XIII Congreso Nacional Farmacéutico Granada, 15-18 de octubre de 2002 Mesa Redonda: Análisis Clínicos: Futuro de las Especializaciones Farmacéuticas Ponencia: Nuevas Salidas Profesionales: Genética-Citogenética-Genética Molecular Eduardo Gómez Arqueros Farmacéutico Genetista, Valladolid Mesa Redonda: Análisis Clínicos: Futuro de las Especializaciones Farmacéuticas Genética-Citogenética-Genética Molecular Eduardo Gómez Arqueros Farmacéutico Genetista, Valladolid La forma más sencilla de definir la genética es la rama de la medicina que estudia los genes y su herencia. En la genética humana existen muchos campos de interés, siendo las más importantes la citogenética (estudio de los cromosomas), Genética molecular (Aplicación de las técnicas de biología molecular al estudio de la estructura y función de genes individuales) y la genética clínica (aplicación al diagnóstico y cuidado del enfermo). La genética clínica es aplicada por un médico genetista (pediatra, ginecólogo, hematólogo, etc.). La citogenética y la genética molecular son áreas de laboratorio que pueden ser ejercitadas por un farmacéutico, biólogo, médico o químico. Citogenética La citogenética es la ciencia que estudia los cromosomas, su estructura y su herencia. Estos cromosomas de aspecto homogéneo en el núcleo celular en interfase se condensan en la división celular realizándose su estudio en la etapa de metafase de la mitosis. El análisis cromosómico se ha convertido en un procedimiento diagnóstico importante en la práctica diaria de la medicina y como describiremos más adelante, las anomalías cromosómicas constituyen causas importantes de problemas de fertilidad, pérdidas reproductivas y defectos congénitos. El cariotipo sin bandas es la clasificación por tamaño y la posición del centrómero de los cromosomas en 7 GRUPOS (A, B, C, D, E, y G) según la ISCN(International Sistem for Human Citogenetic Nomenclature, París 1971). Gracias a las técnicas de bandeado Giemsa se han podido diferenciar los 23 pares de cromosomas. Las células más utilizadas debido a su capacidad de crecer y dividirse rápidamente en cultivo son: Ø Linfocitos sangre periférica: Extracción mediante una venopunción con heparina y cultivo de linfocitos T estimulados con el mitógeno Fitohemaglutinina sacrificando el cultivo a las 72 horas con colchicina. (cordocentésis). Ø Vellosidades coriónicas o líquido amniótico: cultivo de tejido trofoblástico(vía transcervical o transabdominal, 9 semanas de gestación, 1% pérdidas) o amniocitos (amniocentésis transabdominal, 14 semanas de gestación, 0,3 % pérdidas) para el diagnóstico prenatal Ø células linfoblastoides de médula ósea: Cultivo para el estudio de alteraciones cromosómicas producidas por enfermedades hematológicas malignas como el linfoma de Burkitt(t 8,14) oncogén c-MYC o L.M.C.(t9,22). La presencia de alteraciones da un valor diagnóstico y pronóstico de la enfermedad. 1 XIII Congreso Nacional Farmacéutico Granada, 15-18 de octubre de 2002 Análisis cromosómico En los seres humanos el núcleo celular normal contiene 46 cromosomas (23 pares). 