Tomate de árbol (Solanum betaceum (Cav.) Sendtn.), especie frutal nativa de los Andes americanos. Fotografía: Laura Pulido - Área de Comunicaciones, Gimnasio Campestre. 6 El gen de las sombras El Astrolabio 7 ARTÍCULO oRIGINAL AISLAMIENTO Y CARACTERIZACIÓN MOLECULAR DE LA REGIÓN 3’ DE UN GEN QUE CODIFICA UNA POLIFENOL OXIDASA (PPO) EN TOMATE DE ÁRBOL (Solanum betaceum (Cav.) Sendtn.) Roberto Carlos Lenis Posada 1 y Mauricio Pulido Jiménez 2 1. Estudiante 11º grado - Investigador CEBM, Gimnasio Campestre. 2. Director CEBM, Gimnasio Campestre. Correspondencia para el autor: centrobiomol@campestre.edu.co RESUMEN Recibido: 16 de abril de 2012 Aceptado: 18 de mayo de 2012 SUMMARY Se aisló un fragmento de DNA genómico correspondiente a la región 3’ de un gen que codifica una polifenol oxidasa (PPO) de hojas de tomate de árbol, y se determinó su secuencia de nucleótidos. El contenido de guaninas-citosinas del fragmento es de 45,16%, valor que se encuentra dentro del rango que ha sido determinado para los genes ppo de otras solanáceas. Un fragmento de proteína de 213 aminoácidos se dedujo a partir de la secuencia nucleotídica determinada. La secuencia caracterizada muestra similitudes superiores a 78% y 72% a nivel de nucleótidos y aminoácidos respectivamente con genes y proteínas PPO de berenjena, papa, tomate, lulo y tabaco. A fragment of genome DNA corresponding to the 3’ gene region which encodes a polyphenol oxidase (PPO) from the leaves of tree tomato was isolated and their nucleotide sequence was determined. The guanine-citosine fragment content is 45.16%, a value found within the rank determined for other solanaceae ppo genes. A protein fragment of 213 amino acids was deduced from the nucleotide sequence. The characterized sequence shows similarities higher than to 78% and 72% at nucleotide and amino acid levels respectively, with genes and PPO proteins from eggplant, potato, tomato, lulo and tobacco. Palabras clave: pardeamiento enzimático, polifenol oxidasa, Solanum betaceum, silenciamiento de genes, RNA antisentido. Key words: enzymatic browning, polyphenol oxidase, Solanum betaceum, gene silencing, antisense RNA. Investigación y Ciencia del Gimnasio Campestre 8 INTRODUCCIÓN El tomate de árbol (Solanum betaceum (Cav.) Sendtn.), perteneciente a la familia Solanaceae al igual que la papa, el tomate, el tabaco y la uchuva, es una especie frutal originaria de los Andes de Colombia, Perú y Ecuador (Heiser, 1985), que comenzó a ser considerada como promisoria para la exportación a los mercados de Europa y Estados Unidos a partir de la década de los 70. Sin embargo, en Colombia la productividad del cultivo alcanza niveles que están por debajo del rendimiento potencial, debido a la baja oferta tecnológica disponible para la especie y a que los esfuerzos de investigación y fomento se han canalizado hacia cultivos tradicionales relacionados con la seguridad alimentaria del país, la industria y la generación de divisas. En el 2010 la superficie cultivada con tomate de árbol en Colombia fue de 7.504 hectáreas, con una producción de 122.519 toneladas y un rendimiento de 16,3 toneladas/hectárea. Actualmente el área cultivada y la producción crecen a una tasa promedio anual de 2,9% y 3% respectivamente. Excluyendo plátano y banano, en el 2010 el tomate de árbol se constituyó en el quinto producto frutícola colombiano de exportación (297 toneladas) después de la uchuva (4.254 ton.), el banano bocadillo (3.855 ton.), la granadilla (706 ton.) y la pitahaya (326 ton.) (Agronet, 2012). A la baja tasa de productividad del cultivo se suma que la comercialización de aproximadamente el 50% de la producción nacional se ve considerablemente afectada por los daños ocasionados por un fenómeno cuyas características son muy similares a las del pardeamiento El Astrolabio enzimático. Este evento bioquímico, también conocido como oxidación biológica, es el principal causante del deterioro de características como color, sabor y aroma en la gran mayoría