Retos del monitoreo de Florecimientos Algales Nocivos

2ª CONFERENCIA NACIONAL DEL PROGRAMA MEXICANO DE SANIDAD DE
MOLUSCOS BIVALVOS
9 al 11 de marzo de 2016
San José del Cabo, B.C. S.
Retos para el monitoreo de las comunidades
fitoplanctónicas: hacia la estandarización de métodos
Dra. Christine Band-Schmidt- IPN-CICIMAR
Dra. Mary Carmen Ruiz de la Torre – FCM, UABC
10 de marzo de 2016
Sugerencias al ¨LINEAMIENTO DE TRABAJO PARA EL
MUESTREO DE FITOPLANCTON Y DETECCIÓN DE BIOTOXINAS
MARINAS¨ de la COFEPRIS como parte de los acuerdos
de la 1a Conferencia Nacional del PMSMB en el 2014.
(COS-DEPE-P-01-PO1-05-L-01)
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Aspectos nocivos e impactos de los FAN
TÓXICOS
Producción de metabolitos nocivos
NO TÓXICOS
Mecánicos y biológicos
Déficit de
oxígeno
Obstrucción
de branquias
Atenuación
de la luz
Síndromes de intoxicación
Diatomeas
ASP
Dinoflagelados
PSP
NSP
CFP
DSP
Intoxicación paralizante por consumo de mariscos – Saxitoxina
Intoxicación amnésica por consumo de mariscos – Acido domoico
Intoxicación diarreica por consumo de mariscos – Acido okadaico
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Programa de monitoreo y alerta temprana
Objetivos académicos de un programa de monitoreo:

Establecer conocimiento básico sobre la estructura y función del ecosistema.

Conocer de forma detallada la respuesta de los diversos ecosistemas a la eutroficación
o eventos físicos y biológicos.

Establecer patrones y tendencias de las poblaciones fitoplanctónicas.
•
Prevenir la intoxicación por el consumo de moluscos bivalvos –SALUD-
•
Minimizar los daños de los recursos vivos –AMBIENTE-
•
Minimizar pérdidas en la industria acuícola, de pescadores, industria turística – ECONÓMICO-
Salud
Ambiente
Socioeconómica
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LINEAMIENTO DE TRABAJO PARA
EL MUESTREO DE FITOPLANCTON
Y DETECCIÓN DE BIOTOXINAS
MARINAS
COS-DEPE-PO1-05-L-01
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6.4 Implementación de las técnicas de muestreo
* Se requiere un orden en los procedimientos y descripción del tipo de muestra.
Análisis cualitativo
Análisis cuantitativo
 Toma de la muestra
 Lectura de la muestra
 Análisis de la muestra
Red de fitoplancton con luz de
malla de 20 micras.
Botella
muestradora
a
profundidades específicas.
Estimar abundancias relativas
(%) de las especies. Deberán
estimarse después de realizar
un conteo en cámaras de
Uthermöl o de SedgwickRafter.
Cuantificación
e
identificación
(cel/L)
de
especies
en
cámara
de
Uthermöl o Sedgwick-Rafter.
Los laboratorios que realicen una evaluación cualitativa y cuantitativa
deben de contar con personal capacitado en taxonomía de fitoplancton.
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Red
No da información cuantitativa (es
selectivo (tamaño de malla),
volumen de agua filtrada incierta)
No da información de distribución
vertical de las especies.
La información es CUALITATIVA:
presencia/ausencia, % relativa.
Da información de especies poco
abundantes.
No es útil con especies delicadas.
Botellas muestreadoras
Da información CUALITATIVA
(cel/ml).
Información de distribución
vertical.
Bajo costo.
No da información de especies
poco abundantes.
7.1 Observaciones cualitativas in situ de fitoplancton
7.1.2. Procedimiento para la toma de muestra de agua con red y
determinación in situ.
 Capilar plano - Método impreciso que solo proporcionará una idea de las
especies presentes. No se recomienda su uso.
 No se debe clasificar la abundancia de las especies en muchas, pocas o
escasas. Determinar su abundancia relativa (%).
 No es posible revisar muestras en campo ya que se requiere de una superficie
nivelada, solo se puede tener un análisis cualitativo en el laboratorio en caso
de un FAN, pero no durante un monitoreo normal.
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7.2 Muestreo de agua de mar para análisis cuantitativo de
fitoplancton con cámaras Sedgewick-Rafter.
 Para análisis cuantitativos se requiere la toma de muestras con botella
oceanográfica (Niskin, Van Dorn, etc.).
 El tubo o manguera muestreadora sólo se recomienda para lugares con
poca turbulencia. Es preferible usar una botella.
 Dependiendo de la abundancia y del tamaño de los organismos los
conteos y la identificación se deberá hacer con cámaras de SedgewickRafter (de 50 a 500 µm) o de Uthermöl (de 2 a 500 µm).
 Si el tamaño del organismo lo permite el conteo con cámaras de
Sedgewick-Rafter debe hacerse para muestras que provengan de un
evento de FAN, no durante un monitoreo rutinario.
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7.2.4 Análisis cuantitativo de fitoplancton a través del Método
Utermöhl.
 El análisis por Uthermöhl debe hacerse para muestras de agua
tomadas con botella (Niskin) de cierta profundidad.
 Un monitoreo de rutina debe de realizarse con el método
Uthermöhl y reportarse ya sea como abundancia relativa en
porcentaje o como células por ml.
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9. Límites máximos permisibles
máximos de fitoplancton toxico y
biotoxinas marinas
Tabla 2
Yesotoxinas
Azaspirácidos
no son toxinas diarreicas, son
toxinas lipofílicas.
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
9.2 Limites permisibles máximos permisibles de fitoplancton
toxico en agua de mar

