BIOFERTILIZACION UNA ALTERNATIVA AL USO

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Recibido 22/08/2010, Aceptado 03/09/2010, Disponible online 22/12/2011
BIOFERTILIZACION, UNA ALTERNATIVA AL USO DE
FERTILIZANTES QUIMICOS EN CAÑA DE AZUCAR (Saccharum
officinarum)
Liliana Serna-Cock 1*, Camilo Arias-García2, Leidy Johana Valencia-Hernandez3
1, 2. 3
Facultad de Ingeniería y Administración, Universidad Nacional de Colombia Sede
Palmira, Carrera 32 vía Candelaria, Palmira, Valle. Tel: (57-2) 2717000, Fax (57-2),
27170008 *autor correspondiente (lsernac@palmira.unal.edu.co, lsernac@)gmail.com)
RESUMEN
La fertilización de caña de azúcar consiste en aportes de nutrientes de tipo Nitrógeno,
Fósforo y Potasio (NPK), siendo la dosis actual recomendada 250-75-190 Kg/ha,
respectivamente para cada componente. La utilización de éstos compuestos químicos
para la fertilización de los cultivos, conlleva a la remoción de nutrientes y micronutrientes
secundarios presentes en el suelo, los cuales se extraen cosecha tras cosecha sin
retornar en forma orgánica. Debido a este problema es necesaria la aplicación de
agricultura sostenible a través de microorganismos benéficos o biofertilizantes, los cuales
abastecen las deficiencias en nutrientes, aumentan la productividad del cultivo y la
eficiencia en la asimilación de nutrientes por parte de la planta. Sin embargo, en caña de
azúcar se reporta muy poca investigación en biofertilizantes, a pesar de que el cultivo se
produce en más de 90 países en el mundo. Por lo anterior, en este trabajo se evaluó el
efecto de la aplicación de microorganismos fertilizantes, Azospirillum brasilense,
Azotobacter chroccocum y Trichoderma lignorum sobre el crecimiento de plantas de caña
de azúcar variedad CC 934418. El crecimiento de las plantas se midió en términos de
diámetro del tallo, longitud de tallo y raíces, y número de hojas y raíces a los 15, 30 y 45
días de la siembra. El crecimiento de las plantas mostró diferencias estadísticamente
significativas entre los tratamientos. Los microorganismos fertilizantes mostraron efecto
positivo sobre el crecimiento de plantas de caña de azúcar, siendo Azospirillum brasilense
y Trichoderma lignorum los microorganismos que ejercieron mayor efecto sobre el
diámetro del tallo y los sistemas radical y foliar de la planta. En la literatura no se reporta a
Trichoderma lignorum como promotor de crecimiento vegetal; sin embargo, los resultados
de esta investigación demostraron además que este microorganismo puede utilizarse
como promotor del crecimiento vegetal de caña de azúcar.
Palabras clave: Biofertilización, Caña de azúcar, Azospirillum brasilense, Azotobacter
chroccocum, Trichoderma lignorum
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 69
ABSTRACT
The fertilization of sugar cane consists in contributions of nutrients such as Nitrogen,
Phosphorous, and Potassium (NPK), being the current recommended dose 250-75-190
Kg/ha, respectively for each component. The utilization of these elements for crops
fertilization, leads to the removal of secondary nutrients and micronutrientes present in the
soil, which are extracted harvest after harvest without returning in organic form. Due to this
problem the application of sustainable agriculture through beneficial microorganisms or the
biofertilizers is necessary, which supply the deficiencies in nutrients, increase crop’s
productivity and the efficiency of the assimilation of nutrients by the plants. However, very
little research on biofertilizers is reported on sugar cane , even though the crop is
produced in over 90 countries in the world. Therefore, in this study the effect of fertilizing
microorganisms such as Azospirillum brasilense, Azotobacter chroccocum and
Trichoderma lignorum on the growth of plants of sugar cane variety CC 934418 was
evaluated. The plant growth in terms of stem diameter, stem and root length and number
of leaves and roots at 15, 30 and 45 days after planting was measured. The plant growth
showed statistically significant differences among treatments. Fertilizing microorganisms
showed positive effect on the growth of sugar cane plants, being Azospirillum brasilense
and Trichoderma lignorum the microorganisms which exerted a greater effect on stem
diameter and the radical and leaf systems of the plant. In literature is not reported to
Trichoderma lignorum like promoter of vegetable growth; however, the results of this
investigation demonstrated that this microorganism can be used as vegetable growth
promoter of sugar cane.
Key words: Biofertilization, Sugar cane, Azospirillum brasilense, Azotobacter
chroccocum, Trichoderma lignorum
INTRODUCCIÓN
La utilización desequilibrada de
fertilizantes químicos para la protección
fitosanitaria en la agricultura ha generado
reducción de la fertilidad del suelo,
cambios climáticos, dependencia en el
uso de recursos no renovables y
degradación en la composición del
ecosistema del suelo (Palaniappan y
Annadurai 1999; Roesch y otros 2005).