22 pares son iguales en las mujeres y en los varones y se denominan autosomas. El par 23 corresponde a los cromosomas sexuales, gonosomas, y contiene dos Xs en la mujer y un X y un Y en el varón. Cada cromosoma normal en metafase puede ser visto como dos cromátidas que se unen estrechamente en un punto llamado constricción primaria o centrómero (cen). El centrómero divide al cromosoma en dos brazos denominados: Según la posición del centrómero podemos clasificar los cromosomas en tres tipos: • Cromosoma Metacéntrico: los cromosomas que tienen el centrómero en el centro ( pares 1, 3, 16, 19 y 20). • Cromosoma Acrocéntrico: Los cromosomas que tienen el centrómero muy cerca del extremo. Los brazos cortos de estos cromosomas tienen al final unas estructuras llamadas satélites (pares 13, 14, 15, 21, 22 e Y). • Cromosomas submetacéntrico: tienen el centrómero en posición intermedia a entre las anteriores. En la nomenclatura citogenética el cariotipo se nombra primero el número de cromosomas y después el complemento sexual. Ej. : 46,XX. Para nombrar una determinada banda se nombra primero el cromosoma, después el brazo, la región y el número de banda que se enumera a partir del 1, comenzando por la banda cercana al centrómero. Ej. 9p12: cromosoma 9, brazo corto, región 1, banda 2. CARIOTIPO HUMANO NORMAL Cada especie tiene un complemento cromosómico, característico en número y morfología. Esto es lo que conocemos como cariotipo. El estudio de las metafases del cultivo de células de un tejido de un individuo es lo que conocemos como cariotipo constitucional. El cariotipo de una mujer normal es 46,XX. El cariotipo de un hombre normal es 46,XY. VARIACIONES CROMOSÓMICAS EN UN CARIOTIPO NORMAL En la cromatina (asociación de ADN y proteínas del que se componen los cromosomas) podemos diferenciar la Eucromatina regiones codificantes y la heterocromatina regiones no codifi cantes. La heterocromatina presenta una considerable variación entre individuos en la cantidad y distribución. Dentro de un cariotipo normal nos podemos encontrar tres regiones heterocromáticas con alta variabilidad: Ø Heterocromatina centromérica: muy visible en los cromosomas 1, 9 y 16. Según el ISCN se describe como qh+ ó qh-. Ej. : 46,XX, 16qh+. Cromosoma 16 normal con región heterocromática mayor que el otro 16. 2 XIII Congreso Nacional Farmacéutico Granada, 15-18 de octubre de 2002 Ø Brazos cortos y satélites de los cromosomas acrocéntricos: el brazo corto aparece como una extensión de la región centromérica y los satélites son las pequeñas masas de cromatina en forma de bolas oscuras que aparece el extremo del brazo y que codifican el RNA ribosómico. En el ISCN se denominan 46,XX, 13s+. Satélites largos en el cromosoma 13. Y 46,XX, 22pss. Satélites dobles en el cromosoma 22h. Ø Brazo largo del cromosoma Y: la parte distal del brazo largo es una región muy variable en el cromosoma Y. Normalmente estas variaciones se transmiten sin cambios de padres a hijos. No tiene efectos clínicos conocidos. Según el ISCN se nombran Yqh+ ó Yqh-. EL CARIOTIPO HUMANO ANORMAL Los cariotipos anormales se producen por errores en la meiosis durante la fertilización o por errores en la división meiótica. Las anomalías cromosómicas pueden ser numéricas o estructurales: ANOMALÍAS NUMÉRICAS 1. ANOMALÍAS NUMÉRICAS DEL CONJUNTO: Poliploidía. Ej. Tetraploidía 92,XXXX ó 92,XXYY.Triploidía 69,XXY. Tanto la triploidía como la tetraploidía se han observado en fetos que no llegan a término. La triploidía es causa del 20% de los abortos espontáneos. 1/20.000 rnv. No hay evidencias de relación con la edad materna. Es probable que la triploidía ocurra por un fallo en una de las divisiones de maduración en el óvulo (diginía) o en el espermatozoide (diandría) o por doble fertilización de un ovocito (dispermia). Las tetraploidías proceden de una incompleta segmentación del cigoto. 