Documento descargado de http://www.elsevier.es el 26/11/2016. Copia para uso personal, se prohíbe la transmisión de este documento por cualquier medio o formato. Actas Urol Esp. 2013;37(9):571---578 Actas Urológicas Españolas www.elsevier.es/actasuro ARTÍCULO DE REVISIÓN Anticuerpos antiespermatozoides y su asociación con la fertilidad B. Restrepo y W. Cardona Maya ∗ Grupo de Reproducción, Facultad de Medicina, Universidad de Antioquia, Medellín, Colombia Recibido el 5 de septiembre de 2012; aceptado el 27 de noviembre de 2012 Disponible en Internet el 18 de febrero de 2013 PALABRAS CLAVE Anticuerpos antiespermatozoides; Autoinmunidad; Espermatozoide; Inmunoinfertilidad; Interacción intergametos; Reproducción KEYWORDS Antisperm antibodies; Autoimmunity; Spermatozoa; Immune infertility; Gamete interaction; Reproduction ∗ Resumen Objetivo: Evaluar la importancia de los anticuerpos antiespermatozoides (AAE) y su relación con la fertilidad humana mediante una revisión de la literatura científica de los últimos 45 años. Métodos: Se realizó una revisión de la literatura científica basada en investigaciones realizadas sobre anticuerpos antiespermatozoides e infertilidad publicada en español e inglés en bases de datos del área de la salud, Pubmed, Medline, Scielo, libros y otra literatura gris que incluya información afín a la revisión y que se encuentre publicada en los últimos 45 años. Resumen de evidencia: Parejas infétiles padecen de infertilidad causada por mecanismos inmunológicos, principalmente por la presencia de AAE en sangre, semen o inclusive en secreciones cervicovaginales; la formación de AAE en hombres y mujeres puede estar asociada a trastornos en mecanismos inmunomoduladores, que traen como consecuencia la alteración funcional del espermatozoide y por ende su incapacidad para fecundar al oocito. Conclusión: La infertilidad inmunológica causada por AAE es el resultado de la interferencia de estos anticuerpos en las diferentes etapas de la fecundación, inhibiendo la capacidad de interacción entre el espermatoozide y el oocito. © 2012 AEU. Publicado por Elsevier España, S.L. Todos los derechos reservados. Antisperm antibodies and fertility asociation Abstract Objective: To evaluate the relation between antisperm antibodies (ASA) and human fertility by reviewing the scientific literature of the last 45 years. Methods: We carried out a review of scientific literature about antisperm antibodies and infertility published in spanish or english in databases as Pubmed, Medline, Scielo, some books and another gray literature include information related to this review and that is published in the last 45 years. Summary of evidence: Infertile couples suffers infertility by immunological mechanisms mainly by the presence of antisperm antibodies ASA in blood, semen or cervicovaginal secretions; the formation of ASA in men and women may be associated with disturbance in immunomodulatory mechanisms that result in functional impairment of sperm and thus its inability to fertilize the oocyte. Autor para correspondencia. Correos electrónicos: wdcmaya@medicina.udea.edu.co, wdcmaya@yahoo.com (W. Cardona Maya). 0210-4806/$ – see front matter © 2012 AEU. Publicado por Elsevier España, S.L. Todos los derechos reservados. http://dx.doi.org/10.1016/j.acuro.2012.11.003 Documento descargado de http://www.elsevier.es el 26/11/2016. Copia para uso personal, se prohíbe la transmisión de este documento por cualquier medio o formato. 572 B. Restrepo, W. Cardona Maya Conclusion: Immunological infertility caused by ASA is the result of interference of these antibodies in various stages of fertilization process, inhibiting the ability of interaction between sperm and oocyte. © 2012 AEU. Published by Elsevier España, S.L. All rights reserved. Introducción Según la Organización Mundial de la Salud (OMS) la infertilidad se define como la incapacidad de una pareja de lograr un embarazo después de tener relaciones sexuales en los días fértiles por más de un año, sin el empleo de métodos anticonceptivos1 . Las elevadas y crecientes tasas de prevalencia e incidencia de la infertilidad son un problema de salud en el mundo y conllevan repercusiones desde el punto de vista orgánico y psicosocial de la pareja2 , lo cual repercute finalmente en la calidad de vida de las personas. En 2009 la prevalencia mundial de la infertilidad afectó entre 50 y 80 millones de personas, pudiendo variar la incidencia según la región. En América Latina la prevalencia de la infertilidad en parejas en edad fértil fue del 12,8% para 20102 , y para Colombia se considera que la infertilidad afecta del 16 al 20% de las parejas en edad reproductiva en 20103 . Diversos factores de riesgo están involucrados en la patogénesis de la infertilidad, entre los que se encuentran alteración en la espermatogénesis causada por cáncer testicular, aplasia de las células germinales, varicocele, alteración en el transporte de los espermatozoides4 , factores ambientales, así como anormalidades congénitas, procesos infecciosos5---7 , oclusión tubárica bilateral, infecciones relacionadas con el embarazo2,8,9 , alteraciones en los parámetros espermáticos convencionales10 y funcionales11 y la presencia de anticuerpos antiespermatozoides (AAE12,13 ); sin embargo, existe entre un 10 y 25% de casos idiopáticos en los que no se logra identificar la causa que origina la infertilidad14 . Aproximadamente entre el 10-30% de los casos de parejas infértiles los AAE han sido