de frutas y verduras de importancia agrícola y económica, hecho que limita de manera significativa la posibilidad de comercialización del producto, ya sea para el consumo en fresco o para el procesamiento industrial (McEvily, Iyengar, & Otwell, 1992). El fenómeno es provocado por la actividad de una familia de enzimas denominadas polifenol oxidasas (PPO), que están confinadas dentro de los plastidios de las células vegetales y se liberan al citoplasma una vez se ha producido daño en la estructura celular de los tejidos como consecuencia del impacto mecánico, ocasionado durante la recolección de la cosecha y la manipulación poscosecha de los frutos (Vaughn & Duke, 1981; Vaughn, Lax, & Duke, 1988). El método más utilizado para controlar el pardeamiento enzimático es la adición de agentes químicos antioxidantes tales como los sulfitos (Martínez & Whitaker, 1995). Sin embargo, recientes estudios efectuados por la Administración de Drogas y Alimentos de los Estados Unidos han demostrado que dichas sustancias representan un riesgo considerable para la salud humana (Timbo, Koehler, Wolyniak, & Klontz, 2004). Por tal razón, la búsqueda de alternativas de naturaleza biotecnológica a este problema ha cobrado gran importancia a nivel mundial. Para implementar una de tales opciones conocida como silenciamiento de genes mediante RNA antisentido, se requiere aislar un gen o parte de un gen ppo. Puesto que en las especies vegetales económicamente importantes, en las 9 que se observa este hecho, se han encontrado genes que codifican proteínas PPO (Newman, Eannetta, Yu, Prince, de Vicente, Tanksley, & Steffens, 1993; Thygesen, Dry, & Robinson, 1995; Goldman, Seurinck, Marins, Goldman, & Mariani, 1998), se presume que la alteración anteriormente referida en tomate de árbol es pardeamiento enzimático. Sin embargo, hasta hace muy poco tiempo no se tenía ninguna evidencia de la presencia de este tipo de genes en la especie. Ortegón y Pulido (2011) identificaron el extremo 5’ de uno de tales genes. En este trabajo se reporta el aislamiento y caracterización molecular del extremo 3’ del gen anteriormente encontrado. MATERIALES Y MÉTODOS Material vegetal: El tejido empleado en el estudio se obtuvo de plantas de tomate de árbol (Solanum betaceum (Cav.) Sendtn.) y papa (Solanum tuberosum L., var. Millenia). Semillas de tomate de árbol provenientes de los bancos de germoplasma de CORPOICA se sembraron en macetas con turba como sustrato; tanto la germinación de las semillas como el desarrollo de las plántulas se dieron bajo condiciones de invernadero. El material vegetal de papa se colectó de plantas pertenecientes a la Colección Central Colombiana encontradas en el campo. Cultivo de Escherichia coli cepa DH5α: La bacteria se cultivó en medio LuriaBertani (LB) líquido a 37 oC y agitación (250 r.p.m.) durante 8 horas. Extracción y purificación de DNA genómico de tomate de árbol, papa y E. coli: El DNA genómico de tomate de árbol y papa se aisló a partir de hojas jóvenes, empleando el protocolo reportado por Doyle y Doyle (1990). El DNA genómico de E. coli se extrajo utilizando el procedimiento reportado por Chen y Kuo (1993). Evaluación de la integridad y cuantificación de los DNAs genómicos: Alícuotas de los DNAs y del marcador de masa molecular High DNA Mass Ladder (Invitrogen, USA) fueron sometidas a electroforesis en gel de agarosa 1%. El gel se fotografió y la imagen se analizó con el programa GeneTools (Syngene, USA). Diseño de los iniciadores para PCR: Las secuencias nucleotídicas de los genes ppo, previamente reportadas en tomate, papa, tabaco, batata, durazno, manzana, pera y haba, se alinearon utilizando el programa Clustal X versión 2.0.9 (Larkin, Blackshields, Brown, Chenna, McGettigan, McWilliam, Valentin, Wallace, Wilm, López, Thompson, Gibson, & Higgins, 2007), con el fin de identificar la región hacia el extremo 3’ que mostrara el mayor grado de conservación posible. Una vez determinada dicha región, se utilizaron el gen ppo-F de