El nitrógeno, fósforo y potasio, (NPK),
son los principales nutrientes necesarios
para el crecimiento vegetal; sin embargo
la disponibilidad del fósforo es limitada,
dado que cuando es aplicado en el suelo
a través de fertilizantes químicos, se
transforma mayoritariamente a su forma
insoluble, provocando su uso ineficiente
por parte de la planta (Omar 1998;
Gyaneshwar y otros 2002). Se ha
reportado el uso de microorganismos
solubizadores de fosfatos como una
alternativa al uso de fertilizantes
químicos (Khan y otros 2007). Diversos
investigadores
han
estudiado
la
sustitución de fertilizantes químicos por
el uso microorganismos benéficos o
biofertilizantes (Moura y otros 2007,
Stamford y otros 2007, 2008a; Van
Straaten 2007). Los biofertilizantes han
sido aprovechados y aplicados en
cultivos de caña de azúcar debido a su
bajo costo y a que son amigables con el
medio ambiente, además mantienen la
flora natural del suelo e incrementan la
calidad y fertilidad del mismo (Wu y otros
2005; Nain y otros 2010).
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy -70
La caña de azúcar es cultivada
ampliamente en la India, Sur de Asia,
América Latina y el Caribe. La aplicación
de fertilizantes químicos en la planta ha
disminuido su producción, rendimiento y
disponibilidad de nutrientes, sin embargo,
estos efectos se han reducido con el uso
de bacterias simbióticas y asociadas a la
rizósfera de plantas, capaces de mejorar
los niveles de nitrógeno en el suelo,
fijando 50-200 kg N ha-1 año-1 y 30-80 kg
N
ha-1
año-1,
respectivamente
(Shankaraiah y otros 2000; Singh y otros
2007; Stamford y otros 2008b; Lima y
otros 2010). Entre ellas tenemos,
Acetobacter, Arthrobacter, Azoarcus,
Azospirillum,
Azotobacter,
Bacillus,
Enterobacter, Herbaspirillum, Klebsiella,
Zoogloea y otras; se han encontrado en
las raíces y tallos de diversos cultivos
como, arroz, trigo y caña de azúcar sin
causar síntomas de enfermedad (James
y Olivares 1998; Sturz y Nowak 2000;
Bashan y Holguin 1998). Estos
microorganismos
benefician
directamente el crecimiento de la planta
por la producción de ácido indolacético,
citoquinas,
auxinas,
giberelinas,
aminoácidos y vitaminas; que ayudan en
el crecimiento de la raíz de la planta, que
a su vez facilitan la captación de agua y
nutrientes; e indirectamente por su
capacidad de fijar nitrógeno y de producir
agentes de biocontrol contra patógenos
del suelo (Haahtela y otros 1990; Akbari
y otros 2007; Dardanelli y otros 2008).
Fuentes- Ramirez y otros (1993)
demostraron que el acido indolacético
producido por la bacteria nitrificante
Acetobacter diazotrophicus promueve el
crecimiento en cultivos de caña de
azúcar, estos efectos benéficos también
han sido estudiados por Sevilla y otros
(1998). En especies del género de
Azospirillum se ha reportado en trigo
(Triticum aestivum L) un efecto positivo
en el rendimiento del grano, contenido de
proteína y crecimiento de raíces y
retoños, lo cual se atribuye a la
producción de auxinas y al incremento de
la adsorción radicular de nitrógeno
inorgánico.
Estas
bacterias
se
caracterizan por formar asociaciones con
las raíces de algunos cereales y por
emplear sales de amonio como fuente de
nitrógeno (Vande Broek y Vanderleyden
1995; Dommelen y otros 1998; Saubidet
y otros 2002). Khavazi y otros (2005),
indicaron
que
la
secreción
de
sideróforos, cianuro de hidrógeno y
antibióticos promovió el crecimiento y el
rendimiento de cultivos de trigo y cebada,
además
sirven
para
controlar
enfermedades de la planta. En la
biofertilización de caña de azúcar se
reporta el uso de bacterias del género
Azospirillum y Azotobacter (Cavalcante y
Dobereiner 1988), siendo Azotobacter
empleada
para
incrementar
la
productividad
de
algunos
cultivos
agrícolas debido a su capacidad de fijar
nitrógeno y disolver fosfatos (Gordon y
Jacobson 1983; Lakshminarayana 1993).
En especies de hongos de Trichoderma
lignorum no se ha documentado su uso
como biofertilizante y su participación en
interacción con las plantas, sin embargo,
ha sido utilizado como agente de
biocontrol por su potencial de producción
de metabolitos secundarios con actividad
antibiótica. Diversos estudios indican que
dichos metabolitos pueden ejercer efecto
benéfico sobre los mecanismos de
defensa de la planta y el crecimiento de
la misma (Reino y otros 2008). Por lo
anterior, en este trabajo se evaluó el
efecto
de
la
aplicación
de
microorganismos
fertilizantes,
Azospirillum brasilense, Azotobacter
chroccocum y Trichoderma lignorum
sobre el crecimiento de plantas de caña
de azúcar variedad CC 934418
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 71
MATERIALES Y MÉTODOS
Posteriormente a los dos días de la
siembra, 27 plantas de caña de azúcar
se inocularon, por separado con 10 ml de
soluciones acuosas de A. brasilense, A.
chroccocum
y
T.
lignorum
en
concentraciones de 2,5x107 UFC/ml. Las
cepas se obtuvieron en el Banco de
semillas microbianas de la empresa
Biocontrol y se certificaron en el
laboratorio de microbiología del suelo de
la Universidad Nacional de Colombia
sede Bogotá y en el centro de
investigaciones microbiológicas CIMIC
de la Universidad de los Andes en
Bogotá, Colombia.