considerados como la causa de la infertilidad12,13,15 ; en estos individuos se ha encontrado la presencia de AAE en suero, en plasma seminal, unidos a espermatozoides, en el líquido folicular, así como en las secreciones cervicovaginales12,13,15 . Altos niveles de AAE se encuentran en personas con historia clínica de torsión testicular, cáncer testicular, epididimoorquitis, orquitis bilaterales con extensa destrucción de túbulos seminíferos, infecciones seminales, varicocele, inflamación inducida por infección genital y vasectomía8,9,15---19 , y además entre el 40 y el 70% de los hombres con vasectomía desarrollan AAE detectables8,13,18,20,21 . La producción de AAE en hombres y mujeres, dirigidos contra antígenos de la superficie espermática, interviene en la fecundación y la fertilidad, afectando directamente la movilidad y el transporte de los espermatozoides a través del tracto reproductivo femenino, e inhibiendo tanto la capacitación como la reacción acrosomal13,17,19,22---26 . De otro lado, los AAE presentan una acción indirecta mediando la liberación de citocinas que pueden afectar la función del espermatozoide y dificultar la penetración de los espermatozoides al moco cervical15,19 , induciendo citotoxicidad espermática, incrementando la fagocitosis espermática8,9,15,23,25,27,28 o inhibiendo la implantación y el desarrollo del embrión12,13 , generando como consecuencia la reducción de las tasas de embarazos naturales19 . Sin embargo, algunos autores reportan que la presencia de AAE no es considerada como una causa de la infertilidad18 , inclusive se ha reportado que el 60% de los hombres adultos sanos presentan AAE en suero, y entre un 15 a 30% de estos se encuentran unidos a los espermatozoides, además en el 2% de las mujeres se encuentran AAE en el moco cervical18 . Inmunoinfertilidad Es considerada una de las causas de infertilidad en los humanos y se desencadena debido a la activación del sistema inmune, y la subsecuente producción de anticuerpos específicos contra el espermatozoide12 . En parejas con infertilidad de origen desconocido se sospecha de AAE en mujeres cuando presentan una prueba poscoital anormal a repetición, lo que puede ser indicativo de infertilidad inmunológica8 , y en los hombres en los que durante un análisis seminal presentan aglutinación de los espermatozoides8,16 , aunque es importante recalcar que la aglutinación espermática no significa necesariamente la presencia de AAE, debido a que a aglutinación se puede producir por otros factores, inclusive pueden existir autoanticuerpos sin que exista aglutinación. Inmunoinfertilidad en el hombre Los testículos son compartimentos especializados en los que se desarrolla la espermatogénesis9 ; en ellos se encuentra la barrera hematotesticular, conformada por un compartimento tubular y uno vascular. Elf primero está integrado por una lámina basal de los túbulos seminíferos, células germinales y células de Sertoli, estas últimas rodean con sus prolongaciones las células germinales y se encargan del mantenimiento y proceso de formación de los espermatozoides9 . Las uniones herméticas entre las membranas de las células de Sertoli actúan aislando el sistema inmune del compartimento donde ocurre la espermatogénesis, además por su capacidad fagocítica intervienen en la degradación del espermatozoide, los restos citoplasmáticos de las espermátidas y el cuerpo residual, que serían estimulantes de la respuesta inmune; las células de Sertoli presentan antígenos testiculares al sistema inmune induciendo una tolerancia local probablemente por activación de las células supresoras9,29 . Las uniones entre las células de Sertoli aparecen en la pubertad, cuando estas dejan de dividirse y comienza la actividad meiotica con el proceso de espermatogénesis y la formación de células haploides que pueden ser reconocidas por el sistema inmune, por lo que es importante aislarlas18,20,30,31 . Las células germinales testiculares y los espermatozoides poseen Documento descargado de http://www.elsevier.es el 26/11/2016. Copia para uso personal, se prohíbe la transmisión de este documento por cualquier medio o formato. Anticuerpos antiespermatozoides y su asociación con la fertilidad componentes antigénicos específicos en su membrana que no se encuentran en otro tipo de célula9,20,31 . Durante la meiosis antígenos específicos son expresados en las células y permanecen durante la espermatogénesis,20 antígenos adicionales aparecen sobre la membrana después de la etapa de la espermatogénesis y sobre la superficie del espermatozoide durante el tránsito y maduración por el epidídimo8,20 ; los antígenos del espermatozoide normalmente no activan una respuesta inmune9,15,20,23 por la presencia de un sistema inmunorregulador peritubular9 y por el aislamiento que ejerce la barrera hematotesticular8,9,18,20,25,27,29,31,32 . Por su parte el compartimento vascular conformado por células endoteliales de los capilares, que por su baja permeabilidad actúan impidiendo el paso de células, como los linfocitos y proteínas de alto peso molecular como inmunoglobulinas y complemento, contribuye al papel de barrera y dificulta el paso de componentes inmunes al compartimento tubular20,29 . El reconocimiento de los espermatozoides como antígenos extraños es debido a que estos se producen cuando ya ha pasado el proceso de tolerancia a lo propio en la etapa perinatal8,9 , sin embargo cantidades de antígenos pueden fugarse de la red testicular e inducir tolerancia inmunológica8 , causando una inmunorregulación local como respaldo de la barrera hematotesticular en la respuesta autoinmune en el testículo20,29 , inhibiendo la producción y función de los AAE15 . Adicionalmente, la barrera hematotesticular ejerce un control paracrino inmunorregulador que estimula la liberación de sustancias específicas inmunoprotectoras por las células de Sertoli9,15,20 y las células de Leydig9,15 , que actúan inhibiendo la blastogénesis de linfocitos y median la lisis de las células20 . Estas sustancias inmunosupresoras, importantes en la protección contra la respuesta autoinmune contra los espermatozoides8 , son citocinas antiinflamatorias como la interleucina (IL) 1, IL-10, IL-13, IL-14, el factor de transformación y crecimiento , que inhibe la actividad proinflamatoria y a su vez activa algunas citocinas como el factor de crecimiento de las células T (TCGF), la activina, la 2 macroglobulina y la hormona estimulante del melanocito 29 . En los testículos el sistema linfático y sanguíneo pasa a través de los espacios intersticiales entre los túbulos seminíferos, los macrófagos se ubican alrededor de los túbulos y expresan abundantes moléculas HLA-D que desempeñan un papel importante en la presentación de antígenos y el inicio de la respuesta inmune20 ; sin embargo, la barrera hematotesticular retarda el paso de componentes sanguíneos a través de esta, como lo evidencia la poca presencia de inmunoglobulinas, macrófagos y leucocitos en los túbulos seminíferos8 . El desarrollo y función de los anticuerpos, además de los elementos inmunomoduladores, pueden actuar como estimulantes de la respuesta inflamatoria y causar infertilidad masculina15 . La inmunorregulación puede ejercer un papel importante en la supresión inmunológica en el testículo, debido a que componentes del plasma seminal humano inhiben la actividad de los macrófagos y los neutrófilos para reconocer los antígenos y fagocitarlos, inactivan las células NK y las células T citotóxicas en el reconocimiento y eliminación de antígenos, inhiben la acción del complemento, especialmente las fracciones C1 y C3, reduciendo la actividad lítica de los 573 anticuerpos, y así mismo pueden alterar la composición de los antígenos y prevenir su interacción con los receptores de los linfocitos20 . Además de lo ya mencionado, la prostaglandina sintetasa H2, presente en el epitelio de la rete testis y el epidídimo, interfiere en la producción de prostaglandinas que promueven la quimiotaxis de linfocitos T supresores en el tejido subepitelial del epidídimo y los conductos deferentes, y que actúan en defensa contra el estímulo que causan los antígenos del espermatozoide al sistema inmune8 . Algunos componentes del plasma seminal, incluyendo glucoproteínas y poliaminas, suprimen la proliferación de linfocitos y mecanismos inmunes que pueden en determinado momento reaccionar contra los espermatozoides15,20 ; los linfocitos T ayudadores en el tejido subepitelial del epidídimo y conducto deferente mitigan el reconocimiento de antígenos por los linfocitos B, disminuyendo la respuesta humoral8 . Inmunoinfertilidad en la mujer En la mujer, a pesar de que la mucosa está mucho más expuesta, no existe una barrera inmunológica en el tracto reproductivo femenino como en el caso del hombre, incluso los espermatozoides que son extraños para su sistema inmune generalmente no estimulan una respuesta inmune humoral20 , y aunque las mujeres sexualmente activas pueden estar expuestas a millones de espermatozoides en cada relación sexual16,29 , la fecundación estaría comprometida si fueran inmunizadas con estos, lo que podría inducir aglutinación del espermatozoide, movilidad reducida, ineficiente fusión entre gametos, pérdida de implantación del embrión o incremento de la fagocitosis de los espermatozoides8,20,21 ; el moco cervical es parte del sistema inmune y es capaz de montar una respuesta eficaz frente a agentes infecciosos, antígenos extraños y en ocasiones contra los antígenos espermáticos31 . En las trompas de Falopio, en el útero y en la vagina las células plasmáticas subepiteliales tienen capacidad productora de inmunoglobulinas de tipo A; estos anticuerpos presentes en el moco cervical pueden alterar los espermatozoides e impedir su ingreso en el útero, las trompas de Falopio e interacción con el oocito8,16 . Después del depósito de semen en la vagina los AAE ejercen un efecto aglutinante de los espermatozoides, disminuyendo su permeabilidad a través del moco cervical16 . Sin embargo, los espermatozoides que no son aglutinados pasan a través de las trompas de Falopio a la cavidad peritoneal, pudiendo inducir fagocitosis por macrófagos; estos se desplazan hacia los órganos linfoides periféricos, activando, si los restos fagocitados conservan propiedades antigénicas, las células T y los linfocitos B12,16 . El plasma seminal contiene factores de leucocitos que permiten la quimiotaxis de los neutrófilos, atrayendo un gran número de estos al tracto femenino después del coito y la eyaculación. Estas células fagocitan y remueven los espermatozoides inmóviles del sitio de la inseminación20 ; una vez iniciada la respuesta inmunológica las relaciones sexuales posteriores actúan como un reestimulo, por lo tanto cuando la mujer se expone a antígenos espermáticos se producen títulos de anticuerpos insuficientes para causar infertilidad, pero pueden ser susceptibles a esta condición si se presenta un estímulo excesivo del sistema inmune16 . Esta causa puede Documento descargado de http://www.elsevier.es el 26/11/2016. Copia para uso personal, se prohíbe la transmisión de este documento por cualquier medio o formato. 