tomate (como gen de referencia) y el programa Oligo versión 6.71 (Rychlik & Rhoads, 1989; Rychlik, Spencer, & Rhoads, 1990) (Molecular Biology Insights, Inc., USA) para diseñar los iniciadores que permitieran amplificar un fragmento de aproximadamente 950 pares de bases (pb.) a partir de DNA genómico de tomate de árbol. La especificidad del posicionamiento de los iniciadores sobre la región seleccionada se verificó analizándolos con el programa BLAST (Altschul, Gish, Miller, Myers, & Lipman, 1990). Amplificación por PCR de un fragmento del gen ppo de tomate de árbol: Para determinar las condiciones óptimas que Investigación y Ciencia del Gimnasio Campestre 10 permitieran la amplificación de un fragmento ubicado hacia el extremo 3’ del gen ppo de tomate de árbol, se ensayaron diversas concentraciones de iniciadores, cloruro de magnesio (MgCl2) y DNA. De otro lado, se evaluaron programas de amplificación con diferentes temperaturas de anillaje y períodos de extensión. Una vez estandarizadas las condiciones de amplificación, el producto de PCR se sometió a electroforesis en gel de agarosa 1% para verificar su tamaño y la especificidad de la amplificación. Purificación y cuantificación del fragmento amplificado: El fragmento amplificado por PCR fue purificado empleando el sistema Wizard SV Gel and PCR CleanUp System (Promega, USA). La concentración del mismo se determinó utilizando el método descrito anteriormente. Secuenciación del fragmento aislado: La secuencia de nucleótidos del fragmento aislado se obtuvo empleando el método de terminación de cadena con dideoxinucleótidos (Sanger, Nicklen, & Coulson, 1977) y los mismos iniciadores diseñados para producirlo (InfPPO-F y PPO-Rv). El fragmento se secuenció dos veces por cada extremo con el fin de confirmar las secuencias logradas. Secuencia consenso del fragmento aislado: Las secuencias correspondientes tanto a la cadena positiva como a la negativa del fragmento aislado fueron alineadas empleando el programa CodonCode Aligner versión 2.0.4 (CodonCode Corporation, USA), para generar una secuencia consenso definitiva. Identificación de marcos de lectura abiertos en el fragmento secuenciado: Para identificar los posibles marcos de El Astrolabio lectura abiertos en el fragmento aislado se utilizó el programa ORF Finder (NCBI, USA). Análisis de similitud con genes y proteínas PPO previamente reportadas: La secuencia de nucleótidos consenso y la secuencia de aminoácidos, derivada de la primera, fueron comparadas con las bases de datos empleando el programa BLAST, con el fin de determinar el grado de similitud de estas respecto a los genes y proteínas PPO, previamente reportados en otras especies. RESULTADOS Y DISCUSIÓN Iniciadores para PCR Los trabajos sobre la estructura de los genes ppo en papa (Hunt, Eannetta, Yu, Newman, & Steffens, 1993) y tomate (Newman et al., 1993) han señalado que el tamaño de estos oscila entre 1300 y 1900 pb. y que las secuencias que flanquean los extremos 5’ y 3’ muestran un alto grado de divergencia, incluso entre genes pertenecientes a la misma especie. Considerando la variabilidad existente en los extremos de la región que se pretendía amplificar y buscando iniciadores con características que permitieran un posicionamiento altamente específico en los sitios previamente determinados, se diseñaron oligonucleótidos con degeneración en varias posiciones. Para amplificar por PCR el fragmento de DNA, localizado hacia el extremo 3’ del gen ppo de tomate de árbol, se diseñaron los iniciadores InfPPO-F (directo) (5’ CAAWTGRTNACTAAKGCTCC 3’) y PPO-Rv (reverso) (5’ TTAACAATCCKCAAGCTTGAT 3’). Las características de los iniciadores diseñados se muestran en la tabla 1. 