DIGESTIÓN ENZIMÁTICA ASISTIDA POR ULTRASONIDOS PARA LA DETERMINACIÓN DE ARSÉNICO TOTAL EN ALIMENTOS COCIDOS: ESTUDIO PRELIMINAR Polischuk, T.1; Buchhamer, E.1*; Navoni, J.2; Giménez, C.1; Villaamil Lepori, E.2 1 Com. Fernández 755 Cátedra de Química Analítica I, Universidad Nacional del Chaco Austral, Pcia. Roque Sáenz Peña, Chaco, C.P. 3700. 2 Junín 956 Cátedra de Toxicología y Química Legal-Facultad de Farmacia y Bioquímica, UBA, Buenos Aires, C.P. 1113 edgarb@uncaus.edu.ar Resumen Muchos esfuerzos se han dedicado a resolver los problemas de extracción de especies metálicas en muestras relacionadas con los alimentos. Es conocida la eficacia de las enzimas como procedimiento para extraer biomoléculas unidas a especies organometálicas. El objetivo de este trabajo fue comparar diferentes procedimientos de hidrólisis enzimática para la extracción y determinación cuantitativa de arsénico total en alimentos cocidos mediante FI-HG-AAS. Dadas las características del alimento a estudiar (guisado de arroz, verduras y carne cocido con agua con una concentración de Arsénico de 200 µg/l), dos enzimas (celulasa y pancreatina) fueron seleccionadas y combinadas con dos procesos de agitación (baño termostatizado/ ultrasonidos). La confiabilidad de los procedimientos fue comprobada con el material de referencia (Brown rice SYTED105PI0272) y los resultados fueron comparados con el procedimiento clásico de extracción de arsénico total por Dry Ashing. Las recuperaciones obtenidas fueron las siguientes: 101% para baño termostatizadopancreatina, 104% para baño termostatizado-celulasa, 99% para ultrasonidos-celulasa y 85% para ultrasonidospancreatina. La prueba de comparación de medias T (p<0,05) mostró que los valores de arsénico total extraído en los tres primeros procedimientos fueron semejantes, con muy buenos rendimientos, siendo diferente y menor la combinación ultrasonidos-pancreatina. Los valores encontrados permiten concluir que la enzima celulasa presenta un mejor comportamiento para la extracción de AsT en las muestras de alimentos cocidos seleccionados en este estudio; pero además, que como procedimiento de hidrólisis enzimática, la combinación ultrasonidos-enzima presenta la ventaja de reducir los tiempos de tratamiento y consumo de reactivo. Palabras clave: enzimas, ultrasonidos, arsénico, alimentos. Introducción Muchos esfuerzos se han dedicando a resolver los problemas de extracción de especies organometálicas en muestras de alimentos. A pesar de que la extracción con solventes como el cloroformo (Laparra, J.M. 2005; Dietz, C. 2007) o el metanol (Morand, E. 2003) han dado muy buenos resultados, los procedimientos resultan largos y trabajosos y de difícil aplicación en el análisis de rutina en el laboratorio. Las enzimas pueden ser utilizadas como procedimiento suave para extraer biomoléculas vinculadas a especies organometálicas. Por ejemplo, la lipasa es una enzima que permite digerir la grasa, así como la amilasa que actúa sobre los azúcares y el almidón (Branch, S. 1994). La mezcla de ellos como la pancreatina (lipasa + amilasa + proteasa) pueden ser utilizadas para digerir matrices poco homogéneas. La tripsina ha sido empleada en la digestión enzimática de arsénico en especies de pescado (Branch, S. 1994), y con el mismo fin en alimentos para niños (Pardo-Martínez, M. 2001). Los resultados alcanzados por (Ebdon, L. 1994) y corroborados por (Méndez Alonso, M. 1995) usando tripsina en distintos tipos de pescados y crustáceos no dejan lugar a dudas sobre su eficacia en la extracción de arsénico en materiales con alto contenido proteico, no así en algas. Sin embargo, las enzimas celulasa y pancreatina muestran una mejor eficacia en material vegetal, donde la tripsina no resulta útil (Ayala, J. 1999). En el caso de otros metales (por ejemplo, mercurio, estaño y plomo) los métodos enzimáticos no son tan eficaces porque en general, no están incorporados a las biomoléculas más grandes, por lo tanto otros procedimientos de extracción son más adecuados. 