574 estar asociada a un defecto en la presencia o respuesta de los factores inmunosupresores8,31 . Las mujeres en las que se dan altos títulos de anticuerpos antiespermatozoides presentan una inhibición significativa de la fecundación in vitro33 . Por lo anterior se logra deducir que la formación de AAE en hombres y mujeres puede estar asociada a una perturbación en los mecanismos inmunorreguladores normales o a una violación accidental, traumatismo físico, químico o infección iatrogénica de la barrera hematotesticular15 u obstrucción de los conductos del sistema reproductivo masculino9,19,20,31 , permitiendo el reconocimiento de los espermatozoides como antígenos extraños15,18,20,25,29 y desencadenando una respuesta inmune humoral con la subsecuente producción de AAE por los linfocitos B y una respuesta celular por la activación de linfocitos T, liberación de citocinas y activación del complemento9,16,17,20 . La aparición de estos anticuerpos como respuesta autoinmune en los hombres y aloinmune en las mujeres está asociada a infertilidad idiopática en humanos9,15,20,23 . La frecuencia de AAE en mujeres fértiles es del 1,4%, debido a la presencia de factores inmunosupresores en el fluido vaginal, mientras que en las mujeres infértiles es del 2%18,31 . En contraste, la incidencia de AAE es menor al 2% en suero, espermatozoides y moco cervical en hombres y mujeres fértiles, y en infértiles está en un rango del 5 a 25%8 . Anticuerpos antiespermatozoides: mecanismo de acción El sistema inmune tiene la función de identificar antígenos extraños, incluyendo antígenos del espermatozoide, y reaccionar a través de diversos mecanismos entre los que se incluyen la producción de anticuerpos12 . Los anticuerpos son los receptores de los antígenos y son las moléculas efectoras de la inmunidad humoral; la interacción de estos con los antígenos permite la activación y respuesta de los linfocitos B34 . Los anticuerpos son producidos por los linfocitos B y son expresados de 2 formas: a) unidos a la membrana del linfocito, como receptores de antígenos permitiendo una respuesta celular; o b) secretados se unen al antígeno desencadenando actividad del sistema inmune innato a través de mecanismos de neutralización, activación del complemento, opsonización de antígenos potenciando la fagocitosis, causando citotoxicidad mediada por células dependientes de anticuerpos34 . Existen 3 tipos estructurales de anticuerpos antiespermatozoides tipo inmunoglobulinas (Ig) en humanos: IgG, IgA y con menos frecuencia IgM debido a gran tamaño21,25 , los cuales son producidos en hombres y en mujeres por las propiedades autoantigénicas e isoantigénicas del espermatozoide13 . La cantidad y clase de AAE unidos al espermatozoide es importante debido a que cada AAE puede variar en su habilidad para deteriorar principalmente la unión del espermatozoide a la zona pelúcida del oocito23 . Los anticuerpos pueden adherirse independientemente de su tipo a sitios diferentes del espermatozoide17 y cada uno tiene especificidad por una región o toda la superficie del mismo21,25 . Los anticuerpos que reaccionan con la superficie del espermatozoide están asociados con la aglutinación B. Restrepo, W. Cardona Maya e inmovilización35 , inclusive diversos patrones de aglutinación se presentan en sueros de pacientes incubados con sus espermatozoides, uniéndose cabeza con cabeza, cola con cola, cabeza con cola y por la punta de la cola; esto indica que pueden existir diferentes autoantígenos espermáticos35 . Los AAE se unen a los antígenos en la región acrosomal, postacrosomal, región ecuatorial, pieza media y en la cola del espermatozoide20,25 . Si están dirigidos contra la cabeza pueden interferir en la reacción acrosomal o en la oclusión de los receptores externos de la membrana del espermatozoide para la unión a la zona pelúcida del oocito12,23,36 . Estos interfieren en la fecundación, mientras que la unión a la punta de la cola puede ser responsable de la disminución de la movilidad, causando un efecto deletéreo en su desplazamiento12,25 ; en presencia del complemento la actividad de los AAE se amplifica causando un efecto de inmovilización e interrumpiendo la integridad de la membrana del espermatozoide22 . Fisiopatología de los anticuerpos antiespermatozoides Los AAE tipo IgG presentes en el plasma seminal participan en la citoxicidad27,37 , activan la fagocitosis por macrófagos y el complemento, provocando la inactivación del espermatozoide8,36 . Se postula que este tipo de anticuerpos entran a través de un trasudado de la próstata, sin embargo han sido detectados en bajos niveles en el fluido de la rete testis y en el fluido epididimal de conejos20 . Por su parte, en la vagina se originan a partir de trasudados del útero, del endometrio y del fluido folicular31,32 . Aproximadamente el 1% de la IgG encontrada en suero está presente en secreciones del aparato reproductor masculino8 y se incrementa en el suero de hombres infértiles y sus parejas en el moco cervical, sugiriendo que estos anticuerpos se producen por contacto con antígenos de membrana expuestos después de la capacitación espermática37 . Los AAE tipo IgA han sido detectados en el plasma seminal de hombres infértiles20 ; el único sitio de unión de IgA es la cabeza del espermatozoide, causando un deterioro en la capacidad de