11 El análisis BLAST hecho para los dos iniciadores diseñados permitió determinar las posiciones en las que estos se ubican en los genes ppo de otras especies y el tamaño del producto de PCR que permiten obtener (tabla 2). Los resultados del anterior análisis demuestran que los sitios en los cuales se posicionan los dos iniciadores varían incluso en los genes ppo de la misma especie; ello implica que la longitud de los fragmentos que se pueden amplificar con estos iniciadores también presenta diferencias. Aunque el tamaño de los genes ppo oscila entre 1300 y 1900 pb. y muestran un nivel considerable de divergencia en la secuencia de la región 3’, el análisis muestra que también presentan variaciones en otras regiones. De otro Iniciador InfPPO-F PPO-Rv Longitud (pb.) 20 21 lado, el hecho de que los iniciadores diseñados para este estudio encuentren en el DNA de tomate, papa y tabaco secuencias pertenecientes a genes ppo, sobre las que puedan posicionarse de manera muy específica, demuestra que el método utilizado para el diseño de estos es muy efectivo. De todo lo anterior, se deriva que el uso de esta pareja de iniciadores sobre los genomas de tomate de árbol y otras especies vegetales garantiza la amplificación exclusiva de fragmentos correspondientes a genes ppo. Amplificación del fragmento correspondiente al gen ppo de tomate de árbol Los análisis de PCR virtual, realizados con el programa Oligo 6.71, permitieron establecer que el tamaño del producto Posición degenerada nucleótidos 4, 7, 9 y 15 nucleótido 11 % G-C 36,4 38,0 Tm (oC) 63,5 67,0 Tabla 1. Características de los iniciadores diseñados para amplificar un fragmento ubicado hacia el extremo 3’ del gen ppo de tomate de árbol. Especie Gen Tamaño gen (pb.) Lugar posicionamiento iniciadores Tamaño producto PCR (pb.) Tomate ppo-A 1893 881 - 1762 901 Tomate ppo-B 1791 884 - 1771 908 Tomate ppo-C 1881 869 - 1750 901 Tomate ppo-D 1776 869 - 1756 908 Tomate ppo-E 1764 878 - 1744 887 Tomate ppo-F 1758 878 - 1738 881 Papa ppo-POT 32 1794 887 - 1774 908 Papa ppo-POT 33 1800 893 - 1780 908 Papa ppo-A 1752 866 - 1732 887 Papa ppo-B 1767 881 - 1747 887 Tabaco ppo 1781 886 - 1761 896 Tabla 2. Sitios de posicionamiento de los iniciadores diseñados para este estudio sobre genes ppo de diferentes especies y tamaño de los productos de PCR que permiten generar. Investigación y Ciencia del Gimnasio Campestre 12 de amplificación debía estar entre 880 y 910 pb. Los iniciadores InfPPO-F y PPORv permitieron amplificar un fragmento de aproximadamente 950 pb. (figura 1) a partir de los genomas de tomate de árbol y papa. Después de evaluar diferentes concentraciones de magnesio, con el fin de optimizar la amplificación del fragmento, se determinó que el valor óptimo era 4,5 mM. Los ensayos de estandarización de la temperatura de anillaje cubrieron el rango entre 56 y 59 oC. Los mejores resultados se obtuvieron utilizando 57 oC. Las condiciones de reacción óptimas bajo las cuales se logró amplificar el fragmento se presentan en la tabla 3. El programa de ciclaje utilizado se presenta en la tabla 4. Reactivo H2O Buffer PCR MgCl2 dNTP’s Iniciador SupPPO-F Iniciador SupPPO-L DNA (dil 1:10) Taq Polimerasa Volumen final Concentración inicial 5X 25 mM 2.5 mM 10 μM 10 μM 5 U/μL Secuencia del fragmento de gen ppo de tomate de árbol. El método de terminación de cadena con dideoxinucleótidos permitió determinar una secuencia de 941 nucleótidos (figura 2). La diferencia observada entre el tamaño del fragmento amplificado por PCR (950 pb. aprox.) y el resultado arrojado por el procedimiento de secuenciación (941 pb.) obedece a que la técnica no logra resolver eficientemente los nucleótidos de los extremos de las cadenas de DNA que se producen durante la reacción de secuencia. El fragmento de 941 pares de bases está constituido por 234 adeninas (24,86%), Concentración final 1X 4.5 mM 0.2 mM 0.25 μM 0.25 μM - Volumen/Reacción 9.05 μL 5.00 μL 4.50 μL 2.00 μL 0.62 μL 0.62 μL 3.00 μL 0.20 μL 25.0 μL Tabla 3. Condiciones de reacción utilizadas en la amplificación por PCR del fragmento de 950 pb. del gen ppo a partir de DNA genómico de tomate de árbol. 