Consultar los procedimientos de manipulación aséptica, riesgos biólogicos y desecho del
producto usado en el documento INSTRUCCIONES GENERALES DE USO.
ALMACENAMIENTO Y VIDA UTIL
Al recibir las placas, almacenarlas en un lugar oscuro a una temperatura entre 2 y 8 °C,
envueltas en su envase original, hasta justo antes de usarlas. Evitar la congelación y el
calentamiento excesivo. Las placas pueden inocularse hasta su fecha de caducidad (ver la
etiqueta en el paquete) e incubarse durante los períodos de incubación recomendados.
Las placas de grupos de 10 placas ya abiertos pueden usarse durante una semana siempre
que se almacenen en un lugar limpio a una temperatura entre 2 y 8 °C.
CONTROL DE CALIDAD DEL USUARIO
Para el control de calidad del usuario, se deben consultar las normas correspondientes de
CLSI1 o, si procede, las normas nacionales. Sobre todo deben seguirse los procedimientos
descritos a continuación en Procedimiento de Análisis, incluida la cepa de control S.
pneumoniae ATCC 49619, y los discos de agentes antimicrobianos normalmente utilizados por
el laboratorio deben analizarse al menos dos veces a la semana para determinar el rendimiento
correcto.
Los diámetros de zona correctos se encuentran en la Tabla 3A del documento M100 del CLSI,
que se incluye con el documento M2 del CLSI1.
Apariencia del medio sin inocular: rojo (color sangre), opaco.
PROCEDIMIENTO
Materiales suministrados
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood (suministrado en varios formatos diferentes de
placa; véase Envase/Disponibilidad). Controladas microbiológicamente.
Materiales no suministrados
1. Caldo de inóculo en cantidades de 5 mL, tales como Mueller Hinton II Broth (BBL № de
cat. 4397701, tubo de 16 x 102 mm) o 0,9% de solución salina, para preparación del
inóculo estándar.
2. Patrón de comparación de sulfato de bario (0,5 mL de 0,048 M BaCl2 [1,175% w/v
BaCl22H2O] a 99,5 mL de 0,18 M [0,36 N] H2SO4 [1% v/v]).
3. Un dispositivo fotométrico para ajustar la turbidez en la suspensión de inóculo para que
sea equivalente al patrón 0,5 de McFarland.
4. Como alternativa a los materiales anteriores (1–3), se puede utilizar el BD Prompt
Inoculation System (dispositivo de preparación de inóculo volumétrico)1,3.
5. Cultivo de Control: Streptococcus pneumoniae ATCC 49619.
6. Discos de papel impregnados con cantidades específicas de agentes microbianos, tales
como los discos de prueba de sensibilidad BD Sensi-Disc.
7. Dispositivo dispensador de discos, como el dispensador de autoapisonamiento de 6, 8 o 12
posiciones BD Sensi-Disc.
8. Dispositivo para medir o interpretar diámetros de zona, tales como calibrador o una regla.
9. Un incubador capaz de producir una atmósfera de CO2 al 5% o cualquier dispositivo que
produzca una atmósfera enriquecida de CO2 similar.
10. Medios de cultivo auxiliar, reactivos y equipo de laboratorio que se requiera.
Tipos de muestras
Este producto se utiliza para las pruebas de sensibilidad de cultivos puros que se han aislado a
partir de muestras clínicas (véase también CARACTERÍSTICAS DE RENDIMIENTO Y
LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO).
Procedimiento de análisis
Se debe utilizar el método de suspensión de colonias al realizar la prueba de S. pneumoniae1.
Emplear técnicas asépticas.
1. Asegurarse de que se encuentre disponible un cultivo puro reciente (del día anterior) de
medio de agar sangre no selectivo.