fertilización25 . Estudios inmunohistoquímicos confirman la presencia de IgA polimérica en el cérvix31 , en las trompas de Falopio y en el tejido subepitelial del endocérvix, siendo estos fuente de secreción de IgA e IgG dentro del aparato reproductor femenino8 . La IgA secretora es producida en la mucosa cervical y no derivada de la circulación.8 Los AAE tipo IgM no son detectados usualmente en el plasma seminal humano20 ; en la vagina se detectan durante una inflamación31 y estos pueden disminuir la tasa de fecundación a un 44%25 . Las IgM son macroglobulinas capaces de unir antígenos con múltiples epítopes, unen complemento que puede mediar en la lisis de las células, tienen eficiente capacidad de aglutinación y disminuyen la movilidad del espermatozoide25 , de manera similar la unión de la IgA con el espermatozoide en el moco cervical disminuye la capacidad de desplazamiento progresivo del espermatozoide17,27 . Las IgM se unen a la cabeza y a la cola disminuyendo drásticamente la fecundación del espermatozoide25 . Los AAE tipo IgM se producen en las primeras etapas de la respuesta del sistema inmune ante la exposición a antígenos Documento descargado de http://www.elsevier.es el 26/11/2016. Copia para uso personal, se prohíbe la transmisión de este documento por cualquier medio o formato. Anticuerpos antiespermatozoides y su asociación con la fertilidad del espermatozoide y disminuyen progresivamente, posteriormente cambian a otros isotipos (IgG, IgA) por parte de los linfocitos B. Los anticuerpos IgG se elevan y se mantienen en suero durante un largo período, y en el caso de IgA en parejas infértiles está aumentado comparado con parejas fértiles12 . Una vez producidos los AAE se pueden encontrar en el plasma sanguíneo por extravasación de antígenos espermáticos a la circulación periférica, resultando en una inmunización sistémica, y en el plasma seminal por producción local o por paso de anticuerpos séricos al plasma o en secreciones cervicovaginales9,15,18 . En el hombre y en la mujer con autoinmunidad puede haber una extravasación de antígenos espermáticos del plasma seminal y del moco cervical a la circulación periférica a su pareja fértil37 . Debido a la baja cantidad de pacientes con presencia de AAE no se han obtenido estadísticas significativas que indiquen la relevancia en el isotipo de anticuerpo y su ubicación una vez unidos al espermatozoide, sin embargo se reporta que cuando al menos el 50% de espermatozoides móviles son cubiertos con anticuerpos tipo IgA hay interferencia en la movilidad, y estos pueden directamente bajar la tasa de fecundación25,38 . Los epítopes antigénicos se unen más al IgA local que a IgG en hombres infértiles y sus parejas, donde hay una disminución en la densidad de membrana de espermatozoides capacitados, además IgG tiene un nivel más bajo de reactividad contra antígenos espermáticos; los hombres infértiles posiblemente presentan predisposición antigénica antes de la capacitación debido a una aberración inherente o a capacitación prematura, sugiriendo que los espermatozoides de los hombres infértiles presentan pérdida prematura del acrosoma, lo que llevaría a una exposición de antígenos nuevos al sistema inmune. Los espermatozoides no capacitados estimulan una fuerte reacción de los AAE en el suero y plasma seminal de parejas infértiles; esta reactividad se aumenta con la capacitación por la posible aparición de antígenos nuevos37 . Además, el semen de hombres infértiles contienen linfocitos y macrófagos activados20 , los efectos de los productos de dichas células afectan la viabilidad, movilidad y penetración al oocito del espermatozoide20 , lo que indica que la inmunidad celular puede desempeñar un papel significativo en la infertilidad masculina9,20 . Los anticuerpos en suero en las mujeres son principalmente IgG y en la secreción genital predomina la IgA; después de la formación de microlesiones en el epitelio genital y exposición a los antígenos del espermatozoide después del coito se pueden activar los linfocitos B subepiteliales encargados de producir IgA en el tracto genital8 ; la administración oral y rectal de esperma resulta en la producción de anticuerpos en las secreciones genitales de roedores y en los sueros de los hombres homosexuales8 . Por su parte, el complemento elimina materiales extraños mejorando la destrucción y limpieza de aloantígenos y autoantígenos del espermatozoide27 ; la cascada de complemento se ha demostrado en moco cervical y en fluidos foliculares tubulares y uterinos27 . La activación de complemento por los AAE resulta en lesión inmune al espermatozoide en el tracto femenino29 . Los componentes del complemento son originados por las células del endometrio, moduladas por hormonas gonadales y citocinas, tanto el epitelio cervical como las secreciones uterinas proveen al moco cervical el complemento indicado para la 575 reacción citolítica29 . Los componentes del complemento C3 y C4 están presentes en el semen de hombres infértiles, pero en hombres fértiles es poco probable encontrarlos; el fluido folicular deposita C5b, este puede alterar la homeostasis del calcio, lo que afecta a la movilidad del espermatozoide, la reacción acrosomal y en última instancia la fertilización de oocito25 . Otros componentes de la cascada de complemento no han sido medidos y no están presentes en el plasma seminal para la lisis mediada por anticuerpos, incluso si estuvieran presentes los inhibidores del complemento que están en la