FRIJOL (PHASEOLUS VULGARIS L.) CV. FLOR DE MAYO ANITA CON TOLERANCIA DE AMPLIO ESPECTRO A HONGOS FITOPATÓGENOS. FOINS 0159071 María Alejandra Mora Avilés, Ph.D. Agosto 2, 2012. ESTADOS PRODUCTORES >1.1 millones de ton. 11% 16% 13% 25% 7% 262,836 ton. De 70,000 a 163,000 ton. De 5,000 a 30,000 ton. Menos de 5,000 ton. 7% Fuente: SIAP SAGARPA 2011 ESPECIES DOMESTICADAS Tipos de Clima P. leptostachyus • 20 P. coccineus • 19 P. lunatus • 17 P. acutifolius • 14 P. vulgaris • 8 De los 28 tipos de clima, Phaseolus se encuentra en 26 de ellos (López-Soto et al., 2005). HIBRIDACIÓN INTERESPECÍFICA P. acutifolius -Rescate de embriones -Estéril P. vulgaris (7.4% alogamia*) -Rescate de embriones -Estéril *(Miranda, 1971) P. lunatus P. coccineus -Híbridos con progenitor ♀ usualmente abortan. RETO • Clima (agua, temperaturas extremas) • Suelo (toxicidad por aluminio, deficiencia de fosfato). • Calidad nutricional (contenido de minerales) • Plagas (gorgojo, araña roja, mosquita) • Enfermedades (antracnosis, patógenos de raíz, roya, virus) Fuente: FAO, 2009 MEJORAMIENTO BIOTECNOLÓGICO Rescate de embriones en cruzas con parientes distantes Identificación de marcadores Identificación de genes/factores de transcripción Regeneración y modificación genética RAZONAMIENTO • Frijol, especie autógama • Cultivo susceptible a patógenos • Mejoramiento encaminado a resistencia vertical (gen x gen) • Necesidad de generar tecnología nacional disponible para el mejorador y el agricultor. OBJETIVOS • Generación de líneas de frijol modificadas genéticamente con resistencia/tolerancia a factores bióticos y abióticos. DEFENSINAS • Péptidos antimicrobianos conformados de 45 a 54 aminoácidos. • Respuesta del sistema inmune de vertebrados, invertebrados y plantas. • Proteínas generadas de un solo gen (eficientes) con limitado aporte de energía y biomasa. • Presentan efectos inhibitorios de crecimiento sobre un gran número de hongos. De Oliveira y Moreira, 2009 ACTIVIDAD BIOLÓGICA DE DEFENSINAS pdf1.2 • Actividad ocurre en la membrana plasmática (Thevissen et al., 1996). • Se ha demostrado que las defensinas de rábano (Rs-AFP2) y dalia (Dm-AMP1) inducen el influjo de Ca +2 y eflujo de K+ cuando se adhieren a las hifas de hongos . 3. SOBRE EXPRESIÓN DE DEFENSINAS • Defensina de rábano confirió resistencia a Alternaria longipes en tabaco (Terras et al. 1995) y en tomate a Alternaria solani (Parashina et al. 2000). • Defensina de chícharo cierta tolerancia a Leptosphaeria maculans en canola (Wang et al. 1999). • Defensina de alfalfa resistencia robusta a Verticillium dahliae en papa (Gao et al. 2000). FRIJOL cv. FLOR DE MAYO ANITA 2003 Javier Zaragoza Castellanos Ramos / Horacio Guzmán Maldonado / José de Jesús Muñoz Ramos / Jorge Alberto Acosta Gallegos FLOR DE MAYO ANITA, NUEVA VARIEDAD DE FRIJOL PARA LA REGIÓN CENTRAL DE MÉXICO Revista Fitotecnia Mexicana, julio-septiembre, año/vol. 26, número 003 Sociedad Mexicana de Fitogenética, A.C. Chapingo, México pp. 209-211 Resistente a biotipos de VMC, resistencia mediaalta a las razas de roya de la región central de México y moderadamente resistente al tizón común EXTRACCIÓN Y DISECCIÓN DE EMBRIONES 5 3 4 PROCESO DE REGENERACIÓN IN VITRO DE FRIJOL A 4-7 días MI DD B 10 días MI DD 30 días en MEE Hojas dif. 6 mm ancho MI DD 25 días MI DD E D C F 5-7 cm alto, 2-3 hojas trif. 55 DD G 15 cm alto CONSTRUCCIÓN RB nos-p nptII nos- t P352-S pdf 1.2 rbcsS-E9 LB Construcción T-DNA en vector pKYLX80. RB: Borde derecho; nos-p: promotor nopalin sintasa; nptII: gen de selección neomicin fosfotransferasa (resistencia a kanamicina (kan)); nos-t: terminador nopalin sintasa; P352S: Promotor CaMV35S; pdf1.2: Defensina de A. thaliana; rbcsS-E9: terminador ribulose1,5-bifosfate carboxylase de chícharo; LB: borde izquierdo. RESULTADOS Tejido resistente a kanamicina Raíces Cámara de crecimiento 25° C 1 mes después de transplantar a invernadero CARACTERIZACIÓN MOLECULAR Amplificación de genes por PCR punto final. 