Material vegetal
Se utilizaron 36 plantas certificadas de
caña de azúcar de la variedad CC
934418, las cuales se obtuvieron en el
Ingenio del Cauca, Hacienda. Zanjón
Rico, suerte 2, Miranda (Cauca,
Colombia).
Inoculación
de
los
microorganismos
Las plantas se sembraron en materas
sobre un sustrato rico en nutrientes, cuya
composición se muestra en la Tabla 1,
Tabla 1. Composición química del sustrato comercial utilizado en plantas de caña de azúcar
variedad CC 934418.
Nitrógeno total (N)
2%
Cenizas
48%
Fósforo total (P2O5)
1,50%
Humedad máxima
20%
Potasio soluble (K2O)
1,50%
pH
7,14
Calcio (CaO)
2%
0,47 g / cm3
17%
Densidad
Capacidad de intercambio
catiónico
Capacidad de retención
de agua
8,60%
Conductibilidad eléctrica
10,12 ds / m
Magnesio (MgO)
Carbono Orgánico
oxidable
Relación Carbono – Nitrógeno
1,50%
Análisis de variables
Los análisis se tomaron a los 15, 30 y
45 días después de la inoculación, con
muestras tomadas al azar de las plantas
inoculadas con cada microorganismo y
del control, luego las plantas se lavaron
con una solución de agua con hipoclorito
de sodio al 10% y se midió el diámetro
del tallo, la longitud del tallo y las raíces y
el número de hojas y de raíces. El
diámetro del tallo se calculó utilizando un
calibrador Pie de Rey (Metax, 161-012),
la longitud del tallo y de las raíces
mediante un flexómetro (Metromex,
GO5019), con escala de 0 a 3 m y el
número de hojas y raíces se calculó
mediante conteo manual.
38,2 meq /100 g
147,25%
Diseño Estadístico
Los experimentos se realizaron por
triplicado, utilizando un diseño factorial
de 4x3, completamente al azar así:
Factor tipo de inoculante con cuatro
niveles, A. brasilense, A. chroccocum, T.
lignorum, y sin inóculo, tratamiento que
se tomó como el control.
Factor tiempo de desarrollo de la
planta, con tres niveles, desarrollo a los
15, 30 y 45 días de inoculación.
La variable de respuesta fue el
desarrollo de la planta medido a los 15,
30 y 45 días después de la inoculación
con cada microorganismo, en términos
de diámetro del tallo, longitud de tallo y
raíces y número de hojas y raíces.
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 72
Los resultados se analizaron mediante
ANOVA y pruebas de promedios
múltiples con el método de diferencia
mínima significativa (DMS) ajustado al
95%, para ello se utilizó el paquete
estadístico SAS versión 9.13.
chroococcum, y T. lignorum sobre la
longitud del tallo de plantas de caña de
azúcar variedad CC 934418 (Figura 1).
Los tratamientos con aplicaciones de A.
brasilense ejercieron efecto significativo
sobre la longitud del tallo, seguido por T.
lignorum en el día 15, y por A.
chroococcum
que
tuvo
mejores
resultados en el día 30 y 40. Estos
tratamientos fueron significativamente
mayores que el tratamiento control. El
ANOVA mostró diferencia altamente
significativa entre los tratamientos. La
prueba DMS mostró en los tiempos
evaluados diferencias entre todos los
tratamientos.
RESULTADOS Y DISCUSION
Longitud de tallo y raíz
La utilización de microorganismos
como biofertilizantes ha generado
beneficios importantes en el crecimiento
y rendimiento de cultivos de cereales
(Bashan y Holguin 1997). En este
estudio, se reporta el efecto de la
fertilización con A. brasilense, A.
Longitud (cm)
20
16
Azospirillum
brasilense
12
Azotobacter
chroccocum
8
Trichoderma
lignorum
4
Control
0
1
15
29
tiempo (dias)
43
57
Figura 1. Variación en la longitud del tallo por efecto de la inoculación con Azospirillum brasilense,
Azotobacter chrococcum y Trichoderma lignorum en plantas de caña de azúcar de la variedad CC 934418.
Se ha informado la dificultad de
inocular microorganismos con capacidad
de colonizar raíces y sobrevivir en el
suelo, por ello debe tenerse en cuenta
que la supervivencia de estas cepas
depende de la textura, pH, temperatura,
humedad y disponibilidad de nutrientes
en el suelo (Van Elsas y otros 1991;
Normander
y
Prosser
2000).