secreción genital suprimirían su actividad20 . Proteínas inhibidoras de complemento, como MCP (membrane cofactor protein, CD46), decay accelerating factor ([DAF], CD55) y P18 (CD59) presentes en el acrosoma protegen los espermatozoides contra el ataque del complemento en el tracto reproductivo masculino27,39 . Para determinar la presencia de AAE y su relación con la reproducción se han realizado análisis en sueros de hombres y mujeres fértiles e infértiles en diferentes investigaciones; estos han arrojado niveles de anticuerpos que reaccionan con al menos un antígeno del espermatozoide8,20,21,28,40 . La presencia de AAE en hombres y mujeres fértiles puede reflejar un fenómeno fisiológico normal8,21,37,40 . La detección de AAE en suero y en secreciones genitales y su relación con la infertilidad inmunológica ha sido investigada empleando métodos de aglutinación, inmovilización de espermatozoides, técnicas de inmunotransferencia, ensayo de unión a inmunoesferas (IBT) e inmunofluorescencia indirecta (IFI). Antígenos El espermatozoide presenta antígenos en la periferia e integrados en la membrana, estos están distribuidos en la cabeza, el acrosoma y la cola, en el líquido seminal; algunos de estos antígenos pueden encontrarse en otras células del cuerpo y otros son específicos del espermatozoide9 . Varios antígenos específicos de los espermatozoides han sido identificados18,20,21 y otros se investigan con anticuerpos monoclonales específicos20 . Entre los antígenos del espermatozoide los de la membrana pueden ser expresados de forma limitada en otros tejidos como la placenta, los ovarios, el cerebro y los tejidos neoplásicos20,21 . Los antígenos del complejo mayor de histocompatibilidad que pueden estimular respuesta inmune en mujeres activas sexualmente no son expresados en el espermatozoide20 . Los espermatozoides presentan antígenos que aparecen en las diferentes etapas de desarrollo. Estos antígenos, que están presentes desde el origen del espermatozoide y que se adhieren después de la eyaculación, están involucrados en el proceso de maduración y fecundación, además actúan como protectores ante el sistema inmune del tracto reproductor femenino9 . La capacitación de los espermatozoides es un proceso importante para la fecundación; en esta ocurre el desprendimiento de antígenos del acrosoma, organización de los antígenos de superficie y es activada la movilidad del espermatozoide. Estos cambios que se derivan de la capacitación pueden activar la respuesta de los anticuerpos37 . Los espermatozoides de personas infértiles contiene además de antígenos normales antígenos especiales que reaccionan con Documento descargado de http://www.elsevier.es el 26/11/2016. Copia para uso personal, se prohíbe la transmisión de este documento por cualquier medio o formato. 576 el suero autoinmune, lo que indica la inhabilidad de demostrar las diferencias significativas en las reacciones del suero de hombres fértiles e infértiles con antígenos de espermatozoides normales21 . La membrana del espermatozoide está compuesta por un conjunto de proteínas, oligosacáridos y lípidos, los cuales están involucrados en diferentes mecanismos previos a la fertilización, incluido el reconocimiento del espermatozoide al oocito, además pueden ser estimulantes de la producción de AAE40 . Entre estos antígenos se encuentran la acrosina12,18 , un glucopéptido de 15 KDa que reacciona con anticuerpos inmovilizadores, un polipéptido de 14 KDa que está presente en individuos clasificados como infértiles idiopáticos21 , proteínas nucleares autoantigénicas (NASP) de unión a las histonas que afectan la tasa de fecundación12 , antígenos H-Y, hialuronidasa, protaminas, ADN polimerasa18 , antígeno específico de fertilización (FA-1)9,12,24,28,41 y la secuencia de péptido dodecámero (YLPVGGLRRIGG designado como YLP12) involucrados en la unión del espermatozoide y el oocito12,18,41 , proteínas de choque térmico (HSP70, HSP90) presentes en la superficie del espermatozoide33 y fenotipos de antígenos leucocitarios humanos A28 y Bw22 (influencia genética en la respuesta inmune)8 . Detección de anticuerpos antiespermatozoides Los AAE pueden ser detectados de forma directa sobre la membrana de los espermatozoides o indirectamente en el suero, el moco cervical, el fluido folicular o el plasma seminal42 . El ensayo de evaluación de los AAE directo se realiza mediante una prueba de reacción antiglobulinas mezcladas (MAR-test) o un ensayo directo de inmunoesferas (D-IBT)15,42,43 . Ambas metodologías son recomendadas por la OMS en su último manual44,45 . Brevemente, la muestra de espermatozoides es mezclada con la suspensión de la antiglobulinas o inmunoesferas, se incuba y se evalúa la interacción con los espermatozoides. En los casos de la evaluación indirecta los espermatozoides son preincubados con el líquido donde se desea evaluar la presencia de los AAE. La otra posibilidad para evaluar la presencia de AAE en un fluido es la prueba de inmovilización de espermatozoides, la cual detecta anticuerpos que inmovilizan los espermatozoides indirectamente en un fluido y requiere de complemento para que se pueda dar la reacción de inmovilización (revisado en Shibahara H et al.42 ). Tratamiento de los anticuerpos antiespermatozoides La evaluación de la presencia AAE es recomendable en los casos en los que no se encuentra alteración en la mujer y además el espermograma no presenta cambios importantes, teniendo en cuenta que en algunos casos no será el