2.ANOMALÍAS NUMÉRICAS PARCIALES AUTOSÓMICAS: su nomenclatura es muy simple se suma o resta el cromosoma implicado Ej. 47,XY, +13. Ø Trisomía 21 (Sr. De Down) - Frecuencia 1/800 r.n.v. 85% sobreviven al año de vida. -Fenotipo: Retraso mental (CI 40-70) estatura corta, cuello corto, puente nasal plano, boca abierta con macroglosia, pliegue palmar simiesco, enfermedad cardiaca congénita(1/3), fístula duodenal, mayor riesgo de leucemia, hipotiroidismo, inmunodepresión, Varón infértil, mujer con baja fertilidad (50% de riesgo de recurrencia), alzheimer etc. - ¾ abortan espontáneamente. Riesgo asociado con la edad materna. Ø Trisomía 18 (Sr. De Edwards) - frecuencia: varía entre 1/3.000 y 1/7.000 - Fenotipo: retraso mental, fallo en el crecimiento CIR, hipotonía muscular, malformaciones cardiacas, implantación de los pabellones auriculares baja y mal formes, puños cerrados de manera característica( segundo y quinto dedo superponen al tercero y cuarto), etc. - 95% abortan espontáneamente y la supervivencia postnatal es escasa. Influencia de la edad materna. Ø Trisomía 13 (Sr. De Patau) - Frecuencia: 1/25.000 - Fenotipo: Grave retraso mental y de crecimiento, microcefalia, labio leporino, paladar hendido, coloboma de iris e incluso ausencia de los ojos, polidactilia, alteraciones cardiacas graves, criptorquidia, etc. - La mayoría abortan antes del sexto mes de gestación y la supervivencia postnatal es escasa. 3.ANOMALÍAS NUMÉRICAS PARCIALES, SEXUALES: Su nomenclatura es distinta a la de los autosomas. Los cromosomas sexuales se incluyen juntos y simplemente se añaden u omiten. Ej. 47,XXY. 48,XXXY. 45,X. a. Trisomías sexuales. Ø 47,XXY. Sr. Klinefelter 3 XIII Congreso Nacional Farmacéutico Granada, 15-18 de octubre de 2002 -Frecuencia: 1/1.500 -1.800 rnv. Mosaicismo en un 15%(mejor pronóstico). -Origen: error en la disyunción meiótica materna o paterna. -Fenotipo: Muy variable. Retraso mental poco probable (leve en el habla y desarrollo psicomotriz). En la adolescencia aparece ginecomastia(30%), altura superior a la media, retraso puberal( Tto. con testosterona), testículos de pequeño tamaño(infertilidad), vello facial de escaso crecimiento. 87% de las parejas que lo detectan por diagnóstico prenatal llevan a termino el embarazo. -Tasa de supervivencia de un 97%. Ø 47,XXX. Triple X o Trisomía del X -Mujer con fenotipo muy variable: infertilidad, CI normal, desarrollo puberal precoz. -Origen: error en la disyunción meiótica materna. 47,XYY. Sr. XYY -Frecuencia:1/1.000 rnv. -Origen: Error meiosis paterna. -Fenotipo: riesgo elevado de problemas de conducta(agresividad, 3% de los presos). Fertilidad normal. b. Monosomías sexuales: Ø 45,X. Sr. De Turner -Frecuencia: 1/2.500 rnv. Mosaicismo en un 40% (45,X/46,XX) -Diagnóstico prenatal: pliegue nucal aumentado, Higroma quístico cuello(desarrollo linfático anómalo debido a una hipoalbuminemia temprana). -Fenotipo: inteligencia normal (dificultades en el habla y psicomotoras), Pterigium coli (Desarrollo anormal sistema linfático en el cuello), algunas al nacer presentan edema en el dorso del pie, anomalías cardiacas y renales, en el desarrollo puberal aparece la corta estatura, digenesia gonadal, etc. Tto. Estrógenos y GH mejoran el desarrollo de los caracteres sexuales secundarios y la estatura. -98-99% abortan espontáneamente(10% de los abortos). No hay relación con la edad materna. c. Polisomías sexuales : Ø 48,XXXY(1/20.000) y 49,XXXXY(1/80.000) variante del Sr. De Klinefelter Ø 48,XXXX y 49,XXXXX variante femenina del Klinefelter Ø 4 XIII Congreso Nacional Farmacéutico Granada, 15-18 de octubre de 2002 RIESGO DE ALTERACIONES CROMOSÓMICAS POR EDAD MATERNA Y EDAD GESTACIONAL(1/Nº en la tabla) Edad Matern a Trisomía 21 Trisomía 18 12 20 