Shankaraiah y otros (2000) empleando
Asrobacterium
radiobacter,
Bacillus
megaterium y Aspergillus awamori
lograron rendimientos en caña de azúcar
de 8-10% y una economía del 25% del
fosforo utilizado. En otro estudio, se
reportó efectos benéficos sobre el
crecimiento de plántulas caña de azúcar
micropropagadas e inoculadas in vitro
con cepas de Enterobacter, que se
aislaron de tallos y raíces de plantas
cultivadas en campo (Mirza y otros
2001). Lo anterior indica el potencial de
uso de microorganismos en fertilización
de caña de azúcar. Los resultados
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 73
logrados en la presente investigación
pueden ser debidos a la capacidad de los
microorganismos
de
producir
fitohormonas que ayuden a la adsorción
de nutrientes de la planta, sin embargo,
una
sobreproducción
de
estos
compuestos podría inhibir la elongación
de las raíces algunos cultivos (Rasul y
otros 1998). Este puede explicar las
variaciones presentadas en la longitud de
raíces, por efecto de la inoculación con
A. brasilense, A. chrococcum y T.
lignorum en plantas de caña de azúcar
de la variedad CC 934418 (Figura 2),
donde el ANOVA mostró diferencia
significativa entre los tratamientos. El
método DMS mostró diferencias entre las
plantas control y las plantas tratadas con
biofertilizantes.
Longitud (cm)
35
28
Azospirillum
brasilense
21
Azotobacter
chroccocum
14
Trichoderma
lignorum
Control
7
0
1
15
29
tiempo (dias)
43
57
Figura 2. Variación en la longitud de raíces por efecto de la inoculación con Azospirillum
brasilense, Azotobacter chrococcum y Trichoderma lignorum en plantas de caña de azúcar de la
variedad CC 934418.
Los tratamientos y el control
incrementaron notablemente hasta el día
30, sin embargo, para este día no se
observaron variciones en las plantas con
aplicaciones de A. chrococcum y T.
lignorum; pero en el dia 40 la longitud del
tallo incrementó levemente hasta 30,3 y
29 cm, respectivamente. En los
tratamientos con A. brasilense se
presentó en el dia 45 una reducción en la
longitud del tallo, con un valor
correspondiente a 30 cm. El mayor valor
se logró en el día 30 con aplicaciones de
A. brasilense (30,6 cm). Akbari y otros
(2007) reportaron que la inoculación con
Azospirillum
sp.,
incrementó
significativamente la elongación de la
raíz y el desarrollo de raíces laterales en
trigo, lo cual se le atribuye a la
producción de auxinas, fitohormonas
responsable del crecimiento de raíces
laterales (Blakely y otros 1986).
Christiansen-Wengiger (1994), quienes
encontraron a A. brasilense como el
productor
del
ácido
indolacético,
compuesto causante de la actividad
biológica en raíces de plantas. También
se ha demostrado que la producción del
acido indolacético se incrementa a bajos
niveles de vitamina B como piridoxina y
acido nicotínico (Zakharova y otros
2000). Ravikumar y otros (2004) en
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 74
aplicaciones
con
Azotobacter
se
incrementó
significativamente
el
promedio de la biomasa radicular en
suelos de manglares, adicionalmente
encontraron la cepa en mención como
productora de ácido indolacético. En
experimentos realizados en invernadero
con cebolla y con aplicaciones de
Glomus fasciculatum y A. chrooccocum
se logro incrementos en altura de la
planta, longitud de la raíz, adsorción de
fosforo y colonización de la raíz
(Mandhare y otros 1998). En otros
estudios se informa a T. lignorum como
promotor del crecimiento de raíces de
plantas (Harman y otros 2004).
nitrógeno; despertando el interés en su
uso como biofertilizantes (Radwan 2002;
Dardanelli y otros 2008; Reino y otros
2008). Las variaciones del número de
raices por efecto de la inoculación con A.
brasilense, A. chrococcum y T. lignorum
en plantas de caña de azúcar de la
variedad CC 934418 se pueden observar
en la figura 3, donde el ANOVA mostró
diferencias altamente significativas entre
los tratamientos. La prueba DMS no
mostró diferencias entre A. chrocooccum
y T. lignorum. Para el dia 15, A.
brasilense presentó el menor número de
raices (20), seguido por T. lignorum (50)
y el control (51). En las plantas
inoculadas con A. chrococcum se obtuvo
58 raices. Gharib y otros (2008)
obtuvieron en mejorana (Majorana
hortensis L.) incrementos en la
producción de su aceite esencial, en el
crecimiento y rendimiento cuando se
empleó una mezcla A. brasilense, A.
chroococcum, Bacillus polymyxa y B.
circulans y extractos de materia orgánica.
Numero de Raíces y hojas
Microorganismos como Azospirillum
sp., Azotobacter sp., T. lignorum, etc.,
poseen potencial en la promoción del
crecimiento de raíces secundarias de
plantas y en la prevención de
enfermedades patógenas, además han
sido aprovechadas por los agricultores
por su capacidad de fijación de
Número de raíces
120
90
Azospirillum
brasilense
60
Azotobacter
chroccocum
Trichoderma
lignorum
30
Control
0
1
15
29
43
57
tiempo (dias)
Figura 3. Variación en el número de raíces por efecto de la inoculación con Azospirillum
brasilense, Azotobacter chroccocum y Trichoderma lignorum en plantas de caña de azúcar de la
variedad CC 934418.