único factor causal de la infertilidad8 . Una vez identificados los AAE como causantes de la infertilidad se emplean diversos protocolos terapéuticos que actúen sobre esta reacción46 . Los tratamientos propuestos para superar los efectos causados por lo AAE incluyen el uso del B. Restrepo, W. Cardona Maya condón, la terapia inmunosupresiva con corticoesteroides, la transferencia intrafalopiana de gametos, el lavado de espermatozoides combinado con la inseminación intrauterina e inseminación artificial intrauterina8,17 . El uso del condón como tratamiento reduce el contacto que tiene la mujer con los espermatozoides después del coito, con el propósito de disminuir la activación del sistema inmunitario en la mujer; sin embargo, la suspensión del condón después de un uso prolongado no asegura que se mejoren las tasas de fecundación en una persona con infertilidad inmunológica8,23,30 . De otro lado, la terapia inmunosupresora con corticoesteroides se ha empleado para mejorar la fertilidad de parejas que presentan AAE, disminuyéndolos y aumentando la probabilidad del embarazo8,23,46 , sin embargo puede no tener efecto en pacientes con AAE unidos a los espermatozoides8 . La terapia presenta efectos adversos a largo plazo, entre los que se encuentran necrosis aséptica de la cadera, exacerbación de las úlceras duodenales y efectos cardiovasculares8 . El lavado de los espermatozoides es otro método empleado para remover los AAE de la superficie del espermatozoide, sin embargo no resulta eficiente por la alta afinidad que tienen los AAE con los antígenos espermáticos8,32 , además pueden causar pérdida irreversible de la movilidad del espermatozoide. Este método logra reducir la unión del espermatozoide con AAE, pero no mejora las tasas de embarazo8 . La transferencia intrafalopiana de gametos (GIFT) e inseminación artificial intrauterina (IUI) son métodos empleados para tratar a pacientes con infertilidad asociada a AAE46 , sin embargo cuando más del 80% de la superficie total del espermatozoide está unida a IgA e IgG hay bajas tasas de fertilización in vitro8 . La IUI se ha empleado en pacientes con AAE en el moco cervical; el 15% de estos conciben un embarazo después de varios ciclos de este tratamiento8,46 . El tratamiento basado en la GIFT34 se ha empleado en parejas donde los hombre tiene más de 70% de AAE tipo IgG e IgA unidos a la superficie del esperma, sin embargo si estos están ubicados en la cabeza del espermatozoide impide la fertilización in vitro, diferente a lo que ocurre si están ubicados en la cola8 . Conclusión En conclusión la presencia de AAE en hombres y mujeres es un factor que afecta de forma negativa la fertilidad; la infertilidad inmunológica causada por AAE es el resultado de la interferencia de estos anticuerpos en las diferentes etapas de la fecundación, debido a la exposición de los antígenos del espermatozoide al sistema inmune por alteración de los mecanismos inmunorreguladores en el testículo. Esta causa de infertilidad debe ser evaluada con el objetivo de conocer los mecanismos de acción de los anticuerpos e identificar cómo afecta a la fertilidad, y así poder proporcionar un adecuado tratamiento en cada pareja en particular, debido a que no siempre los AAE son la causa de problema reproductivo. Conflicto de intereses Los autores declaran que no tienen ningún conflicto de intereses. Documento descargado de http://www.elsevier.es el 26/11/2016. Copia para uso personal, se prohíbe la transmisión de este documento por cualquier medio o formato. Anticuerpos antiespermatozoides y su asociación con la fertilidad Agradecimientos A la Universidad de Antioquia, Programa Sostenibilidad 20122013. Bibliografía 1. WHO. Infertility. 2012 [consultado 5 Sep 2012]. Disponible en: http://www.who.int/topics/infertility/en/ 2. Ombelet W, Cooke I, Dyer S, Serour G, Devroey P. Infertility and the provision of infertility medical services in developing countries. Hum Reprod Update. 2008;14:605---21. 3. Proyecto de ley N.◦ 107 2009 por la cual se reconoce la infertilidad como una enfermedad, se autoriza su inclusión en el Plan Obligatorio de Salud y se dictan otras disposiciones. 4. Cardona Maya W. Current definition and treatment of premature ejaculation. Arch Esp Urol. 2010;63:53---5. 5. Cardona Maya W, Rugeles MT, Cadavid AP. Interacción entre espermatozoides humanos y el virus de la inmunodeficiencia humana. Actas Urol Esp. 2009;33:223---6. 6. Cardona-Maya W, Velilla P, Montoya CJ, Cadavid A, Rugeles MT. Presence of HIV-1 DNA in spermatozoa from HIV-positive patients: changes in the semen parameters. Curr HIV Res. 2009;7:418---24. 7. Cardona-Maya W, Velilla PA, Montoya CJ, Cadavid Á, Rugeles MT. In vitro human immunodeficiency virus and sperm cell interaction mediated by the mannose receptor. J Reprod Immunol. 2011;92:1---7. 8. Marshburn PB, Kutteh WH. The role of antisperm antibodies in infertility. Fertil Steril. 1994;61:799---811. 9. Vivas AG, Lozano HJ, Velasco J. Regulación inmuno-testicular y citocinas. Invest Clin. 2007;48:107---21. 10. De los Rios J, Cardona WD, Berdugo JA, Correa C, Arenas A, Olivera-Angel M, et al. Los valores espermáticos de 113 individuos con fertilidad reciente no mostraron correlación con los parámetros establecidos por la OMS. Arch Esp Urol. 2004;57:147---52. 11. Cardona Maya WD, Berdugo Gutiérrez JA, De los Ríos J, Cadavid Jaramillo AP. Functional evaluation of sperm in Colombian fertile men. Arch Esp Urol. 2007;60:827---31. 