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2. Suspender el crecimiento en un caldo tal como el Mueller Hinton II o solución salina estéril
al 0,9%. Ajustar la turbidez para que sea equivalente al patrón de sulfato de bario (patrón
0,5 de McFarland). La turbidez del patrón y del inóculo de prueba deben compararse
sosteniendo ambos tubos delante de un fondo blanco con líneas negras claramente
marcadas, o se puede utilizar un dispositivo fotométrico.
3. Se han considerado aceptables para fines de análisis sistemáticos métodos alternativos de
la preparación del inóculo en los que se utilizan dispositivos que permiten la normalización
directa de los inóculos sin un ajuste de la turbidez, tal como BD Prompt Inoculation
System1,3.
4. Dentro de los 15 min de ajustar la turbidez del inóculo, sumergir una torunda estéril en el
inóculo correctamente diluido y hacerla rodar firmemente varias veces contra la pared
interna superior del tubo para exprimir el líquido en exceso.
5. Inocular el BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood extendiendo la muestra por
toda la superficie de agar de la placa tres veces, girándola 60 grados cada vez para
obtener una inoculación uniforme.
6. Volver a colocar la tapa de la placa y mantener la placa a temperatura ambiente durante al
menos 3 min, pero no más de 15 min, para permitir que la humedad de la superficie se
absorba antes de aplicar los discos impregnados de fármaco. No utilizar más de nueve
discos por placa de 150 mm o cuatro discos para la placa de 90 y 100 mm. Para las
pruebas de penicilina de S. pneumoniae, utilizar un disco de oxacilina de 1 µg4.
7. Incubar durante 20 – 24 h a 35 °C en una atmósfera de CO2 al 5%.
Resultados
Después de la incubación, debe estar visible un crecimiento confluente. Si sólo crecen
colonias aisladas, el inóculo está muy diluido y se debe repetir la prueba.
Medir el diámetro de las zonas de inhibición completa (observadas a simple vista), incluido el
diámetro del disco, al milímetro más cercano, mediante calibradores deslizantes o una regla,
desde la parte superior de la placa sin la tapa5. El criterio de valoración debe considerarse
como la superficie que no muestra crecimiento visible evidente que pueda detectarse a simple
vista. Desestimar el crecimiento débil de colonias diminutas que pueda detectarse con
dificultad cerca del borde de la zona de inhibición evidente.
Con BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood, debe medirse la zona de inhibición de
crecimiento, no la zona de inhibición de hemólisis.
Recuento e interpretación de los resultados
Los diámetros de zona deben compararse con los que aparecen en la tabla 2G para
S. pneumoniae y 2H para otros estreptococos en el documento M100 (M2) del CLSI, que
proporcionan criterios de interpretación1. Los resultados obtenidos, luego se pueden describir
como resistentes, intermedios o sensibles. Observar los criterios de interpretación especiales
para los aislados de S. pneumoniae con diámetros de zona de oxacilina de 19 mm
mencionados en esta norma (véase también CARACTERISTICAS DE RENDIMIENTO Y
LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO).
Nota: Se publican periódicamente tablas complementarias al documento M2 del CLSI, o sus versiones
revisadas, con tablas actualizadas de discos antimicrobianos y normas de interpretación. Consultar en
las tablas más recientes las recomendaciones vigentes. La norma completa y los suplementos
informativos se pueden solicitar al Clinical and Laboratory Standards Institute, 940 West Valley Road,
Suite 1400, Wayne, PA 19087-1898 EE.UU. Teléfono: +1-610-688-1100.
CARACTERISTICAS DE RENDIMIENTO Y LIMITACIONES DEL PROCEDIMIENTO
La prueba de sensibilidad de difusión en disco está diseñada para uso con cultivos puros
solamente. Se recomienda realizar una tinción de Gram y una identificación presuntiva del
aislado antes de preparar la prueba de sensibilidad1.