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 75
Para el día 30, A. brasilense ejerció
mayor efecto sobre el numero de raíces
de las plantas de caña, seguido por A.
chrocooccum, que presentó un valor
cercano al obtenido con T. lignorum. En
el día 45, los tratamientos con A.
brasilense tambien presentaron el
numero mas alto de raices (97), seguido
por T. lignorum (93) y A. chrocooccum
(87). Molla y otros (2001) lograron
incrementar la longitud y el número de
raices en soja con aplicaciones de A.
brasilense. Otros autores reportan
efectos benéficos en el crecimiento y
rendimiento de maíz y trigo inoculados
con Bacillus. cereus, Bacillus. circulans,
A. chroococcum, A. brasilense y
Pseudomonas fluorescens (Tilak y Reddy
2006).
En la Figura 4 se muestra la variación
en el número de hojas, por efecto de la
inoculación con A. brasilense, A.
chrococcum y T. lignorum en plantas de
caña de azúcar variedad CC 934418,
donde la prueba DMS presentó
diferencias significativas entre los
tratamientos. Los mejores resultados se
lograron en las aplicaciones con T.
lignorum, en donde se alcanzó a tener 16
hojas para el dia 45. A. brasilense y A.
chrococcum no presentaron diferencias
significativas en el dia 30 y 45, con
valores correspondientes a 7 y 16 hojas,
respectivamente.
Los
resultados
obtenidos pueden ser debidos a la
fijación biológica de nitrógeno y a la
secreción de hormonas como auxinas,
giberelinas y citoquininas, que ayudan a
la adsorción de agua y nutrientes en la
planta (Mehboob y otros 2009). El
nitrógeno y el fosforo juegan un papel
importante en el crecimiento de la planta.
Sin embargo, el fósforo se solubiliza
rápidamente en el suelo dado que es
altamente reactivo con el calcio, hierro y
aluminio (Barber 1984). Chabot y otros
(1996) reportan efectos benéficos en el
crecimiento de maíz y lechuga cuando se
empleó Rhizobium leguminosarum como
fertilizante, efecto que los autores lo
atribuyen
a
la
capacidad
del
microorganismo de solubilizar fosfatos.
Estos microorganismos nitrificantes han
sido aprovechados en Brasil para
incrementar por más del 30% el
rendimiento de caña de azúcar (Nóbrega
y otros 2004). En otros estudios se logró
incrementar el total de nitrógeno, por
más del 100% en materia orgánica,
inoculada con Acidithiobacillus y una
mezcla de fósforo y potasio biológico. En
la presente investigación no se realizaron
este tipo de combinaciones; sin embargo,
se han estudiado como fuente de
fertilización en plantas, lo cual se puede
considerar para dar continuidad a este
estudio, y de esta forma se logre mejorar
los resultados obtenidos en el número de
hojas de plantas de caña de azúcar
inoculadas con A. brasilense y A.
chrococcum.
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 76
Número de hojas
25
20
Azospirillum
brasilense
15
Azotobacter
chrococcum
10
Trichoderma
lignorum
5
Control
0
1
15
29
43
57
tiempo (dias)
Figura 4. Variación en el número de hojas por efecto de la inoculación con Azopirillum brasilense,
Azotobacter choroccocum y Trichoderma lignorum en plantas de caña de azúcar de la variedad CC
934418.
Diámetro de tallo
Las variaciones en el diámetro del
tallo por efecto de la fertilización con A.
brasilense, A. chroococcum, y T.
lignorum en plantas de caña de azúcar
variedad CC 934418 se pueden apreciar
en la figura 5. Las plantas de caña de
azúcar inoculadas con A. brasilense
presentaron los mayores valores en el
diámetro del tallo, con un valor de 0,9 cm
para el día 30 y 45. Estos resultados se
pueden comparan con los obtenidos por
Gharib y otros (2008), quienes lograron
incrementar el diámetro del tallo, la altura
de la planta y número de ramas en
mejorana
inoculada
con
Bacillus
circulans, extracto acuoso de compost y
una mezcla de tres microorganismos
fijadores de nitrógeno (A. brasiliense, A.
chroococcum y Bacillus polymyxa).
Adicionalmente, para los tratamientos
con T. lignorum se obtuvo en los días 30
y 45 valores correspondientes a 0,63 y
0,9 cm, donde en el día 30 no se
presentaron
diferencias
estadísticas
entre los tratamientos con T. lignorum y
A. chrocooccum; asi como tampoco
sucedió entre el control y las aplicaciones
con A. chroococcum en el dia 0. El
ANOVA mostró diferencia altamente
significativa entre los tratamientos. El
método DMS no mostró diferencias
significativas en los tiempos evaluados
entre el control y el tratamiento con
Azotobacter chroccocum, lo cual indica
que los tratamientos con A. brasilense
ejercieron mayor efecto benéfico sobre el
diámetro del tallo. Estos resultados
alcanzados en aplicaciones con A.
brasilense también pueden explicarse
por la producción de sideróforos, y
fithormonas como acido inolacético,
auxinas, giberelinas y citoquininas
(Dardanelli y otros 2008). Pedraza y
otros (2007), demostraron ocurrencia de
A. brasilense en plantas de fresa, y su
capacidad de fijación de nitrógeno,
producción de sideróforos e índoles.