40 12 25 1.06 8 946 30 626 1.29 5 1.14 7 759 1.52 7 1.35 2 895 35 249 302 356 2.48 4 2.20 0 1.45 6 580 40 44 68 21 82 26 97 30 157 50 20 20 Trisomía 13 Edad gestacional(semanas) 40 12 20 40 12 4.897 18.01 3 4.336 15.95 1 2.869 10.55 4 1.114 4.202 2 310 1.139 98 359 7.82 6 6.93 0 4.58 5 1.82 6 495 156 14.65 6 12.97 8 8.587 3.419 927 292 42.42 1.47 3 1 37.56 7 24.85 6 9.876 Turner Klinefelt er 20 40 = 3.12 5 4.16 7 1.667 2.683 846 1.667 1.667 1.250 1.000 833 ANOMALÍAS ESTRUCTURALES A) Reordenamientos desequilibrados: En estos casos es probable que el fenotipo del paciente resulte anormal. 1.Deleciones: Pérdida de un segmento cromosómico que genera un desequilibrio. Las consecuencias clínicas dependen del tamaño delecionado y el número o función de los genes que contiene. Su abreviatura según el ISCN es del. Ej. 46,XX, del(6)(p22) deleción en el brazo corto del cromosoma 6. Ø Sr. Cri du Chat (Síndrome del maullido de gato) -Frecuencia: 1/30.000-50.000 rnv. 46,XY, del(5)(p15) -Fenotipo: retraso mental grave, poca esperanza de vida(40 años), llanto recién nacido característico, microcefalia(cabeza pequeña), hipertelorismo(ojos separados), pabello nes auriculares de implantación baja, cara de luna, dificultades para comer, frecuentes infecciones respiratorias, etc. -80-85% de los casos son de aparición esporádica y el 10-15% restante, son hijos de portadores de una translocación. También podemos encontrarnos con microdeleciones o deleciones no visibles mediante las técnicas de bandeado Giemsa, las cuales pueden ser detectadas por las técnicas de Biología Molecular conocida como F.I.S.H. (Fluorescence in situ hibridization). 2.Duplicación: Duplicación de un segmento cromosómico. Puede ser directa o inversa. Su abreviatura según la ISCN es dup. Ej. 46,XY, dup(4)(q11q21) duplicación de un segmento entre las bandas 11 y 21 del brazo largo del cromosoma 4. 3.Cromosomas en anillo: Se forman cuando se producen dos roturas terminales en un cromosoma y se unen los extremos. Son muy raros pero se han detectado para cada cromosoma humano. Nomenclatura r. Ej. 46,X , r(X) debido al pérdida de la banda Xq21 cursan con un fenotipo semejante al del Sr. de Turner (5%) y algunos pacientes manifiestan un leve retraso mental. 4. Isocromosomas: cromosoma al que le falta un brazo y el otro está duplicado. Son frecuentes los mosaicos. Nomenclatura i. Ej. 46,X, i(Xq) isocromosoma del brazo largo del cromosoma X que suele cursar con un fenotipo semejante al Sr. de Turner (10%). 5 XIII Congreso Nacional Farmacéutico Granada, 15-18 de octubre de 2002 5. Cromosomas marcadores: Son cromosomas diminutos formados por reordenamientos complejos. Suelen estar formados por heterocromatina centromérica, pero pueden llegar a contener parte de algún gen. Su identificación es normalmente compleja y su hallazgo en un cariotipo fetal complica la evaluación clínica y el consejo genético. Las nuevas técnicas de pintado cromosómico F.I.S.H. han facilitado su identificación, pero pueden llegar a incrementar el coste económico y de tiempo. Nomenclatura +mar. Ej. 46,XX, +mar. Frecuencia: 1,5/ 1.000 De lo que aparecen de novo, se calcula que el 13% se asocian a alteraciones fenotípicas. B) Reordenamientos equilibrados: Estos no tienen efecto fenotípico, ya que toda la información genética se encuentra presente. Sin embargo, estos reordenamientos estructurales constituyen una amenaza para la siguiente generación ya que estos portadores pueden producir una alta frecuencia de gametos desequilibrados y, por lo tanto tener descendencia anormal con cariotipos desequilibrados. 