Este medio se utiliza para la prueba de sensibilidad de S. pneumoniae y otros estreptococos
contra agentes antimicrobianos seleccionados1,2,5. Tener en cuenta que para amoxilina,
ampicilina, cefepima, cefotaxima, ceftriaxona, cefuroxima, imipenem y meropenem no existen
criterios de pruebas de difusión en disco fiables para S. pneumoniae. La actividad in vitro de
estos agentes antimicrobianos se determina mejor utilizando el método de CMI.
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Para la determinación de la sensibilidad a la penicilina de S. pneumoniae, se debe utilizar un
disco de oxacilina. Los aislados de S. pneumoniae con diámetros de zona de oxacilina 20
mm son sensibles (CMI 0,06 mg/mL) a la penicilina. Dado que ocurren zonas 19 mm con
discos de determinación de oxacilina con determinadas cepas resistentes, intermedias y
sensibles a la penicilina, se debe determinar una CMI de penicilina, meropenem y cefotaxima
o ceftriaxona en todos los aislados de S. pneumoniae con zonas de oxacillina 19 mm1.
Para los estreptococos diferentes de S. pneumoniae, no se recomienda la prueba de oxacilina
para determinación de sensibilidad de penicilina. Para los estreptococos beta-hemolíticos,
utilizar un disco de penicilina o ampicilina. Para los estreptococos del grupo viridans, la prueba
de difusión en disco de penicilina y oxacilina no es fiable; se debe determinar su sensibilidad
mediante pruebas de CMI1.
Las pruebas de sensibilidad y difusión de disco antimicrobiano con Streptococcus pneumoniae
ATCC 49619 se han realizado internamente con cefaclor, cefprozilo, cloranfenicol,
eritromicina, ofloxacina, tetraciclina, trimetoprima/sulfametoxazol y vancomicina.
Posteriormente a los procedimientos de prueba descritos en M2-A5, se realizaron veinte
pruebas con la cepa de control de calidad y ocho discos antimicrobianos en un período de 10
días de prueba. Para los ocho antimicrobianos, el 100% (160/160) de los tamaños de zona se
incluyeron dentro de los intervalos de tamaños de zona esperados publicados en M2-A5 y la
Tabla 3C del documento M100-S6 del NCCLS6,7. La desviación estándar de tetraciclina fue
menor de 1 mm y, para todos los demás antimicrobianos, menor de 2mm8.
Los estudios de reproducibilidad (3 veces al día durante 3 días) se realizaron en dos
establecimientos con los agentes antimicrobianos enumerados anteriormente contra S.
pneumoniae ATCC 49619 y nueve cepas adicionales bien caracterizadas de S. pneumoniae .
Para cada agente antimicrobiano se siguieron las normas de interpretación de diámetro de
zona de la Tabla 2C del documento M2-A5 y suplemento M100-S6 del NCCLS6,7. Las pruebas
con cloranfenicol, eritromicina, ofloxacina, tetraciclina y vancomicina dieron como resultado
más del 95% de concordancia de categorías con el método de referencia de NCCLS. Las
pruebas con trimetoprima/sulfametoxazol dieron un 90% de concordancia de categorías con el
método de referencia de NCCLS. No se pudo determinar reproducibilidad para cefaclor y
cefprozilo debido a la ausencia de normas de interpretación para estos dos agentes
antimicrobianos. Basándose en los estudios apuntados anteriormente, el uso de cefaclor,
cefprozilo o trimetoprima/sulfametoxazol no se recomienda en este medio cuando se realicen
pruebas de S. pneumoniae. Además, las referencias en la literatura recogen errores de
interpretación excesivos en las pruebas de difusión en discos con trimetoprima/sulfametoxasol
en placas de agar Mueller Hinton con sangre de carnero9.
Con respecto a algunas combinaciones de organismos-agente antimicrobiano, la zona de
inhibición tal vez no tenga un borde claramente demarcado, lo que puede llevar a una
interpretación incorrecta.