12 3 45 Etapa 950 pb. 1000 pb. Figura 1. Productos de amplificación por PCR de 950 pb. correspondientes a genes ppo. Línea 1: blanco; Línea 2: genoma de E. coli (control negativo); Línea 3: genoma de papa; Línea 4: genoma de tomate de árbol; Línea 5: marcador de peso molecular. El Astrolabio Denaturación Inicial Amplificación Denaturación Anillaje Extensión Extensión final Temperatura / Tiempo o 94 C X 4 min. 94 oC X 1 min. 57 oC X 45 seg. 72 oC X 75 seg. 72 oC X 7 min. Número de ciclos 1 45 1 Tabla 4. Programa de ciclaje utilizado en la amplificación por PCR del fragmento de 950 pb. del gen ppo a partir de DNA genómico de tomate de árbol. 13 GCGAGACTTCACCACCATTCTTTGGTACCAGAGTCACCGCAATAGTGTTTTCATCTTCCAGGCCAATGTCCTCCAACAGTTCAGTTATCGCCAGCTGCAAAGTAGCACTCGCAACATGATCAGAATCATTAGCTTGGTGAACATGTGGCAAGCTAGTATAGCTCCCCGCGAACTCTATCATGTCAAGCTCATCCGCTTTCACGTTCTTGTCCACGTTCAGGAACACATCGAACCTTACATATTCTCTATTATCATATTTTATGTAGTTGAATGTTAGTAACTCCTCTTGTTCATTCTTCTCCTGTTGAGTCCTCGAGGAGGCCGGCCTATTGATGGAAAACGAAATGGCTTTGTCCAGCTTAAAGATTGGGAATACCTTGCTCGCTTGCAGAAGTGAACCTGTATTCACTTTCCCATCTGCTTTCTTTTTGTTTGGCTTGAAGTTACACCATGGGGTGGGCATTGGTGCGTAATCGTACCCCATCTTCTTCGTGTCCAAACAGTCTCGTACTTTCACGAGGTAAGGATTTTTGTTTTCATCGTGGAAAAAAAATTTGGAGACCAAACAGTCTTTATGTGAAAGATTCCTTCTTTTCCCTCCGATTTGTTTCAATTCATTCGAGAATAACGCGGGGGCCATAAAAAACCAGCTGCCTCATGACTGACTCTGAGGCGCGAAAAACGTGANGATCCAACGGGATTCCATACCCTGAAACTCCATGCTGTAAACTACGTGTGCTGTATGTTGGGCAACTTAGTTGTTCAATGCCACACCTCCCGCGAGTAACCACACCATCTGTAAAATACAGACGTAACGTTGAAACTCACAGAGCTGACGGGTTGCGTCTACCCTCGTAACAACCTGACACTTTCTTTCCAAGCATGCGCAGATCCTTACAAGGCCTTGTATGCCTATGCCTGTGTCCAACTAGGGCTTTTNC Figura 2. Secuencia de nucleótidos correspondiente al fragmento del gen ppo identificado en tomate de árbol (941 pb). Especie Tom. Árbol Tomate Tomate Tomate Tomate Tomate Tomate Papa Papa Papa Papa Papa Papa Tabaco Batata Batata Durazno Pera Haba Manzana Manzana Gen ppo ppo A ppo B ppo C ppo D ppo E ppo F pot 32 pot 33 pSP32 ppo A ppo B pSRP33 ppo ppo ppo -1 ppo ppo ppo -1 ppo -1 ppo -2 Tamaño gen (pb.) 941 1893 1791 1881 1776 1764 1758 1794 1800 1325 1752 1767 1315 1781 1767 1767 1794 1359 1821 1782 1782 Adenina 234 530 519 529 513 498 491 517 537 375 501 507 391 491 420 419 485 350 602 463 462 Citosina 237 379 370 365 366 379 365 366 376 251 367 367 251 409 523 525 512 351 353 462 472 Guanina 188 420 399 437 409 374 382 401 377 311 378 377 297 389 475 478 437 367 338 475 459 Timina 280 564 503 550 488 513 520 510 510 388 506 516 376 492 349 345 360 291 528 382 389 % G+C 45,16 42,20 42,94 42,63 43,64 42,69 42,49 42,75 41,83 42,41 42,52 42,10 41,67 44,80 56,48 56,76 52,90 52,83 37,94 52,58 52,24 Tabla 5. Contenido de nucleótidos y porcentaje de guaninas y citosinas (%GC) en genes ppo de especies económicamente importantes pertenecientes a las familias Solanaceae, Rosaceae y Fabaceae. 237 citosinas (25,18%), 188 guaninas (19,97%) y 280 timinas (29,75%). El contenido de guaninas-citosinas (%GC) de este fragmento es 45,16%, valor que se encuentra dentro del rango que ha sido determinado previamente para los genes de solanáceas como papa y tomate, que oscila entre 40 y 45% (Rensink, Lee, Liu, Iobst, Ouyang, & Buell, 2005). El %GC específico para genes que codifican PPO (tabla 5) en tomate y papa oscila entre 41,67% y 43,64%; en tabaco es 44,80%, Investigación y Ciencia del Gimnasio Campestre 14 levemente superior al mostrado en las dos especies anteriores, y para el caso de manzana, pera, durazno y batata -las tres primeras pertenecientes a la familia Rosaceae y la última a la familia Convolvulaceae- los valores se encuentran entre 52,24 y 56,48% respectivamente. El valor más bajo encontrado en la comparación corresponde a haba (37,94%), especie perteneciente a la familia Fabaceae. La comparación de la secuencia de 941 pb. encontrada en tomate de árbol con los genes ppo de otras especies reveló valores de identidad elevados con los genes de especies pertenecientes a la familia Solanaceae (tabla 6). El porcentaje de identidad que arrojó el análisis BLAST, definido como el grado de invariabilidad que presentan dos secuencias -de nucleótidos o proteínas- al ser comparadas, puede ser asumido como una medida de la