1. Inversiones: Se produce por dos roturas dentro de un cromosoma, inversión del segmento entre ellas y unión de los fragmentos cromosómicos implicados. Estas, según sean las roturas, en cada brazo o en un mismo brazo, las clasificamos en pericéntricas (incluyen del centrómero) o paracéntricas. El fenotipo del paciente es normal y su importancia clínica se relaciona con su descendencia. La inversión del cromosoma 9, presente en más del 1% de la población citogenéticamente estudiada, se considera una variante normal que no tiene repercusión clínica en los portadores y parece no estar asociada con riesgo significativo de aborto o descendencia desequilibrada. Nomenclatura inv. Ej. 46,XX, inv(9)(p11q12). 2.Translocaciones: Existen dos tipos: 2a.Translocaciones recíprocas: Intercambio de segmentos cromosómicos entre dos cromosomas. El número cromosómico total no cambia. No suelen tener repercusión clínica en el portador, pero se asocian con un riesgo elevado de gametos desequilibrados y descendencia anormal. Nomenclatura t. Ej. 46,XY, t(3;22)(p21;q11) Translocación entre el brazo pequeño del cromosoma 3 y el brazo largo del cromosoma 22. 2b. Translocaciones robertsonianas: Reordenamiento en el que intervienen dos cromosomas acrocéntricos perdiendo generalmente los brazos cortos en los cuales están codificados los genes del RNA ribosómico. Debido a que existen varias copias de estos en el resto de cromosomas acrocéntricos, el portador suele ser fenotípicamente normal con un número cromosómico total de 45 cromosomas. Tienen un riesgo elevado de gametos desequilibrados y descendencia anormal. Ej. 45,XX, t(13;22)(q11;q12). 2c. Inserción: Translocación no recíproca en el que un segmento se retira de un cromosoma y se inserta en otro de manera directa o inversa. Nomenclatura ins. NUEVAS TECNOLOGÍAS Ø FISH (hibridación in situ molecular) Nueva tecnología que utiliza sondas de DNA marcadas con fluorescencia para detectar o confirmar anomalías génicas o cromosómicas que no se pueden detectar con las técnicas citogenéticas de rutina. Para su aplicación desnaturalizamos la muestra de DNA, hibridamos las sondas marcadas y observamos en un microscopio de fluorescencia la señal emitida. Esta técnica es útil para la detección en núcleos o metafases de microdeleciones, cromosomas marcadores, confirmación de translocaciones, etc. La sensibilidad de esta técnica es mayor que la citogenética de rutina pero depende de un síndrome o alteración concreta. Su utilización se está incrementando para la detección en líquido amniótico de las principales trisomías (13, 18 y 21) y determinación del sexo (X e Y) en 48-72 horas, siempre esperando a la citogenética de rutina para confirmar el resultado ya que esta técnica no sustituye el análisis completo del cariotipo. Recientemente ya se disponen técnicas que nos permiten pintar cada cromosoma de un color (SKY) o con bandas características (RX-FISH). Estas técnicas tienen aún un coste elevado pero esperamos que en un futuro próximo se conviertan en una herramienta habitual en el laboratorio de Genética para facilitar la labor del citogenetista. 