1 Un inconveniente general del procedimiento de digestión enzimática es el largo tiempo de incubación que deben aplicarse, normalmente de 12 a 24 h y, el relativo alto costo de los reactivos a usar. Esto ha llevado a algunos investigadores a intentar desarrollar un método alternativo más rápido y sencillo que consiste en la combinación de ultrasonidos y el uso de enzimas (Vale, G. 2008). El primero proporciona una ruptura efectiva de las paredes celulares, que facilita la interacción de las enzimas con los componentes liberados de las células, resultando en una reducción del tiempo de tratamiento de horas a minutos solamente. La lipasa y proteasa combinadas con ultrasonidos han demostrado ser válidas para la extracción de especies de arsénico en pelo humano, con una recuperación del 60% y un tiempo de extracción de 10 min., alcanzando límites de detección del método de 19.6, 12.7, 14.3 y 19.4 ng L-1 de As (III), DMA, MMA y As (V), respectivamente (Dietz, C. 2007). Con Amilasa y proteasa se alcanzaron rendimientos de extracción de 98 – 110% con LOD de 13-20 ng L-1 en Materiales de Referencia a base de arroz y muslo de pollo (Vale, G. 2008 y SanzMedel, E. 2007). Atendiendo a estos antecedentes, se pensó en la posibilidad de emplear un procedimientos de hidrólisis enzimática asistida por ultrasonido (USAED), como metodología factible de ser utilizada para la extracción de arsénico total y especies de arsénico inorgánico en alimentos cocidos en el análisis de rutina para la determinación cuantitativa de arsénico en alimentos cocidos mediante FI-HGAAS (Morand, E. 2003; Vale, G. 2008 y Vale, G. 2010). Materiales y Métodos 1) Toma de muestras En los diferentes métodos de digestión enzimática se trabajó con un guisado de arroz, verduras y carne cocido con agua con una concentración de Arsénico de 200 µg/l. Los ingredientes usados para su preparación fueron: arroz, cebolla, carne, papa, zanahoria, pimiento, tomate perita y ajo, utilizando 600 ml de agua para su cocción. El tiempo de cocción fue de 25 minutos. Dadas las características del alimento a estudiar, dos enzimas (celulasa y pancreatina) fueron seleccionadas para realizar los procesos de digestión y combinadas con dos procesos de agitación (baño termostatizado y ultrasonidos). La confiabilidad de los procedimientos fue comprobada con el material de referencia (Brown rice CYTED105PI0272; As 0,508+0,032) y los resultados fueron comparados con el procedimiento clásico de extracción de arsénico total por Dry Ashing. 2) Tratamiento de las muestras Se determinó el contenido de humedad secándolo en estufa a 105°C hasta peso constante, obteniendo una humedad promedio de 75,5%. EL material seco se sometió a molienda en un molino de cuchillas marca DALVO modelo MC/I V.C.A. 220, guardándose en recipientes plásticos herméticos y almacenados a -20°C hasta su análisis. Previo al análisis el material fue secado nuevamente a 105°C durante 2 h. 3) Métodos de extracción seleccionados 3.a) Mineralización por calcinación en mufla Se pesaron alrededor de 0,25 g de muestra seca o MRC, se le adicionaron 3 ml de agente coadyuvante de la mineralización formado por Mg(NO3)2 al 20% (m/v) y MgO al 2% (m/v) y 10 ml de HNO3 (50% v/v). La mezcla homogeneizada se colocó en plancha calefactora evaporándose el contenido hasta total sequedad. Este residuo seco se llevó a mufla, siguiendo un programa de temperatura hasta llegar a 450 °C manteniéndose por 12 h, hasta cenizas blancas. Estas cenizas fueron disueltas con 5 ml de HCl 6M y 5 ml de solución reductora formada por KI 5% (m/v) y ácido ascórbico 5% (m/v). Transcurridos 30 min, la disolución se transfirió a matraz de 25 ml y se llevó a volumen final con HCl 6M. 2 3.b) Digestión enzimática Para el tratamiento de las muestras fueron seleccionadas dos enzimas, para lo cual se tuvo en cuenta las características del material a analizar, seleccionándose para cada procedimiento la relación muestra – enzima más adecuada, según se describe a continuación: 3.b.1) Pancreatina Baño termostatizado: Se pesaron 250 mg de muestra seca o Material