Estas
evidencias
son
de
gran
importancia; sin embargo, otros autores
han realzado el efecto de la aplicación de
fertilizantes
biológicos
sobre
el
crecimiento de la planta. Srivastava y
otros (2010), lograron promover el
desarrollo y la protección contra
patógenos en cultivos de arroz mediante
aplicaciones foliares de Pseudomonas, a
las cuales se les proporcionó un medio
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 77
de crecimiento a base de estiércol. Por
otro lado, en la literatura se reporta la
cepa Trichoderma, como un agente de
control de enfermedades en plantas, no
obstante en especies lignorum no se ha
informado un uso como biofertilzante
(Harman y otros 2004).
Diámetro (cm)
1
0,8
Azospirillum
brasilense
0,6
Azotobacter
chroccocum
0,4
Trichoderm
a lignorum
0,2
Control
0
1
15
29
tiempo (dias)
43
57
Figura 5. Variación en el diámetro del tallo por efecto de la inoculación con Azospirillum brasilense,
Azotobacter chroccocum y Trichoderma lignorum en plantas de caña de azúcar de la variedad CC
934418.
CONCLUSIONES
El estudio reveló que la inoculación
con microorganismos asociados a la
rizósfera de plantas ayuda a realzar el
desarrollo de plantas de caña de azúcar
variedad CC 934418. Por tanto, la
aplicación
de
A.
brasilense,
A.
chroococcum, y T. lignorum en plantas
pueden ser una alternativa potencial al
uso de fertilizantes químicos. En los
tratamientos con Azospirillum brasilense
se logró incrementar significativamente el
diámetro del tallo, longitud del tallo y
número y longitud de las raíces. También
se evidenció efectos benéficos sobre el
número de hojas cuando se inoculó la
planta con Trichoderma lignorum, lo cual
es de gran importancia, debido a que no
existen reportes del uso de la especie
lignorum como biofertilizante.
REFERENCIAS
Akbari, GA., Arab SM., Alikhani HA.,
Allahdadi I., Arzanesh MH. 2007.
Isolation and selection of indigenous
Azospirillum spp. and the IAA of superior
strains effects on wheat roots. World
Journal of Agricultural Science. 3(4):523529. 2007.
Barber SA. 1984. Soil nutrient
bioavailability: A mechanistic approach.
2nd ed. New York, USA: JohnWiley and
Sons, Inc.
Blakely, LM., Blakely RM., Galloway
CM. 1986. Effects of dimethyl sulfoxide
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 78
and PH on indoleacetic acid induced
lateral root formation in the radish
seedling root. Plant Physiology. 80:790791.
Phaseolus vulgaris flavonoids and Nod
factor production under salt stress. Soil
Biology & Biochemistry. 40(11):27132721.
Bashan, Y., Holguin G. 1997.
Azospirillum-plant
relationships:
environmental
and
physiological
advances
(1990–1996).
Canadian
Journal of Microbiology. 43 (2):103–121.
Dommelen
AV.,
Keijers
V.,
Vanderleyden J., De-Zamaroczy M.
1998. (Methyl) ammonium transport in
the nitrogen-fixing bacterium Azospirillum
brasilense. Journal of Bacteriology.
180(10): 2652–2659.
Bashan, Y., Holguin G. 1998. Proposal
for the division of plant growth-promoting
rhizobacteria into two classifications:
Biocontrol-PGPB (plant growth-promoting
bacteria) and PGPB. Soil Biology &
Biochemistry. 30:1225–1228.
Cavalcante, VA., Dobereiner J. 1998.
A new acid tolerant nitrogen fixing
bacterium associated with sugarcane.
Plant and soil, 108(1):23-31.
Chabot, R., Antoun H., CesCas MP.
1996. Growth promotion of maize and
lettuce
by
phosphate
solubilizing
Rhizobium
leguminosarum
biovar
phaseoli. Plant and Soil 184(2):311–321.
Christiansen-Wengiger, C. Ismailia,
Egypt. Para nodule induction in maize
with indole-acetic acid (IAA) and its
infection
with
ammonia
excreting
Azospirillum
brasilense.
En:
The
American University (in Cairo press).
Proceedings of the Sixth International
Symposium on Nitrogen Fixation with
Non-Legumes. Ismailia, Egypt: Eds.
Hegazi N, M Fayez, Monib M. 525-535.
Dardanelli, MS., Fernández de
Córdoba FJ., Espuny MR., Rodríguez
Carvajal MA., Soria Díaz ME., Gil
Serrano AM., Okon Y, Megías M. 2008.
Effect
of
Azospirillum
brasilense
coinoculated
with
Rhizobium
on
Fuentes-Ramirez
LE.,
JimenezSalgado
T.,
Abarca-Ocampo
IR.,
Caballero-Mellado J. 1993. Acetobacter
diazotrophicus, an indoleacetic acid
producing bacterium isolated from
sugarcane cultivars of México. Plant and
Soil 154 (2):145–150.
Gharib FA., Moussa LA., Massoud
ON. 2008. Effect of compost and biofertilizers on growth, yield and essential
oil of sweet marjoram (majorana
hortensis) plant. International Journal of.
Agriculture and Biology. 10 (4):381–387.