12. Mutar Mahdi B, Kamieniczna M, Domagala A, Kurpisz M. Frequency of antisperm antibodies in infertile women. J Reprod Infertil. 2011;12:261---5. 13. Naz RK. Antisperm contraceptive vaccines: where we are and where we are going? Am J Reprod Immunol. 2011;66:5---12. 14. Mayorga Torres BJM, Cardona-Maya W, Cadavid A, Camargo M. Evaluación de los parámetros funcionales del esperma en individuos infértiles normozooespérmicos. Actas Urol Esp. 2013;37:221---7. 15. Oliveros SY, Mallea Sánchez L, Frontela Noda M, Machado Curbelo AJ. Anticuerpos antiespermatozoides en parejas con infertilidad de causa no explicada. Rev Cubana Endocrinol. 2000;11:11---7. 16. Rivera JG, Matte J. Fenomenos inmunológicos en la infertilidad. Rev Clin Esp. 1971;122:1---4. 17. Esteves SC, Schneider DT, Verza Jr S. Influence of antisperm antibodies in the semen on intracytoplasmic sperm injection outcome. Int Braz J Urol. 2007;33:795---802. 18. Henao IS, Cadavid AP, Ossa JE. Autoanticuerpos antiespermatozoides e infertilidad. Iatreia. 1997;10:52---8. 19. Zini A, Fahmy N, Belzile E, Ciampi A, Al-Hathal N, Kotb A. Antisperm antibodies are not associated with pregnancy rates after IVF and ICSI: systematic review and meta-analysis. Hum Reprod. 2011;26:1288---95. 20. Alexander NJ, Anderson DJ. Inmunology of semen. Steril Fertil. 1987;47:192---205. 577 21. Shai S, Naot Y. Identification of human sperm antigens reacting with antisperm antibodies from sera and genital tract secretions. Fertil Steril. 1992;58:593---8. 22. Alexander NJ. The effects of antibody sperm-egg interaction. Ann N Y Acad Sci. 1988;541:317---23. 23. Jaimes K, Hargreave TB. Immunosuppression by seminal plasma and its possible clinical significance. Immunol Today. 1984;5:352---63. 24. Menge AC, Christman GM, Ohl DA, Naz RK. Fertilization antigen1 removes antisperm autoantibodies from spermatozoa of infertile men and results in increased rates of acrosome reaction. Fertil Steril. 1999;71:256---60. 25. Yeh WR, Acosta AA, Seltman HJ, Doncel G. Impact of immunoglobulin isotype and sperm surface location of antisperm antibodies on fertilization in vitro in the human. Fertil Steril. 1995;63:1287---92. 26. Cardona Maya WD, Cadavid Jaramillo AP. Complementariedad intergametos: breve revisión. Arch Esp Urol. 2004;57: 1107---12. 27. Chowdhury NA, Kamada M, Takikawa M, Mori H, Gima H, Aono T. Complement-inhibiting activity of human seminal plasma and semen quality. Arch Androl. 1996;36:109---18. 28. Diekman AB, Goldberg E. Characterization of a human antigen with sera from infertile patients. Biol Reprod. 1994;50: 1087---93. 29. Anderson DJ, Hill JA. Immunological aspects of the reproductive organs and implications of intercourse. Curr Opin Immunol. 1989;1:1119---24. 30. Beer AE, Neaves WB. Antigenic status of semen from the viewpoints of the female and male. Fertil Steril. 1978;29:3---22. 31. Naz RK, Menge AC. Antisperm antibodies: origin, regulation, and sperm reactivity in human infertility. Fertil Steril. 1994;61:1001---13. 32. Chamley LW, Clarke GN. Antisperm antibodies and conception. Semin Immunopathol. 2007;29:169---84. 33. Naaby-Hansen S, Herr JC. Heat shock proteins on the human sperm surface. J Reprod Immunol. 2010;84:32---40. 34. Abbas KA, Lichtman HA, Pober SJ. Inmunología celular y molecular, 43---44, 4.a ed España: Madrid; 2010, 58, 438-9. 35. D’Almeida M, Lefroit-Joliy M, Voisin GA. Studies on human spermatozoa autoantigens. I. Fractionation of sperm membrane antigens: evidence of three antigenic systems. Clin Exp Immunol. 1981;44:359---67. 36. Dor J, Rudak E, Aitken RJ. Antisperm antibodies: their effect on the process of fertilization studied in vitro. Fertil Steril. 1981;35:535---41. 37. Wingate EW, Patrick RT, Mathur S. Antigens in capacitated spermatozoa eliciting autoimmune responses. J Urol. 1993;149 5 Pt 2:1331---7. 38. Abshagen K, Behre HM, Cooper TG, Nieschlag E. Influence of sperm surface antibodies on spontaneous pregnancy rates. Fertil Steril. 1998;70:355---6. 39. D’Cruz OJ, Haas GGJ. The expression of the complement regulators CD46, CD55, and CD59 by human sperm does not protect them from antisperm antibody- and complement-mediated immune injury. Fertil Steril. 1993;59:876---84. 40. Paradisi R, Bellavia E, Pession AL, Venturoli S, Bach V, Flamigni C. Characterization of human sperm antigens reacting with antisperm antibodies from autologous sera and seminal plasma: comparison among infertile subpopulations. Int J Androl. 1996;19:345---52. 41. Williams J, Samuel A, Naz RK. Presence of antisperm antibodies reactive with peptide epitopes of FA-1 and YLP12 in sera of immunoinfertile women. Am J Reprod Immunol. 2008;59:518---24. 42. Shibahara H, Koriyama J. Methods for direct and indirect antisperm antibody testing. Methods Mol Biol. 2013;927:51---60. Documento descargado de http://www.elsevier.es el 26/11/2016. Copia para uso personal, se prohíbe la transmisión de este documento por cualquier medio o formato. 578 43. Shibahara H, Shiraishi Y, Suzuki M. Diagnosis and treatment of immunologically infertile males with antisperm antibodies. RMB. 2005;4:133---41. 44. Cardona Maya W. Manual de procesamiento de semen humano de la Organización Mundial de la Salud-2010. Actas Urol Esp. 2010;34:577---8. B. Restrepo, W. Cardona Maya 45. WHO. Laboratory manual for the examination and processing of human semen. Ginebra: Organización Mundial de la Salud; 2010. 46. Dondero F, Lenzi A, Gandini L, Lombardo F. Immunological infertility in humans. Exp Clin Immunogenet. 1993;10: 65---72.