de Referencia (MR) al que se adicionó 250 mg de enzima (Pancreatin, From Porcine Pancreas P10750 SIGMA) relación muestra – enzima 1:1 (Morand, E. 2003 y Ayala, J. 1999) utilizando para ello una disolución de pancreatina al 1,66% (m/v) en buffer NH4HCO3 0,1M (pH=8), hasta un volumen total de 15 ml. Ultrasonidos: Se pesaron 250 mg de muestra seca o Material de Referencia (MR) al que se adicionó 100 mg de enzima relación muestra – enzima 2,5:1 (Vale, G. 2010) utilizando para ello una disolución de pancreatina al 1,00% (m/v) en buffer pH=8, hasta un volumen total de 10 ml. 3.b.2) Celulasa Baño termostatizado: A la muestra seca o material de referencia (MR) se añadió la enzima correspondiente (Cellulase, From Penicillium funiculosum C0901 SIGMA) en una proporción muestra – enzima 1:2, valor ajustado a partir de (Morand, E. 2003 y Ayala, J. 1999), utilizando para ello una disolución de celulasa al 3,33% (m/v) en buffer CH3COONH4 0,02M (pH=5), hasta un volumen total de 15 ml. Ultrasonidos: A la muestra seca o material de referencia (MR) se agregó enzima en una proporción muestra – enzima 2,5:1 (Vale, G. 2010) utilizando para ello una disolución de celulasa al 1,00% (m/v) en buffer correspondiente, hasta un volumen total de 10 ml. 3.c) Mecanismos de agitación Una vez conseguida la homogeneización completa de muestra y reactivos; se procedió a someter a cada uno de los preparados descriptos anteriormente al mecanismo de agitación correspondiente. El procedimiento de los dos mecanismos de agitación, para cada enzima, se describe a continuación. Baño Termostatizado: La mezcla muestra-enzima colocadas tubos Falcon de 50 ml se incubó en un baño termostatizado con agitación (120 rpm) a 37°C durante 12 h. Finalizada esta etapa se sumergieron en baño con hielo. La separación del extracto y el pellet se obtuvo con una centrífuga refrigerada marca ROLCO modelo CR5900 (3000 rpm - 10 minutos - 6°C). Ultrasonidos: La mezcla en tubos Falcon de 15 ml colocados en gradilla fueron sometidos a agitación por ultrasonidos durante 20 min (lavador ultrasonido TESTLAB modelo TB10TDCD, potencia ultrasónica 400W y frecuencia 40kHz). Concluida esta etapa los tubos se sumergieron en un baño con hielo. La separación del sobrenadante se obtuvo por centrifugación siguiendo las condiciones detalladas anteriormente. Los extractos obtenidos fueron filtrados (filtro 45 μm) y transferidos a matraces de 25 ml para baño termostatizado, y a matraces de 10 ml para ultrasonidos. Se completaron los volúmenes con buffers libres de enzimas correspondientes a cada metodología; estos se guardaron en heladera para su posterior análisis. Ver Figura 1. 4) Análisis de Arsénico Se trabajó con un Espectrofotómetro de Absorción Atómica VARIAN SpectrAA 220 Atomic Absorption Spectrometer; se utilizó un generador de hidruros con separador gas-líquido, acoplado a una bomba peristáltica de cuatro vías, una para el ingreso de la muestra, y tres para los reactivos: solución pre-reductora de Yoduro de potasio (KI), solución reductora de Borohidruro de Sodio (NaBH4) y ácido Clorhídrico (HCl). 3 5) Reactivos En todos los casos se emplearon reactivos de grado analítico. Para la preparación de todas las soluciones reactivas y estándar se utilizó agua bidestilada. Todo el material volumétrico de vidrio y plástico utilizado en la preparación de reactivos y disoluciones y para las digestiones enzimáticas se mantuvo en un baño de HNO3 al 30% durante 24 h, el que fue enjuagado con agua destilada y secado previo a su utilización. Figura 1: Esquema del proceso de digestión enzimática Muestra Enzima- Buffer Enzima - Buffer 10 ml sn Enzima/Buffer 15 ml sn Enzima/Buffer Ultrasonidos Baño Termostatizado Agitación | Incubación Centrifugación Residuo Extracto Filtración Volumen final con Buffer sin enzima Análisis Resultados y Discusión Las concentraciones de arsénico halladas en los extractos enzimáticos fueron comparadas y analizadas mediante ANOVA de un factor (p<0,05), empleando (LSD) de Fisher para la comparación de medias haciendo uso del software