similitud existente entre las mismas (Altschul et al., 1990). Descripción del gen ppo-3 berenjena (Solanum melongena) ppo-2 berenjena (Solanum melongena) ppo-1 berenjena (Solanum melongena) ppo alelo pot33 papa (Solanum tuberosum) ppo alelo pot32 papa (Solanum tuberosum) ppo-B tomate (Solanum lycopersicum) ppo-D tomate (Solanum lycopersicum) ppo alelo pot72 papa (Solanum tuberosum) ppo-C tomate (Solanum lycopersicum) ppo-A tomate (Solanum lycopersicum) ppo tabaco (Nicotiana tabacum) ppo-E tomate (Solanum lycopersicum) ppo-B papa (Solanum tuberosum) ppo-6 berenjena (Solanum melongena) ppo-5 berenjena (Solanum melongena) ppo-A papa (Solanum tuberosum) ppo-F tomate (Solanum lycopersicum) ppo lulo (Solanum quitoense) ppo caqui (Diospyros kaki) El grado de similitud existente entre la secuencia encontrada en tomate de árbol y los genes ppo-1, ppo-2 y ppo-3 de berenjena y los alelos pot32 y pot33 de papa (tabla 6) osciló entre 81 y 88% mientras que con los genes ppo-A, ppo-B, ppo-C y ppo-D de tomate y el alelo pot72 de papa fue de 80%. Con respecto a los genes ppo de tabaco, ppo-E y ppo-F de tomate, ppo-A y ppo-B de papa, ppo-5 y ppo-6 de berenjena y los de lulo y caqui (Diospyros kaki L.), especie frutal de la familia Ebenaceae, la similitud estuvo en el rango entre 76 y 79%. En la tabla 6 se observa que los valores E arrojados por el análisis BLAST se presentan en orden numérico ascendente mientras que los porcentajes de identidad se muestran en orden descendente. Ello responde a que el valor E representa el número de alineamientos que se puede Valor E 0.0 0.0 0.0 2e-175 1e-159 5e-158 8e-156 6e-151 1e-147 1e-147 3e-141 2e-138 2e-138 3e-135 5e-133 2e-130 1e-120 2e-118 3e-91 % Identidad 88% 84% 84% 83% 81% 80% 80% 80% 80% 80% 79% 78% 78% 78% 78% 77% 76% 76% 76% Tabla 6. Valores de identidad entre la secuencia de 941 pb. identificada en tomate de árbol y genes ppo reportados en otras especies. El Astrolabio 15 esperar que ocurran por azar entre la secuencia en estudio y cualquiera otra de las existentes en la base de datos. Por lo tanto, entre más cercano a cero sea el valor E, más significativo es el alineamiento entre la secuencia que se analiza y la secuencia relacionada (Altschul, et al., 1990). Los valores E más bajos que arrojó la comparación de la secuencia estudiada con la base de datos de genes correspondieron a los alineamientos con los genes ppo reportados en berenjena, papa y tomate, especies emparentadas con tomate de árbol. Sin embargo, llama la atención que se presente un valor E bastante bajo respecto al caqui, especie perteneciente a una familia que hace parte del orden de las Ericales, filogenéticamente distante de las solanáceas. El programa ORF Finder permitió determinar que dentro de la secuencia nucleotídica identificada hay un marco de lectura abierto de 639 nucleótidos en la cadena positiva, que se inicia en la posición 2 y se extiende hasta la posición 640. La proteína deducida tiene 213 aminoácidos (figura 3). El análisis BLAST para la secuencia de aminoácidos deducida del fragmento de 941 pb. reveló valores de similitud que MAPALFSNELKQIGGKRRNLSHKDCLVSKFFFHDENKNPYLVKVRDCLDTKKMGYDYAPMPTPWCNFKPNKKKADGKVNTGSLLQASKVFPIFKLDKAISFSINRPASSRTQQEKNEQEELLTFNYIKYDNREYVRFDVFLNVDKNVKADELDMIEFAGSYTSLPHVHQANDSDHVASATLQLAITELLEDIGLEDENTIAVTLVPKNGGEVS Figura 3. Secuencia de aminoácidos de la proteína deducida a partir del fragmento de 941 pb. identificado en tomate de árbol. Descripción de la proteína prePPO-3 berenjena (Solanum melongena) prePPO-1 berenjena (Solanum melongena) prePPO-2 berenjena (Solanum melongena) PPO-B tomate (Solanum lycopersicum) PPO POT33 papa (Solanum tuberosum) PPO POT72 papa (Solanum tuberosum) PPO-E tomate (Solanum lycopersicum) PPO tabaco (Nicotiana tabacum) PPO-P2 tomate (Solanum lycopersicum) prePPO-5 berenjena (Solanum melongena) PPO POT32 papa (Solanum tuberosum) PPO-D tomate (Solanum lycopersicum) prePPO-B papa (Solanum tuberosum) prePPO-6 berenjena (Solanum melongena) PPO-F tomate (Solanum lycopersicum) PPO-C tomate (Solanum lycopersicum) PPO-A tomate (Solanum lycopersicum) prePPO-A papa (Solanum tuberosum) PPO lulo (Solanum quitoense) PPO caqui (Diospyros kaki) Valor E 1e-118 2e-109 8e-108 2e-106 4e-106 4e-106 2e-103 1e-102 5e-102 2e-101 5e-101 8e-101 1e-99 1e-99 5e-99 1e-98 2e-98 2e-96 3e-89 9e-73 % Identidad 84% 77% 79% 76% 77% 74% 76% 75% 75% 75% 73% 72% 74% 74% 73% 74% 74% 72% 69% 72% Tabla 7. Valores de similitud existentes entre la proteína hipotética derivada del fragmento de 941 pb. identificado en tomate de árbol y polifenol oxidasas reportadas en otras especies. Investigación y Ciencia del Gimnasio Campestre 16 oscilan entre 72 y 84% con la gran mayoría de proteínas PPO de berenjena, tomate, papa y tabaco (tabla 7). Tal como en el análisis de la secuencia de nucleótidos, el fragmento de proteína hipotética de tomate de árbol muestra los niveles de similitud más bajos respecto a las PPO de lulo y caqui. La semejanza entre el fragmento de proteína deducido de la secuencia encontrada en tomate de árbol y la PPO de caqui, una especie de la familia Ebenaceae que a su vez pertenece al orden Ericales, puede ser el reflejo de la relativa proximidad filogenética de los órdenes Ericales y Solanales. Contrario a lo observado en la región N-terminal analizada por Ortegón y Pulido (2011), esta región de la proteína no presenta niveles significativos de similitud con PPOs de especies pertenecientes a las familias Rosaceae, Fabaceae y Salicaceae. Aunque especies como tomate de árbol, papa, berenjena, tomate común y lulo pertenecen al género Solanum, y el tabaco al género Nicotiana, ambos de la familia Solanaceae, la PPO de tomate de árbol es levemente más parecida a la PPO de tabaco que a algunas de las presentes en otros miembros del género Solanum. CONCLUSIONES Aunque una de las características que distingue a todos los genes ppo conocidos es la divergencia en la secuencia de su extremo 3’, los iniciadores utilizados en este estudio permitieron evidenciar que existen variaciones a lo largo de toda la secuencia de los genes ppo encontrados en las especies de la familia Solanaceae. Los análisis BLAST demuestran que el diseño de los iniciadores les confiere la El Astrolabio capacidad de amplificar exclusivamente genes ppo, hecho que abre la posibilidad de que sean utilizados para estudios similares en otras especies. La elevada similitud del fragmento identificado, tanto a nivel de nucleótidos como de aminoácidos, con los genes y proteínas PPO de berenjena, tomate, papa, lulo y tabaco, junto con un %GC situado dentro del rango esperado para los genes de solanáceas, se constituyen en evidencia de que el fragmento de DNA identificado corresponde a un gen ppo. De otro lado, los porcentajes de similitud entre la secuencia encontrada en tomate de árbol y las secuencias homólogas en otras especies (a nivel de nucleótidos o de aminoácidos) reflejan de manera clara la distancia filogenética existente entre los individuos comparados. El análisis conjunto de las regiones 5’ y 3’ encontradas en el genoma de la especie estudiada permitirá hacer algunas predicciones sobre las características estructurales y funcionales de la proteína derivada del fragmento de DNA caracterizado y sobre los patrones de expresión de este candidato a gen ppo. Si bien el examen de un fragmento de DNA en términos de su secuencia de nucleótidos, el nivel de homología respecto a otros genes y la existencia de secuencias que codifiquen algún tipo de proteína pueden aportar información valiosa, la prueba definitiva de la existencia de proteínas PPO en tomate de árbol consiste en expresar el gen aislado, purificar la proteína obtenida y evaluar su actividad sobre sustratos específicos (Cary, Lax, & Flurkey, 1992; Eicken, Zippel, Buldt-Karentzopoulos, & Krebs, 1998), con el fin de determinar su capacidad para catalizar las reacciones de oxidación de orto-difenoles a ortodiquinonas. 