Gordon JK., Jacobson MR. 1983.
Isolation
and
characterization
of
Azotobacter vinelandii mutant strains with
potential as a bacterial biofertilizer.
Canadian Journal of Microbiology
29:973–978.
Gyaneshwar P., Kumar GN., Parekh
LJ., Poole PS. 2002. Role of soil
microorganisms in improving P nutrition
of plants. Plant and Soil 245(1):83–93.
Haahtela K., Ronkko R., Laakso T.,
Williams PH., Korhonem TK. 1990. Root
associated Enterobacter and Klebsiella in
Poa pratensis: Characterization of an iron
scavenging system and a substance
stimulating
root
hair
production.
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 79
Interactions
Agricultural Science Digest. 18(4):228230.
Harman GE., Howell CR., Viterbo A.,
Chet I., Lorito M. 2004. Trichoderma
species–opportunistic, avirulent plant
symbionts. Nature Reviews Microbiology
2(1):43–56.
Mehboob I., Naveed M., Zahir Z. 2009.
Rhizobial association with non-legumes:
mechanisms and applications. Critical
Reviews in Plant Sciences. 28(6):432–
456.
James EK., Olivares FL. 1998.
Infection and colonization of sugar cane
and other graminaceous plants by
endophytic diazotrophs. Critical Reviews
in Plant Sciences .17(1):77–119.
Mirza MS., Ahmad W., Latif F., Haurat
J., Bally R., Normand P., Malik KA. 2001.
Isolation, partial characterization, and the
effect of plant growth-promoting bacteria
(PGPB) on micro-propagated sugarcane
in vitro. Plant and Soil 237(1):47–54.
Molecular Plant–Microbe
3(6):358–365.
Khan MS., Zaidi A,Wani PA. 2007.
Role
of
phosphate-solubilizing
microorganisms in sustainable agriculture
– A review. Agronomy for Sustainable
Development. 27(1):29–43.
Khavazi
K.,
Asadi-Rahmani
H,Malakouti MJ. 2005. Necessity for the
production of biofertilizers in Iran: A
Compilation if Papers. 2nd ed. Sana
Publications. Tehran, Iran: Soil and
Water Research Institute (SWRI). 589
Lakshminarayana, K. 1993. Influence
of Azotobacter on nitrogen nutrition of
plants and crop productivity. Proceedings
of the Indian National Science Academy.
59(3-4):303–308.
Lima FS., Stamford NP., Sousa CS.,
Lira Junior MA., Malheiros SMM., Van
Straaten P. 2010. Earthworm compound
and rock biofertilizer enriched in nitrogen
by inoculation with free living diazotrophic
bacteria. World Journal of Microbiology &
Biotechnology. 26: 1769-1775.
Mandhare VK., Patil PL., Gadekar DA.
1998. Phosphorus uptake of onion as
influenced by Glomus fasciculatum,
Azotobacter and phosphorus levels.
Molla AH., Shamsuddin ZH., Saud
HM. 2001. Mechanism of root growth and
promotion of nodulation in vegetable
soybean by Azospirillum brasilense.
Communications in Soil Science and
Plant Analysis. 32 (13-14):2177-2187.
Moura PM., Stamford NP., Duenhas
LH., Santos CERS., Nunes GHS. 2007.
Eficiencia de biofertilizantes de rochas
com Acidithiobacillus em melao, no Vale
do Sao Francisco. Revista Brasileira de
Ciências Agrarias 2:1–7.
Nain L., Rana A., Joshi M., Jadhav
SD., Kumar D., Shivay YS., Paul S.,
Prasanna R. 2010. Evaluation of
synergistic effects of bacterial and
cyanobacterial strains as biofertilizers for
wheat. Plant and Soil. 331(1-2):217–230.
Nóbrega
RSA.,
Moreira
FMS.,
Siqueira
JO.,
Lima
AS.
2004.
Caracterização fenotípica e diversidade
de bactérias diazotróficas associativas
isoladas de solos em reabilitação após a
mineração de bauxita. Revista Brasileira
de Ciência do Solo 28:269–279.
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 80
Normander B., Prosser JI. 2000.
Bacterial
origin
and
community
composition in the barley phytosphere as
a function of habitat and presowing
conditions. Applied and Environmental
Microbiology 66(10):4372–4377.
Reino JL., Guerrero RF., HernándezGalán R., Collado IG. 2008. Secondary
metabolites from species of the biocontrol
agent Trichoderma. Phytochemistry.
Reviews. 7(1):89–123.
Omar SA. 1998. The role of rockphosphate-solubilizing
fungi
and
vesicular-arbusular mycorrhiza (VAM) in
growth of wheat plants fertilized with rock
phosphate. World Journal of Microbiology
& Biotechnology. 14(2):211–218.
Roesch LF., Camargo F., Selbach P.,
Sá ES., Passaglia L. 2005. Identificação
de cultivares de milho eficientes na
absorção de nitrogênio e na associação
com bactérias diazotrófica. Revista
Ciência Rural (Brazil) 35(4):924–927.
Palaniappan SP., Annadurai K. 1999.
Organic farming: theory and practice.
Jodhpur, India: 53-73.
Saubidet MI., Fatta N., Barneix AJ.