estadístico SPSS Statistics 17.0. Tabla 1: Concentraciones de arsénico y porcentaje de recuperación hallados para los diferentes métodos de extracción aplicados en las muestras de alimentos cocidos. Resultados expresados en (μg/g) de m.s. Método de Extracción Mineralización por Calcinación en mufla Baño Termostatizado-Celulasa Baño Termostatizado-Pancreatina Ultrasonidos-Celulasa Ultrasonidos-Pancreatina Total As extractado 0,757 0,788 0,763 0,753 0,641 S.D. C.V. 0,0306 0,0164 0,0391 0,0311 0,0268 4,0% 2,1% 5,1% 4,1% 4,2% Recuperación % ----104% 101% 99% 85% Los resultados muestran que las extracciones efectuadas con baño termostatizado-enzimas presentan un rendimiento similar, en cambio, cuando se emplea el procedimiento de agitación por ultrasonidos, no se observa semejanza en el rendimiento obtenido con ambas enzimas (Tabla 1). La 4 enzima celulasa exhibe un mejor rendimiento extractivo, semejante al alcanzado con el método con baño termostatizado, que no se logra con la enzima pancreatina. Considerando la concentración de arsénico total extraída, se puede deducir que los métodos baño termostatizado-enzimas y ultrasonidoscelulasa generan niveles de extracciones satisfactorios, comparables con los alcanzados con el método de mineralización por calcinación en mufla. Tabla 2: Concentraciones de arsénico y porcentaje de recuperación hallados para los diferentes métodos de extracción aplicados en MR (Brown rice CYTED105PI0272). Resultados expresados en (μg/g) de m.s. Método de Extracción Total As extractado 0,492 Mineralización por Calcinación en mufla 0,492 Baño Termostatizado-Celulasa 0,501 Baño Termostatizado-Pancreatina Ultrasonidos-Celulasa 0,492 Ultrasonidos-Pancreatina 0,471 Valor de referencia: As 0,508+0,032 (como Arsénico Total) S.D. C.V. 0,0156 0,0051 0,0206 0,0013 0,0037 3,2% 1,0% 4,1% 0,3% 0,8% Recuperación % ----100% 102% 100% 96% La Tabla 2 muestra los resultados obtenidos para el material de referencia, observándose que todas las recuperaciones no muestran diferencias significativas a un (p<0,05) para las pruebas T de student y ANOVA de un factor (SPSS Statistics 17.0). Figura 2: Recuperación % para los distintos métodos de extracción en las muestras de alimentos cocidos. 104% 99% 85% 100% % de recuperación 101% 75% 50% 25% 0% B-C B-P U-C U-P Tipo de extracción En la Figura 2 se muestran las recuperaciones alcanzadas por los diferentes tratamientos efectuados, siendo estos de 104% para Baño termostatizado-Celulasa, 101% para Baño termostatizado-Pancreatina, 99% para Ultrasonidos-Celulasa y 85% cuando se empleó la combinación Ultrasonidos-Pancreatina. El resultado de la aplicación del procedimiento estadístico (LSD) de Fisher, para discriminar entre medias muestra que no existen diferencias significativas (p<0,05) entre las tres primeras metodologías, no así la combinación Ultrasonidos-Pancreatina quién evidenció un menor rendimiento. Conclusiones Para ambos procedimiento, la enzima celulasa demostró su efectividad en la extracción de AsT en las muestras de alimentos cocidos consideradas, no siendo así para el caso de la enzima pancreatina. Cabe destacar, que como procedimiento para la extracción de biomoléculas unidas a especies organometálicas la digestión enzimática asistida por ultrasonidos presenta la gran ventaja de ser simple, efectiva y reducir los tiempos de tratamiento y consumo de reactivos siempre que estén garantizadas las condiciones de pH, temperatura, agitación y relación muestra-enzima. Si bien no se ha 5 conseguido, hasta el momento, alcanzar una buena respuesta con la enzima pancreatina, son necesarios nuevos estudios para mejorar su efectividad. Agradecimientos El presente trabajo ha sido desarrollado con fondos de la SICyT de la UNCAus. PI: WINSIP 36/00005 Bibliografía Ayala Javier, Garro Oscar A, Giménez María C. (1999). Extracción enzimática de arsénico en muestras de origen vegetal. Acta Reunión de Comunicaciones Científicas y Técnicas (V): 67-70. Branch S., Ebdon L. and O'Neill P. 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