35S, nptII y pdf1.2 Amplificación por PCR-Q pdf1.2. Expresión transcripcional por PCR-Q pdf1.2. Hojas de frijol de plantas T0 de frijol inoculadas con C. lindemuthianum 1472 1 Línea Superficie cubierta con lesiones1 E.E C- 80.0 13.5 a2 CT 82.0 12.0 a L2 50.0 8.9 b L3 82.5 13.5 a L4 67.5 13.5 a L7 36.8 7.8 b L9 33.3 7.8 b Promedio de superficie de hoja cubierta con lesiones (10 días después de inoculación). L2, L3, L4, L7 y L9 = Líneas transformadas; -C = Planta no transformada; CT= Control de transformación 2 Análisis de comparación de medias Tukey = 0.05 a b Inoculación de C. lindemuthianum patotipo 1472 sobre planta de frijol variedad Flor de Mayo Anita genéticamente modificada (a) y planta control (b). Las flechas indican la presencia de masas de esporas en peciolos. Plantas T3 de frijol de FMA-pdf1.2 inoculadas con C. lindemuthianum 0 50 45 1 Número de plantas 40 V FMA L2 L3 L7 L9 35 30 25 20 15 10 5 0 2 448 1472 0 3 448 1472 1 448 1472 2 448 1472 3 Cepa Daño Plantas T3 de frijol de frijol inoculadas con C. lindemuthianum FMA L2 L9 INOCULACIÓN CON PATÓGENOS DE RAÍZ Muestreo a los 10 cm y a los 15 cm de perfil del suelo BIOENSAYO FMA-PDF1.2 T4 • Fusarium lateritium • Rhizoctonia solani • Verticillium spp Líneas pdf1.2 Montcalm FMA F. latertium 1 x 105 Reinoculación 2 x 105 ESCALA VISUAL 1= 0% 2= 1-5% 3= 6-10% 4= 11-25% 5= 26-35% 6= 36-50% 7= 51-65% 8= 66-75% 9= > del 75% del hipocotilo y tejido de la raíz con lesiones Sánchez-García, 2006; CIAT, 1987 INOCULACIÓN 1 X 105 CONIDIOS 6 5 Valores de Resistencia 1= 0% 2= 1-5% 3= 6-10% 4= 11-25% 5= 26-35% 6= 36-50% 7= 51-65% 8= 66-75% 9= > del 75% del hipocotilo y tejido de la raíz con lesiones A A 4 BC 3 C BC BC L4 L7 C 2 1 0 FMA L2 L3 Poblaciones L9 Montcalm REINOCULACIÓN 2.5 X 105 CONIDIOS 7 Valores de Resistencia 6 A A BC 5 BC C C C L7 L9 4 3 2 1 0 FMA L2 L3 L4 Poblaciones Montcalm INOCULACIÓN CON Glomus intraradices Tratamiento C Ci Infección radical (%) R1 R2 R3 Frijol FJM* 0 0 0 Frijol FMA 0 0 0 Frijol FJM i 25 25 50 Frijol FMA i 25 25 25 L2-448 i 0 0 0 L2-1472 i 25 0 0 L3-1472 i 25 0 25 L4-1472 i 25 0 0 L9-448 i 0 25 0 L9-1472 i 0 0 0 * FJM: Flor de junio Marcela, FMA: Flor de mayo Anita, i: Inoculado con Glomus intraradices. Tres repeticiones con 3 plantas cada una Dr. Grageda et al., 2011 FMA L9 PERSPECTIVAS • Caracterización molecular (proteína, secuencias flanqueantes, otros) Convenio SENASICA-INIFAP dPCR. • Análisis proximal, de equivalencia sustancial, digestibilidad, alergenicidad y toxicidad • Análisis de riesgo (salud, ambiental, agronómico) PARTICIPANTES • Anareli Quintero • Mayela Sucedo • Pablo Delgado • Fernando García • Miriam Guía • Juan Ayala • Martha Tovar • Virginia Cabrera • Baltazar Tula • Oscar Grageda • • • • Saúl Fraire (UAZ) Roberto Gaxiola (U. Arizona) Gabriel Iturriaga (UAEM) Miguel Gómez Lim (CINVESTAV) • Bertha Sánchez • Elsa Espinosa • Horacio Guzmán • Jorge Acosta • Mario González • Emiliano Villordo GRACIAS mora.alejandra@inifap.gob.mx