Se han identificado diversos factores que afectan las pruebas de sensibilidad de difusión en
disco. Se incluyen en esta categoría el medio, la profundidad del agar, la potencia del disco, la
concentración del inóculo, la edad del inóculo y el pH2.
La concentración incorrecta del inóculo puede producir resultados inexactos. Las zonas de
inhibición pueden ser demasiado pequeñas si el inóculo es demasiado denso o pueden ser
demasiado grandes y difíciles de medir si el inóculo está muy diluido.
El almacenamiento inadecuado de los discos con agentes antimicrobianos puede causar una
pérdida de potencia y un resultado resistente falso.
La sensibilidad in vitro de un organismo a un agente antimicrobiano específico no
necesariamente significa que el agente tendrá eficacia in vivo. Consultar las referencias
correspondientes para obtener instrucciones para la interpretación de resultados2,10.
No utilizar este medio para pruebas de sensibilidad de bacterias diferentes a S. pneumoniae y
estreptococos beta-hemolíticos.
REFERENCIAS
1. Clinical and Laboratory Standards Institute. Approved Standard: M2. Performance
standards for antimicrobial disk susceptibility tests. CLSI, Wayne, PA, USA.Search for
latest version at www.clsi.org
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-4-
2. Washington, J.A., and G.L. Woods. 1995. Antibacterial susceptibility tests: dilution and disk diffusion
methods, p. 1327-1341. In P.R. Murray, E.J. Baron, M.A. Pfaller, F.C. Tenover, and R.H. Yolken
(ed.), Manual of clinical microbiology, 6th ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C.
3. Baker, C.N., C. Thornsberry, and R.W. Hawkinson. 1983. Inoculum standardization in antimicrobial
susceptibility testing: evaluation of overnight agar cultures and the rapid inoculum standardization
system. J. Clin. Microbiol. 17:450-457.
4. Swenson, J.M., B.C. Hill, and C. Thornsberry. 1986. Screening pneumococci for penicillin resistance.
J. Clin. Microbiol. 24:749-752.
5. Hindler, J.F., and J.M. Swenson. 2003. Susceptibility test methods: fastidious bacteria. In: In:
Murray, P. R., E. J. Baron, J.H. Jorgensen, M. A. Pfaller, and R. H. Yolken (ed.). Manual of clinical
th
microbiology, 8 ed. American Society for Microbiology, Washington, D.C.
6. National Committee for Clinical Laboratory Standards. 1993. Approved Standard: M2-A5.
Performance standards for antimicrobial disk susceptibility tests, 5th ed. National Committee for
Clinical Laboratory Standards, Villanova, Pa.
7. National Committee for Clinical Laboratory Standards. 1995. Sixth informational supplement: M100S6. Performance standards for antimicrobial susceptibility testing. National Committee for Clinical
Laboratory Standards, Wayne, Pa.
8. Data on file at Becton Dickinson Microbiology Systems.
9. Jorgensen, J.J. 1994. Detection of antimicrobial resistance in Streptococcus pneumoniae by use of
standardized susceptibility testing methods and recently developed interpretive criteria. Clin.
Microbiol. Newsl. 16(13)97-104.
10. Neumann, M.A., D.F. Sahm, C. Thornsberry, J.E. McGowan, Jr. 1991. Cumitech 6A, New
developments in antimicrobial agent susceptibility testing: a practical guide. Coordinating ed., J.E.
McGowan, Jr. American Society of Microbiology, Washington, D.C.
ENVASE/DISPONIBILIDAD
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood (placas Stacker de 90 mm)
Nº de cat. 254030
Medios en placa listos para usar, 20 placas
Nº de cat. 254080
Medios en placa listos para usar, 120 placas
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep Blood (150 mm)
Nº de cat. 255080
Medios en placa listos para usar, 20 placas
BD Mueller Hinton Agar with 5% Sheep blood, Square (120 x 120 mm)
Nº de cat. 254517
Medios en placa listos para usar, 20 placas
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