6 XIII Congreso Nacional Farmacéutico Granada, 15-18 de octubre de 2002 Ø QF-PCR Esta técnica de nueva generación está sustituyendo a la técnica FISH para la detección en 24-48 horas de las principales trisomías y cromosomas sexuales en líquido amniótico, siendo esta un complemento a la citogenética de rutina. El principio del método se basa en la proporcionalidad entre la cantidad inicial de una secuencia de ADN y la cantidad del producto de amplificación generado durante el inicio de la fase exponencial de la PCR. La cuantificación del producto de amplificación es posible gracias a la utilización de cebadores marcados con fluorocromos. La señal fluorescente es capturada y procesada por un sistema informático lo que facilita su interpretación por el citogenetista. Ø BIO-Chips También conocida como microarray DNA -chip, esta tecnología va a revolucionar el análisis molecular. Como todas las grandes ideas es conceptualmente sencilla, aunque requiere de una infraestructura notable. El chip está formado por una placa de sílice o nylon donde inmovilizamos de forma ordenada miles(hasta 40.000) de secuencias de c-DNA (DNA complementario), construyendo así un panel de sondas semejante a un chip informático. La naturaleza de estas secuencias de DNA estará en función de las aplicaciones que queramos darle a nuestro chip. Sobre este chip se colocará el DNA a estudiar marcado con un fluorocromo y si híbrida algunas de las secuencias de nuestro chip emitirá una señal que será capturada y procesada por un autoanalizador. Este bio-chip va a permitirnos estudiar los más de 30.000 genes localizados en los cromosomas y sus variaciones interindividuales, incluyendo las distintas propensiones a una u otra enfermedad. Su utilización será crucial en la medicina del futuro será crucial para la prevención y diagnóstico personalizado. Aplicaciones del Bio-chip: . Cáncer: la formación de un tumor se debe a una compleja acumulación de mutaciones de los genes de una célula que provocan que escape de control y prolifere indebidamente. Algunas de estas mutaciones son causadas por agresiones externas(tabaco, radiación ultravioleta solar, etc.) y otras las lleva puestas un individuo desde su nacimiento, lo que explica la susceptibilidad de algunas personas a desarrollar uno u otro tipo de cáncer. Conocer estas mutaciones nos va a permitir si responderá a un tratamiento u otro. . Enfermedades simples: de los 30.000 genes humanos hay unas 1.100 variaciones asociadas a unas 1.500 enfermedades. Predecir el riesgo será ahora relativamente sencillo. .Enfermedades complejas: la propensión genética a las enfermedades más comunes no se debe a la alteración de un solo gen, sino a decenas o cientos a la vez. Los bio-chips revolucionarán la medicina al analizar de una sola vez todas las variantes de esos genes. .Fármacos a medida: el conocer las mutaciones especificas que provoquen una enfermedad en un individuo, nos va a permitir personalizar el tratamiento. La administración de EEUU ha calculado que las reacciones adversas a medicamentos causan en dicho país dos millones de hospitalizaciones al año. Referencias bibliográficas 1. Callen DF, Freemantle CJ, Ringerbergs ML, Baker E, Eyre HJ, Romain D, Haan EA. The isochromosome 18p syndrome: Confirmation of cytogenetic diagnosis in nine cases by in situ hybridization. Am J Hum Genet 1990; 47:493 -498 2. Eiben B, Trawicki W, Hammans W, Epplen JT. False-negative finding in rapid interphase FISH analysis of uncultured amniotic cells. Prenat Diagn 1999 Sep;19(9):892-3 3. Mutter GL, Pomponio RJ. Molecular diagnosis of sex chromosome aneuploidy using quantitative PCR. Nucleic Acids Res 1991 Aug 11;19(15):4203-7. 4. Mutter GL, Pomponio RJ. Molecular diagnosis of sex chromosome aneuploidy using quantitative PCR. Nucleic Acids Res 1991 Aug 11;19(15):4203-7. 5. Goldberg R, Motzkin B, Marion R, Scambler PJ, Shprintzen RJ. Velocardiofacial syndrome: a review of 120 patients. 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