2002. The effect of inoculation with
Azospirillum brasilense on growth and
nitrogen utilization by wheat plants. Plant
and Soil 245(2):215–222.
Pedraza RO., Motok J., Tortora ML.,
Salazar SM., Díaz-Ricci JC. 2007.
Natural occurrence of Azospirillum
brasilense in strawberry plants. Plant and
Soil 295(1-2):169–178.
Radwan FI. 2002. Response of some
maize
cultivars
to
Vamycorrhizal
inoculation, biofertilization and soil
nitrogen application. Alexandria Journal
of Agricultura. Research. 43:43-56.
Rasul G., Mirza MS., Latif F., Malik
KA.
Dordrecht,
The
Netherlands.
Identification of plant growth hormones
produced by bacterial isolates from rice,
wheat and kallar grass. En: Kluwer
Academic Publishers. Nitrogen Fixation
with Non-legumes. 25–3.
Ravikumar
S.,
Kathiresan
K.,
Thadedus Maria Ignatiammal S., Babu
Selvam M., Shanthy S. 2004. Nitrogenfixing azotobacters from mangrove
habitat and their utility as marine
biofertilizers. Journal of Experimental
Marine Biology and Ecology. 312(1):5–
17.
Sevilla M., de Oliveira AL., Baldani I.,
Kennedy C. 1998. Contribution of the
bacterial
endophyte
Acetobacter
diazotrophicus to sugarcane nutrition: A
preliminary study. Symbiosis: The
Journal of Ecologically Suistainable
Medicine. 25:181–191.
Shankaraiah C., Hunsigi G., Nagaraju
MS. 2000. Effect of levels and sources of
phosphorus and phosphate solubilizing
microorganisms on growth, yield and
quality of sugarcane. Sugar Tech: An
International Journal of Sugar Crops and
Related Industries. 2(1-2):23-28.
Singh KP., Archna Suman PN., Singh
Menhi Lal. 2007. Yield and soil nutrient
balance of a sugarcane plant–ratoon
system with conventional and organic
nutrient management in sub-tropical
India.
Nutrient
Cycling
in
Agroecosystems 79(3):209–219.
Srivastava R., Aragno M., Sharma AK.
2010. Cow dung extract: A medium for
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 81
the growth of pseudomonads enhancing
their efficiency as biofertilizer and
biocontrol agent in rice. Indian Journal of
Microbiology. Short Communication. 1-6.
Stamford NP., Santos PR., Santos
CES., Freitas ADS., Dias SHL., Lira
Junior
MA.
2007.
Agronomic
effectiveness
of
biofertilizers
with
phosphate
rock,
sulphur
and
Acidithiobacillus for yam bean grown on a
Brazilian
tableland
acidic
soil.
Bioresource Technology. 98 (6):1311–
1318.
Stamford NP., Santos CERS., Silva
Junior S., Lira Junior MA., Figueiredo
MVB. 2008a. Effect of rhizobia and rock
biofertilizers with Acidithiobacillus on
cowpea nodulation and nutrients uptake
in a tableland soil. World Journal of.
Microbiology
&
Biotechnology.
24(9):1857–1865.
Stamford NP., Lima RA., Lira Junior
MA. Santos CERS. 2008b. Effectiveness
of phosphate and potash rocks with
Acidithiobacillus on sugarcane yield and
their effects on soil chemical attributes.
World Journal of Microbiology &
Biotechnology. 24 (10): 2061–2066.
2008b.
Azospirillum-plant
Critical Reviews
14(5):445–466.
root
association.
in Plant Sciences.
Van Elsas JD., Van Overbeek LS.,
Fouchier R. 1991. A specific marker, pat,
for studying the fate of introduced
bacteria and their DNA in soil using a
combination of detection techniques.
Plant and Soil 138(1):49–60.
Van Straaten P. 2007. Agrogeology –
the use of rocks for crops. Canadá,
Ontario: Enviroquest Cambridge Ltda.
440.
Wu SC., Cao ZH., Li ZG., Cheung
KC., Wong MH. 2005. Effects of
biofertilizer containing N-fixer, P and K
solubilizers and AM fungi on maize
growth: a greenhouse trial. Geoderma. A
Global Journal of Soil Science. 125(12):155–166.
Zakharova EA., Iosipenko AD.,
Ignatov VV. 2000. Effect of water-soluble
vitamins on the production of indole-3acetic acid by Azospirillum brasilense.
Microbiological Research. 155(3):209214.
AGRADECIMIENTOS
Sturz AV., Nowak J. 2000. Endophytic
communities of rhizobacteria and the
strategies required to create yield
enhancing associations with crops.
Applied Soil Ecology. 15(2):183–190.
Los autores agradecen a la empresa
BIOCONTROL y a la Universidad
Nacional de Colombia Sede Palmira por
la financiación de esta investigación.
Tilak KVBR., Reddy BS. 2006.
Bacillus cereus and Bacillus circulans
novel inoculants for crops. Current
Science (Bangalore). 90(5): 642–644.
Vande Broek A., Vanderleyden J.
1995.
Review:
genetics
of
the
Vol 20, No 24 (2011), Revista Alimentos Hoy - 82
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