Tabla 3.
Cel/L
Alexandrium spp
1000
Pyrodinium bahamense var. compressum
5000
Gymnodinium catenatum
5000
Dinophysis sp.
200
Prorocentrum lima, P. concavum
200
Pseudonitzschia spp
Karenia brevis
50,000
5000
 Una veda sanitaria no puede establecerse en base al número de células de una
especie.
 La abundancia no tiene una relación lineal con la cantidad de toxinas en
moluscos.
 Al presentarse una especie toxica se debe hacer el seguimiento.
 Faltan especies: Chattonella sp., Fibrocapsa japonica, Cochlodinium sp., P.
lima, Gambierdiscus sp., Coolia sp.,cianobacterias.
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 Se sugiere hacer una lista de especies por regiones geográficas
del país.
Observación de muestras vivas
Chattonella sp.
Fibrocapsa
japonica
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Monitoreo de las comunidades fitoplanctónicas
RUTINA
• Ausencia de fitoplancton nocivo.
• Ausencia de ficotoxinas en tejidos de
organismos marinos.
VIGILANCIA
• Parámetros
ambientales
(temperatura,
nutrientes, pigmentos (imágenes de satélite).
• Toxinas presentes por debajo de los límites
regulatorios.
• Presencia de especies de fitoplancton nocivos.
ALERTA
• Toxinas presentes por arriba de los límites de
regulación.
• Comportamiento de la vida silvestre que indique
síntomas de intoxicación.
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Monitoreo de las comunidades fitoplanctónicas
MONITOREO DE RUTINA
MONITOREO DE VIGILANCIA
Cuantitivas
• Toma
directa
o
con
botella
oceanográfica.
• Vigilar cambios en la temperatura del agua
u otras variables locales.
• Conteo por técnica de Uthermöhl.
• Toma directa o con botella oceanográfica.
Cualitativas
• Arrastre verticales y circulares por lo menos 5
• Arrastre verticales y circulares por lo
minutos con red de 20 micras.
menos 5 minutos con red de 20 micras.
• Técnica Uthermöhl para conteo.
• Abundancia
relativa
(técnica
de
Uthermöhl).
MONITOREO DURANTE UN FAN
• Conteo mediante técnica de Uthermöhl o con la
cámara de
Sedgwick-Rafter (si el tamaño del
organismo lo permite).
• Identificación taxonómica por personal capacitado.
• Cuantificación de toxinas.
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Recomendaciones
DATOS
ADICIONALES
Para un monitoreo preciso es
necesario que cada productor
reporte las condiciones presentes
cuando se tomó la muestra.
Punto de muestreo
Temperatura del agua
Salinidad
Nubosidad
Oleaje
Otros
MANEJO DE LA
MUESTRA
- Tomar muestras correctamente.
- Fijar la muestra con suficiente
lugol.
- Etiquetar muestra con toda la
información (lugar, fecha,
profundidad).
- Transportar en oscuridad y a
temperatura ambiente o en
fresco (SIN CONGELAR).
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Academia
•
Necesitamos llevar a cabo estudios
multiparámetricos, a multiescala y