17 LISTA DE REFERENCIAS Agronet. (2012, Enero 16). Área cosechada, producción y rendimiento de tomate de árbol, 2010 [Tabla]. Recuperado del sitio web de Agronet: http:// www.agronet.gov.co/www/htm3b/ReportesAjax/ VerReporte.aspx Altschul, S.F., Gish, W., Miller, W., Myers, E.W., & Lipman, D.J. (1990). Basic local alignment search tool. Journal of Molecular Biology, 215, 403-410. Cary, J.W., Lax, A.R., & Flurkey, W.H. (1992). Cloning and characterization of cDNAs coding for Vicia faba polyphenol oxidase. Plant Molecular Biology, 20, 245-253. Chen, W., & Kuo, T. (1993). A simple and rapid method for the preparation of gram-negative bacterial DNA. Nucleic Acids Research, 21, 2260. Doyle, M., & Doyle, A. (1990). Isolation of DNA from small amounts of plant tissues. BRL Focus 12, 13-15. Eicken, C., Zippel, F., Buldt-Karentzopoulos, K., & Krebs, B. (1998). Biochemical and spectroscopic characterization of catechol oxidase from sweet potatoes (Ipomoea batatas) containing a type-3 dicopper center. FEBS Letters, 436, 293-299. Goldman, M.H., Seurinck, J., Marins, M., Goldman, G.H., & Mariani, C. (1998). A tobacco flower-specific gene encodes a polyphenol oxidase. Plant Molecular Biology, 36, 479-485. Heiser, C.B. (1985). Ethnobotany of the Naranjilla (Solanum quitoense) and its relatives. Economical Botany, 39, 4-11. Hunt, M.D., Eannetta, N.T., Yu, H., Newman, S.M., & Steffens, J.C. (1993). cDNA cloning and expression of potato polyphenol oxidase. Plant Molecular Biology, 21, 59-68. Larkin, M.A., Blackshields, G., Brown, N.P., Chenna, R., McGettigan, P.A., McWilliam, H., Valentin, F., Wallace, I.M., Wilm, A., López, R., Thompson, J.D., Gibson, T.J., & Higgins, D.G. (2007). Clustal W and Clustal X version 2.0. Bioinformatics, 23, 2947-2948. Martínez, M.V., & Whitaker, J.R. (1995). The biochemistry and control of enzymatic browning. Trends in Food Science and Technology, 6, 195-200. Newman, S.M., Eannetta, N.T., Yu, H., Prince, J.P., de Vicente, M.C., Tanksley, S.D., & Steffens, J.C. (1993). Organisation of the tomato polyphenol oxidase gene family. Plant Molecular Biology, 21, 1035-1051. Ortegón, S., & Pulido, M. (2011). Aislamiento y secuenciación de la región 5’ de un gen que codifica una polifenol oxidasa (PPO) en tomate de árbol (Solanum betaceum (Cav.) Sendtn). El Astrolabio, 10(1), 29-40. Rensink, W.A., Lee, Y., Liu, J., Iobst, S., Ouyang, S., & Buell, C.R. (2005). Comparative analyses of six solanaceous transcriptomes reveal a high degree of sequence conservation and species-specific transcripts. BMC Genomics, 6, 124. Recuperado de http://www.biomedcentral.com/1471-2164/6/124 Rychlik, W., & Rhoads, R.E. (1989). A computer program for choosing optimal oligonucleotides for filter hybridization, sequencing and in vitro amplification of DNA. Nucleic Acids Research, 17, 8543 – 8551. Rychlik, W., Spencer, W.J., & Rhoads, R.E. (1990). Optimization of the annealing temperature for DNA amplification in vitro. Nucleic Acids Research, 18, 6409 – 6412. Sanger, F., Nicklen, S., & Coulson, A.R. (1977). DNA sequencing with chain-terminating inhibitors. Proceedings of the National Academy of Sciences of the United States of America, 74, 5463-5467. Timbo, B., Koehler, K.M., Wolyniak, C., & Klontz, K.C. (2004). Sulfites: a food and drug administration review of recalls and reported adverse events. Journal of Food Protection, 67, 1806-1811. Thygesen, P.W., Dry, I.A., & Robinson, S.P. (1995). Polyphenol Oxidase in potato. A multigene family that exhibits differential expression patterns. Plant Physiology, 109, 525-531. Vaughn, K.C., & Duke, S.O. (1981). Tentoxin-induced loss of plastidic polyphenol oxidase. Physiologia Plantarum, 53, 421-428. Vaughn, K.C., Lax, A.R., & Duke, S.O. (1988). Polyphenol oxidase: The chloroplast oxidase with no established function. Physiologia Plantarum, 72, 659-665. McEvily, A.J., Iyengar, R., & Otwell, W.S. (1992). Inhibition of enzymatic browning in foods and beverages. Critical Reviews in Food Science and Nutrition, 32, 253-273. Investigación y Ciencia del Gimnasio Campestre