Sector productivo
multidisciplinarios.
Autoridades sanitarias
Sociedad
•
Determinar
los
factores
que
determinan la ocurrencia de FAN.
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Manejo de la Información
Muestras
MUESTREO
- Fitoplancton
- Moluscos bivalvos
- Parámetros ambientales
Pescadores
Autoridades
Consultores
Análisis de muestras
- Identificación y cuantificación de
muestras de fitoplancton.
- Mediciones de toxicidad
Pescadores
Autoridades
Consultores
Datos
Evaluación de resultados
Comunicación de la información
Planes de acción / Medidas de mitigación
Autoridades
y consultores
Industria
pesquera
Acuacultores
Autoridades
Público general
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RECOMENDACIONES ADICIONALES
- Evitar la traducción literal
cualificación, implantación).
del
ingles
(Ejemplo:
Veneno,
- Especificar y dar la referencia de las pruebas rápidas de toxinas.
- Los métodos deben poder adaptarse a diferentes regiones
geográficas del país.
- Generar una ruta crítica para la toma de muestras de rutina,
durante un monitoreo, una alerta temprana y durante la presencia
de un FAN.
- Actualizar referencias bibliográficas.
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MESA DIRECTIVA
Dra. Mary Carmen Ruiz de la Torre-Presidenta
mary.ruiz@uabc.edu.mx
Dra. Christine Band-Schmidt-Tesorera
Dra. Ivonne Sandra Santiago Morales-Vicepresidenta
Dr. Carlos Poot Delgado-Secretario
Vocales
Dr. José Jesús Bustillos Guzmán
Dr. José Antolín Aké Castillo
Dra. María Esther Meave del Castillo
Dr. Aramis Olivos Ortíz
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Recomendaciones
Durante monitoreo de rutina y un FAN
Muestras de botella (Niskin), u otra botella.
ANÁLISIS
CUANTITATIVO
UTHERMöHL
Muestras
de red
Observadas en
Cámaras Uthermöhl,
diferentes volúmenes
y tiempo de
sedimentación
Reportar cel/ml.
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¿Por qué es importante llevar a cabo un monitoreo
fitoplanctónico y quienes están involucrados?
Evitar efectos negativos a la salud pública (AUTORIDADES DE SALUD)
Minimizar perdidas en las actividades económicas costeras (PRODUCTORES, SECTOR TURISMO)
Establecer un conocimiento básico sobre la función del ecosistema (ACADEMIA)
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Recomendaciones
Durante la presencia de un FAN
Muestras de red
ANÁLISIS
CUALITATIVO
Muestras
de red
Observadas
en SedgwickRafter
Reportar
% de abundancia
relativa de
especies.
Actual formato
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7.1 Cualificación in situ de fitoplancton – Bajo que condiciones
7.1.1. Material y equipo necesario para la cualificación
CUALITATIVO in situ de fitoplancton.
 Especificar el tipo de red desde el inicio (tamaño de luz de malla)
20 micras.
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